
Нарушения минерального обмена при заболеваниях роговицы
Журнал: Вестник офтальмологии. 2022;138(5-2):247-252.
DOI: 10.17116/oftalma2022138052247
Прочитано: 3564 раза
Резюме
Функциональное состояние и биологические свойства соединительных тканей во многом предопределяются минеральными химическими элементами, участвующими в их метаболизме. Соединительно-тканная строма роговицы составляет большую часть ее толщины; ряд заболеваний роговицы обусловлен патологическими изменениями коллагеновых волокон и основного вещества; некоторые заболевания роговицы прямо ассоциированы с нарушениями минерального обмена. В статье рассмотрены нарушения минерального метаболизма как возможные механизмы патогенеза отдельных заболеваний и патологических состояний роговицы; детально отражены изменения в отношении минеральных веществ, выявленные при кератоконусе.
Ключевые слова
- кератоконус
- кольцо Флейшера
- цинк
- медь
- железо
Дата поступления: 21.03.2022
Дата принятия в печать: 12.04.2022
Дата публикации: 26.10.2022
Соединительная ткань является морфологической основой роговицы, образуя ее строму и пограничные мембраны. Строма (собственное вещество) роговицы составляет около 90% всей ее толщины, включает клеточные элементы (в основном кератоциты) и межклеточное вещество (внеклеточный матрикс). Межклеточное вещество состоит из основного вещества и волокнистых структур: коллагеновые волокна пространственно организованы в пластины и погружены в бесструктурное основное вещество. Основное вещество высоко гидратировано и сформировано молекулами гликозаминогликанов (мукополисахариды), протеогликанов и гликопротеинов (гликопротеиды). Передняя и задняя пограничные мембраны, боуменова и десцеметова мембраны представлены преимущественно коллагеновыми фибриллами [1—3]. Известно, что функциональное состояние и биофизические характеристики соединительнотканных структур, а соответственно, и роговицы, во многом зависят от некоторых минеральных химических элементов и их метаболизма.
Роль минеральных элементов в метаболизме соединительной ткани
Биологически значимые минеральные элементы (макро-, микро- и ультрамикроэлементы) играют ключевую роль в нормальной физиологии соединительных тканей и образованных ими органов и структур. Эссенциальные и условно эссенциальные минеральные элементы, в том числе ионы металлов, являются ингибиторами или кофакторами ферментов, модулирующих метаболизм основного вещества, коллагеновых и эластиновых волокон. Прежде всего к таким элементам относят магний, кальций, медь, цинк, марганец и бор — наличие, концентрация и биологическая доступность которых определяют скорость ферментативных реакций за счет активирования или ингибирования соответствующих энзимов [4, 5].
В обмене коллагена участвуют такие металлозависимые ферменты ката- и анаболизма, как коллагеназы и металлопротеиназы, а также гидроксилазы, лизилоксидаза и гликозилтрансферазы. Цинк содержится в активном центре тканевой коллагеназы и матриксных металлопротеиназ, ферментирующих лизис белков межклеточного вещества, в том числе коллагена. Железо входит в состав активного центра гидроксилаз пролина и лизина, участвующих в посттрансляционных модификациях препропептидов коллагена. Медь содержится в структуре лизилоксидазы, необходимой для стабилизации внеклеточного матрикса за счет формирования «поперечных» ковалентных связей между молекулами тропоколлагена. Марганец является кофактором гликозилтрансфераз, участвующих в посттрансляционной модификации коллагена (гликозилирование гидроксилизина в молекулах коллагена), обеспечивающей формирование дисульфидных мостиков между α-цепями коллагена. Медь и железо выступают в роли ингибиторов гиалуронидаз, под действием которых снижается вязкость гликозаминогликанов межклеточного вещества; известно, что за счет изменения физико-химических свойств гликозаминогликанов основного аморфного вещества осуществляется модулирование биомеханических свойств и транспорта веществ в основном веществе соединительной ткани. Медь, цинк и марганец являются кофакторами супероксиддисмутаз — основных факторов антиоксидантной защиты, которые предотвращают развитие окислительного стресса в тканях и защищают их от токсического действия активных форм кислорода. В отсутствие перечисленных минеральных элементов происходит нарушение синтеза, распада и функционирования коллагена и соединительной ткани в целом [5—7].
