Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Алексеенко С.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России;
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России

Дворянчиков В.В.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России

Артюшкин С.А.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России;
ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России

Рязанцев С.В.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России

Скальный А.В.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Барашкова С.В.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России

Кривопалов А.А.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России

Туриева В.В.

ФГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт уха, горла, носа и речи» Минздрава России

Тиньков А.А.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»;
Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук — обособленное структурное подразделение ФБУН «Оренбургский федеральный исследовательский центр» Уральского отделения Российской академии наук

Молекулярные механизмы нарушений мукоцилиарного клиренса у пациентов с хроническим полипозным риносинуситом

Авторы:

Алексеенко С., Дворянчиков В.В., Артюшкин С.А., Рязанцев С.В., Скальный А.В., Барашкова С.В., Кривопалов А.А., Туриева В.В., Тиньков А.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Российская ринология. 2023;31(4): 274‑280

Прочитано: 1542 раза


Как цитировать:

Алексеенко С., Дворянчиков В.В., Артюшкин С.А., и др. Молекулярные механизмы нарушений мукоцилиарного клиренса у пациентов с хроническим полипозным риносинуситом. Российская ринология. 2023;31(4):274‑280.
Alekseenko S, Dvoryanchikov VV, Artyushkin SA, et al. Molecular mechanisms of altered mucociliary clearance in patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps (CRSwNP). Russian Rhinology. 2023;31(4):274‑280. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rosrino202331041274

Рекомендуем статьи по данной теме:
Биомар­ке­ры ате­рот­ром­бо­ти­чес­ко­го и кар­диоэм­бо­ли­чес­ко­го под­ти­пов ос­тро­го ише­ми­чес­ко­го ин­суль­та. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(12-2):20-26

Сокращения

ИЛ — интерлейкин

ИФН — интерферон

ЛПС — липополисахариды

ПРС — полипозный риносинусит

ФНО-α — фактор некроза опухолей α

ХРС — хронический риносинусит

Введение

Хронический риносинусит (ХРС) — хроническое воспалительное заболевание слизистой оболочки полости носа и околоносовых пазух, которое проявляется затруднением носового дыхания, выделениями из носа, а также наличием головных болей и снижением обоняния более чем 12 нед [1]. Распространенность ХРС составляет от 5—6% в США и Бразилии до 27—28% в Португалии и Иране [2], в России средний показатель составляет 16,4% [3].

В соответствии с фенотипическими особенностями, наличие назальных полипов определяет форму полипозного риносинусита (ПРС) и составляет до 20—30% всех пациентов с ХРС [4]. Несмотря на то что локальные проявления ХРС с назальными полипами и без таковых очень похожи, патогенетические механизмы развития ПРС обусловливают тесную взаимосвязь этого заболевания с бронхиальной астмой, аспириновой триадой и бронхоэктатической болезнью [5]. По мере прогрессирования пролиферации, полипы способны блокировать носовые ходы [6]. ПРС характеризуется высокой частотой рецидивов, что ассоциировано с повышенным риском ревизионной хирургии [7].

Знания о патогенезе ПРС лежат в основе классификации заболевания, выделяющей эндотипы ХРС и способствующей выбору рациональной фармакотерапии [8] и тактики послеоперационного периода [9]. Наряду с развитием хронического воспаления нарушение мукоцилиарного клиренса является одним из важнейших механизмов патогенеза ПРС [10]. В то же время данные об особенностях функционирования цилиарного аппарата респираторного эпителия у пациентов с хроническим ПРС и их взаимосвязи с механизмами развития заболевания недостаточны и противоречивы.

Цель исследования — анализ данных литературы о молекулярных механизмах развития нарушений мукоцилиарного клиренса у пациентов с ПРС.

Материал и методы

Был проведен анализ материалов, опубликованных до 10 марта 2023 г. в базах данных PubMed (Medline), Google Scholar и РИНЦ. Поиск осуществляли по ключевым словам «cilia», «mucociliary», «mucus», «nasal polyp», «nasal polyposis», «CRSwNP» (и их русскоязычным эквивалентам).

Результаты

Анализ результатов многочисленных исследований показал, что пациенты с ПРС характеризуются нарушениями мукоцилиарного клиренса. После функциональной эндоскопической риносинусохирургии также установлены более высокие показатели длительности сахаринового теста при ПРС по сравнению с пациентами без полипоза [11]. В.С. Козлов и соавт. (2008) [12] отметили, что наряду с увеличением длительности сахаринового теста у пациентов с ПРС наблюдались значительные различия в частоте биения цилий, причем частота биения цилий эпителия средней носовой раковины была ниже таковой в области созревания и на верхушке полипов.

Причиной упорного течения так называемого «трудноизлечимого» ХРС может являться способность микробиоты формировать биопленки, в частности Staphylococcus aureus [13]. Важно отметить, что наличие бактериальных биопленок сопровождается разрушением эпителиального слоя и отсутствием цилий как у пациентов с ПРС, так и с ХРС без полипоза [14].

