Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Смирнова М.Д.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России

Свирида О.Н.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России

Бланкова З.Н.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России

Виценя М.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России

Иванова А.Ю.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России;
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

Агеев Ф.Т.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России

Медведев О.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России;
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

К вопросу о влиянии ферментативной активности микробиоты на гемодинамику, артериальную жесткость и эмоциональное состояние больных низкого/умеренного риска сердечно-сосудистых осложнений

Авторы:

Смирнова М.Д., Свирида О.Н., Бланкова З.Н., Виценя М.В., Иванова А.Ю., Агеев Ф.Т., Медведев О.С.

Подробнее об авторах

Журнал: Кардиологический вестник. 2024;19(4‑2): 128‑136

Прочитано: 785 раз


Как цитировать:

Смирнова М.Д., Свирида О.Н., Бланкова З.Н., Виценя М.В., Иванова А.Ю., Агеев Ф.Т., Медведев О.С. К вопросу о влиянии ферментативной активности микробиоты на гемодинамику, артериальную жесткость и эмоциональное состояние больных низкого/умеренного риска сердечно-сосудистых осложнений. Кардиологический вестник. 2024;19(4‑2):128‑136.
Smirnova MD, Svirida ON, Blankova ZN, Vitsenya MV, Ivanova AYu, Ageev FT, Medvedev OS. Influence of enzymatic activity of microbiota on hemodynamics, arterial stiffness and emotional state of patients with mild-to-moderate risk of cardiovascular complications. Russian Cardiology Bulletin. 2024;19(4‑2):128‑136. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/Cardiobulletin202419042128

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ка­там­нес­ти­чес­кое об­сле­до­ва­ние де­тей с аф­фек­тив­но-рес­пи­ра­тор­ны­ми па­рок­сиз­ма­ми. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2024;(11-2):76-80
Мик­ро­би­ота ки­шеч­ни­ка при би­по­ляр­ном аф­фек­тив­ном расстройстве. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(11):28-33

Введение

Поиск новых предикторов развития сердечно-сосудистых осложнений (ССО) на протяжении последних 10-летий остается одним из самых важных направлений кардиологии. Данная проблема особенно актуальна для лиц, относящихся к категории низкого или умеренного сердечно-сосудистого риска, если стратифицировать этот риск по традиционным шкалам. В научной литературе активно обсуждается возможная роль таких причин или маркеров раннего развития атеросклероза, как психосоциальные факторы, прежде всего депрессия и тревога, хроническое вялотекущее воспаление, гиперурикемия и многие другие. Еще одним важным «игроком» на этом поле стала микробиота, изменения в составе которой, по данным ряда наблюдений, могут модифицировать не только развитие атеросклероза, но и определять реакцию организма на стресс [1, 2].

К основным маркерам метаболической активности микробиоты, оказывающим влияние на сердечно-сосудистую систему, относятся триметиламин (ТМА), триметиламин-N-оксид (ТМАО), короткоцепочечные жирные кислоты (КЦЖК), а также молекулярный водород (H2), большое количество которого образуется при ферментации пищевых волокон некоторыми родами бактерий. В работах in vitro показано, что к водород-генерирующим бактериям относятся бактерии родов Roseburia [3], Ruminococcus [4], видов Blautia coccoides, Clostridium leptum, Escherihia coli, Bacteroides fragilis [5]. In vivo подтверждена водород-образующая способность у бактерий из семейств Lachnospiraceae, Ruminococcaceae; Eubacteriaceae класса Clostridia [6, 7]; класса Bacteroidia [8]; семейства Enterobacteriaceae класса γ-proteobacteria [9]. Известно, что H2 обладает мощным антиоксидантным действием. Экспериментальные данные подтверждают его антиатеросклеротические [10, 11], кардиопротективные [12] и антистрессорные свойства [13]. Еще одним газом, генерируемым только кишечной микробиотой с использованием водорода, является метан (CH4). Несколько видов метаногенных микроорганизмов микробиоты, относящихся к семейству Euryarchaeota домена Archaea [14—16] способны образовывать метан. Наибольшее функциональное значение при этом придают Methanobrevibacter Smithii [14—16]. Образование метана метаногенами происходит с обязательным использованием водорода, тогда как в качестве источников углерода могут участвовать углекислый газ (CO2), метанол или ТМА. Согласно реакции (CO2 + 4H2 → CH4 + 2H2O) для синтеза 1 молекулы метана необходимы 4 молекулы водорода. Согласно представлениям K. Gottlieb и соавт. (2016), образование водорода является термодинамически равновесным процессом, который определяется скоростью образования водорода гидрогенами и скоростью утилизации водорода другими типами микроорганизмов (гидрогенотрофами) [15]. Предположительно, подавление образования метаногенных архей может способствовать увеличению образования водорода в просвете кишечника, подавлять реакции оксидативного стресса в организме, тем самым обеспечивая дополнительные фармакотерапевтические эффекты.