Нарушения минерального обмена при заболеваниях роговицы
К настоящему времени о физиологической роли биологически значимых минеральных компонентов, входящих в состав тканей роговицы, известно немногое. Относительно минерального состава ранее сообщалось только о том, что из ионов металлов роговица человека содержит цинк [8]. С развитием методов элементного анализа еще несколько металлов определены в здоровых тканях роговицы мелких млекопитающих (крысы), преимущественно кальций и цинк, а также железо и медь [9].
О непосредственной роли минеральных элементов в патофизиологии роговицы также известно относительно немного. Вместе с тем стало очевидным, что нарушения минерального обмена на системном уровне являются причиной патологических изменений роговицы, а на местном — проявляются симптоматически при некоторых ее заболеваниях.
В литературе имеются немногочисленные данные об изменениях роговицы при нутритивной недостаточности минеральных элементов. Так, при нехватке магния в пище у крыс ученые наблюдали повышение концентраций кальция в плазме крови, патологические изменения эпителиоцитов и эндотелиоцитов роговицы, отложения депозитов высокой плотности и макрофагоподобные клетки в субэпителиальных слоях стромы роговицы, истончение и фрагментацию клеточных мембран, дегенерацию клеток и коллагеновых волокон, увеличение размеров митохондрий, нарушение синтеза белков [10, 11]. При алиментарной недостаточности цинка у крыс выявлены изменения эпителия роговицы, а также неоваскуляризация передних слоев стромы и увеличение количества миелинизированных волокон роговицы [12—14]. Существенно сниженная по сравнению с нормой концентрация цинка обнаружена в плазме крови пациентов с резистентной формой язвы роговицы [15].
Лентовидная кератопатия — заболевание роговицы, при котором происходит отложение солей кальция под эпителием в боуменовой мембране, в базальной мембране эпителия и в передних слоях стромы; ассоциирована с гиперкальциемией, вызванной системными состояниями, такими как гиперпаратиреоз, интоксикации витамином D, метастатическое поражение костей и саркоидоз [16—18].
Некоторые разновидности дистрофии Фукса вызваны мутацией гена ZEB1, ответственного за синтез белков-доменов типа «цинковые пальцы» («цинк-пальцевые» белки) [19, 20]. Мутации гена ZNF469, кодирующего синтез белков-доменов типа «цинковые пальцы», выявлены в 23% случаев кератоконуса (КК). Мутации этого гена являются причиной развития наследственного «синдрома ломкой роговицы», проявляющегося истончением и спонтанной перфорацией роговицы [21].
В результате нарушения обмена меди при болезни Вильсона—Коновалова (и при других состояниях, сопровождающихся гиперкупремией) ее избыточное накопление в тканях приводит к формированию кольца Кайзера—Флейшера — отложению меди в периферической части десцеметовой мембраны. Случаи отложения меди на границе десцеметовой мембраны и эндотелия на средней периферии роговицы зарегистрированы при применении эстроген-содержащих оральных контрацептивов, а в центральной оптической зоне — при выраженной гиперкупремии [17, 22—24].
При анализе пигментаций роговицы особую роль отводят обмену железа, с которым в основном и связывают пигментацию роговицы [25, 26]. Отложение железа в эпителии на границе средней и нижней трети роговицы наблюдают у пожилых лиц в виде линии Хадсона—Стэли [27, 28]. Имеются сообщения о формировании пигментированной дуги в пределах эпителия центральной оптической зоны роговицы в результате оптической коррекции аметропии ночными ортокератологическими контактными линзами [29—31]. Характерным проявлением птеригиума является линия Стокера в эпителии роговицы, прилежащая к птеригиуму в зоне его роста [32]. Эпителиальное отложение железа в зоне роговицы, смежной с фильтрационной подушкой, формируемой при антиглаукомных хирургических вмешательствах, именуют линией Ферри [33]. Образование пигментированных отложений в эпителии также может происходить в результате хирургических вмешательств на роговице: имплантации интрастромальных роговичных колец, радиальной кератотомии, фоторефракционной кератэктомии (PRK) и лазерного кератомилеза (LASIK) [34—37].
