Кузнецова В.С.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»;
ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Синельникова В.А.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Васильев А.В.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Применение BMP-2 для регенерации костной ткани при остеопорозе

Авторы:

Кузнецова В.С., Синельникова В.А., Васильев А.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Стоматология. 2025;104(3): 101‑108

Прочитано: 1640 раз


Как цитировать:

Кузнецова В.С., Синельникова В.А., Васильев А.В. Применение BMP-2 для регенерации костной ткани при остеопорозе. Стоматология. 2025;104(3):101‑108.
Kuznetsova VS, Sinelnikova VA, Vasilyev AV. Application of BMP-2 for bone regeneration in osteoporosis. Stomatology. 2025;104(3):101‑108. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/stomat2025104031101

Рекомендуем статьи по данной теме:
Вер­теб­роп­лас­ти­ка при па­то­ло­ги­чес­ком пе­ре­ло­ме поз­вон­ка на фо­не ос­те­опо­ро­за. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(6):67-76
Сов­ре­мен­ные пред­став­ле­ния о спор­тив­ной аме­но­рее и ме­то­дах ее кор­рек­ции. (Об­зор ли­те­ра­ту­ры). Воп­ро­сы ку­рор­то­ло­гии, фи­зи­оте­ра­пии и ле­чеб­ной фи­зи­чес­кой куль­ту­ры. 2025;(3):62-71
Па­то­ло­гия опор­но-дви­га­тель­но­го ап­па­ра­та при бо­лез­ни Пар­кин­со­на. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(11-2):6-10

Распространенность остеопороза в Мире составляет 18,3%, при этом женщины в 1,5 раза чаще страдают от этого заболевания, чем мужчины [1]. Ожидается, что к 2034 г. общее число заболевших остеопорозом составит 263,2 млн [2]. В стоматологии остеопороз является фактором риска развития пародонтита и усугубляет его течение, что может приводить к потере зубов [3]. В то же время основной группой пациентов, нуждающейся в проведении дентальной имплантации, являются лица старше 50 лет с заболеваниями, провоцирующими развитие остеопороза. У таких пациентов наблюдается избыточная остеокластическая резорбция, а также недостаток индукции остеобластов и их клеток-предшественниц. В связи с имеющимся отрицательным костным балансом процессы репаративной регенерации костной ткани в условиях остеопороза могут быть недостаточными для обеспечения успеха дентальной имплантации и костно-пластических операций, а значит для их проведения требуются материалы, обладающие остеоиндуктивным действием [4].

В 2007 г. Администрация по контролю лекарственных средств и медикаментов США одобрила применение активированного материала с морфогенетическим белком кости-2 (bone morphogenic protein, BMP-2) костно-пластического материала Infuse Bone Graft (Medtronic, США) при проведении синус-лифтинга и заполнении лунок удаленных зубов [5, 6]. В клинических исследованиях было показано, что BMP-2 обладает сравнимой эффективностью с аутогенными костными трансплантатами, а в некоторых случаях превосходит их [7–9]. Однако описанные результаты были получены у пациентов без остеопороза, в то время как применение остеоиндуктора у лиц с остеопорозом требует особого внимания в связи с имеющейся спецификой метаболических нарушений костной ткани и сниженным регенераторным потенциалом [10].

Несмотря на то, что материалы с BMP-2 потенциально могут применяться у пациентов с остеопорозом, особенности воздействия этого фактора роста на процессы регенерации костной ткани в состоянии остеопороза не были достаточно изучены. Целью обзора является обобщение данных in vitro и in vivo и клинических исследований, посвященных применению BMP-2 при остеопорозе.

Действие BMP-2 в условиях остеопороза in vitro

Сравнение влияния BMP-2 на дифференцировку и минерализацию клеток в культурах, полученных от здоровых доноров и тех, кто страдает остеопорозом, показало выраженные различия (табл. 1) [11]. В клеточных линиях остеобластов и стромальных клеток костного мозга различного происхождения обработка BMP-2 вызывала остеогенную дифференцировку и способствовала минерализации внеклеточного матрикса за счет активации внутриклеточных сигнальных медиаторов, таких как Smad1 и Smad5 [12].

Таблица 1. Результаты применения BMP-2 на моделях in vitro

Организм

Источник клеток

Концентрация BMP-2

Результаты

Ссылка

Крыса

МСК костного мозга

Данные отсутствуют

В клетках отмечали повышенный уровень активности щелочной фосфатазы и минерализации

[16]

Крыса

МСК костного мозга

Данные отсутствуют

Повышенная экспрессия Runx2, остеокальцина и остеопонтина в группе с повышенной экспрессией BMP-2.

