Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Рудик И.С.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Тартаковский К.Э.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Сочилина А.В.

ФГБУ НИЦ «Курчатовский институт»

Дунаев А.Г.

ФГБУ НИЦ «Курчатовский институт»

Миронов А.В.

ФГБУ НИЦ «Курчатовский институт»

Васильев А.В.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Исследование физико-механических свойств и устойчивости к гидролизу материалов на основе фотополимеризуемых композиций гиалуроновой кислоты и диакрилата полиэтиленгликоля

Авторы:

Рудик И.С., Тартаковский К.Э., Сочилина А.В., Дунаев А.Г., Миронов А.В., Васильев А.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Стоматология. 2025;104(6‑2): 5‑11

Прочитано: 159 раз


Как цитировать:

Рудик И.С., Тартаковский К.Э., Сочилина А.В., Дунаев А.Г., Миронов А.В., Васильев А.В. Исследование физико-механических свойств и устойчивости к гидролизу материалов на основе фотополимеризуемых композиций гиалуроновой кислоты и диакрилата полиэтиленгликоля. Стоматология. 2025;104(6‑2):5‑11.
Rudik IS, Tartakovsky KE, Sochilina AV, Dunaev AG, Mironov AV, Vasiliev AV. Study of the physicomechanical properties and hydrolysis resistance of materials based on photopolymerizable hyaluronic acid and polyethyleneglycol diacrylate composites. Stomatology. 2025;104(6‑2):5‑11. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/stomat20251040625

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Гиалуроновая кислота (ГК) является ключевым компонентом внеклеточного матрикса различных тканей и обладает уникальными биофизическими и биохимическими свойствами, такими как вязкоупругость и барьерная функция. Биологическая функциональность ГК отличают ее от других природных полимеров, что делает ее крайне востребованной для создания комбинированных гидрогелей, применяемых в области тканевой инженерии [1—3].

В отличие от хитозана, альгината и целлюлозы ГК естественным образом содержится в организме человека и способна влиять на ряд клеточных процессов, таких как адгезия, пролиферация, миграция, дифференцировка, связывание со специфическими клеточными рецепторами и активация сигнальных путей [4, 5].

К наиболее существенным недостаткам ГК относят ее низкую устойчивость к гидролитической и ферментной деградации, что препятствует ее использованию в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии в качестве долговременной основы для биорезорбируемых костно-пластических материалов, способных к своевременному замещению собственными тканями организма без существенного изменения изначально заданного объема [6, 7]. Химическая модификация ГК с последующей межмолекулярной сшивкой за счет добавления олигомерных и полимерных добавок позволяет увеличить сроки ее деградации, а также улучшить физико-механические характеристики [8, 9].

Получение матрицы на основе ГК позволит создать биосовместимые и отверждаемые in situ материалы, способные к биорезорбции. Речь идет, прежде всего, о костно-пластических материалах, широко используемых в стоматологии. Некоторые разработки обладают способностью к хемо- и термоотвреждению, но еще не наделены способностью к фотоотвреждению, хотя задел в этом направлении существует [10—12].

Цель исследования: разработка и изучение свойств биосовместимых фотополимеризуемых композиций на основе ГК и диакрилата полиэтиленгликоля с использованием фотоинициаторов I типа, дифенил(2,4,6-триметилбензоат)фосфиноксид и фенил(2,4,6-триметилбензоилфосфинат) лития, а также оценка влияния химической модификации ГК на физико-механические свойства и скорость деградации получаемых композиций.

Материал и методы

Для проведения реакции модификации использовали низкомолекулярную ГК 5000—10000 г/моль («LEAPChem», Китай), глицидилметакрилат — ГМА («Macklin», Китай), диметилсульфоксид —ДМСО («Concord Technology», Китай), соляную кислоту (осч.; «Сигма Тек», Россия), ацетон (осч. для ВЭЖХ; «Альдоса», Россия), этилацетат (осч.; «Компонент-Реактив», Россия).

В качестве компонентов фотополимеризуемых композиций использовали ГК, полиэтиленгликоль диакрилат (PEG-DA) 700 г/моль («Sigma-Aldrich», США), полученную в ходе работы метакрилированную гиалуроновую кислоту (М-ГК), дифенил(2,4,6-триметилбензоил) фосфиноксид — ТРО («Macklin», Китай) и фенил (2,4,6-триметилбензоилфосфинат) лития — LAP («Macklin», Китай).