КК является одним из клинических вариантов эктатических заболеваний роговицы. В основе патофизиологии КК лежат морфологические и гистологические изменения роговицы дегенеративно-дистрофического характера, наблюдаемые преимущественно в ее соединительнотканной строме. При КК нарушено ортогональное расположение пластин в строме, число пластин уменьшено, снижена объемная доля волокнистых структур и увеличены межфибриллярные промежутки; развиваются иррегулярность, уплотнение, происходит нарушение организации и архитектоники коллагеновых волокон, изменяются их тинкториальные свойства, снижается количество «кросс-сшивок» между фибриллами коллагена и/или эластина. Среди характерных для КК изменений роговицы отмечено снижение объемной доли основного вещества, неравномерное распределение протеогликанов и гликопротеинов [38, 39].
В результате многочисленных исследований выявлена ассоциация КК с заболеваниями, вызванными патологическими изменениями соединительной ткани и ее метаболизма, что позволяет предполагать: перечисленные выше патологические состояния — разнообразные клинические проявления нарушений обмена коллагена. В пользу нарушения обмена веществ в соединительнотканной строме роговицы при КК свидетельствуют признаки нарушения окислительных процессов и реакций энергообразования, ферментативного дисбаланса процессов ката- и анаболизма коллагена и основного вещества роговицы [38, 40].
В ряде исследований при КК выявлено изменение активности энзимов (глюкозо-6-фосфат-дегидрогеназы, лизосомальных ферментов, энзимов антиоксидантной системы и лизилоксидазы), коферментами и ингибиторами многих из них являются ионы металлов и другие минеральные элементы [39—44].
О взаимосвязи КК с системными нарушениями метаболизма металлов свидетельствуют результаты ряда исследований. Недостаточность магния в организме приводит к молекулярным и цитологическим изменениям в роговице, характерным для КК [10]. В плазме крови у пациентов с КК зафиксировали увеличенное содержание титана и свинца и уменьшенное — алюминия, никеля, цинка и селена [42, 45—48]. При содержании собак и крыс на диете с низким содержанием кальция и витамина D наблюдали развитие КК [49, 50].
В 1906 г. в Мюнхенском медицинском еженедельнике появилась статья «О кератоконусе и об особом пигментном образовании в роговице» немецкого врача Бруно Флейшера. Автор связывал появление пигментного кольца с эпителиальными отложениями соединения железа (гемосидерин) вследствие нарушения сферичности роговицы и последующего аномального неравномерного распределения слезной пленки в основании эктазии [51].
Как правило, пигментное кольцо Флейшера располагается в основании конуса (парацентральная зона роговицы) [51, 52]. Согласно данным литературы, пигментное кольцо встречается в 57% случаев КК и является наиболее часто обнаруживаемым при биомикроскопии симптомом в средней или развитой стадии КК; некоторые авторы этот симптом считают признаком прогрессирования заболевания [51, 53, 54]. В ряде случаев пигментное кольцо может образовываться и на начальной стадии КК, даже если по данным кератотопографии роговица еще не изменена.
При гистологическом исследовании в сочетании с качественной химической реакцией на железо с «берлинской лазурью» доказано присутствие этого элемента в зоне пигментного кольца — депозиты синего цвета, расположенные в базальных клетках эпителия кератоконусной роговицы [55]. В дальнейшем при КК в тканях роговицы обнаруживали дисбаланс концентраций цинка, железа и меди [41, 56].
В настоящее время применение современных методов аналитической химии позволило картировать ряд биологически значимых минеральных элементов в зоне пигментного кольца Флейшера — избыточное накопление элементов халькофильной группы с одновременным их отсутствием в центральной зоне роговицы [57].
Рентгенофлюоресцентный анализ позволил провести сравнительный анализ содержания химических элементов в норме и при КК в центральной и периферической зонах роговичных дисков. В здоровой роговице содержание железа, меди и цинка оказалось примерно одинаковым в центральном и периферическом сегментах. При КК выявлено накопление этих химических элементов на периферии роговичных дисков и полное отсутствие в центральной зоне. Кроме того, на периферии роговичных дисков при КК обнаружены микроконцентрации никеля и свинца. При КК выявлено накопление кальция в центральной и периферической зоне роговичных дисков в сопоставимых концентрациях [57].
