Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Крутинь И.В.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Минздрава России

Мелкозерова О.А.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Минздрава России

Семенов Ю.А.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Минздрава России

Башмакова Н.В.

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Минздрава России

Роль внеклеточных везикул в модуляции рецептивности эндометрия у пациенток с повторными неудачами имплантации

Авторы:

Крутинь И.В., Мелкозерова О.А., Семенов Ю.А., Башмакова Н.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2025;31(4): 46‑52

Прочитано: 204 раза


Как цитировать:

Крутинь И.В., Мелкозерова О.А., Семенов Ю.А., Башмакова Н.В. Роль внеклеточных везикул в модуляции рецептивности эндометрия у пациенток с повторными неудачами имплантации. Проблемы репродукции. 2025;31(4):46‑52.
Krutin IV, Melkozerova OA, Semenov YuA, Bashmakova NV. Extracellular vesicles and their role in endometrial receptivity in patients with recurrent implantation failure. Russian Journal of Human Reproduction. 2025;31(4):46‑52. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20253104146

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Несмотря на значительные достижения в области вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), ежегодное увеличение циклов ВРТ, показатели эффективности программ в мире остаются на одном уровне, варьируя в диапазоне от 33,5 до 35,8%, а уровень родов один на перенос эмбрионов составляет 24,1—25,6% [1, 2].

Ключевыми факторами, влияющими на наступление беременности, являются качество эмбрионов и состояние эндометрия [3—5]. Имплантация эмбриона — это сложный, критически важный процесс, который начинается, когда компетентный эмбрион попадает в матку, прикрепляется к восприимчивому эндометрию и внедряется в него [6]. Неудачи имплантации составляют 75% всех случаев потерь беременности после экстракорпорального оплодотворения [7]. Повторные неудачи имплантации (ПНИ) представляют серьезную проблему, имеющую не только медицинские и социально-экономические аспекты, определяя до 70% в структуре репродуктивных неудач при переносе эмбрионов хорошего качества [3, 8]. Поэтому в последние годы исследования репродуктологов, эмбриологов, генетиков и молекулярных биологов сосредоточены на изучении рецептивности эндометрия.

Цель исследования — проанализировать влияние внеклеточных везикул (ВВ) эндометрия и эмбриона на процесс имплантации у пациенток с бесплодием, оценить потенциал ВВ для разработки новых диагностических и терапевтических подходов в лечении бесплодия.

Материал и методы

Проведен систематический анализ литературы (2018—2024 гг.) с фокусом на исследованиях, посвященных ВВ и их роли в имплантации. Библиографический метод: для написания статьи нами использованы источники из базы данных PubMed, MedLine и поисковой системы CyberLeninka. Глубина поиска составляла 8 лет. Отбору подлежали статьи, затрагивающие тему влияния ВВ на имплантацию эмбриона. Статьи, касающиеся влияния ВВ на оплодотворение и развитие эмбрионов, а также малоинформативные статьи исключались. Проанализировано и включено в исследование 52 источника.

Результаты

Современные методы иммуногистохимических, гистологических и микроскопических исследований открывают новые горизонты для понимания маркеров успешной имплантации.

В середине секреторной фазы менструального цикла эндометрий проходит короткий период, называемый окном имплантации, который приходится между 19-м и 24-м днями цикла. В этот период происходят значительные морфологические и биологические изменения, необходимые для успешной имплантации. Эти изменения регулируются множеством факторов, включая гормоны, цитокины и микроРНК (миРНК) [9]. Как известно, миРНК — это короткие последовательности РНК (18—22 нуклеотида), которые играют ключевую роль в контроле генов после их транскрипции [10, 11]. Накопленные данные указывают на важную роль ВВ в процессе имплантации, так как они ответственны за транспорт сигнальных молекул, включая миРНК, между эндометрием и эмбрионом [12].

Согласно определению Международного общества внеклеточных везикул, ВВ — это частицы, естественным образом высвобождаемые из клеток, которые ограничены двуслойной липидной мембраной и не могут реплицироваться [13—16]. Они играют важную роль в межклеточной коммуникации и потенциально могут служить биомаркерами различных физиологических и патологических состояний [17].