Исследование с использованием сканирующей электронной микроскопии выявило выраженные нарушения структуры цилий, характеризующихся беспорядочностью, избыточной плотностью, а также удлинением, что сопровождалось снижением частоты биения цилий. Подобный характер нарушений ассоциирован с гиперплазией эпителия и обусловлен up-регуляцией центросомального белка 110 (Centrosomal protein 110, CP110), факторов транскрипции FOXJ1 (Forkhead box J1) и TAp73 (P73 isoform with an N-terminal transactivation domain) [15]. В то же время в условиях гипоксии, также играющей значительную роль в патогенезе ХРС [16], в эпителии назальных полипов имеет место нарушение цилиогенеза и функционирования цилий, о чем свидетельствует снижение экспрессии мРНК генов GMNC, MCIDAS, FOXJ1, MYB, RFX3, RFX2, TP73 и TRRAP, а также нарушение дифференцировки эпителиоцитов [17]. Таким образом, для ПРС характерно увеличение количества клеток с нарушением структуры цилий [19].

Кроме того, представляются интересными результаты исследования, продемонстрировавшие отсутствие выраженных нарушений функции цилиарного аппарата на фоне снижения мукоцилиарного клиренса, что указывает на значимую роль изменений характеристик назальной слизи [20].

Несмотря на то что патология цилиарного аппарата у пациентов с ПРС отчетливо продемонстрирована, исследования последних десятилетий направлены на изучение возможных механизмов подобных нарушений. В частности, в образцах назальных полипов выявлено выраженное снижение интенсивности ацетилхолин-индуцированного биения цилий относительно контроля, что может быть связано с торможением экспрессии в эпителии полипов M1/M3 мускариновых рецепторов, паннексина 1 и P2X7 пуринергического рецептора, обладающих стимулирующим влиянием в отношении биения цилий [21]. Также предполагается, что в дисфункцию цилиарного аппарата при назальных полипах может вносить существенный вклад снижение экспрессии гена WDPCP (Wd-repeat containing planar cell polarity effector) и последующее нарушение функции митохондрий посредством нарушений сигнального пути MAPK/ERK [22].

Дисфункция цилиарного аппарата при ХРС с назальным полипозом также может быть обусловлена активацией сигнального пути Wnt фибробластами назальных полипов [23]. В частности, роль сигнального пути Wnt/β-catenin в патогенезе назального полипоза обусловлена поддержанием воспалительной реакции и гиперпродукцией провоспалительных цитокинов, нарушением межклеточных контактов и цилиогенеза [24].

Возможным механизмом нарушения активности цилиарного аппарата при эозинофильном эндотипе может являться снижение продукции оксида азота, обладающего модулирующим влиянием на активность цилий [25].

Показано, что эпителий назальных полипов характеризуется генетическими нарушениями, ассоциированными с патологией цилиогенеза и функционирования цилий, что может быть отчасти вызвано нарушением экспрессии микроРНК, в первую очередь mir-34 и mi-449 [26].

Поскольку мукоцилиарный клиренс состоит из двух функциональных компонентов, назальной слизи и ресничек эпителия слизистой оболочки носа и околоносовых пазух, в дальнейшем будут рассмотрены механизмы развития изменений характеристик слизи, а также влияние цитокинов, вовлеченных в патогенез ПРС, на активность цилий.

Состав и, как следствие, характеристики назальной слизи, например ее вязкость, оказывают значительное влияние на эффективность мукоцилиарного транспорта [27]. В частности, гиперэкспрессия муцина MUC5AC являлась устойчивой характеристикой назальных полипов, которая не снижалась под влиянием глюкокортикоидов, уменьшающих количество эозинофилов в ткани полипов [28].

Результаты протеомного анализа отделяемого носа также продемонстрировали, что избыточная продукция MUC5A в большей степени характерна для ХРС без полипов (CRSsNP) чем для ПРС (CRSwNP) [29]. Аналогично, для ПРС, в отличие от ХРС без полипов, характерно увеличение количества бокаловидных клеток и гиперпродукция MUC5A и MUC5B, что может быть связано с активацией гипоксия-индуцибельного фактора 1 (HIF-1) [30].

Эпидермальный фактор роста, экспрессия мРНК которого существенно увеличена при ПРС [31], также способствует увеличению экспрессии мРНК и белка MUC5AC в назальных эпителиальных клетках у пациентов с ПРС посредством активации PI3K-TMEM16A [32, 33]. Также отмечается роль ФНО-α-ассоциированной экспрессии эпидермального фактора роста в гиперплазии бокаловидных клеток [34].

Результаты проведенных исследований продемонстрировали влияние различных цитокинов на качественный состав назальной слизи и гиперпродукцию MUC5AC. В частности, при эозинофильных эндотипах назальных полипов наиболее выраженный стимулирующий эффект на секрецию MUC5AC отмечался при воздействии интерлейкина (ИЛ) 13 > ИЛ-6 > ИЛ-17А, причем для эозинофильного эндотипа была характерна преимущественно экспрессия ИЛ-6 и ИЛ-13 [35].