Несмотря на то что количество H2 в выдыхаемом воздухе значительно ниже образованного в просвете кишечника, доказана тесная корреляция между H2, образуемым в кишечнике и измеренным в выдыхаемом воздухе [17, 18]. Измерение концентрации H2 и CH4, а также их соотношения (H2/CH4) в выдыхаемом воздухе (дыхательный тест) широко используется для оценки ферментативной активности микробиоты.

Цель исследования — выявление возможных взаимосвязей между ферментативной активностью микробиоты, с одной стороны, и показателями гемодинамики, артериальной жесткостью и аффективными расстройствами, с другой, у пациентов низкого и умеренного риска ССО.

Материал и методы

В исследование были включены 22 больных низкого и умеренного риска ССО (0—4% по шкале SCORE), обратившихся в консультативно-диагностическое отделение ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии им. акад. Е.И. Чазова» Минздрава России. Критериями невключения в исследование были: кардиомиопатии, клапанная патология сердца, клинически значимые нарушения ритма и проводимости сердца, эндокринные заболевания, хроническая почечная и печеночная недостаточность, онкологические и гематологические заболевания, коллагенозы, морбидное ожирение (ИМТ>40 кг/м2), бронхолегочные заболевания (в стадии обострения), острые респираторные заболевания в течение 1 предшествующего месяца, беременность и период лактации, прием психотропных препаратов в течение 3 предшествующих месяцев, наличие в анамнезе воспалительных заболеваний кишечника, оперативное лечение, антибактериальная и противовоспалительная терапия в течение 3 предшествующих месяцев, отказ от участия в исследовании. Средний возраст пациентов был 46,5±6,0 лет, 30% из них мужчины. Артериальной гипертензией (АГ) I—II степени страдали 5 человек.

Клинико-демографическая характеристика пациентов представлена в табл. 1.

Таблица 1. Клинико-демографическая характеристика больных, включенных в исследование

Показатель

n=22

Возраст, лет

46,5±6,0

Пол (муж/жен)

7/15

ИМТ, кг/м2

26,5±4,9

Курение, n (%)

3 (13,6)

Больные АГ, n (%)

5 (22,7)

САД, мм рт.ст.

130,7±14,7

ДАД, мм рт.ст.

81,7±10,1

ЧСС, мин

72,9±9,2

CAVI

7,0±0,7

СРБвч, мг/л

3,89±6,14

ОХС, ммоль/л

5,44±0,91

ТГ, ммоль/л

1,18±0,60

ХС ЛНП, ммоль/л

3,47±0,92

ХС ЛВП, ммоль/л

1,56±0,38

Глюкоза, ммоль/л

5,16±0,32

АЛТ, ед/л

21,6±9,7

АСТ, ед/л

21,6±8,4

Мочевая кислота, ммоль/л

294,29±72,3

Креатинин, ммоль/л

67,91±10,52

Получают гипотензивную терапию (%):

4 (20)

иАПФ (%)

3 (13,6)

АРА (%)

1 (4,5)

Диуретики (%)

3 (13,6)

Примечание. Здесь и в табл. 3: ИМТ — индекс массы тела; САД — систолическое артериальное давление; ДАД — диастолическое артериальное давление; ЧСС — частота сердечных сокращений; СРБвч — высокочувствительный С-реактивный белок; ОХС — общий холестерин; ТГ — триглицериды; ХС ЛНП — холестерин липопротеидов низкой плотности; ХС ЛВП — холестерин липопротеидов высокой плотности; АЛТ — аланинаминотрансфераза; АСТ — аспартатаминотрансфераза; иАПФ — ингибиторы ангиотензинпревращающего фермента; АРА — антагонисты рецепторов ангиотензина.