Увеличение кальцинированных узелков в группе с повышенной экспрессией BMP-2

[18]

Человек

МСК костного мозга здоровых женщин и с остеопорозом в постменопаузе

Данные отсутствуют

Остеопоротические МСК не показали ответа на добавленный BMP-2, о чем свидетельствуют соотношение p-PPARγ/PPARγ и уровень Runx2, хотя уровень BMPR-IA был значительно выше в остеопоротических, чем в контрольных МСК. Кроме того, окрашивание на p-Smad-1/5/8 наблюдалось в перинуклеарном пространстве.

[11]

Человек

МСК из трабекулярной кости пациентов с остеопорозом

100 нг/мл

Трехкратное увеличение остеогенного потенциала при высоких концентрациях BMP-2

[13]

Человек

МСК из головок бедренных костей здоровых и больных остеопорозом

Данные отсутствуют

Нормальное фосфорилирование SMAD1/5/8, но сниженная активация ERK1/2 в остеопоротических МСК

[14]

Человек

Остеобласты человека из головок бедренных костей пациентов с остеопорозом и остеоартритом

40 нМ

Отсутствие реакции минерализации на BMP-2 в остеопоротических клетках

[17]

В то время как клетки, полученные от доноров с остеопорозом, часто демонстрировали отсутствие реакции на добавление остеоиндуктора или измененную сигнализацию BMP-2 [11, 13]. Так, в исследовании остеопоротические мезенхимальные стволовые клетки (МСК) не реагировали на экзогенное добавление BMP-2 и демонстрировали его проадипогенный эффект. Об этом свидетельствовало отсутствие изменений в соотношении фосфорилированной и активной формы транскрипционного фактора адипогенеза PPAR и уровня Runx2 [11].

Другими исследователями были получены данные о том, что при сохранении способности к остеогенной дифференцировке, механизм действия BMP-2 внутри клетки был изменен. Анализ паттернов активации ключевых белков сигнального пути, связанного со SMAD, показал, что при добавлении BMP-2 фосфорилирование SMAD 1/5/8 в здоровых и остеопоротических МСК происходит на одинаковом уровне. Однако для контрольных клеток была характерна внутриядерная локализация комплекса SMAD, в то время как в остеопоротических он чаще располагался в пространстве вокруг ядра [11, 14]. Помимо этого, для остеопоротических клеток был характерен более высокий уровень BMPR-IA и значимо более низкий уровень показателей фосфорилирования ERK1/2 и SMAD 4 [11, 14]. Несмотря на то, что при добавлении BMP-2 наблюдалось увеличение экспрессии Runx2, Dlx5 и остеокальцина, уровень их индукции в остеопоротических клетках был снижен по сравнению с нормальными клетками. При этом экспрессия щелочной фосфатазы была повышена, но ее активность и способность клеток к минерализации — снижены [15—17].

Действие BMP-2 в условиях остеопороза in vivo

Данные об эффективности применения BMP-2 в условиях остеопороза были получены при локальном и системном введении белка в различных моделях на животных, включая мышей, крыс, собак, овец и приматов (табл. 2).

Таблица 2. Результаты применения BMP-2 in vivo

Вид животного

Концентрация BMP-2

Материал- носитель

Вид костного дефекта

Результат

Ссылка

Мышь

5 мкг

Середина диафиза бедренной кости

В группе применения BMP-2 не происходило восстановления костного дефекта

[25]

Мышь

600 нг

3D-каркас на основе желатина с сульфатом кальция или гидроксиапатитом

Критический дефект костей черепа

Композиты, содержащие BMP-2, способствовали восстановлению критического костного дефекта костей черепа

[26]

Крыса

10 мкг

Носитель на основе гидрокисапатита

Средняя часть малоберцовой кости

BMP-2 у крыс с остеопорозом сохранял остеоиндуктивные свойства, однако не приводил к полному восстановлению костного дефекта по сравнению с группой здоровых крыс

[27]

Крыса

3 мкг и 30 мкг

Гидрогель на основе наночастиц фосфата кальция и гиалуронана, конъюгированного с бифосфонатом

Сегментарный дефект бедренной кости

Использование дозы 3 мкг значительно улучшала процесс формирования кости и приводила к замещению дефектов костной тканью. Высокая доза BMP-2 приводила к избыточному образованию кости с кистоподобной структурой

[28]

Крыса

20 мкг

Фибриновый гель

Модель перелома поясничного позвонка L5

Применение BMP-2 с фибрином приводит к формированию костной ткани. Показатели максимальной нагрузки, максимальной деформации, модуля упругости кости, а также объемного и поверхностного процента, средней ширины и скорости минерализации трабекулярной кости были выше по сравнению с группой без применения BMP-2

[29]