В ходе реализации Th2-опосредованного иммунного ответа активация секреции MUC5AC и MUC5B в тканях назальных полипов может быть опосредована передачей сигналов ИЛ-4 или ИЛ-13 через IL-4Rα, который характеризуется избыточной экспрессией в тканях полипов [36]. Кроме того, Th2-индуцированная экспрессия пендрина может играть значительную роль в повышении продукции провоспалительных цитокинов, в первую очередь ИЛ-13, и секреции муцина MUC5AC [37]. ИЛ-13-индуцированная гиперсекреция муцина MUC5AC также может быть опосредована up-регуляцией TMEM16A [38].

Описана роль других цитокинов в гиперпродукции муцина MUC5AC. В частности, отдельные исследователи предполагают, что повышенная экспрессия муцина MUC5AC и гиперплазия бокаловидных клеток в большей степени характерна для ИЛ-5-зависимого эозинофильного эндотипа ПРС, что может быть связано с ингибированием фактора транскрипции NKX2-1 [39]. Одним из факторов гиперпродукции MUC5A также может являться секреция ИЛ-19, активирующего сигнальный путь STAT3 [40]. Интересно, что эластаза нейтрофилов также может индуцировать секрецию MUC5AC посредством up-регуляции экспрессии фактор некроза опухолей (ФНО)-α-превращающего фермента, однако данный механизм не является специфическим для ХРС исключительно с назальными полипами [41].

В свою очередь, активация NF-κB, характерная для пациентов с ПРС, может обусловливать гиперпродукцию ИЛ-6, ИЛ-8, эотаксина [42] и продукцию MUC5A [43]. Активация этого механизма может иметь место при избыточном воздействии ФНО-α [44] или липополисахарида (ЛПС) [45].

В то же время другие авторы при назальном полипозе отмечают гиперсекрецию MUC8, но не MUC5AC, что может быть обусловлено продукцией ИЛ-4 [46].

Таким образом, при ПРС характерным изменением назальной слизи является увеличение секреции муцина MUC5AC вследствие активации сигнальных путей при воздействии ИЛ-4/ИЛ-13, эпидермального фактора роста, ФНО-α, ИЛ-19, а также гипоксии.

В патогенетическом континууме ПРС отмечен выраженный плейоморфизм цитокинового профиля [47]. С целью оценки механизмов развития цилиарной дисфункции у пациентов с ПРС изучено влияние различных цитокинов на активность цилиарного аппарата мерцательного эпителия слизистой оболочки носа и околоносовых пазух. Наиболее изучен в этом плане ИЛ-13, являющийся одним из цитокинов, продуцируемых в том числе эозинофилами.

Продемонстрировано, что эпителий назальных полипов характеризуется повышенной экспрессией мРНК не только ИЛ-13, но и его рецепторов IL-13Rα1 и IL-13Rα2. При этом IL-13Rα2-опосредованная передача сигнала ИЛ-13 сопровождается снижением частоты биения цилий и увеличением экспрессии мРНК MUC5AC посредством активации ERK1/2-сигнального пути [48]. При этом одним из механизмов увеличения продукции ИЛ-13 может являться индукция секреции ИЛ-33 у пациентов с ПРС [49].

ИЛ-13, равно как и интерферон (ИФН)-γ, снижает дифференцировку реснитчатого эпителия и частоту биения цилий эпителия у пациентов с ПРС, причем ИЛ-13 также стимулирует гиперплазию бокаловидных клеток с гиперпродукцией MUC5AC, в то время как воздействие ИФН-γ сопровождается повышенной экспрессией MUC5B [50]. Предполагается, что одним из механизмов ИЛ-13-зависимого нарушения дифференцировки реснитчатого эпителия может являться торможение экспрессии фактора транскрипции FOXJ1, вовлеченного в регуляцию цилиогенеза, посредством активации STAT6 [51]. При этом в снижении факторов транскрипции цилиогенеза FOXJ1 и DNAI2 и гиперпродукции MUC5A и CLCA1 бокаловидными клетками в эпителии назальных полипов под влиянием ИЛ-13 могут играть значимую роль эпигенетические механизмы, в первую очередь интенсификация экспрессии H3K4me3 и метилтрансферазы MLL1 [52]. Другими установленными механизмами, обусловливающими характер влияния ИЛ-13 на цилиогенез, может являться изменение экспрессии Yes-ассоциированного белка [53] и CP110 [54], являющегося отрицательным регулятором образования цилий [55].

Важно отметить, что наряду со снижением количества клеток с подвижными цилиями и гиперсекрецией слизи, при воздействии ИЛ-13 также отмечается снижение экспрессии белков межклеточных контактов и продукции ИФН-λ1 и CXCL10 в ответ на воздействие риновируса [56].