Пациентам проводилось стандартное клиническое инструментальное обследование: осмотр, сбор жалоб и анамнеза, определение антропометрических показателей, включая индекс массы тела (ИМТ, измерение офисного артериального давления (АД) и частоты сердечных сокращений (ЧСС), биохимический анализ крови с определением креатинина, мочевой кислоты, глюкозы, липидного профиля, аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы (АСТ), уровня высокочувствительного C-реактивного белка (СРБвч). Жесткость магистральных артерий определялась методом объемной сфигмографии на приборе VaseraVS 1500 (Fukuda Denshi, Япония). CAVI (cardio-ankle vascular index — кардио-лодыжечный сосудистый индекс) вычислялся автоматически по формуле:

CAVI=1/k2 (lnСАД/ДАД)×СПВ2,

где СПВ — скорость пульсовой волны; ДАД — диастолическое артериальное давление. Больные проходили анкетирование с целью оценки уровня тревоги и депрессии с использованием Hospital Anxiety and Depression Scale (HADS) [19]. Шкала создана для применения врачами общей практики для скрининга аффективных расстройств и состоит из двух подшкал: тревоги и депрессии. Результаты оцениваются следующим образом: 0—7 баллов по каждой из подшкал соответствует норме (отсутствие достоверно выраженных симптомов тревоги и депрессии), 8—10 баллов — «субклинически выраженная тревога/депрессия», 11 баллов и выше — «клинически выраженная тревога/депрессия».

У всех испытуемых проводили водородно-метановый дыхательный тест с целью оценки ферментативной активности микробиоты кишечника. В качестве нагрузки, в соответствии с Европейскими и Российскими рекомендациями, использовали 10 гр лактулозы [20, 21], растворенной в стакане воды. Тесты проводили в утреннее время натощак. После получения исходной пробы выдыхаемого воздуха испытуемый выпивал стакан воды с лактулозой, после чего каждые 20 мин в течение 3 ч производили заборы воздуха.

Пробы воздуха забирали в алюминированные пакеты (производитель фирма Guangzhou Itingbaby Tech Co., Китай), из которых воздух анализировали на содержание водорода (H2), метана (CH4) и кислорода (O2) на газоанализаторе (Gastro4check фирмы Bedfont, UK) не позже, чем через 7 дней после проведения дыхательного теста и забора образцов выдыхаемого воздуха.

Статистический анализ проводился с помощью пакетов статистических программ Statistica 10 и SPSS 20. Непрерывные переменные, распределение которых было близко к нормальному, представлялись как среднее (M) ± стандартное отклонение (σ), при отличии распределения переменной от нормального распределения приводились медиана и 95% доверительный интервал — Me (–95% ДИ; 95% ДИ), максимальное и минимальное значения. Для проверки гипотез о средних в двух группах применялся t-критерий Стьюдента или его непараметрический аналог — критерий Манна–Уитни. Зависимость признаков в таблице сопряженности 2×2 исследовалась с помощью критерия Пирсона. Для анализа корреляции использовался метод Спирмена. Независимый характер связи изученных показателей оценивался в регрессионной модели с использованием многофакторного пошагового анализа. Уровень значимости для проверки гипотез принимался равным 0,05.

Результаты

Данные, полученные при газовом анализе выдыхаемого воздуха, представлены в табл. 2.