Сообщается, что ВВ широко распространены в биологических жидкостях организма и могут выделяться практически всеми типами клеток, включая плазму, грудное молоко, фолликулярную жидкость и слюну. В зависимости от размера выделяют три основных подтипа ВВ — апоптотические тельца (1000—5000 нм), микровезикулы, или эктосомы (100—1500 нм) и экзосомы (30—100 нм) [18, 19].

Содержащиеся во ВВ миРНК защищены от деградации, что приводит к улучшенному обнаружению по сравнению со свободной миРНК. Показано, что ВВ помогают преодолеть проблемы со стабильностью миРНК in vivo, и недавние достижения демонстрируют эффективные методы лечения с применением ВВ в качестве терапевтических носителей мРНК [16].

Белки ВВ вовлечены в биологические процессы, связанные с восприимчивостью эндометрия, имплантацией эмбриона и ранним развитием эмбриона, поддерживая связь между эмбрионом и материнским эндометрием через ВВ [20]. Не только эндометрий регулирует процессы имплантации, секретируя множество факторов, белков и других молекул в маточную жидкость, но и эмбрион модулирует эндометрий. Таким образом, один из важнейших типов клеточной коммуникации происходит посредством высвобождения ВВ.

Внеклеточные везикулы, секретируемые эндометрием

Секретируемые материнским эндометрием ВВ эффективно поглощаются как эмбрионами, так и близлежащими эндометриальными клетками, что позволяет им влиять на микросреду матки аутокринным и паракринным способами [21].

M. Segura-Benítez и соавт. в 2023 г. идентифицировали миРНК с функциями, связанными с развитием эмбриона и метаболизмом кислорода, способствующими переходу к аэробному метаболизму, который происходит во время раннего развития эмбриона, а также миРНК, которые ответственны за регуляцию клеточного цикла, дифференцировку или апоптоз. Данные миРНК имеют решающее значение во время раннего развития эмбриона в дополнение к клеточному метаболизму, клеточной организации и экспрессии генов. Выделены члены семейства let-7, miR-30, а также ряд других миРНК, которые участвовали в регуляции рецептивности эндометрия [21].

Члены семейства let-7 связаны с имплантацией эмбриона и способствуют приобретению эпителием эндометрия состояния готовности к адгезии во время окна имплантации путем изменения экспрессии антиадгезивных компонентов [22]. Фактически наличием функций, связанных с адгезией, можно объяснить, почему подавление некоторых членов семейства let-7, таких как let-7a, let-7f-5p, let-7g-5p, let-7e-5p и let-7d-5p, может привести к спонтанным выкидышам [23]. Кроме того, экспрессия семейства let-7 усиливается в децидуальной оболочке при ранней беременности по сравнению с менструальным эндометрием [23]. Недавнее исследование показало, что let-7a и let-7g усиливают восприимчивость эндометрия посредством сигнального пути Wnt/β-катенина, который увеличивает восприимчивость матки наряду с адгезией эмбриона и эндометриальных клеток [24, 25].

Члены семейства, содержащиеся во ВВ, такие как miR-30a-5p, miR-30a-3p, miR-30b-5p, miR-30c-3p, miR-30c-5p, miR30d-5p, miR-30e-3p и miR-30e-5p, связаны с рецептивностью эндометрия [26]. В частности, экспрессия miR-30d-5p подавлена в пререцептивном эндометрии женщин репродуктивного возраста по сравнению с рецептивным эндометрием, а также в эндометрии после аборта и эндометрии у пациенток с повторными неудачами имплантации [27].

Другие miRNA, переносимые ВВ, секретируемыми человеческим эндометрием, такие как miR-21-5p, miR-29a-3p, miR-10a-5p, miR-10b-5p, miR-27b-3p и miR-320a-3p, также участвуют в рецептивности эндометрия. В частности, miR-21-5p активно экспрессируется в просвете матки мышей во время их рецептивного окна, и ее дефицит приводит к неудаче имплантации [28]. Выделение miR-10a, miR-10b, miR-92a-3p и miR-27b является особенно значимым во время рецептивной фазы человеческого эндометрия [29]. Более того, miR-320a предложена в качестве маркера эндометрия, готового к имплантации, так как она стимулирует миграцию децидуализированных стромальных клеток [30].