Таким образом, учитывая роль ИЛ-13 в патогенезе ПРС, а также характер его влияний на цилиарный аппарат эпителия слизистой оболочки носовой полости и околоносовых пазух, справедливо предположить, что избыточная продукция ИЛ-13 может являться значимым механизмом развития цилиарной дисфункции.

В ряде исследований изучено влияние других цитокинов на активность цилиарного аппарата слизистой оболочки носа при ПРС. В ходе детального анализа показано, что ИЛ-4 и ИЛ-13 снижают частоту биения цилий назального эпителия, тогда как ИЛ-5 или ИЛ-9 оказывают обратный эффект. Также следует отметить, что низкие и высокие концентрации ИФН-γ достоверно снижают и повышают частоту биения цилий [57]. Различия в влиянии цитокинов на функционирование цилий могут в определенной степени обусловливать клинические различия эндотипов ПРС.

Несмотря на то что в патогенезе ПРС ведущая роль принадлежит ИЛ-4/ИЛ-13, а также ИЛ-5, в ряде исследований изучено влияние других цитокинов, экспрессия которых также имела место при ПРС [58].

В частности, метилхолин-индуцированное биение цилий, а также ЛПС-индуцированная секреция ИЛ-6 и ИЛ-8 были более выраженным в эпителии пациентов с ПРС, чем в здоровых клетках [59]. При этом ИЛ-6 способствовал активации цилий, повышая частоту биения цилий и стимулируя миграцию и пролиферацию эпителиоцитов, что может играть значительную роль в генезе назальных полипов [60].

Результаты обследования пациентов с ПРС продемонстрировали, что экспрессия рецепторов к ФНО-α и, как следствие, чувствительность назального эпителия к ФНО-α ассоциирована с наличием бактериальных биопленок, отсутствием цилий, а также плоскоклеточной метаплазией эпителия [61]. Результаты ряда других исследований также показали, что ФНО-α также обладает ингибирующим влиянием в отношении биения цилий [62]. При этом возможным механизмом нарушения цилиарного аппарата может являться ФНО-α-индуцированная экспрессия CP110 [63].

Заключение

Таким образом, имеющиеся данные свидетельствуют о выраженном нарушении мукоцилиарного клиренса у пациентов при ПРС, которое обусловлено, с одной стороны, дисфункцией цилиарного аппарата вследствие нарушений процесса цилиогенеза, тогда как с другой — изменением характеристик назальной слизи преимущественно за счет увеличения секреции муцина MUC5AC. Описанные изменения развиваются вследствие избыточной продукции провоспалительных цитокинов, характерных для ПРС, в первую очередь ИЛ-4/ИЛ-13, роль которых в дисфункции цилиарного аппарата наиболее изучена. Ряд других цитокинов, в том числе ИЛ-5, ИЛ-6, ФНО-α и ИФН-γ также оказывают значительное модулирующее влияние на мукоцилиарный транспорт при ПРС. Непосредственные молекулярные механизмы, опосредующие влияние этих цитокинов на дифференцировку эпителиальных клеток, активность цилий или секрецию слизи могут включать активацию сигнальных путей HIF-1, PI3K, TMEM16, NF-κB, STAT3/6, ERK, а также модуляцию экспрессии факторов транскрипции, вовлеченных в регуляцию цилиогенеза. Предполагается, что воздействие на молекулярные механизмы развития нарушений мукоцилиарного клиренса у пациентов с ПРС может способствовать повышению эффективности как медикаментозного, так и хирургического лечения.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — С. Алексеенко, В.В. Дворянчиков, С.А. Артюшкин, С.В. Рязанцев, А.В. Скальный, А.А. Тиньков

Сбор и обработка материала — С. Алексеенко, В.В. Тиньков, С.В. Барашкова, В.В. Туриева

Написание текста — С. Алексеенко, А.А. Тиньков, С.В. Барашкова, В.В. Туриева

Редактирование — С.В. Рязанцев, А.А. Кривопалов

Авторы заявляют об отсутствии конфликтов интересов.

Литература / References:

  1. Stevens W, Lee R, Schleimer P, Cohen A. Chronic rhinosinusitis pathogenesis. J Allergy Clin Immunol. 2015;136(6):1442-1453. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2015.10.009.
  2. Sedaghat A, Kuan E, Scadding G. Epidemiology of Chronic Rhinosinusitis: Prevalence and Risk Factors. J Allergy Clin Immunol. 2022;10(6):1395-1403. https://doi.org/10.1016/j.jaip.2022.01.016.
  3. Шамкина П.А., Кривопалов А.А., Рязанцев С.В., Шнайдер Н.А., Гайдуков С.С., Шарданов З.Н. Эпидемиология Хронических Риносинуситов. Современные проблемы науки и образования. 2019;3:188.  https://doi.org/10.17513/Spno.28891
  4. Chaaban M, Walsh E, Woodworth B. Epidemiology and differential diagnosis of nasal polyps. Am J Rhinol Allergy. 2012;27(6):473-478.  https://doi.org/10.2500/ajra.2013.27.3981
  5. Cattano D, Citardi M. Chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Journal of Head and Neck Anesthesia. 2019;3(3):20.  https://doi.org/10.1097/HN9.0000000000000020
  6. Lilja J, Koskinen A, Virkkula P, Vento SI, Myller J, Hammarén-Malmi S, Laulajainen-Hongisto A, Hytönen M, Mäkitie A, Numminen J, Sillanpää S, Raitiola H, Rautiainen M, Toppila-Salmi SK. Factors Affecting the Control of Chronic Rhinosinusitis With Nasal Polyps: A Comparison in Patients With or Without NERD. Allergy and rhinology. 2021;12:21526567211003844. https://doi.org/10.1177/21526567211003844
  7. Kato A, Peters A, Stevens W, Schleimer P, Tan BK, Kern RC. Endotypes of chronic rhinosinusitis: Relationships to disease phenotypes, pathogenesis, clinical findings and treatment approaches. Allergy. 2022;77(3):812-826.  https://doi.org/10.1111/all.15074
  8. Wynne M, Atkinson C, Schlosser R, Mulligan J. Contribution of Epithelial Cell Dysfunction to the Pathogenesis of Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. Am J Rhinol Allergy. 2019;33(6):782-790.  https://doi.org/10.1177/1945892419868588
  9. Унтевский В.С., Семенов Ф.В. Особенности течения раневого процесса в слизистой оболочке полости носа и околоносовых пазух после эндоназальных хирургических вмешательств. Российская ринология. 2021;29(3):148-154.  https://doi.org/10.17116/rosrino202129031148
  10. Рязанцев С.В., Будковая М.А. Тактика лечения полипозного риносинусита. Российская оториноларингология. 2017;2:162-169.  https://doi.org/10.18692/1810-4800-2017-2-162-169
  11. Haxel B, Karaiskaki N, Boessert P, Fruth K. Mucociliary clearance before and after endonasal sinus surgery for chronic rhinosinusitis with and without nasal polyps. Edorium Journal of Otolaryngology. 2017;3:1-7.  https://doi.org/10.5348/O04-2017-8-OA-1
  12. Козлов В.С., Шиленкова В.В., Азатян А.С, Крамной А.И. Мукоцилиарный транспорт и двигательная активность цилиарного аппарата слизистой оболочки носа у больных хроническим полипозным риносинуситом. Вестник оториноларингологии. 2008;2:10-13. Ссылка активна на 24.09.23.  https://www.elibrary.ru/item.asp?id=10334392
  13. Лопатин А.С., Азизов И.С., Козлов Р.С. Микробиом полости носа и околоносовых пазух в норме и при патологии. Часть II. Российская ринология. 2021;29(2):81-89.  https://doi.org/10.17116/rosrino20212902181
  14. Wang X, Du J, Zhao C. Bacterial biofilms are associated with inflammatory cells infiltration and the innate immunity in chronic rhinosinusitis with or without nasal polyps. Inflammation. 2014;37(3):871-879.  https://doi.org/10.1007/s10753-013-9807-8
  15. Li YY, Li CW, Chao SS, Yu FG, Yu XM, Liu J, Yan Y, Shen L, Gordon W, Shi L, Wang Y. Impairment of cilia architecture and ciliogenesis in hyperplastic nasal epithelium from nasal polyps. Edorium Journal of Otolaryngology. 2014;134(6):1282-1292. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2014.07.038
  16. Zhong B, Seah J, Liu F, Ba L, Du J, Wang Y. The role of hypoxia in the pathophysiology of chronic rhinosinusitis. Allergy. 2022;77(11):3217-3232. https://doi.org/10.1111/all.15384
  17. Jiao J, Hu P, Zhuang M, Li Y, Ca C, Wang X, Zhang L. Transcriptome sequencing reveals altered ciliogenesis under hypoxia in nasal epithelial cells from chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Clin Transl Allergy. 2022;12(6):e12168. https://doi.org/10.1002/clt2.12168