Крыса

90 мкг

Аутогенная костная ткань подвздошной кости и коллагеновая губка

Поясничные позвонки зоны L4–L5

В группе BMP наблюдалась значительно большая костная масса в ложе сращения через 3 недели и позже. Все крысы в группе BMP имели мостовую кость в 3 недели; в 12 недель мостовая кость в группах Sham и OVX составляла около 50% и 25% соответственно от таковой в группе BMP. Рекомбинантный человеческий BMP-2 усиливает сращение позвоночника у крыс OVX и действует на ранних этапах формирования кости

[30]

Крыса

0,11 мг/мл и 0,22 мг/мл

Гидроксиапатит + трикальцийфосфат

Имплантация канал бедренной кости

В группах с BMP-2 было отмечено улучшение минеральной плотности костной ткани на 4-й и 8-й неделях по сравнению с контрольными группами. Была обнаружена тенденция к дозозависимому увеличению пикового крутящего момента, жесткости при кручении, напряжения сдвига и модуля сдвига костей через 4 недели после имплантации материала с BMP-2

[22]

Крыса

1 мкМ

Коллагеновая губка

Сегментарный дефект большеберцовой кости

BMP-2 увеличивал прочность костей при нагрузках до разрушения, а также приводил к увеличению показателей минеральной плотности и ремоделирование кортикальной кости

[31]

Крыса

5 мкг

Кальций-фосфатный цемент, модифицированный стронцием

Дефект метафиза бедренной кости

Применение костного цемента с BMP-2 приводило к увеличению скорости формирования новообразованной кости по сравнению с группами, где был использован кальций-фосфатный цемент и модифицированный стронцием кальций-фосфатный цемент

[32]

Крыса

1 мг

Гель гиалуроната натрия

Периимплантная область в правой большеберцовой кости

В группе крыс с овариоэктомией после имплантации геля с BMP-2 в области имплантатов формировалась костная ткань, резорбция кости не была обнаружена

[33]

Крыса

1 мкг

Коллагеновая губка

Заднелатеральный поясничный спондилодез

Не были выявлены отличия в количестве и качестве новообразованной кости в группах крыс с овариоэктомией и ложнооперированных животных

[34]

Коза

20 мкг

Тетракальцийфосфат и дикальцийфосфат с микросферами желатина, импрегнированными BMP-2

Поясничные позвонки зоны L2–L4

Применение композиции с желатиновыми микросферами привело к образованию большего объема кости, обладающей высокой прочностью на разрыв, по сравнению с группой контроля и группой без желатиновых микросфер. Также в раннем периоде после имплантации минерализация кости в группе с желатиновыми микросферами была повышена, однако к концу эксперимента она не отличалась от других групп

[35]

Овца

0,5 мг

Гранулы полиортоэстера

Поясничные позвонки зоны L2–L5

Увеличение трабекулярной костной ткани, связанное с быстрым высвобождением BMP-2, наблюдалось через 2 месяца после имплантации гранул, и этот эффект сохранялся в течение 6 месяцев исследования

[36]

Оценка свойств новообразованной костной ткани показала, что применение BMP-2 приводит к улучшению скорости образования и значительному увеличению минеральной плотности костной ткани у животных с остеопорозом [12, 18—20]. В эксперименте на крысах при имплантации в область дефекта бедренной кости BMP-2 на коллагеновой губке скорость образования кости и ее объем были сопоставимы с результатами, полученными в группе, где применяли аутотрансплантат [21]. У крыс с овариоэктомией при имплантации коллагеновой губки с BMP-2 в области альвеолярного дефекта нижней челюсти происходило образование костной ткани с более высоким показателем минеральной плотности кости [20]. Однако у мышей подобный эффект был отмечен только для трабекулярной кости [12]. Также в исследовании на крысах был обнаружен дозозависимый эффект. В то время как низкая и высокая дозы BMP-2 через 4 недели приводили к формированию кости с более высокой минеральной плотностью, у животных в группе с более высокой конценетрацией BMP-2 через 8 недель наблюдалось значительное повышение минеральной плотности кости, то есть более высокие дозы могут быть более эффективными для долгосрочного улучшения плотности костной ткани [22].

Анализ данных микрокомпьютерной томографии показал, что использование BMP-2 приводит к значительному увеличению объема новообразованной костной ткани по сравнению с применением только носителя [20]. У кроликов имплантация в области критического дефекта остеоиндуктора на носителе из β-трикальцийфосфата вызывала образование кости в большем объеме по сравнению аутотрансплантатами или только β-трикальцийфосфатом [19].