Некоторые miRNA имеют прямую взаимосвязь с адгезией эмбриона, например miR-183-5p и miR-182-5p в ВВ, которые способствуют миграции и пролиферации эндометриальных клеток. Эксперименты со сфероидами JAr (линия клеток хориокарциномы) показали, что скорость прикрепления значительно снижалась после ингибирования miR-183-5p и miR-182-5p, и в качестве альтернативы лечение этими miRNA усиливало прикрепление посредством подавления CTNNA2 и последующей регуляции пути Wnt [31]. Сверхэкспрессия miR-23a-3p способствует прикреплению сфероидов JAr и усиливает преимущества miR-23a-3p в восприимчивости эндометрия и имплантации эмбриона посредством снижения регуляции гена CUL3 и последующей регуляции пути Wnt [32]. Вместе с тем прямая трансфекция miR-221-3p в трофобласты (т.е. клетки HTR-8/SVneo) способствовала росту клеток трофобласта, инвазии и миграции, закладывая основу для раннего развития эмбриона и последующей имплантации [33]. Экзосомальные микроРНК модулируют восприимчивость эндометрия и имплантацию эмбриона, воздействуя на членов семейства межклеточных белков, внеклеточный матрикс (ECM), фактор роста эндотелия сосудов (VEGF), JAK-STAT и сигнальные пути Toll-подобных рецепторов [34].

Внеклеточные везикулы, секретируемые эмбрионом

Эмбриональные ВВ могут пересекать zona pellucida и вызывать как аутокринные эффекты в клетках трофобласта, так и паракринные эффекты в эндометрии [35]. Трофобласт может экспрессировать антиген гистосовместимости, класс I, G (HLA-G), который требует межклеточного транспорта через ВВ и служит защитным механизмом от смерти, опосредованной NK-клетками [36]. Эмбриональные ВВ обладают потенциалом модулировать эндометриальные реакции, включая усиление выработки прогестерона и стимуляцию иммуносупрессивных факторов. Это способствует установлению эндометриальной восприимчивости и облегчает успешную имплантацию [37].

Q. Ma и соавт. в своих исследованиях показали, что ВВ, секретируемые децидуализированными эмбриональными стволовыми клетками, увеличивают потенциал дифференциации эмбриональных стволовых клеток и стимулируют выработку ими ангиопоэтина-2 [38]. Кроме того, ВВ, полученные из эмбриональных стволовых клеток, могут стимулировать пролиферацию эндотелиальных клеток человека и усиливать образование сосудистой сети. Полученные из стромальных клеток ВВ также могут индуцировать эндотелиальные клетки вен бугорков in vitro, что указывает на их потенциальную роль в регуляции ангиогенеза во время имплантации [39].

Секретируемые бластоцистой ВВ после вылупления из zona pellucid регулируют гены и поддерживают выработку прогестерона для успешного установления беременности [40]. В частности, миРНК-661, выделенная из бластоцисты человека, поглощается эпителиальными клетками эндометрия и подавляет ее адгезию, пока бластоциста не достигнет подходящего места для прикрепления [41].

Внеклеточные везикулы эндометриальной жидкости

Эндометриальная жидкость (ЭЖ) — это сложная биологическая жидкость, содержащая множество молекул, выделяемых эндометрием, которая потенциально контролирует равновесие и готовность эндометрия. Точный состав ЭЖ до конца не изучен, но известно, что ЭЖ включает биологически активные молекулы, такие как аминокислоты, стероиды, глюкоза, липиды, ионы, транспортные белки, цитокины, миРНК, гормоны, ферменты, факторы роста, протеазы, ингибиторы и иммуномодуляторы [42]. Показано, что ЭЖ способна оказывать поддержку эмбриону на ранних стадиях и инициировать процесс имплантации, поскольку улучшает коммуникацию между эмбрионом и эндометрием. Кроме того, ЭЖ окружает и смазывает эндометрий, способствуя его оптимальному функционированию [43].

Экзосомы, полученные из маточной жидкости, на преимплантационной стадии содержат больше белков, участвующих в апоптозе клеток, в то время как экзосомы, полученные из маточной жидкости на стадии имплантации, имели более высокое содержание белков, участвующих в клеточной адгезии. Исследования показали, что процесс извлечения жидкости из полости матки непосредственно перед переносом эмбриона не влияет на успешное прикрепление эмбриона. Отмечено, что ЭЖ можно собирать в различные моменты менструального цикла, чтобы оценить готовность эндометрия к имплантации [41].