  18. Qiu Q, Peng Y, Zhu Z, Chen Z, Zhang C, Ong HH, Tan KS, Hong H, Yan Y, Huang H, Liu J, Li X, Nam HN, Dung NTN, Shi L, Yang Q, Bingle CD, Wang DY. Absence or mislocalization of DNAH5 is a characteristic marker for motile ciliary abnormality in nasal polyps. The Laryngoscope. 2018;128(3):E97-E104. https://doi.org/10.1002/lary.26983
  19. Slater A, Smallman L, Logan A, Drake-Lee AB. Mucociliary function in patients with nasal polyps. Clin Otolaryngol Allied Sci. 1996;21(4):343-347.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2273.1996.tb01084.x
  20. Do HB, Ohbuchi T, Yokoyama M, Kitamura T, Wakasugi T, Ohkubo JI, Suzuki H. Decreased ciliary beat responsiveness to acetylcholine in the nasal polyp epithelium. Clinical otolaryngology. 2019;44(3):356-365.  https://doi.org/10.1111/coa.13312
  21. Ma Y, Tian P, Zhong H, Wu F, Zhang Q, Liu X, Dang H, Chen Q, Zou H, Zheng Y. WDPCP Modulates Cilia Beating Through the MAPK/ERK Pathway in Chronic Rhinosinusitis With Nasal Polyps. Front Cell Dev biol. 2021;8:630340. https://doi.org/10.3389/fcell.2020.630340
  22. Dobzanski A, Khalil SM, Lane A. Nasal polyp fibroblasts modulate epithelial characteristics via Wnt signaling. Int Forum Allergy Rhinol. 2018;8(12):1412-1420. https://doi.org/10.1002/alr.22199
  23. Böscke R, Vladar E, Könnecke M, Hüsing B, Linke R, Pries R, Reiling N, Axelrod JD, Nayak JV, Wollenberg B. Wnt Signaling in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. Am J Respir Cell Mol Biol. 2017;56(5):575-584.  https://doi.org/10.1165/rcmb.2016-0024OC
  24. Takabayashi T, Schleimer R. Formation of nasal polyps: The roles of innate type 2 inflammation and deposition of fibrin. J Allergy Clin Immunol Glob. 2020;145(3):740-750.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.01.027
  25. Callejas-Díaz B, Fernandez G, Fuentes M, Martínez-Antón A, Alobid I, Roca-Ferrer J, Picado C, Tubita V, Mullol J. Integrated mRNA and microRNA transcriptome profiling during differentiation of human nasal polyp epithelium reveals an altered ciliogenesis. Allergy. 2020;75(10):2548-2561. https://doi.org/10.1111/all.14307
  26. Burgel P, Cardell L, Ueki I, Nadel J. Intranasal steroids decrease eosinophils but not mucin expression in nasal polyps. Eur J Respir Med. 2004;24(4):594-600.  https://doi.org/10.1183/09031936.04.00014404
  27. Kao S, Bassiouni A, Ramezanpour M, Finnie J, Chegeni N, Colella A, Chataway T, Wormald P, Vreugde S, Psaltis A. Proteomic analysis of nasal mucus samples of healthy patients and patients with chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol Glob. 2021;147(1):168-178.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.06.037
  28. Носуля Е.В., Кунельская В.Я., Ким И.А., Лучшева Ю.В. Мукоактивные препараты в лечении воспалительных заболеваний носа и околоносовых пазух. Российская ринология. 2021;29(1):37-40.  https://doi.org/10.17116/rosrino20212901137
  29. Tu Y, Liu J, Li T, Zhou X, Tan KS, Ong HH, Sun K, Ouyang Y, Liang X, Ong YK, Thong M, Shi L, Wang DY. Mucus composition abnormalities in sinonasal mucosa of chronic rhinosinusitis with and without nasal polyps. Inflammation. 2021;44(5):1937-1948. https://doi.org/10.1007/s10753-021-01471-6
  30. Luo Q, Zhu H, Feng K, Huang X, Jing X, Zhang J. Zhonghua er bi yan hou tou jing wai ke za zhi. Chinese J of otorhinolaryngol head and neck surg. 2015;50(2):138-144. Accessed September 24, 2023. https://www.researchgate.net/journal/Zhonghua-er-bi-yan-hou-tou-jing-wai-ke-za-zhi-Chinese-journal-of-otorhinolaryngology-head-and-neck-surgery-1673-0860
  31. Ding G, Zheng C, Bagga S. Up-regulation of the mucosal epidermal growth factor receptor gene in chronic rhinosinusitis and nasal polyposis. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 2007;133(11):1097-1103. https://doi.org/10.1001/archotol.133.11.1097
  32. Young Kim J, Kim C, Kim K, Choi Y, Lee J, Yoon J. Extracellular signal-regulated kinase is involved in tumor necrosis factor-alpha-induced MUC5AC gene expression in cultured human nasal polyp epithelial cells. Acta oto-laryngologica. 2014;124(8):953-957.  https://doi.org/10.1080/00016480310017054
  33. Jiao J, Zhang T, Zhang Y, Li J, Wang M, Wang M, Li Y, Wang X, Zhang L. Epidermal growth factor upregulates expression of MUC5AC via TMEM16A, in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy Asthma Clin Immunol. 2020;16:40.  https://doi.org/10.1186/s13223-020-00440-2