Энергодисперсионная рентгеновская спектроскопия со сканирующей электронной микроскопией позволила построить карты распределения химических элементов в норме и при КК в соответствии с послойной структурой роговицы. Карты распределения показали, что в здоровой роговице железо, медь и цинк достаточно равномерно распределены в толще роговицы. В роговичных дисках, удаленных по поводу КК, выявлено аномальное избыточное накопление железа, меди и цинка в передних слоях периферической зоны роговичных дисков (в зоне видимого пигментного кольца Флейшера). Кроме этого, как в норме, так и при КК в роговичных дисках обнаружены микроконцентрации марганца и алюминия. При КК во всех слоях как в центральной, так и в периферической зоне роговичных дисков обнаружены кальций и магний (микроконцентрации); в периферической зоне роговичных дисков при КК также выявлены «следовые» концентрации кремния [57].
Выявленный дисбаланс минеральных элементов в роговице при КК позволил выдвинуть новую гипотезу этиопатогенеза этого заболевания. Осаждение железа, меди и цинка на периферии роговицы в виде кольца Флейшера может приводить к ферментативной недостаточности в строме центральной зоны роговицы, что, в свою очередь, вызывает нарушение метаболизма соединительной ткани и биомеханических свойств роговицы при КК [57].
Дальнейшие разработки в этом направлении привели к созданию медьсодержащих препаратов в виде растворов для местного медикаментозного лечения КК. Пилотные исследования показали эффективность глазных капель с сульфатом меди in vivo: результатом четырехнедельного применения экспериментального препарата у кроликов стало уменьшение преломляющей силы роговицы и повышение модуля упругости роговицы. По мнению авторов, инстилляции медьсодержащих капель активизируют в тканях роговицы фермент лизилоксидазу, который индуцирует «фармакологический кросслинкинг роговичного коллагена». Безопасность и эффективность лекарственного средства, подтвержденные экспериментальными испытаниями, позволили начать клинические исследования с участием пациентов с КК [58, 59].
Заключение
Представленные в настоящем обзоре данные свидетельствуют о том, что ряд заболеваний и патологических состояний роговицы сопровождаются нарушениями минерального метаболизма. Принимая во внимание непосредственное участие биологически значимых минеральных элементов в нормальных физиологических процессах межклеточного матрикса, можно предполагать их существенную роль в развитии некоторых дегенеративно-дистрофических заболеваний роговицы. К настоящему времени доказано, что в основе развития кератоконуса лежат патологические изменения соединительнотканного межклеточного вещества стромы роговицы, а также выявлены специфические изменения химического состава роговицы при этом заболевании. Дальнейшее детальное изучение in vivo и in vitro конкретных патофизиологических механизмов развития кератоконуса может способствовать перспективным разработкам патогенетически ориентированной терапии.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
- Meek KM, Knupp C. Corneal structure and transparency. Progress in Retinal and Eye Research. 2015;49:1-16. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2015.07.001
- Hassella JR, Birkb DE. The molecular basis of corneal transparency. Experimental Eye Research. 2010;91(3):326-335. https://doi.org/10.1016/j.exer.2010.06.021
- Du Y, Funderburgh JL. Stem Cells of the Ocular Surface. In Encyclopedia of the Eye. 2010; 212-218. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-374203-2.00065-8
- Творогова Т.М., Воробьева А.С. Недифференцированная дисплазия соединительной ткани с позиции дизэлементоза у детей и подростков. РМЖ. 2012;20(24):1215-1221.
- Северин Е.С. Биохимия. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2020.
- Авцын А.П., Жаворонков А.А., Риш М.А., Строчкова Л.С. Микроэлементозы человека: этиология, классификация, органопатология. М.: Медицина; 1991.
- Zelko IN, Mariani TJ, Folz RJ. Superoxide dismutase multigene family: a comparison of the CuZn-SOD (SOD1), Mn-SOD (SOD2), and EC-SOD (SOD3) gene structures, evolution, and expression. Free Radical Biology and Medicine. 2002;33(3):337-349. https://doi.org/10.1016/s0891-5849(02)00905-x
- Amemiya T. The Eye and Nutrition: Morphological Aspects. Nova Science Publishers Inc.; 2007.