Получение метакрилированной ГК. Модификацию ГК проводили по данной методике с некоторыми изменениями [13]. Для проведения реакции 1 г ГК растворяли в 100 мл дистиллированной воды. После полного растворения ГК добавляли 50 мл ДМСО, 20 мл ГМА и оставляли реакционную смесь при постоянном перемешивании при температуре 25 °C на 48 ч. Для осаждения М-ГК реакционную смесь доводили до pH 3 раствором 1 М соляной кислоты и добавляли 200 мл ацетона и 100 мл этилацетата. Для очистки продукта осадок отделяли центрифугированием, растворяли в дистиллированной воде и диализовали против 10-кратного избытка дистиллированной воды в течение 3 сут с ежедневной сменой воды. После очистки продукт замораживали и лиофильно высушивали в течение 48 ч до полного удаления воды.

Определение молекулярной массы ГК и М-ГК методом ВЭЖХ. Молекулярную массу и индекс полидисперсности определяли с помощью установки GPC/SEC («АКВИЛОН», Россия) с колонками PolySep-SEC GFC-P 4000 и PolySep-SEC GFC-P 5000 («Phenomenex Inc.», США) длиной 300 мм и диаметром 7,8 мм, с рефрактометрическим детектором и петлей инжектора объемом 20 мкл. В качестве подвижной фазы был подготовлен раствор 0,1 М NaN3 («Sigma-Aldrich», США) и 0,01 M NaH2PO4 («Sigma-Aldrich», США) в дистиллированной воде, дополнительно очищенной системой Milli-Q («Millipore», США). Температура термостата установки поддерживалась на уровне 40 °C, а скорость потока элюента составляла 1 мл/мин. Регистрируемые данные автоматически обрабатывались программой «МультиХром 1.6» («Амперсенд», Россия). Градуировочная зависимость строилась на основе полиэтиленгликоль/полиэтиленоксид стандартов («Sigma-Aldrich», Швейцария), растворенных в подвижной фазе при концентрации 3 г/л.

Определение степени метакрилирования М-ГК методом перманганатометрии. Определение степени метакрилирования М-ГК с использованием перманганата калия — KMnO4 («Sigma-Aldrich», США) проводили согласно методике из данной работы с небольшими изменениями [14]. Суть метода заключается в титровании стандартного раствора KMnO4 (1 мл, 0,00625%) раствором М-ГК (0,5%) до полного изменения окраски раствора от фиолетовой до охристой со спектрофотометрическим подтверждением по исчезновению пиков KMnO4 (450—600 нм) на УФ-ВИД-спектрофотометре Evolution 201 («Thermo Fisher Scientific», США; рис. 1). Степень метакрилирования определяется как отношение количества привитых групп ГМА, содержащих двойную связь, реагирующую с KMnO4, к общему количеству дисахаридных звеньев М-ГК. Количество двойных связей, которое необходимо для полного восстановления стандартного раствора KMnO4, является константой и определено титрованием с помощью водного раствора свободного ГМА как 0,593 мкмоль. При этом общее количество дисахаридных звеньев будет переменной величиной, которая определяется из объема раствора М-ГК, потраченного на полное восстановление стандартного раствора KMnO4.

Рис. 1. Изменение спектра поглощения стандартного раствора KMnO4 (1 мл, 0,00625%) при добавлении различных объемов анализируемого раствора 0,5% М-ГК.

Зеленый спектр соответствует исходному раствору KMnO4, синий спектр — MnO2, который образуется при восстановлении KMnO4.

Получение фотополимеризуемых композиций и образцов для испытаний. Приготовление фотополимеризуемых композиций проводили в виалах из темного стекла объемом 5 мл. Фотополимеризуемые композиции представляли собой водные растворы PEG-DA, ГК, М-ГК и фотоинициаторов. В виалу вносили 25%масс. PEG-DA, 0,5%масс. ТРО или LAP и расчетные количества ГК или М-ГК, после чего перемешивали в течение 1 мин на амальгамном смесителе Shofu Amalgam Mixer «Deluxe» («Shofu Dental MFG. CO., Ltd.», Япония) и погружали на 15 мин в ультразвуковую баню Laborette 17 («Fritsch», Германия) при мощности ультразвука 35 кГц, 240 Вт и температуре 25 °C. Составы использованных в работе фотополимеризуемых композиций приведены в табл. 1.