  34. Burgel P, Escudier E, Coste A, Dao-Pick T, Ueki I, Takeyama K, Shim J, Murr A, Nadel J. Relation of epidermal growth factor receptor expression to goblet cell hyperplasia in nasal polyps. J Allergy Clin Immunol Glob. 2000;106(4):705-712.  https://doi.org/10.1067/mai.2000.109823
  35. Zhang Y, Wang X, Jiao J, Li Y, Song X, Zhang L. Expression of T helper cytokines associated with MUC5AC secretion in eosinophil-based endotypes of nasal polyps. Allergy. 2021;76(2):604-609.  https://doi.org/10.1111/all.14669
  36. Zhang Y, Derycke L, Holtappels G, Wang XD, Zhang L, Bachert C, Zhang N. Th2 cytokines orchestrate the secretion of MUC5AC and MUC5B in IL-5-positive chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy. 2019;74(1):131-140.  https://doi.org/10.1111/all.13489
  37. Seshadri S, Lu X, Purkey MR, Homma T, Choi AW, Carter R, Suh L, Norton J, Harris KE, Conley DB, Kato A, Avila PC, Czarnocka B, Kopp PA, Peters AT, Grammer LC, Chandra RK, Tan BK, Liu Z, Kern RC, Schleimer RP. Increased expression of the epithelial anion transporter pendrin/SLC26A4 in nasal polyps of patients with chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol Glob. 2015;136(6):1548-1558. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2015.05.024
  38. Zhang Y, Wang X, Wang H, Jiao J, Li Y, Fan E, Zhang L, Bachert C. TMEM16A-Mediated Mucin Secretion in IL-13-Induced Nasal Epithelial Cells From Chronic Rhinosinusitis Patients. Allergy Asthma Immunol Res. 2015;7(4):367-375.  https://doi.org/10.4168/aair.2015.7.4.367
  39. Du J, Ba L, Li B, Liu F, Hu X, Zhang J, Liu Y, Xian J, Liu S, Li H. Distinct expression of NK2 homeobox 1 (NKX2-1) and goblet cell hyperplasia in nasal polyps with different endotypes. Int Forum Allergy Rhinol. 2017;7(7):690-698.  https://doi.org/10.1002/alr.21932
  40. Lai X, Li X, Chang L, Chen X, Huang Z, Bao H, Huang J, Yang L, Wu X, Wang Z, Bellanti JA, Zheng SG, Zhang G. IL-19 Up-Regulates Mucin 5AC Production in Patients With Chronic Rhinosinusitis via STAT3 Pathway. Frontiers in immunology. 2019;10:1682. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01682
  41. Luo Q, Zhang Z, Liu D, Feng K, Jin X, Zhang J. Human neutrophil elastase induces MUC5AC overexpression in chronic rhinosinusitis through tumour necrosis factor-α converting enzyme. Acta oto-laryngologica. 2016;136(6):641-648.  https://doi.org/10.3109/00016489.2016.1144145
  42. Jung HJ, Zhang YL, Kim DK, Rhee CS, Kim DY. The Role of NF-κB in Chronic Rhinosinusitis With Nasal Polyps. Allergy Asthma Immunol Res. 2019;11(6):806-817.  https://doi.org/10.4168/aair.2019.11.6.806
  43. Bae C, Na H, Choi Y, Song S, Kim Y. Clusterin Induces MUC5AC Expression via Activation of NF-κB in Human Airway Epithelial Cells. Clin Exp Otorhinolaryngol. 2018;11(2):124-132.  https://doi.org/10.21053/ceo.2017.00493
  44. Lora JM, Zhang DM, Liao SM, Burwell T, King AM, Barker PA, Singh L, Keaveney M, Morgenstern J, Gutiérrez-Ramos JC, Coyle AJ, Fraser CC. Tumor necrosis factor-alpha triggers mucus production in airway epithelium through an IkappaB kinase beta-dependent mechanism. The Journal of biological chemistry. 2005;280(43):36510-36517. https://doi.org/10.1074/jbc.M507977200
  45. Wang W, Xu X, Zheng M, Wan L. Lipopolysaccharides induces MUC5AC overproduction in human nasal epithelium. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2013;270(2):541-547.  https://doi.org/10.1007/s00405-012-2037-0
  46. Савлевич Е.Л., Зурочка А.В., Курбачева О.М., Егоров В.И., Шиловский И.П., Митрофанова Е.С., Любимова Е.В. Плейоморфизм цитокинового профиля в ткани полипов в зависимости от фенотипа полипозного риносинусита. Вестник Оториноларингологии. 2023;88(1):50-56.  https://doi.org/10.17116/otorino20228801150
  47. Seong JK, Koo JS, Lee WJ, Kim HN, Park JY, Song KS, Hong JH, Yoon JH. Upregulation of MUC8 and downregulation of MUC5AC by inflammatory mediators in human nasal polyps and cultured nasal epithelium. Acta oto-laryngologica. 2002;122(4):401-407.  https://doi.org/10.1080/00016480260000094