Таблица 2. Данные, полученные при газовом анализе выдыхаемого воздуха при водородно-метановом дыхательном тесте с лактулозой

Показатель

n=22

AUC H2

50,23 (52,57; 97,65)

AUC CH4

15,02 (40,40; 75,04)

AUC CH4/H2

0,20 (2,22; 53,30)

AUC H2/CH4

5,03 (57,30; 106,43)

AUC H2 и AUC CH4 отрицательно коррелировали друг с другом (r=–0,425; p=0,049).

У 7 пациентов, включенных в наше исследование, преобладает CH4-продуцирующая микрофлора, у 15 — H2 —продуцирующая (рис. 1).

Рис. 1. Доли пациентов с преобладанием CH4 («CH4-продуцентов») и H2 («H2-продуцентов») в выдыхаемом воздухе.

Зависимость клинических характеристик пациентов от газового состава выдыхаемого воздуха

«CH4-продуценты» и «H2-продуценты» не отличались по возрасту, полу, ИМТ, психологическому статусу, показателям биохимического анализа крови, артериальной жесткости (табл. 3). Однако у «H2-продуцентов» был выше уровень офисного САД (p=0,008) (рис. 2). Среди «CH4-продуцентов» больных АГ не было, среди «Н2-продуцентов» доля больных АГ была 33,3% (χ2 Пирсона 3,02; p=0,08).

Таблица 3. Клинико-демографические характеристики «CH4-продуцентов» и «H2-продуцентов»

Показатель

СН4-продуценты,

n=7

Н2-продуценты,

n=15

p

Возраст, лет

45,2±3,9

46,2±4,1

0,601

Пол (М/Ж)

2/5

5/10

0,823

ИМТ, кг/м2

25,7±3,8

26,8±4,0

0,532

Курение, n (%)

1

2

Н/д

Больные АГ, n (%)

0

5 (33,3)

0,08

САД, мм рт.ст.

118,7±4,0

133,1±11,8

0,008

ДАД, мм рт.ст.

75,57±6,11

80,57±9,78

0,234

ЧСС, мин

74,0±13,1

70,4±10,2

0,539

CAVI

6,6±0,8

7,0±0,9

0,384

СРБвч, мг/л

3,87±6,14

1,45±1,66

0,177

ОХС, ммоль/л

4,89±0,89

5,46± 0,92

0,184

ТГ, ммоль/л

1,09±0,40

1,12±0,71

0,918

ХС ЛНП, ммоль/л

3,20±0,71

3,48±1,96

0,567

ХС ЛВП, ммоль/л

1,50±0,28

1,53±0,41

0,372

Глюкоза, ммоль/л

4,89±0,41

5,19±0,34

0,086

АЛТ, ед/л

15,9±4,9

22,9±8,67

0,098

АСТ, ед/л

17,0±8,4

21,9±8,7

0,162

Мочевая кислота, ммоль/л

311,71±81,82

296,97±32,32

0,637

Примечание. М — мужчины; Ж — женщины; Н/д — нет данных.

Рис. 2. САД у «CH4-продуцентов» (1) и «H2-продуцентов» (0).

Таблица 4. Параметры, детерминирующие уровень тревоги (данные многофакторного регрессионного анализа)

Показатель

β

p

AUC H2

–0,638617

0,009

Возраст

0,107545

0,624

Пол

–0,027060

0,918

САД

0,063630

0,787

ДАД

0,313042

0,280

ЧСС

0,337759

0,145

Нами была выявлена отрицательная корреляция между САД и уровнем CH4 (r=–0,530; p=0,008) (рис. 3). Причем по данным многофакторного регрессионного анализа AUC CH4 показал себя независимым от возраста предиктором повышения САД (β=–0,49; p=0,03).

Рис. 3. Корреляция САД и CH4 в выдыхаемом воздухе у больных низкого и умеренного риска ССО.

Кроме того, уровень AUC CH4 отрицательно коррелировал с уровнем АСТ (r=–0,53; p=0,01).

Психологический статус пациентов

Среди включенных в исследования пациентов критериям субклинической депрессии (Д) по шкале HADS соответствовали 31,8%, субклинической тревоги (А) — 36,3%. Уровень А составлял 6,61±4,1 баллов, уровень Д — 5,17±2,45 баллов.