- Ugarte M, Grime GW, Osborne NN. Distribution of trace elements in the mammalian retina and cornea by use of particle-induced X-ray emission (PIXE): localization of zinc does not correlate with that of metallothioneins. Metallomics. 2014;6(2):274-278. https://doi.org/10.1039/c3mt00271c
- Thalasselis A. The possible relationship between keratoconus and magnesium deficiency. Ophthalmic and Physiological Optics. 2005;25(1):7-12. https://doi.org/10.1111/j.1475-1313.2004.00232.x
- Gong H, Takami Y, Kitaoka T, Amemiya T. Corneal changes in magnesium-deficient rats. Cornea. 2003;22(5):448-456. https://doi.org/10.1097/00003226-200307000-00011
- Fujikawa A, Gong H, Amemiya T. Vitamin E prevents changes in the cornea and conjunctiva due to vitamin A deficiency. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 2003;241(4):287-297. https://doi.org/10.1007/s00417-003-0633-9
- Kanazawa S, Kitaoka T, Ueda Y, Gong H, Amemiya T. Interaction of zinc and vitamin A on the ocular surface. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 2002;240(12):1011-1021. https://doi.org/10.1007/s00417-002-0586-4
- Leure-Dupree AE. Vascularization of the rat cornea after prolonged zinc deficiency. The Anatomical Record. 1986;216(1):27-32. https://doi.org/10.1002/ar.1092160105
- Pati SK, Mukherji R. Serum zinc in corneal ulcer — A preliminary report. Indian Journal of Ophthalmology. 1991;39(3):134-135.
- Yanoff M, Duker JS, Augsburger JJ. Ophthalmology. 3rd edition. London, Mosby Elsevier; 2009.
- Kanski JJ. Clinical Ophthalmology: A Systematic Approach. Butterworth-Heinemann; 2009.
- Jhanji V, Rapuano CJ, Vajpayee RB. Corneal calcific band keratopathy. Current Opinion in Ophthalmology. 2011;22(4):283-289. https://doi.org/10.1097/ICU.0b013e3283477d36
- Mehta JS, Vithana EN, Tan DT, Yong VHK, Yam GHF, Law RWK, Chong WGW, Pang CP, Aung T. Analysis of the posterior polymorphous corneal dystrophy 3 gene, TCF8, in late-onset Fuchs endothelial corneal dystrophy. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2008;49(1):184-188. https://doi.org/10.1167/iovs.07-0847
- Riazuddin SA, Zaghloul NA, Al-Saif A, Davey L, Diplas BH, Meadows DN, Eghrari AO, Minear MA, Li YJ, Klintworth GK, Afshari N, Gregory SG, Gottsch JD, Katsanis N. Missense mutations in TCF8 cause late-onset Fuchs corneal dystrophy and interact with FCD4 on chromosome 9p. American Journal of Human Genetics. 2010;86(1):45-53. https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2009.12.001
- Vincent AL, Jordan CA, Cadzow MJ, Merriman TR, McGhee CN. Mutations in the zinc finger protein gene, ZNF469, contribute to the pathogenesis of keratoconus. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2014; 55(9):5629-5635. https://doi.org/10.1167/iovs.14-14532
- Aldave AJ, King JA, Kim BT, Hopp L. Corneal copper deposition associated with chronic lymphocytic leukemia. American Journal of Ophthalmology. 2006;142(1):174-176. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2006.01.078
- Garmizo G, Frauens BJ. Corneal copper deposition secondary to oral contraceptives. Optometry and Vision Science. 2008;85(9):802-807. https://doi.org/10.1097/OPX.0b013e3181853092
- Probst LE, Hoffman E, Cherian MG, J Yang, Feagan B, Adams P, Nichols B. Ocular copper deposition associated with benign monoclonal gammopathy and hypercupremia. Cornea. 1996;15(1):94-98.