Таблица 1. Состав фотополимеризуемых композиций, %масс.

ГК

PEG-DA

ТРО

ГК

PEG-DA

LAP

5

25

0,5

5

25

0,5

10

10

15

15

М-ГК

PEG-DA

ТРО

М-ГК

PEG-DA

LAP

5

25

0,5

5

25

0,5

10

10

15

15

Примечание. ГК — гиалуроновая кислота; PEG-DA — полиэтиленгликоль диакрилат; ТРО — дифенил(2,4,6-триметилбензоил) фосфиноксид; LAP — фенил (2,4,6-триметилбензоилфос финат) лития; М-ГК — метакрилированная гиалуроновая кислота.

Образцы для испытаний готовили с использованием фторопластовой формы высотой 4 мм и отверстием с внутренним диаметром 3 мм. Форму помещали на полиэфирную пленку, заполняли испытуемой фотополимеризуемой композицией, накрывали сверху пленкой и экспонировали светополимеризационной лампой Megalux LED («Megadenta Dentalprodukte GmbH», Германия) при длине волны 440—480 нм и интенсивности светового потока 1200 мВт/см2 в течение 40 с.

Определение физико-механических свойств. Измерение прочности при сжатии отвержденных образцов проводили по методике ГОСТ 31578-2012 на универсальной испытательной машине Z010 («Zwick GmbH & Co. KG», Германия) со скоростью движения траверсы 1 мм/мин с использованием программного обеспечения testXpert V 10.11 («ZwickRoell», Германия).

Определение степени набухания и гидролитической устойчивости. Для определения степени набухания образцы, высушенные до постоянной массы, погружали в дистиллированную воду и выдерживали при температуре 37 °C в течение 7 дней. По истечении указанного срока образцы вынимали из воды, промокали поверхность образцов фильтровальной бумагой и взвешивали на аналитических весах. Затем образцы повторно высушивали до постоянной массы. Степень набухания определяли по отношению разницы масс образца после выдержки в воде в течение 7 сут и после повторного высушивания к массе образца после повторного высушивания.

Деградацию отвержденных образцов фотополимеризуемых композиций измеряли гравиметрически. Испытания in vitro проводили в гидролитической и ферментативной среде в течение 7 дней. Образцы, высушенные до постоянной массы, помещали в избыток фосфатно-солевого буферного раствора Дульбекко (DPBS) с pH 7,4 («ПанЭко», Россия) или в DPBS, содержащий 25 мг/л трипсина («ПанЭко», Россия), и выдерживали при температуре 37 °C. По истечению 7 дней образцы вынимали из раствора, промывали дистиллированной водой, промокали поверхность образцов фильтровальной бумагой и высушивали до постоянной массы. Фиксировали массу образцов после испытания. Коэффициент деградации рассчитывали по отношению разницы масс образца до и после испытания к массе образца после испытания.

Результаты и обсуждение

Характеристика фотополимеризуемых композиций

Молекулярная масса ГК и М-ГК. В процессе метакрилирования как среднечисленная Mn, так и среднемассовая молекулярная масса Mw ГК существенно понизились вследствие деструкции макромолекул. Увеличение индекса полидисперсности PDI, отражающего ширину молекулярного массового распределения, указывает на нерегулярную локализацию мест обрывов полимерной цепи и образование значительного числа резко различающихся по длине макромолекул. Результаты измерения молекулярной массы исходных и метакрилированных образцов приведены в табл. 2.

Таблица 2. Изменение молекулярно-массовых характеристик гиалуроновой кислоты в процессе метакрилирования

Образец

Mw, г/моль

Mn, г/моль

PDI

ГК

15219±1628

8944±428

1,7

М-ГК

10871±1163

3395±515

3,2

Примечание. ГК — гиалуроновая кислота; М-ГК — метакрилированная гиалуроновая кислота; Mw — среднемассовая молекулярная масса; Mn — среднечисленная молекулярная масса; PDI — индекс полидисперсности.