Считается, что содержание белка в ЭЖ, который в основном поступает из эндометриальных выделений, имеет решающее значение в имплантации эмбриона. Более того, обнаружение внеклеточных миРНК в маточной жидкости и среде культивирования эмбриона подчеркивает важность их изучения [43].

Богатый состав экзосом включает такие белки, как фибулин 1 (FBLN1), богатый цистеином 61 (CYR61), фактор, ускоряющий распад комплемента (CD55), и гепарансульфатный протеогликан 2 (HSPG2), которые играют особую роль в имплантации эмбриона [44].

A. Rai и соавт. (2021) показали, что ВВ из маточной жидкости фертильных женщин несут известные маркеры белков восприимчивости (S100A4, FGB, SERPING1, CLU, ANXA2). С учетом списка генов ERA транскриптом ВВ из маточной жидкости коррелирует с транскриптомом эндометриальной ткани. Более того, протеом ВВ, полученных из маточной жидкости, подчеркивает различие состава белков в ВВ у фертильных и бесплодных женщин, что можно использовать для прогнозирования окна имплантации [45].

Экзосомальный белок bta-miR-98, полученный из промывных жидкостей матки крупного рогатого скота (UFs), отрицательно регулирует экспрессию нескольких генов, связанных с иммунной системой, и способствует прикреплению эмбриона к эпителию эндометрия в период преимплантации, например генов, регулирующих катепсин C, интерлейкин-6 (IL-6), каспазу-4 (CASP4) и IKBKE [46]. Экзосомы, полученные из маточной жидкости фертильных женщин по сравнению с бесплодными, содержат известные предикторы имплантации эмбриона (PRDX2 и IDHC), восприимчивости эндометрия (S100A4, FGB, SERPING1, CLU и ANXA2) и успеха имплантации (CAT, YWHAE и PPIA) [47].

Внеклеточные везикулы при повторных неудачах имплантации

Повторная неудача имплантации определяется как неудача имплантации после двух или более последовательных переносов эмбрионов хорошего качества [3]. Исследования, сравнивающие среду эндометриальной миРНК у пациентов с ПНИ и фертильных женщин, продемонстрировали, что у пациентов с ПНИ наблюдаются различные профили эндометриальных генов. Эти измененные гены влияют на различные пути, такие как сигнальный путь Wnt, клеточная адгезия, формирование цитоскелета, подвижность клеток и циркадный ритм [3]. Секретируемые эндометриальными клетками от пациентов с рецидивирующей неудачей имплантации ВВ снижают скорость бластоцисты и вылупления, общее количество клеток и способность к инвазии у мышиных эмбрионов, что предполагает важную роль этих ВВ в развитии эмбриона [20].

При ПНИ ВВ ослабляют эмбриональное развитие, подавляя образование бластоцисты, уменьшая общее количество клеток эмбрионов, а также способность эмбриональной инвазии. Такая дисрегуляция у эмбрионов может быть связана с патогенезом неудачи имплантации. Так, miRNA 6131 подавляла рост и инвазию клеток HTR8/SVneo [47].

Для преодоления неудач имплантации рассматривается использование миРНК ЭЖ в качестве неинвазивных биомаркеров для состояния ПНИ [9]. Таким образом, в будущем они могли бы потенциально помочь в клинических решениях и определении времени переноса эмбрионов, если прогнозируется высокий риск неудачи имплантации.

Возможность и безопасность внутриматочного введения веществ уже долгое время используется в мировой практике. Так, доказаны эффективность и безопасность таких методов, как внутриматочное введение плазмы, обогащенной тромбоцитами (PRP-терапия), а также введение аутологичных мононуклеарных клеток, гранулоцитарного колониестимулирующего фактора роста [48—51].

Заключение

Рассмотрены ключевые аспекты, касающиеся имплантации эмбрионов и роли внеклеточных везикул в процессе имплантации. Внеклеточные везикулы играют важную роль в межклеточной коммуникации, обеспечивая передачу сигнальных молекул, включая микроРНК, которые регулируют рецептивность эндометрия и имплантацию.