- Gass JD. The iron lines of the superficial cornea: Hudson-Stahli line, Stocker′s line and Fleischer′s ring. Archives of Ophthalmology. 1964;7(3): 348-358. https://doi.org/10.1001/archopht.1964.00970010364010
- Loh A, Hadziahmetovic M, Dunaief JL. Iron homeostasis and eye disease. Biochimica et Biophysica Acta. 2009;1790(7):637-649. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2008.11.001
- Norn MS. Hudson-Stahli′s line of cornea. I. Incidence and morphology. Acta Ophthalmologica. 1968;46(1):106-118. https://doi.org/10.1111/j.1755-3768.1968.tb02501.x
- Norn MS. Hudson-Stahli′s line of cornea. II. Aetiological studies. Acta Ophthalmologica. 1968;46(1):119-128. https://doi.org/10.1111/j.1755-3768.1968.tb02502.x
- Cho P, Cheung SW, Mountford J, Chui WS. Incidence of corneal pigmented arc and factors associated with its appearance in orthokeratology. Ophthalmic and Physiological Optics. 2005;25(6):478-484. https://doi.org/10.1111/j.1475-1313.2005.00312.x
- Kirkwood BJ, Rees IH. Central corneal iron line arising from hyperopic orthokeratology. Clinical and Experimental Optometry. 2011;94(4):376-379. https://doi.org/10.1111/j.1444-0938.2010.00573.x
- González-Méijome JM, González-Pérez J, Garcia-Porta N, Diaz-Rey A, Parafita-Mato MA. Pigmented corneal ring associated with orthokeratology in Caucasians: case reports. Clinical and Experimental Optometry. 2012; 95(5):548-552. https://doi.org/10.1111/j.1444-0938.2012.00751.x
- Krachmer JH, Mannis MJ, Holland EJ. Cornea. London, Elsevier Mosby; 2005.
- Yanoff M, Duker JS. Ophthalmology. 5th edition. Elsevier Health Sciences; 2018.
- Assil KA, Quantock AJ, Barrett AM, Schanzlin DJ. Corneal iron lines associated with the intrastromal corneal ring. American Journal of Ophthalmology. 1993;116(3):350-356. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(14)71353-4
- Krueger RR, Tersi I, Seiler T. Corneal iron line associated with steep central islands after photorefractive keratectomy. Journal of Refractive Surgery. 1995; 13(4):401-403. https://doi.org/10.3928/1081-597X-19970701-19
- Probst LE, Almasswary MA, Bell J. Pseudo-Fleischer ring after hyperopic laser in situ keratomileusis. Journal of Cataract and Refractive Surgery. 1999; 25(6):868-870. https://doi.org/10.1016/s0886-3350(99)00012-7
- Steinberg EB, Wilson LA, Waring GO 3rd, Lynn MJ, Coles WH. Stellate iron lines in the corneal epithelium after radial keratotomy. American Journal of Ophthalmology. 1984;98(4):416-421. https://doi.org/10.1016/0002-9394(84)90122-3
- Аветисов С.Э., Новиков И.А., Патеюк Л.С. Кератоконус: этиологические факторы и сопутствующие проявления. Вестник офтальмологии. 2014;130(4):110-116.
- Takaoka A, Babar N, Hogan J, Kim M, Price MO, Price FW, Trokel SL, Paik DC. An Evaluation of Lysyl Oxidase—Derived Cross-Linking in Keratoconus by Liquid Chromatography/Mass Spectrometry. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2016;57(1):126-136. https://doi.org/10.1167/iovs.15-18105
- Vitar RML, Bonelli F, Rama P, Ferrari G. Nutritional and Metabolic Imbalance in Keratoconus. Nutrients. 2022;14(4):913. https://doi.org/10.3390/nu14040913
- Аветисов С.Э., Мамиконян В.Р., Новиков И.А. Роль кислотности слезы и Cu-кофактора активности фермента лизилоксидазы в патогенезе кератоконуса. Вестник офтальмологии. 2011;127(2):3-8.
- Пучковская Н.А., Титаренко З.Д. Кератоконус. Кишинев: Тимпул; 1990.
- Каспарова Е.А. Современные представления об этиологии и патогенезе кератоконуса. Вестник офтальмологии. 2002;118(3):50-53.