По данным анализа микро-КТ, BMP-2 приводит к формированию кости с увеличенной толщиной и количеством трабекул, а также плотностью костной структуры [12]. В связи с этим костная ткань, формируемая под действием BMP-2, также отличается улучшенными биомеханическими характеристиками. Введение в канал бедренной кости остеоиндуктора на носителе из гидрокисапатита и β-трикальцийфосфата приводило к формированию кости с более высокими показателями пикового крутящего момента, жесткости при кручении, напряжения и модуля сдвига по сравнению с применением только носителя [22]. У овец при имплантации в области тел позвонков фибринового силанта с BMP-2 новообразованная кость демонстрировала более высокие показатели предела текучести, предельного сжимающего напряжения, модуля упругости кости и поглощения энергии [23]. Локальное введение BMP-2 в область шейки бедренной кости у кроликов приводило к увеличению модуля напряжения при сдвиге и модуля деформации за счет увеличения числа и толщины костных трабекул [24].

Клиническое применение BMP-2 при остеопорозе

Несмотря на то, что костно-пластические материалы с BMP-2 были одобрены для клинического применения в ортопедии еще в 2002 г., а для стоматологии — в 2007 г., до сих пор существует ограниченное число исследований, касающихся его использования у лиц с остеопорозом. Большинство из них описывают результаты применения материалов с BMP-2 при проведении спондилодеза, а также есть отдельные работы, посвященные возможностям использования их у пациентов с остеонекрозом челюстей (табл. 3).

Таблица 3. Результаты применения BMP-2 в клинических исследованиях

Вид исследования

Число пациентов

Вид вмешательства

Носитель

Концентрация BMP-2

Результат

Ссылка

Клинический случай

1

Закрытие дефекта при остеонекрозе челюсти

Деминерализованный дентинный матрикс

0,2 мг/мл

Через 4 месяца после операции происходило заживление мягких тканей и костного дефекта. Через 7 месяцев после операции резорбция костной ткани отсутствовала.

[41]

Клиническое исследование

195

Заднебоковой спондилодез

Аллотрансплантат

4,2—12 мг

Частота сращения у пациентов в возрасте 65 лет и старше при использовании rhBMP-2 была выше, чем в группе, где использовали аутотрансплантат. При использовании rhBMP-2 у пациентов старше 65 лет период сращения длился дольше по сравнению с пациентами младше 65

[42]

Ретроспективное исследование

251

Задний межтеловой спондилодез

Смесь гидроксиапатита и аутологичной кости

0,5 мг

Результаты исследования показали, что в группе с BMP-2 спондилодез прошел успешно, частота остеолиза и проседания имплантата была низкой

[43]

Обзор клинических случаев

20

Заполнение дефекта у пациентов с остеонекрозом челюсти

Коллагеновая губка

4—8 мг

У всех пациентов наблюдались рентгенографические признаки формирования костной ткани через 3 и 4 месяца после операции. Рецидивов остеонекроза не наблюдалось.

[40]

Ретроспективное исследование

132

Поясничный межтеловой спондилодез

Аутогенный трансплантат

1 мг

Использование BMP-2 значительно сократило время сращения при проведении спондилодеза

[37]

Ретроспективное исследование

103

Чрескожная кифопластика

Кальций-фосфатный костный цемент

1—2 мг

В группе с применением костного цемента с BMP-2 потеря высоты передней части тела позвонка и степень компрессии переднего края поврежденного позвонка была ниже, а плотность костной ткани – выше, по сравнению с использованием только цемента

[39]

Использование BMP-2 при спондилодезе позволяет достичь успешного сращения позвонков за более короткий срок по сравнению с применением аутогенного или аллогенного трансплантатов без остеоиндуктора [37, 38]. Использование BMP-2 в сочетании с костным цементом привело к повышению плотности костной ткани и позволило снизить показатель потери высоты передней части тела позвонка и степени компрессии переднего края поврежденного позвонка [39].

При остеонекрозе челюстей имплантация материалов с BMP-2 обеспечивает заполнение дефектов новообразованной костной тканью уже через 3—4 месяца и отсутствие осложнений в виде резорбции кости или повторного формирования некротических зон [40, 41].

Побочные эффекты применении BMP-2 при остеопорозе

Несмотря на то, что большинство исследований свидетельствуют о положительных эффектах применения BMP-2 в условиях остеопороза, следует учитывать возможные нежелательные последствия и осложнения, с которыми пациенты могут столкнуться после имплантации материалов с остеоиндуктором.

Так, в исследовании на мышах и крысах было показано, что использование супрафизиологических доз BMP-2 связано с образованием костной мозоли большого объема, однако в ней объем новообразованной кости может быть низким. Это связано с тем, что высокие дозы BMP-2 приводят к формированию кости с аномальной структурой, которая представляет собой кистоподобные костные полости заполненные жировой тканью [25, 28].