Исследования показывают, что микроРНК, переносимые внеклеточными везикулами, могут существенно влиять на адгезию эмбрионов и восприимчивость эндометрия, что открывает новые горизонты для понимания патогенеза бесплодия и разработки эффективных методов лечения. Дальнейшие исследования в этой области могут привести к более глубокому пониманию молекулярных механизмов, участвующих в имплантации, и преодолению бесплодия у пациенток при применении вспомогательных репродуктивных технологий, особенно с повторными неудачами имплантации.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Мелкозерова О.А., Семенов Ю.А.

Сбор и обработка материала — Крутинь И.В., Башмакова Н.В.

Написание текста — Мелкозерова О.А., Крутинь И.В.

Редактирование — Башмакова Н.В., Семенов Ю.А.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Carson SA, Kallen AN. Diagnosis and Management of Infertility: A Review. Journal of the American Medical Association. 2021; 326(1):65-76.  https://doi.org/10.1001/jama.2021.4788
  2. Smeenk J, Wyns C, De Geyter C, Kupka M, Bergh C, Cuevas Saiz I, De Neubourg D, Rezabek K, Tandler-Schneider A, Rugescu I, Goossens V. European IVF Monitoring Consortium for the European Society of Human Reproduction and Embryology. ART in Europe, 2019: results generated from European registries by ESHRE. Human Reproduction. 2023;38(12):2321-2338. https://doi.org/10.1093/humrep/dead197
  3. Liu C, Yao W, Yao J, Li L, Yang L Zhang H, Sui C. Endometrial extracellular vesicles from women with recurrent implantation failure attenuates the growth and invasion of embryos. Fertility and Sterility. 2020;114(2):416-425.  https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.04.005
  4. Габидуллина Р.И., Купцова А.И., Кошельникова Е.А., Нухбала Ф.Р., Багирли Р.Р., Мингалева Э.Р., Халиуллина Э.А. Аденомиоз: клинические аспекты, влияние на фертильность и исходы беременности. Гинекология. 2020;22(4):55-61.  https://doi.org/10.26442/20795696.2020.4.200264
  5. Радзинский В.Е., Михалёва Л.М., Оразов М.Р., Силантьева Е.С., Камилова Д.П., Мидибер К.Ю., Орехов Р.Е. Рецептивность эндометрия пациенток с повторными неудачами имплантации. Доктор.Ру. 2022;21(1):27-33.  https://doi.org/10.31550/1727-2378-2022-21-1-27-33
  6. Shaulov T, Sierra S, Sylvestre C. Recurrent implantation failure in IVF: A Canadian Fertility and Andrology Society Clinical Practice Guideline. Reproductive BioMedicine Online. 2020;41(5):819-833.  https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2020.08.007
  7. Pavani KC, Meese T, Pascottini OB, Guan X, Lin X, Peelman L, Hamacher J, Van Nieuwerburgh F, Deforce D, Boel A, Heindryckx B, Tilleman K, Van Soom A, Gadella BM, Hendrix A, Smits K. Hatching is modulated by microRNA-378a-3p derived from extracellular vesicles secreted by blastocysts. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2022;119(12): e2122708119. https://doi.org/10.1073/pnas.2122708119
  8. Радзинский В.Е., Оразов М.Р., Михалева Л.М., Хамошина М.Б., Баринова Э.К. Патогенез неудач имплантации при бесплодии, обусловленном аденомиозом. Акушерство и гинекология: Новости. Мнения. Обучение. 2024;12:69-74.  https://doi.org/10.33029/2303-9698-2024-12-suppl-69-74
  9. Von Grothusen C, Frisendahl C, Modhukur V, Lalitkumar PG, Peters M, Faridani OR, Salumets A, Boggavarapu NR, Gemzell-Danielsson K. Uterine fluid microRNAs are dysregulated in women with recurrent implantation failure. Human Reproduction. 2022;37(4):734-746.  https://doi.org/10.1093/humrep/deac019
  10. Rokhsartalab AP, Maleki AM, Karimi S, Haghtalab A, Sadeghpour S, Mellatyar H, Taheri-Anganeh M, Ghasemnejad-Berenji H. Uterine fluid microRNAs in repeated implantation failure. Clinica Chimica Acta. 2024;558:119678. https://doi.org/10.1016/j.cca.2024.119678