- Kenney MC, Brown DJ. The cascade hypothesis of keratoconus. Contact Lens and Anterior Eye. 2003;26(3):139-146. https://doi.org/10.1016/S1367-0484(03)00022-5
- Ortak H, Sögüt E, Tas U, Mesci C, Mendil D. The relation between keratoconus and plasma levels of MMP-2, zinc, and SOD. Cornea. 2012;31(9): 1048-1051. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318254c028
- Bamdad S, Owji N, Bolkheir A. Association between advanced keratoconus and serum levels of zinc, calcium, magnesium, iron, copper, and selenium. Cornea. 2018;37(10):1306-1310. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000001661
- Zarei-Ghanavati S, Yahaghi B, Hassanzadeh S, Mobarhan MG, Hakimi HR, Eghbali P. Serum 25-Hydroxyvitamin D, Selenium, Zinc and Copper in Patients with Keratoconus. Journal of Current Ophthalmology. 2020; 32(1):26-31. https://doi.org/10.1016/j.joco.2019.06.003
- Kilic R, Bayraktar AC, Bayraktar S, Kurt A, Kavutçu M. Evaluation of serum superoxide dismutase activity, malondialdehyde, and zinc and copper levels in patients with keratoconus. Cornea. 2016;35(12):1512-1515. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000001018
- Knapp AA. Vitamin D complex in keratoconus. Etiology, pathology and treatment of conical cornea: preliminary report. JAMA. 1938;110(24):1993-1994. https://doi.org/10.1001/jama.1938.02790240017006
- Knapp AA. Results of vitamin-D-complex treatment of keratoconus. Preliminary study. American Journal of Ophthalmology. 1939;22(3):289-292. https://doi.org/10.1016/S0002-9394(39)90814-7
- Wang M, Swartz TS. Keratoconus and Keratoectasia: Prevention, Diagnosis, and Treatment. SLACK Inc.; 2010.
- Khurana AK. Theory and Practice of Optics and Refraction. Elsevier; 2008.
- Barbara A, Rabinowitz YS. Textbook on Keratoconus: New Insights. JP Medical Ltd.; 2011.
- Edrington TB, Zadnik K, Barr JT. Keratoconus. Optometry Clinics. 1995; 4(3):65-73.
- Krachmer JH, Palay DA. Cornea Atlas. Mosby; 2006.
- Севостьянов Е.Н., Горскова Е.Н., Экгардт В.Ф. Кератоконус (этиология, патогенез, медикаментозное лечение): учебное пособие. Челябинск: Кафедра офтальмологии, лаборатория контактной коррекции областной клинической больницы; 2005.
- Аветисов С.Э., Мамиконян В.Р., Новиков И.А., Патеюк Л.С., Осипян Г.А., Кирющенкова Н.П. Перераспределение минеральных элементов в роговице при кератоконусе. Вестник офтальмологии. 2015; 131(6):34-42. https://doi.org/10.17116/oftalma2015131634-42
- Molokhia S, Muddana SK, Uehara H, Burr M, Hauritz H, McCulloch J, Ambati BK. IVMED-80 Eye Drops for Treatment of Keratoconus. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2018;59:4454.
- Molokhia S, Muddana SK, Hauritz H, Qiu Y, Burr M, Chayet A, Ambati BK. IVMED 80 eye drops for treatment of keratoconus in patients — Phase 1/2a. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2020;61:2587.
Рекомендуем статьи по данной теме:
Биомаркеры кератоконуса в слезной жидкости.Вестник офтальмологии. 2026;142(4):99-104
Оценка уровня цинка в сыворотке крови у пациентов с атопическим дерматитом.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(3):412-416
Оценка уровня железа в мозговой ткани в контексте диагностики хронической алкогольной интоксикации.Судебно-медицинская экспертиза. 2026;69(2):22-27
Опыт применения препаратов двухвалентного железа у доноров крови.Профилактическая медицина. 2026;29(2):85-89
Особенности показателей окислительного стресса в семенной плазме мужчин с высокой степенью фрагментации ДНК сперматозоидов.Проблемы репродукции. 2025;31(6):94-104
Сравнительная оценка методов тонометрии при кератоконусе.Вестник офтальмологии. 2025;141(6):7-13
Эритроферрон и его роль в регуляции обмена железа: молекулярные механизмы и клиническое значение.Профилактическая медицина. 2025;28(10):123-128
Фемтолазерная интрастромальная кератопластика с имплантацией биосинтетического комплекса при кератоконусе (предварительное сообщение).Вестник офтальмологии. 2025;141(4):73-79
Оксидативный стресс и антиоксидантная терапия в лечении преждевременной недостаточности яичников и улучшении качества жизни.Проблемы репродукции. 2025;31(1):21-34
Комбинированный подход к хирургическому лечению катаракты при кератоконусе.Вестник офтальмологии. 2024;140(6):107-111


