Особенности кровяного давления мышей с генетическим дефектом различных подтипов α1-адренорецепторов

Закрыть метаданные

Первичная открытоугольная глаукома (ПОУГ) является главной причиной необратимой слепоты во всех странах мира. Патогенез ПОУГ до конца не изучен. Кроме повышенного внутриглазного давления в настоящее время общепризнаны такие патогенетические факторы этого заболевания, как пониженное системное кровяное давление, ухудшение глазного кровотока, а также сосудистая дисрегуляция, реперфузионное повреждение и оксидативный стресс тканей глазного яблока. Описана роль α1-адренорецепторов в регуляции, например, глазного кровотока, кровотока в сетчатке, проницаемости сосудистой стенки и др.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Выявить влияние различных подтипов α1-адренорецепторов на уровень системного кровяного давления лабораторных мышей.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Изучены особенности кровяного давления 36 лабораторных мышей старше 1 года 6 мес, имеющих генетический дефект (линии ADRA-1A, ADRA-1D и ADRA-1D) по одному из подтипов α1-адренорецепторов (α1a, α1b, α1d соответственно). Группа контроля сформирована из десяти интактных лабораторных мышей такого же возраста. Применен современный высокоточный неинвазивный метод измерения кровяного давления мышей с помощью системы Coda^TM Standard system (производитель Kent Scientific Corporation, США).

РЕЗУЛЬТАТЫ

Обнаружено, что для мышей линии ADRA-1A характерны умеренно пониженное систолическое и диастолическое кровяное давление и максимальное значение пульсового давления, а также наибольшие колебания абсолютных значений последнего; для мышей линии ADRA-1B — наиболее высокие уровни систолического и диастолического кровяного давления; для мышей линии ADRA-1D — наименьшее систолическое и диастолическое кровяное давление и минимальные значения пульсового давления.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Полученные результаты свидетельствуют о специфичном вкладе α1a-, α1b- и α1d-подтипов адренорецепторов в процесс поддержания нормальной гемодинамики организма, что необходимо учитывать при изучении патогенеза ПОУГ.

Ключевые слова:

Авторы:

Корсакова Н.В.

ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет им. И.Н. Ульянова»; Чебоксарский филиал ФГАУ НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России

Даты поступления:

19.10.2019

Даты принятия в печать:

23.04.2020

Список литературы:

Адо А.Д. Патологическая физиология. М.: Триада-Х; 2000.
Еричев В.П., Козлова И.В., Макарова А.С., Цзинь Д. Особенности системной гемодинамики у больных первичной открытоугольной глаукомой, компенсированным внутриглазным давлением и нестабилизированным течением. Глаукома. 2013;3:22-25.
Курышева Н.И., Царегородцева М.А., Иртегова Е.Ю., Рябова Т.Я. и др. Глазное перфузионное давление и первичная сосудистая дисрегуляция у больных глаукомой нормального давления. Глаукома. 2011; 3:11-17.
Мозаффари М., Фламмер Й. Кровообращение глаза и глаукомная оптическая нейропатия. СПб.: Эко-Вектор; 2013.
Шляхто Е.В., Баранцевич Е.Р., Щербак Н.С., Галагудза М.М. Молекулярные механизмы формирования ишемической толерантности головного мозга (Часть 1). Вестник Российской академии медицинских наук. 2012;6:42-50.
Любовцева Е.В., Любовцева Л.А., Гурьянова Е.А., Голубцова Н.Н., Московский А.В. и др. Местная регуляция органов биоаминсодержащими клетками. Морфология. 2009;136(4):91b.
Cavalli A, Lattion A-L, Hummler E, Nenniger M. Decreased blood pressure response in mice deficient of the a1b-adrenergic receptor. Proc Natl Acad Sci USA. 1997;94:11589-11594. https://doi.org/10.1073/pnas.94.21.11589
Guimaraes S, Moura D. Vascular adrenoreceptors: an update. Pharmacol Rev. 2001;53(2):451.
Kordasz M, Manicam C, Steege A, Goloborodko E, et al. Role of a1-adrenoceptor subtypes in pupil dilation studied with gene-targeted mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014;55(12):8295-8301. https://doi.org/10.1167/iovs.14-15706
Rokosh D, Simpson P. Knockout of the α1A/C-adrenergic receptor subtype: the α1A/C is expressed in resistance arteries and is required to maintain arterial blood pressure. Proc Natl Acad Sci USA. 2002;99(14):9474-9479. https://doi.org/10.1073/pnas.132552699
Tanoue A, Nasa Y, Koshimizu T, Shinoura H, et al. The a1D-adrenergic receptor directly regulates arterial blood pressure via vasoconstriction. J Clin Invest. 2002;109(6):765-775. https://doi.org/10.1172/jci14001
Sebastiani A, Parmeggiani F, Costagliola C, Ciancaglini M, et al. Effects of acute topical administration of clonidine 0.125%, apraclonidine 1.0% and brimonidine 0.2% on visual field parameters and ocular perfusion pressure in patients with primary open-angle glaucoma. Acta Ophthalmol Scand Suppl. 2002;236:29-30. https://doi.org/10.1034/j.1600-0420.80.s236.18.x
Rosa RH Jr, Hein TW, Yuan Z, Xu W, et al. Brimonidine evokes heterogeneous vasomotor response of retinal arterioles: diminished nitric oxide-mediated vasodilation when size goes small. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006;291(1):231-238. https://doi.org/10.1152/ajpheart.01281.2005
Costagliola C, Parmeggiani F, Ciancaglini M, D’Oronzo E, et al. Ocular perfusion pressure and visual field indice modifications induced by alpha-agonist compound (clonidine 0.125%, apraclonidine 1.0% and brimonidine 0.2%) topical administration. An acute study on primary open-angle glaucoma patients. Ophthalmologica. 2003;217(1):39-44. https://doi.org/10.1159/000068249
Pankratov Y, Lalo U. Role for astroglial α1-adrenoreceptors in gliotransmission and control of synaptic plasticity in the neocortex. Front Cell Neurosci. 2015;9:230. https://doi.org/10.3389/fncel.2015.00230
Корсакова Н.В. Особенности внутриглазного давления мышей с генетическим дефектом различных подтипов альфа-1-адренорецепторов в утренние и вечерние часы. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2017;103(5):562-569.
Dalvin L, Fautsch M. Analysis of circadian rhythm gene expression with reference to diurnal pattern of intraocular pressure in mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2015;56(4):2657-2663. https://doi.org/10.1167/iovs.15-16449
Moore D, Harris A, Wudunn D, Kheradiya N, et al. Dysfunctional regulation of ocular blood flow: a risk factor for glaucoma? Clin Ophthalmol. 2008; 2(4):849-861. https://doi.org/10.2147/opth.s2774
Ulrich A, Ulrich C, Barth T, Ulrich WD. Detection of disturbed autoregulation of the peripapillary choroid in primary open angle glaucoma. Ophthalmic Surg Lasers. 1996;27(9):746-757.
Terelak-Borys B, Czechowicz-Janicka K. Investigation into the vasospastic mechanisms in the pathogenesis of glaucomatous neuropathy. Klin Oczna. 2011;113(7-9):201-208.
Carlsson AM, Chauhan BC, Lee AA, Leblanc RP. The effect of brimonidine tartrate on retinal blood flow in patients with ocular hypertension [corrected]. Am J Ophthalmol. 1999;128(6):697-701 https://doi.org/10.1016/s0002-9394(99)00228-7
Yu M, Li Y, Liu X, Ling Y, et al. Effect of 0.2% brimonidine on retinal blood flow. Yan Ke Xue Bao. 2001;17(1):42-45.
Lachkar Y, Migdal C, Dhanjil S. Effect of brimonidine tartrate on ocular hemodynamic measurements. Arch Ophthalmol. 1998;116(12):1591-1594. https://doi.org/10.1001/archopht.116.12.1591
Schmidt KG, Klingmuller V, Gouveia SM, Osborne NN, et al. Short posterior ciliary artery, central retinal artery, and choroidal hemodynamics in brimonidine-treated primary open-angle glaucoma patients. Am J Ophthalmol. 2003;136(6):1038-1048. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(03)00631-7
Korsakova NV. Numbers of retinal ganglion cells in mice with genetic defects in different A1-adrenoreceptor subtypes. Neurosci Behav Physiol. 2019; 49(8):1027-1031. https://doi.org/10.1007/s11055-019-00833-w
Daugherty A, Rateri D, Hong L, Balakrishnan A. Measuring blood pressure in mice using volume pressure recording, a tail-cuff method. J Vis Exp. 2009;15(27):1291. https://doi.org/10.3791/1291
Feng M, Whitesall S, Zhang Y, Beibel M, et al. Validation of volume-pressure recording tail-cuff blood pressure measurements. Am J Hypertens. 2008; 21(12):1288-1291. https://doi.org/10.1038/ajh.2008.301
Wang Y, Thatcher S, Cassis L. Measuring blood pressure using a noninvasive tail cuff method in mice. Methods Mol Biol. 2017;1614:69-73. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7030-8_6
CODATM Non-Invasive Blood Pressure System Owner`s Manual. For Standard and High-Throughput. Kent Scientific Corporation, Documentation Version 1.01.07, For Software Version 4.1. 2013;37.
Kurysheva NI, Maslova EV, Zolnikova IV, Fomin AV, et al. A comparative study of structural, functional and circulatory parameters in glaucoma diagnostics. PLoS ONE. 2018;13(8):e0201599. https://doi.org/10.1371/journal. pone.0201599
Fuchsjager-Mayrl G, Wally B, Georgopoulos M, Rainer G, et al. Ocular blood flow and systemic blood pressure in patients with primary open-angle glaucoma and ocular hypertension. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2004;45(3): 834-839. https://doi.org/10.1167/iovs.03-0461
Kurysheva N. Heart rate variability in normal tension glaucoma: a case-control study. J Pharm Sci Res. 2017;9(5):527-536. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000009744
Kurysheva N, Shlapak VN, Ryabova TN. Heart rate variability: the comparison between high tension and normal tension glaucoma. EPMA J. 2018; 9(1):35-45. https://doi.org/10.1007/s13167-017-0124-4
Алиханов Р.Б., Кубышкин В.А. Патофизиологические аспекты реперфузионных повреждений печени. Кубанский научный медицинский вестник. 2013;7(142):170-173.

Закрыть метаданные