  11. Diener C, Keller A, Meese E. Emerging concepts of miRNA therapeutics: from cells to clinic. Trends in Genetics. 2022;38(6):613-626.  https://doi.org/10.1016/j.tig.2022.02.006
  12. Liu C, Wang M, Zhang H, Sui C. Altered microRNA Profiles of Extracellular Vesicles Secreted by Endometrial Cells from Women with Recurrent Implantation Failure. Reproductive Sciences. 2021;28(7): 1945-1955. https://doi.org/10.1007/s43032-020-00440-y
  13. Welsh JA, Goberdhan DCI, O’Driscoll L, Buzas EI, Blenkiron C. Minimal information for studies of extracellular vesicles (MISEV2023): From basic to advanced approaches. Journal of Extracellular Vesicles. 2024;13(5):e12451. https://doi.org/10.1002/jev2.12451
  14. Théry C, Witwer KW, Aikawa E, Alcaraz MJ, Anderson JD. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 2018;7(1):1535750. https://doi.org/10.1080/20013078.2018.1535750
  15. Vaiaki EM, Falasca M. Comparative analysis of the minimal information for studies of extracellular vesicles guidelines: Advancements and implications for extracellular vesicle research. Seminars in Cancer Biology. 2024;101:12-24.  https://doi.org/10.1016/j.semcancer.2024.04.002
  16. Kirian RD, Steinman D, Jewell CM, Zierden HC. Extracellular vesicles as carriers of mRNA: Opportunities and challenges in diagnosis and treatment. Theranostics. 2024;14(5):2265-2289. https://doi.org/10.7150/thno.93115
  17. Couch Y, Buzàs EI, Di Vizio D, Gho YS, Harrison P Hill AF, Lötvall J, Raposo G, Stahl PD, Théry C, Witwer KW, Carter DRF. A brief history of nearly EV-erything — The rise and rise of extracellular vesicles. Journal of Extracellular Vesicles. 2021;10(14):12144. https://doi.org/10.1002/jev2.12144
  18. Amin S, Massoumi H, Tewari D, Roy A, Chaudhuri M, Jazayerli C, Krishan A, Singh M, Soleimani M, Karaca EE, Mirzaei A, Guaiquil VH, Rosenblatt MI, Djalilian AR, Jalilian E. Cell Type-Specific Extracellular Vesicles and Their Impact on Health and Disease. International Journal of Molecular Sciences. 2024;25(5):2730. https://doi.org/10.3390/ijms25052730
  19. Xiang H, Bao C, Chen Q, Gao Q, Wang N, Gao Q, Mao L. Extracellular vesicles (EVs)’ journey in recipient cells: from recognition to cargo release. Journal of Zhejiang University Science B: Biomedicine and Biotechnology. 2024;25(8):633-655.  https://doi.org/10.1631/jzus.B2300566
  20. Segura-Benítez M, Carbajo-García MC, Corachán A, Faus A, Pellicer A, Ferrero H. Proteomic analysis of extracellular vesicles secreted by primary human epithelial endometrial cells reveals key proteins related to embryo implantation. Reproductive Biology and Endocrinology. 2022;20(1):3.  https://doi.org/10.1186/s12958-021-00879-x
  21. Segura-Benítez M, Bas-Rivas A, Juárez-Barber E, De Los Santos MJ, Pellicer A, Ferrero H. Human blastocysts uptake extracellular vesicles secreted by endometrial cells containing miRNAs related to implantation. Human Reproduction. 2023;38(8):1547-1559. https://doi.org/10.1093/humrep/dead138
  22. Gurung S, Greening DW, Catt S, Salamonsen L, Evans J. Exosomes and soluble secretome from hormone-treated endometrial epithelial cells direct embryo implantation. Molecular Human Reproduction. 2020;26(7):510-520.  https://doi.org/10.1093/molehr/gaaa034
  23. Wang Y, Lv Y, Gao S, Zhang Y, Sun J Gong C, Chen X, Li G. MicroRNA Profiles in Spontaneous Decidualized Menstrual Endometrium and Early Pregnancy Decidua with Successfully Implanted Embryos. PLOS One. 2016;11(1):e0143116. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0143116
  24. Shekibi M, Heng S, Nie G. MicroRNAs in the Regulation of Endometrial Receptivity for Embryo Implantation. International Journal of Molecular Sciences. 2022;23(11):6210. https://doi.org/10.3390/ijms23116210