Помимо этого, BMP-2 может стимулировать остеокластическую резорбцию за счет увеличения количества активных остеокластов [44, 45]. Так, в эксперименте на овцах в группе с использованием системы для медленного высвобождения BMP-2 через 2 месяца в теле позвонка была сформирована костная ткань с большим количеством пустот, в то время как в группе, где происходило быстрое высвобождение, не было отмеченно такого эффекта. Однако через 6 месяцев признаки активной резорбции костной ткани отсутствовали в обеих группах [36]. Также в клиническом исследовании у пациентов, перенесших задний поясничный межтеловой спондилодез, наблюдались явления остеолиза в 36% случаев [46].

Другие осложнения, возникшие у пациентов старше 65 лет, после проведения спондилодеза с применением BMP-2, были связаны скорее с имеющимися у них сопутствующими заболеваниями, а не действием остеоиндуктора. Так, образование серомы, плевральный выпот, обострение заболеваний сердечно-сосудистой системы, желудочно-кишечного тракта, инфекции мочевыводящих путей, тромбоза глубоких вен и раневой инфекция с примерно равной частотой наблюдались у пациентов, перенесших спондилодез с использованием BMP-2 и аллогенного трансплантата или аутогенного костного трансплантата [38].

Заключение

Имеющиеся данные о безопасности и эффективности использования BMP-2 при остеопорозе носят противоречивый характер. В ряде исследований было показано, что в условиях остеопороза остеоиндуктивные свойства белка могут быть снижены, в то время как в других он способствовал регенерации костной ткани. В связи с этим требуют уточнения механизмы внутриклеточного действия BMP-2 в условиях остеопороза, а также должны быть получены отдаленные результаты применения остеоиндуктора при восстановлении костных дефектов у пациентов, страдающих этим заболеванием. Все это позволит расширить возможности клинического применения BMP-2 для стоматологии и челюстно-лицевой хирургии.

Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда (грант № 23-75-01116).

The study was carried out with financial support from the Russian Science Foundation (grant No. 23-75-01116).

Литература / References:

  1. Salari N, Darvishi N, Bartina Y, Larti M, Kiaei A, Hemmati M, Shohaimi S, Mohammadi M. Global Prevalence of Osteoporosis among the World Older Adults: A Comprehensive Systematic Review and Meta-Analysis. J. Orthop. Surg. 2021;16:669.  https://doi.org/10.1186/s13018-021-02821-8
  2. Zhu Z, Yu P, Wu Y, Wu Y, Tan Z, Ling J, Ma J, Zhang J, Zhu W, Liu X. Sex Specific Global Burden of Osteoporosis in 204 Countries and Territories, from 1990 to 2030: An Age-Period-Cohort Modeling Study. J. Nutr. Health Aging 2023;27:767–774.  https://doi.org/10.1007/s12603-023-1971-4
  3. Liu F, Wang X, He Y, Han R, Wang T, Guo Y. Jaw Osteoporosis: Challenges to Oral Health and Emerging Perspectives of Treatment. Biomed. Pharmacother. 2024;177:116995. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2024.116995
  4. Shibli JA, Naddeo V, Cotrim KC, Kalil EC, de Avila ED, Faot F, Faverani LP, Souza JGS, Fernandes JCH, Fernandes GVO. Osteoporosis’ Effects on Dental Implants Osseointegration and Survival Rate: A Systematic Review of Clinical Studies. Quintessence Int. Berl. Ger. 1985, 2025. https://doi.org/10.3290/j.qi.b5927487
  5. Gonzalez M, Fuentes R, Triplett R, Triplett S. BMP-2 Used for Maxillary Sinus Augmentation and Implant Placement: 15 Years Follow-Up After Final Restorations. J. Oral Maxillofac. Surg. 2011:69:e51.  https://doi.org/10.1016/j.joms.2011.06.098
  6. Kuznetsova VS, Vasilyev AV, Buharova TB, Goldshtein DV, Kulakov AA. Safety and Efficacy of BMP-2 and BMP-7 Use in Dentistry. Stomatologiya. 2019;98:64.  https://doi.org/10.17116/stomat20199801164
  7. Burkus JK, Sandhu HS, Gornet MF. Influence of rhBMP-2 on the Healing Patterns Associated With Allograft Interbody Constructs in Comparison With Autograft: Spine. 2006:31:775-781.  https://doi.org/10.1097/01.brs.0000206357.88287.5a
  8. Fu R, Selph S, McDonagh M, Peterson K, Tiwari A, Chou R, Helfand M. Effectiveness and Harms of Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2 in Spine Fusion: A Systematic Review and Meta-Analysis. Ann. Intern. Med. 2013;158:890–902, https://doi.org/10.7326/0003-4819-158-12-201306180-00006
  9. Takemoto R, Forman J, Taormina DP, Egol KA. No Advantage to rhBMP-2 in Addition to Autogenous Graft for Fracture Nonunion. Orthopedics. 2014:37.  https://doi.org/10.3928/01477447-20140528-51
  10. Chen Y, Jia L, Han T, Zhao Z, Yang J, Xiao J, Yang H-J, Yang K. Osteoporosis Treatment: Current Drugs and Future Developments. Front. Pharmacol. 2024;15:1456796. https://doi.org/10.3389/fphar.2024.1456796
  11. Donoso O, Pino AM, Seitz G, Osses N, Rodríguez JP. Osteoporosis‐associated Alteration in the Signalling Status of BMP‐2 in Human MSCs under Adipogenic Conditions. J Cell Biochem. 2015:116:1267-1277. https://doi.org/10.1002/jcb.25082
  12. Akkiraju H, Bonor J, Olli K, Bowen C, Bragdon B, Coombs H, Donahue LR, Duncan R, Nohe A. Systemic Injection of CK2.3, a Novel Peptide Acting Downstream of Bone Morphogenetic Protein Receptor BMPRIa, Leads to Increased Trabecular Bone Mass. J Orthop Res. 2015;33;208-215.  https://doi.org/10.1002/jor.22752
  13. Pountos I, Georgouli T, Henshaw K, Bird H, Jones E, Giannoudis PV. The Effect of Bone Morphogenetic Protein-2, Bone Morphogenetic Protein-7, Parathyroid Hormone, and Platelet-Derived Growth Factor on the Proliferation and Osteogenic Differentiation of Mesenchymal Stem Cells Derived From Osteoporotic Bone. J Orthop Trauma. 2010;24:552-556.  https://doi.org/10.1097/BOT.0b013e3181efa8fe
  14. Prall WC, Haasters F, Heggebö J, Polzer H, Schwarz C, Gassner C, Grote S, Anz D, Jäger M, Mutschler W, et al. Mesenchymal Stem Cells from Osteoporotic Patients Feature Impaired Signal Transduction but Sustained Osteoinduction in Response to BMP-2 Stimulation. Biochem Biophys Res Commun. 2013;440:617-622.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2013.09.114
  15. Garcia-Garcia P, Reyes R, Rodriguez JA, Martín T, Evora C, Díaz-Rodríguez P, Delgado A. The Bone Regeneration Capacity of BMP-2 + MMP-10 Loaded Scaffolds Depends on the Tissue Status. Pharmaceutics. 2021;13: 979.  https://doi.org/10.3390/pharmaceutics13070979
  16. Haque T, Uludag H, Zernicke RF, Winn SR, Sebald W. Bone Marrow Cells from Normal and Ovariectomized Rats Respond Differently to Basic Fibroblast Growth Factor and Bone Morphogenetic Protein 2 Treatment in Vitro. Tissue Eng. 2005;11:634-644.  https://doi.org/10.1089/ten.2005.11.634