Степень метакрилирования М-ГК. По мере реакции с двойными связями М-ГК KMnO4 восстанавливался до MnO2 (реакция Вагнера), что отражалось в виде изменения окраски и уменьшения пиков поглощения. Полное исчезновение пиков свидетельствовало об окончании реакции (рис. 1). Измерение объема 0,5% раствора М-ГК, необходимого для полного титрования KMnO4, позволило рассчитать степень метакрилирования М-ГК, которая составила 22%.

Физико-механические испытания. В процессе оценки физико-механических свойств установлено, что увеличение содержания исходной ГК в качестве неактивного компонента в составе фотополимеризуемой композиции, независимо от используемого фотоинициатора, закономерно приводило к снижению прочности при сжатии отвержденных образцов (рис. 2). Обратная ситуация наблюдалась для фотополимеризуемых композиций, содержащих в своем составе М-ГК. В случае увеличения концентрации М-ГК прочность при сжатии отвержденных образцов увеличивалась, что прямо указывает на участие молекул М-ГК в формировании пространственной ковалентно-сшитой макромолекулярной сети в процессе фотополимеризации (рис. 3).

Рис. 2. Прочность при сжатии образцов фотополимеризуемых композиций PEG-DA 25%масс. и TPO 0,5%масс. (а), а также PEG-DA 25%масс. и LAP 0,5%масс. (б) в зависимости от содержания гиалуроновой кислоты.

Рис. 3. Прочность при сжатии образцов фотополимеризуемых композиций PEG-DA 25%масс. и TPO 0,5%масс. (а), а также PEG-DA 25%масс. и LAP 0,5%масс. (б) в зависимости от содержания метакрилированной гиалуроновой кислоты.

При одинаковой дозе инициирующего облучения для фотополмеризуемых композиций М-ГК фотоинициатор LAP показал большую эффективность по сравнению с ТРО. Так, для фотополимеризуемой композиции PEG-DA, содержащей 15%масс. М-ГК и 0,5%масс. LAP прочность при сжатии достигала 2000 кПа.

Оценка гидролитической устойчивости. Образцы фотополимеризуемых композиций, содержащих в своем составе ГК, демонстрировали относительно большую способность удерживать воду по сравнению с М-ГК. Так, после выдерживания в воде при температуре 37 °C наблюдалось увеличение массы немодифицированных образцов от 2 до 5 г/г в зависимости от концентрации ГК, при этом степень набухания композиции с М-ГК сохранялась неизменной во всем диапазоне концентраций М-ГК и не превышала 2,2 г/г (рис. 4).

Рис. 4. Степень набухания образцов фотополимеризуемых композиций PEG-DA 25%масс. и ТРО 0,5%масс. (а), а также PEG-DA 25%масс. и LAP 0,5%масс. (б) в зависимости от содержания гиалуроновой кислоты (ГК) и метакрилированной гиалуроновой кислоты (М-ГК).

Деградация in vitro отвержденных образцов в модельной ферментативной среде протекала ожидаемо быстрее, чем в гидролитической. В качестве фермента использовали трипсин. Предположительно он способен разрывать сложноэфирную связь между ГК и ГМА. Большую устойчивость к гидратации проявляли образцы фотополимеризуемых композиций, содержащие фотоинициатор LAP.

Наличие в структуре фотополимеризуемой композиции ковалентно несвязанной ГК приводит к более быстрой деградации образцов как в DPBS, так и в среде трипсина. Потеря массы для композиций, содержащих 15%масс. ГК, по истечению 7 дней составляла более 50%. Большую устойчивость к гидратации проявили композиции PEG-DA с М-ГК и LAP, потеря массы которых не превышала 30% как в гидролитической, так и в ферментативной среде (рис. 5).

Рис. 5. Деградация in vitro образцов фотополимеризуемых композиций PEG-DA 25%масс. и ТРО 0,5%масс. (а), а также PEG-DA 25%масс. и LAP 0,5%масс. (б) в зависимости от содержания гиалуроновой кислоты (ГК) и метакрилированной гиалуроновой кислоты (М-ГК).