  48. Liu J, Li YY, Andiappan AK, Yan Y, Tan KS, Ong HH, Thong KT, Ong YK, Yu FG, Low HB, Zhang YL, Shi L, Wang DY. Role of IL-13Rα2 in modulating IL-13-induced MUC5AC and ciliary changes in healthy and CRSwNP mucosa. Allergy. 2018;73(8):1673-1685. https://doi.org/10.1111/all.13424
  49. Jiao J, Duan S, Meng N, Li Y, Fan E, Zhang L. Role of IFN-γ, IL-13, and IL-17 on mucociliary differentiation of nasal epithelial cells in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Clin Exp Allergy. 2016;46(3):449-460.  https://doi.org/10.1111/cea.12644
  50. Gomperts B, Kim L, Flaherty S, Hackett B. IL-13 regulates cilia loss and foxj1 expression in human airway epithelium. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007;37(3):339-346.  https://doi.org/10.1165/rcmb.2006-0400OC
  51. Yu L, Li N, Zhang J, Jiang Y. IL-13 regulates human nasal epithelial cell differentiation via H3K4me3 modification. Journal of inflammation research. 2017;10:181-188. 
  52. https://doi.org/10.2147/JIR.S149156
  53. Yuan T, Zheng R, Liu J, Tan KS, Huang ZQ, Zhou XM, Zi XX, Qiu HJ, Wang XY, Wang WH, Deng HY, Chen YB, Kong WF, Wu QW, Huang Y, Ong HH, Huang XK, Chen ZG, Wang DY, Yang QT. Role of yes-associated protein in interleukin-13 induced nasal remodeling of chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy. 2021;76(2):600-604.  https://doi.org/10.1111/all.14699
  54. Liu J, Li Y, Ong H, Tan K. IL-13 regulates cilia loss and localization of cp110 in human nasal epithelium. ERJ. 2019;54(suppl 63):PA5209.
  55. https://doi.org/10.1183/13993003.congress-2019.PA5209
  56. Tsang W, Bossard C, Khanna H, Peränen J, Swaroop A, Malhotra V, Dynlacht BD. CP110 suppresses primary cilia formation through its interaction with CEP290, a protein deficient in human ciliary disease. Developmental cell. 2008;15(2):187-197.  https://doi.org/10.1016/j.devcel.2008.07.004
  57. Huang Z, Liu J, Ong H, Yuan T. Interleukin-13 Alters Tight Junction Proteins Expression Thereby Compromising Barrier Function and Dampens Rhinovirus Induced Immune Responses in Nasal Epithelium. Front Cell Dev Biol. 2020;8:572749. https://doi.org/10.3389/fcell.2020.572749
  58. Shaw J, Fakhri S, Citardi M, Porter P. IL-33-responsive innate lymphoid cells are an important source of IL-13 in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Am J Respir Crit Care Med. 2013;188(4):432-439.  https://doi.org/10.1164/rccm.201212-2227OC
  59. Grosse-Onnebrink J, Werner C, Loges NT, Hörmann K. Effect of TH2 cytokines and interferon gamma on beat frequency of human respiratory cilia. Pediatric research. 2016;79(5):731-735.  https://doi.org/10.1038/pr.2016.8
  60. Kim DK, Eun KM, Kim MK, Cho D, Han SA, Han SY, Seo Y, Lee DH, Cho SH, Kim DW. Comparison Between Signature Cytokines of Nasal Tissues in Subtypes of Chronic Rhinosinusitis. Allergy Asthma Immunol Res. 2019;11(2):201-211.  https://doi.org/10.4168/aair.2019.11.2.201
  61. Bleier B, Mulligan R, Schlosser R. Primary human sinonasal epithelial cell culture model for topical drug delivery in patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyposis. J Pharm Pharmacol Res. 2012;64(3):449-456.  https://doi.org/10.1111/j.2042-7158.2011.01409.x
  62. Bequignon E, Mangin D, Bécaud J, Pasquier J, at al. Pathogenesis of chronic rhinosinusitis with nasal polyps: role of IL-6 in airway epithelial cell dysfunction. Journal of translational medicine. 2020;18(1):136.  https://doi.org/10.1186/s12967-020-02309-9
  63. Karosi T, Csomor P, Sziklai I. Tumor necrosis factor-α receptor expression correlates with mucosal changes and biofilm presence in chronic rhinosinusitis with nasal polyposis. The Laryngoscope. 2012;122(3):504-510.  https://doi.org/10.1002/lary.23190
  64. Ueda N, Takeno S, Chen J, Osada R. Inhibitory Effects of TNF-alpha and IFN-gamma on Ciliary Beat Frequency of Cultured Human Sinus Epithelial Cells and its Modulation by Ambroxol Hydrochloride. Practica Otologica-Kyoto. 2000;93(2):167-173.  https://doi.org/10.5631/jibirin.93.167
  65. Lai Y, Chen B, Shi J, Palmer J. Inflammation-mediated upregulation of centrosomal protein 110, a negative modulator of ciliogenesis, in patients with chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol Glob. 2011;128(6):1207-1215. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2011.09.001

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.