  17. Weidner H, Yuan Gao V, Dibert D, McTague S, Eskander M, Duncan R, Wang L, Nohe A. CK2.3, a Mimetic Peptide of the BMP Type I Receptor, Increases Activity in Osteoblasts over BMP2. Int J Mol Sci. 2019;20:5877. https://doi.org/10.3390/ijms20235877
  18. Zhao B, Xing G, Wang A. The BMP Signaling Pathway Enhances the Osteoblastic Differentiation of Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells in Rats with Osteoporosis. J Orthop Surg. 2019;14:462.  https://doi.org/10.1186/s13018-019-1512-3
  19. Huang T-Y, Wu C-C, Weng P-W, Chen J-M, Yeh W-L. Effect of ErhBMP-2-Loaded β-Tricalcium Phosphate on Ulna Defects in the Osteoporosis Rabbit Model. Bone Rep. 2021;14:100739. https://doi.org/10.1016/j.bonr.2020.100739
  20. Kim HJ, Kim K-H, Lee Y-M, Ku Y, Rhyu I-C, Seol Y-J. In Ovariectomy-Induced Osteoporotic Rat Models, BMP-2 Substantially Reversed an Impaired Alveolar Bone Regeneration Whereas PDGF-BB Failed. Clin Oral Investig. 2021;25:6159-6170. https://doi.org/10.1007/s00784-021-03915-7
  21. Moon YJ, Jeong S, Lee K-B. Bone Morphogenetic Protein 2 Promotes Bone Formation in Bone Defects in Which Bone Remodeling Is Suppressed by Long-Term and High-Dose Zoledronic Acid. Bioengineering. 2023;10:86.  https://doi.org/10.3390/bioengineering10010086
  22. Liporace FA, Breitbart EA, Yoon RS, Doyle E, Paglia DN, Lin S. The Effect of Locally Delivered Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2 with Hydroxyapatite/Tri-Calcium Phosphate on the Biomechanical Properties of Bone in Diabetes-Related Osteoporosis. J Orthop Traumatol. 2015;16:151-159.  https://doi.org/10.1007/s10195-014-0327-6
  23. Wu ZX, Liu D, Wan SY, Zhang Y, Lei W, Cui G. Sustained-Release rhBMP-2 Increased Bone Mass and Bone Strength in an Ovine Model of Postmenopausal Osteoporosis. J Orthop Sci. 2011;16:99-104.  https://doi.org/10.1007/s00776-010-0019-x
  24. Jing D, Hao X, Xu F, Liu J, Xu F, Luo E, Meng G. Effects of Local Delivery of BMP2, Zoledronate and Their Combination on Bone Microarchitecture, Biomechanics and Bone Turnover in Osteoporotic Rabbits. Sci Rep. 2016;6:28537. https://doi.org/10.1038/srep28537
  25. Chen X, Wang S, Zhang X, Yu Y, Wang J, Liu C. Dual-Function Injectable Fibrin Gel Incorporated with Sulfated Chitosan Nanoparticles for rhBMP-2-Induced Bone Regeneration. Appl Mater Today. 2022;26: 101347. https://doi.org/10.1016/j.apmt.2021.101347
  26. Echave MC, Erezuma I, Golafshan N, Castilho M, Kadumudi F.B, Pimenta-Lopes C, Ventura F, Pujol A, Jimenez JJ, Camara JA, et al. Bioinspired Gelatin/Bioceramic Composites Loaded with Bone Morphogenetic Protein-2 (BMP-2) Promote Osteoporotic Bone Repair. Biomater Adv. 2022;134: 112539. https://doi.org/10.1016/j.msec.2021.112539
  27. Lee JH, Baek H-R, Lee K-M, Zheng GB, Shin SJ, Shim H-J. Effects of  Ovariectomy and Corticosteroid-Induced Osteoporosis on the Osteoinductivity of rhBMP-2 in a Segmental Long-Bone Defect Model. Tissue Eng. Part A. 2015;21:2262-2271. https://doi.org/10.1089/ten.tea.2014.0659
  28. Van Houdt CIA, Koolen MKE, Lopez‐Perez PM, Ulrich DJO, Jansen JA, Leeuwenburgh SCG, Weinans HH, Van Den Beucken JJJP. Regenerating Critical Size Rat Segmental Bone Defects with a Self‐Healing Hybrid Nanocomposite Hydrogel: Effect of Bone Condition and BMP‐2 Incorporation. Macromol Biosci. 2021;21:2100088. https://doi.org/10.1002/mabi.202100088
  29. Ouyang X, Ding Y, Yu L, Xin F, Yang X, Sha P, Tong S, Cheng Q, Xu Y. Effects of BMP-2 Compound with Fibrin on Osteoporotic Vertebral Fracture Healing in Rats. Journal of musculoskeletal & neuronal interactions. 2021; 149-156. 
  30. Park SB, Park SH, Kim N-H, Chung CK. BMP-2 Induced Early Bone Formation in Spine Fusion Using Rat Ovariectomy Osteoporosis Model. Spine J. 2013;13:1273-1280. https://doi.org/10.1016/j.spinee.2013.06.010
  31. Sarban S, Senkoylu A, Isikan UE, Korkusuz P, Korkusuz F. Can rhBMP-2 Containing Collagen Sponges Enhance Bone Repair in Ovariectomized Rats?: A Preliminary Study. Clin Orthop Relat Res. 2009;467:3113-3120. https://doi.org/10.1007/s11999-009-1004-6