Увеличение содержания М-ГК в составе фотополимеризуемой композиции приводит к образованию большего числа ковалентных связей в процессе полимеризации. Более того, при одинаковом массовом содержании PEG-DA и М-ГК в фотополимеризуемой композиции, обладающий меньшей молекулярной массой, а следовательно, большим мольным содержанием, LAP способен активировать большее количество элементарных связей, что приводит к увеличению количества межмолекулярных соединений, уплотнению объемной структуры и, как следствие, упрочнению образцов [15].

Для полимерных гелей степень набухания прямо зависит от гидрофильности макромолекул и плотности сшивки [16]. Увеличение содержания в составе геля ГК, не участвующей в формировании полимерной сети, приводит к увеличению предельной степени набухания. Напротив, М-ГК, участвующая в процессе сшивки, увеличивает упругость структуры образца, снижая количество сорбированной воды.

Таким образом, увеличение плотности сшивки полимерной сети способствует увеличению механической прочности и гидролитической устойчивости получаемых композиций. Полученные экспериментальные данные хорошо согласуются с результатами, приведенными в работах, посвященных фотополимеризуемым композициям на основе химически модифицированной ГК [3, 17].

Заключение

Использование немодифицированной гиалуроновой кислоты приводит к снижению механической прочности композиций, ее устойчивости к гидролизу и значительно увеличивает водопоглощение, что обусловлено низкой плотностью сшивки в сочетании с гидрофильностью макромолекул гиалуроновой кислоты. В свою очередь использование модифицированной акрилатными группами гиалуроновой кислоты способствует упрочнению пространственной структуры полимерных композиций, что увеличивает прочность получаемого материала и снижает степень его набухания.

Результаты настоящего исследования помогут оптимизировать состав и условия получения фотополмеризуемых материалов на основе гиалуроновой кислоты, обладающих необходимыми функциональными характеристиками для создания фотоотверждаемых костно-пластических материалов.