  25. Li Q, Liu W, Chiu PCN, Yeung WSB. Mir-let-7a/g Enhances Uterine Receptivity via Suppressing Wnt/β-Catenin Under the Modulation of Ovarian Hormones. Reproductive Sciences. 2020;27(5):1164-1174. https://doi.org/10.1007/s43032-019-00115-3
  26. Zhao Y, He D, Zeng H, Luo J, Yang S, Chen J, Abdullah RK, Liu N. Expression and significance of miR-30d-5p and SOCS1 in patients with recurrent implantation failure during implantation window. Reproductive Biology and Endocrinology. 2021;19(1):138.  https://doi.org/10.1186/s12958-021-00820-2
  27. Grasso A, Navarro R, Balaguer N, Moreno I, Alama P Jimenez J, Simón C, Vilella F. Endometrial liquid biopsy provides a miRNA roadmap of the secretory phase of the human endometrium. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2020;105(3):146.  https://doi.org/10.1210/clinem/dgz146
  28. Hua R, Zhang X, Li W, Lian W, Liu Q, Gao D, Wang Y, Lei M. Ssc-miR-21-5p regulates endometrial epithelial cell proliferation, apoptosis and migration via the PDCD4/AKT pathway. Journal of Cell Science. 2020;133(23):248898. https://doi.org/10.1242/jcs.248898
  29. Nikolova M, Naydenov M, Glogovitis I, Apostolov A, Saare M, Boggavarapu N, Salumets A, Baev V, Yahubyan G. Coupling miR/isomiR and mRNA Expression Signatures Unveils New Molecular Layers of Endometrial Receptivity. Life (Basel). 2021;11(12):1391. https://doi.org/10.3390/life11121391
  30. Berkhout RP, Keijser R, Repping S, Lambalk CB, Afink GB, Mastenbroek S, Hamer G. High-quality human preimplantation embryos stimulate endometrial stromal cell migration via secretion of microRNA hsa-miR-320a. Human Reproduction. 2020;35:1797-1807. https://doi.org/10.1093/humrep/deaa149
  31. Akbar R, Ullah K, Rahman TU, Cheng Y, Pang HY, Jin LY, Wang QJ, Huang HF, Sheng JZ. miR-183-5p regulates uterine receptivity and enhances embryo implantation. Journal of Molecular Endocrinology. 2020;64(1):43-52.  https://doi.org/10.1530/JME-19-0184
  32. Huang K, Chen G, Fan W, Hu L. miR-23a-3p increases endometrial receptivity via CUL3 during embryo implantation. Journal of Molecular Endocrinology. 2020;65(2):35-44.  https://doi.org/10.1530/JME-20-0053
  33. Yang Y, Li H, Ma Y, Zhu X, Zhang S, Li J. MiR-221-3p is down-regulated in preeclampsia and affects trophoblast growth, invasion and migration partly via targeting thrombospondin 2. Biomedicine and Pharmacotherapy. 2019;109:127-134.  https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.10.009
  34. Nguyen MA, Karunakaran D, Geoffrion M, Cheng HS, Tandoc K, Perisic Matic L, Hedin U, Maegdefessel L, Fish JE, Rayner KJ. Extracellular Vesicles Secreted by Atherogenic Macrophages Transfer MicroRNA to Inhibit Cell Migration. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 2018;38(1):49-63.  https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.117.309795
  35. Vyas P, Balakier H, Librach CL. Ultrastructural identification of CD9 positive extracellular vesicles released from human embryos and transported through the zona pellucida. Systems Biology in Reproductive Medicine. 2019;65:273-280.  https://doi.org/10.1080/19396368.2019.1619858
  36. Giacomini E, Alleva E, Fornelli G, Quartucci A, Privitera L, Vanni VS, Viganò P. Embryonic extracellular vesicles as informers to the immune cells at the maternal-fetal interface. Clinical and Experimental Immunology. 2019;198:15-23.  https://doi.org/10.1111/cei.13304
  37. Sui C, Liao Z, Bai J, Hu D, Yue J, Yang S. Current knowledge on the role of extracellular vesicles in endometrial receptivity. The European Journal of Medical Research. 2023;28(1):471.  https://doi.org/10.1186/s40001-023-01459-y
  38. Ma Q, Beal JR, Song X, Bhurke A, Bagchi IC, Bagchi MK. Extracellular Vesicles Secreted by Mouse Decidual Cells Carry Critical Information for the Establishment of Pregnancy. Endocrinology. 2022;163(12):165.  https://doi.org/10.1210/endocr/bqac165