  32. Tao Z, Zhou W, Jiang Y, Wu X, Xu Z, Yang M, Xie J. Effects of Strontium-Modified Calcium Phosphate Cement Combined with Bone Morphogenetic Protein-2 on Osteoporotic Bone Defects Healing in Rats. J Biomater Appl. 2018;33:3-10, https://doi.org/10.1177/0885328218765847
  33. Song Y, Wan L, Zhang S, DuY. Biological Response to Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2 on Bone-Implant Osseointegration in Ovariectomized Experimental Design. J Craniofac Surg. 2019;30:141-144.  https://doi.org/10.1097/SCS.0000000000004992
  34. Ghodasra JH, Nickoli MS, Hashmi SZ, Nelson JT, Mendoza M, Nicolas JD, Bellary SS, Sonn K Ashtekar A, Park CJ, et al. Ovariectomy-Induced Osteoporosis Does Not Impact Fusion Rates in a Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2–Dependent Rat Posterolateral Arthrodesis Model. Glob Spine J. 2016;6:60-68.  https://doi.org/10.1055/s-0035-1556582
  35. Li M, Liu X, Liu X, Ge B. Calcium Phosphate Cement with BMP-2-Loaded Gelatin Microspheres Enhances Bone Healing in Osteoporosis: A Pilot Study. Clin Orthop. 2010;468:1978-1985. https://doi.org/10.1007/s11999-010-1321-9
  36. Zarrinkalam MR, Schultz CG, Ardern DW, Vernon‐Roberts B, Moore RJ. Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein‐type 2 (rhBMP‐2) Enhances Local Bone Formation in the Lumbar Spine of Osteoporotic Sheep. J Orthop Res. 2013;31:1390-1397. https://doi.org/10.1002/jor.22387
  37. Kim S-H, Park Y, Shin J-W, Ha J-W, Choi H-M, Kim H.-S, Moon S-H, Suk K-S, Park S-Y, Lee B-H, et al. Accelerated Fusion Dynamics by Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2 Following Transforaminal Lumbar Interbody Fusion, Particularly in Osteoporotic Conditions. Spine J. 2024;24:2078-2085. https://doi.org/10.1016/j.spinee.2024.06.010
  38. Lee K-B, Johnson JS, Song K-J, Taghavi CE, Wang JC. Use of Autogenous Bone Graft Compared With RhBMP in High-Risk Patients: A Comparison of Fusion Rates and Time to Fusion. J Spinal Disord Tech. 2013;26:233-238.  https://doi.org/10.1097/BSD.0b013e3182440162
  39. Xia Y-D, Zhang R, Liu Q, Chen J-R. Application value of bone cement containing rhbFGF and RHBMP-2 in PKP treatment of osteoporotic lumbar compression fracture. Zhongguo Gu Shang China J Orthop Traumatol. 2024; 37:15-20.  https://doi.org/10.12200/j.issn.1003-0034.20221048
  40. Cicciù M, Herford AS, Juodžbalys G, Stoffella E. Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein Type 2 Application for a Possible Treatment of Bisphosphonates-Related Osteonecrosis of the Jaw: J Craniofac Surg. 2012;23:784-788.  https://doi.org/10.1097/SCS.0b013e31824dbdd4
  41. Ku J-K, Choi J-W, Song S-M, Yun P-Y, Um I-W, Leem DH. Demineralized Dentin Matrix Incorporated with rhBMP-2 Composite Graft for Treating Medication-Related Osteonecrosis of the Jaw. J Clin Med. 2024;13:4830. https://doi.org/10.3390/jcm13164830
  42. Lee K-B, Taghavi CE, Hsu MS, Song K-J, Yoo JH, Keorochana G, Ngo SS, Wang JC. The Efficacy of rhBMP-2 versus Autograft for Posterolateral Lumbar Spine Fusion in Elderly Patients. Eur Spine J. 2010;19:924–930.  https://doi.org/10.1007/s00586-009-1248-6
  43. Ryu S, Yoon S-J, Lee CK, Yi S, Kim K-N, Ha Y, Shin DA. The Combined Effects of RhBMP-2 and Systemic RANKL Inhibitor in Patients With Bone Density Loss Undergoing Posterior Lumbar Interbody Fusion: A Retrospective Observational Analysis With Propensity Score Matching. Neurospine 2023;20:1186-1192. https://doi.org/10.14245/ns.2346702.351
  44. James AW, LaChaud G, Shen J, Asatrian G, Nguyen V, Zhang X, Ting K, Soo C. A Review of the Clinical Side Effects of Bone Morphogenetic Protein-2. Tissue Eng Part B Rev. 2016;22:284-297.  https://doi.org/10.1089/ten.teb.2015.0357
  45. Zara JN, Siu RK, Zhang X, Shen J, Ngo R, Lee M, Li W, Chiang M, Chung J, Kwak J, et al. High Doses of Bone Morphogenetic Protein 2 Induce Structurally Abnormal Bone and Inflammation In Vivo. Tissue Eng Part A. 2011;17:1389-1399. https://doi.org/10.1089/ten.tea.2010.0555
  46. Ryu S, Yoon S-J, Lee CK, Yi S, Kim K-N, Ha Y, Shin DA. The Combined Effects of RhBMP-2 and Systemic RANKL Inhibitor in Patients With Bone Density Loss Undergoing Posterior Lumbar Interbody Fusion: A Retrospective Observational Analysis With Propensity Score Matching. Neurospine. 2023;20:1186–1192. https://doi.org/10.14245/ns.2346702.351

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.