Работа выполнена в рамках темы государственного задания № 1023021300027-9-3.2.14 (WLGC-2024-0001) Министерства здравоохранения Российской Федерации.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Васильев А.В., Кузнецова В.С., Галицына Е.В., Бухарова Т.Б., Осидак Е.О., Фатхудинова Н.Л. Леонов Г.Е., Бабиченко И.И., Домогатский С.П., Гольдштейн Д.В., Кулаков А.А. Биосовместимость и остеогенные свойства коллаген-фибронектинового гидрогеля, импрегнированного BMP-2. Стоматология. 2019;98(6-2):5-11.  https://doi.org/10.17116/stomat2019980625
  2. Кузнецова В.С., Васильев А.В., Григорьев Т.Е., Загоскин Ю.Д., Чвалун С.Н., Бухарова Т.Б., Гольдштейн Д.В., Кулаков А.А. Перспективы использования гидрогелей в качестве основы для отверждаемых костно-пластических материалов. Стоматология. 2017;96(6):68-74.  https://doi.org/10.17116/stomat201796668-74
  3. Velasco-Rodriguez B, Diaz-Vidal T, Rosales-Rivera LC, García-González CA, Alvarez-Lorenzo C, Al-Modlej A, Domínguez-Arca V, Prieto G, Barbosa S, Soltero Martínez JFA, Taboada P. Hybrid methacrylated gelatin and hyaluronic acid hydrogel scaffolds. Preparation and systematic characterization for prospective tissue engineering applications. Int J Mol Scie. 2021; 22:6758. https://doi.org/10.3390/ijms22136758
  4. Zhao W, Zhu J, Hang J, Zeng W. Biomaterials to promote vascularization in tissue engineering organs and ischemic fibrotic diseases. MedComm — Biomaterials and Applications. 2022;1(1):16.  https://doi.org/10.1002/mba2.16
  5. Volpi N, Schiller J, Stern R, Soltés L. Role, metabolism, chemical modifications and applications of hyaluronan. Curr Med Chem. 2009;16(14): 1718-1745. https://doi.org/10.2174/092986709788186138
  6. Zhang M, Ye Q, Zhu Z, Shi S, Xu C, Xie R, Yumei Li Y. Hyaluronic acid-based dynamic hydrogels for cartilage repair and regeneration. Gels. 2024,10(11):703.  https://doi.org/10.3390/gels10110703
  7. Beldman TJ, Senders ML, Alaarg A, Perez-Medina C, Tang J, Zhao Y, Fay F, Deichmöller J, Born B, Desclos E, van der Wel NN, Hoebe RA, Kohen F, Kartvelishvily E, Neeman M, Reiner T, Calcagno C, Fayad ZA, de Winther MPJ, Lutgens E, Mulder WJM, Kluza E. Hyaluronan nanoparticles selectively target plaque-associated macrophages and improve plaque stability in atherosclerosis. ACS Nano. 2017;11(6):5785-5799. https://doi.org/10.1021/acsnano.7b01385
  8. Hintze V, Schnabelrauch M, Rother S. Chemical modification of hyaluronan and their biomedical applications. Front Chem. 2022;10:830671. https://doi.org/10.3389/fchem.2022.830671
  9. Tiwari S, Bahadur P. Modified hyaluronic acid based materials for biomedical applications. Int J Biol Macromol. 2019;121:556-571.  https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.10.049
  10. Grigoriev TE, Zagoskin YD, Belousov SI, Vasilyev AV, Bukharova TB, Leonov GE, Galitsyna EV, Goldshtein DV, Chvalun SN, Kulakov AA, Paltsev MA. Influence of molecular characteristics of chitosan on properties of in situ formed scaffolds. BioNanoScie. 2017;7(6):492-495.  https://doi.org/10.1007/s12668-017-0411-5
  11. Vasilyev AV, Kuznetsova VS, Bukharova TB, Osidak EO, Grigoriev TE, Zagoskin, YD, Nedorubova IA, Domogatsky SP, Babichenko II, Zorina OA, Kutsev SI, Chvalun SN, Kulakov AA, Losev FF, Goldshtein DV. Osteoinductive moldable and curable bone substitutes based on collagen, BMP-2 and highly porous polylactide granules, or a mix of HAP/β-TCP. Polymers. 2021;13(22):3974. https://doi.org/10.3390/polym13223974
  12. Vasilyev AV, Kuznetsova VS, Bukharova TB, Grigoriev TE, Zagoskin YD, Nedorubova IA, Babichenko II, Chvalun SN, Goldstein DV, Kulakov AA. Influence of the degree of deacetylation of chitosan and BMP-2 concentration on biocompatibility and osteogenic properties of BMP-2/PLA granule-loaded chitosan/β-glycerophosphate hydrogels. Molecules. 2021;26(2):261  https://doi.org/10.3390/molecules26020261
  13. Savelyev AG, Sochilina AV, Babayeva G, Nikolaeva ME, Kuziaeva VI, Prostyakova AI, Sergeev IS, Gorin DA, Khaydukov EV, Generalova AN, Akasov RA. Photocrosslinking of hyaluronic acid-based hydrogels through biotissue barriers. Biomaterials Science. 2025;13(4):980-992.  https://doi.org/10.1039/D4BM01174K
  14. Sochilina AV, Savelyev AG, Demina PA, Sizova SV, Zubov VP, Khaydukov EV, Generalova AN. Quantitative detection of double bonds in hyaluronic acid derivative via permanganate ion reduction. Measurement Scie Technol. 2019;30(7):075102. https://doi.org/10.1088/1361-6501/ab0fb4
  15. Nedunchezian S, Wu C-W, Wu S-C, Chen C-H, Chang J-K, Wang C-K. Characteristic and chondrogenic differentiation analysis of hybrid hydrogels comprised of hyaluronic acid methacryloyl (HAMA), gelatin methacryloyl (GelMA), and the acrylate-functionalized nano-silica crosslinker. Polymers. 2022;14(10)2003. https://doi.org/10.3390/polym14102003
  16. Asensio G, Benito-Garzon L, Ramírez-Jiménez RA, Guadilla Y, Gonzalez-Rubio J, Abradelo C, Parra J, Martín-López MR, Aguilar MR, Vázquez-Lasa B, Rojo L. Biomimetic gradient scaffolds containing hyaluronic acid and Sr/Zn folates for osteochondral tissue engineering. Polymers. 2022;14(1):12.  https://doi.org/10.3390/polym14010012
  17. Jongprasitkul H, Parihar VS, Turunen S, Kellomaki M. pH-responsive gallol-functionalized hyaluronic acid-based tissue adhesive hydrogels for injection and three-dimensional bioprinting. ACS Applied Materials. Interfaces. 2023;15(28):33972-33984.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.