  39. Ma Q, Beal JR, Bhurke A, Kannan A, Yu J Taylor RN, Bagchi IC, Bagchi MK. Extracellular vesicles secreted by human uterine stromal cells regulate decidualization, angiogenesis, and trophoblast differentiation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2022;119(38):e2200252119. https://doi.org/10.1073/pnas.2200252119
  40. Nakamura K, Kusama K, Bai R, Sakurai T, Isuzugawa K, Godkin JD, Suda Y, Imakawa K. Induction of IFNT-Stimulated Genes by Conceptus-Derived Exosomes during the Attachment Period. PLOS One. 2016;11(6):e0158278. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0158278
  41. Chen C, Zhang Z, Gu X, Sheng X, Xiao L, Wang X. Exosomes: New regulators of reproductive development. Materials Today Bio. 2023;19:100608. https://doi.org/10.1016/j.mtbio.2023.100608
  42. Alves AR, Dias MF, Silvestre M. Endometrial fluid biomarkers and their potential as predictors of successful embryo implantation. Biomedicine. 2023;13(3):1-8.  https://doi.org/10.37796/2211-8039.1413
  43. Rokhsartalab AP, Maleki AM, Karimi S, Haghtalab A, Sadeghpour S, Mellatyar H, Taheri-Anganeh M, Ghasemnejad-Berenji H. Uterine fluid microRNAs in repeated implantation failure. Clinica Chimica Acta. 2024;558:119678. https://doi.org/10.1016/j.cca.2024.119678
  44. Greening DW, Nguyen HP, Elgass K, Simpson RJ, Salamonsen LA. Human endometrial exosomes contain hormone-specific cargo modulating trophoblast adhesive capacity: insights into endometrial-embryo interactions. Biology of Reproduction. 2016;94(2):38.  https://doi.org/10.1095/biolreprod.115.134890
  45. Rai A, Poh QH, Fatmous M, Fang H, Gurung S, Vollenhoven B, Salamonsen LA, Greening DW. Proteomic profiling of human uterine extracellular vesicles reveal dynamic regulation of key players of embryo implantation and fertility during menstrual cycle. Proteomics. 2021;21(13-14):e2000211. https://doi.org/10.1002/pmic.202000211
  46. Nakamura K, Kusama K, Ideta A, Kimura K, Hori M, Imakawa K. Effects of miR-98 in intrauterine extracellular vesicles on maternal immune regulation during the peri-implantation period in cattle. Scientific Reports. 2019;9(1):20330. https://doi.org/10.1038/s41598-019-56879-w
  47. Liu C. P-388 Pre-selected for an award: Endometrial extracellular vesicles from recurrent implantation failure patients inhibited embryonic growth and implantation via miR-6131/PAK2 pathway. Human Reproduction. 2021;36(1):127.071.  https://doi.org/10.1093/humrep/deab130.387
  48. Нгуен К.Т., Ниаури Д.А., Тапильская Н.И., Гзгзян А.М. Возможности применения гранулоцитарного колониестимулирующего фактора в репродуктивной медицине. Журнал акушерства и женских болезней. 2021;70(2):119-128.  https://doi.org/10.17816/JOWD43587
  49. Оразов М.Р., Краснопольская К.В., Силантьева Е.С., Михалева Л.М., Орехов Р.Е., Лагутина Е.В., Семенов П.А. Эффективность альтернативных методов лечения бесплодия маточного генеза. Гинекология. 2021;23(1):92-96.  https://doi.org/10.26442/20795696.2021.1.200672
  50. Мотовилова Т.М., Симакова В.Ю., Казакова К.В., Казаринова Д.А. Современные представления о проблеме эндометриального бесплодия на фоне «тонкого эндометрия» (обзор литературы). Consilium Medicum. 2024;26(7):403-410.  https://doi.org/10.26442/20751753.2024.7.202891
  51. Амян Т.С., Перминова С.Г., Кречетова Л.В., Вторушина В.В. Эффективность внутриматочного введения аутологичных мононуклеарных клеток периферической крови перед переносом эмбриона у пациенток с повторными неудачами имплантации в программах вспомогательных репродуктивных технологий. Гинекология. 2018;20(2):28-33.  https://doi.org/10.26442/2079-5696_2018.2.28-33

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.