Была выявлена отрицательная корреляция между уровнем тревоги, с одной стороны, и H2 в выдыхаемом воздухе (r=–0,44; p=0,05) и соотношением H2/CH4 (r=–0,53; p=0,02) — с другой (рис. 4).

Рис. 4. Корреляция AUC H2/CH4 и уровня тревоги по шкале HADS у больных низкого и умеренного риска ССО.

Уровень H2 по данным многофакторного регрессионного анализа показал себя независимым от возраста, уровня САД, ДАД, ЧСС, отрицательный предиктор тревоги.

Артериальная жесткость

Выявлена отрицательная корреляция между показателем артериальной жесткости CAVI и количеством выдыхаемого H2 (r=–0,41; p=0,049) (рис. 5).

Рис. 5. Корреляция AUC H2 и артериальной жесткости у больных низкого и умеренного риска ССО.

Однако AUC H2 не был независимым предиктором CAVI у наших пациентов и терял прогностическую значимость при введении в модель показателей возраста и АД.

Таким образом, низкий уровень H2 у наших больных ассоциировался как с высоким уровнем тревожности, так и с повышением артериальной жесткости.

Обсуждение

Микробиота кишечника в настоящее время часто рассматривается как динамический эндокринный орган, который взаимодействует с организмом-хозяином посредством многочисленных медиаторов, вырабатываемых микробами [22]. CH4 и H2, с одной стороны, являются такими метаболитами, оказывающими, по всей видимости, прямое действие на некоторые органы и системы, а с другой — маркерами, позволяющими косвенно оценить состав микробиоты. Так, например, установлено, что артериальная жесткость отрицательно коррелирует с количеством бактерий из семейства Ruminococcaceae, относящихся к группе H2-продуцирующих [23]. Кроме того, эти бактерии продуцируют КЦЖК. КЦЖК активируют специфические рецепторы Olfr78 (olfactory receptors), которые располагаются в почечных артериях, стенках мелких кровеносных сосудов, сердце, коже, скелетной и гладкой мускулатуре [24, 25]. Активация Olfr78 усиливает секрецию ренина и, таким образом, оказывает гипертензивное воздействие. Но те же КЦЖК также могут активировать рецепторы GPR41 и GPR43 (G-protein coupled receptors). Активация GPR41 и GPR43, напротив, оказывает сосудорасширяющее действие и снижает АД. Таким образом, КЦКЖ, а следовательно, и продуцирующие их бактерии, оказывают разнонаправленное действие на уровень АД. Но поскольку рецепторы GPR41 и GPR43 намного более чувствительны, то увеличение уровня КЦЖК в крови чаще вызывает гипотензивный эффект.

У наших пациентов мы обнаружили, что, вопреки ожиданию, уровень САД выше в группе «CH4-продуцентов». Мало того, повышение концентрации CH4 в выдыхаемом воздухе показало себя независимым отрицательным предиктором увеличения САД. Возможное объяснение — влияние микроорганизмов рода Archaea, которые продуцируют CH4. Например, Methanomassiliicoccus luminyensis ассоциируются с меньшим риском атеросклероза. Эти бактерии ферментируют ТМА в кишечнике до метана, тем самым блокируют образованию ТМАО в печени, что оказывает протективный эффект [26]. Высокий уровень ТМАО плазмы ведет к окислительному стрессу, что, в свою очередь, приводит к подавлению активности эндотелиальной синтазы оксида азота (eNOS) и продукции оксида азота (NO) [27].

Что касается артериальной жесткости, то с ее повышением коррелировало низкое содержание H2 в выдыхаемом воздухе. Об ассоциации ряда H2-продуцирующих микроорганизмов с низкой артериальной жесткостью мы уже писали выше [23]. Клинические исследования показали преобладание снижения количества бактерий, продуцирующих H2 и короткоцепочечные летучие жирные кислоты (КЦЖК) (Eubacterium, Roseburia, Ruminococcaceae spp.) у больных с установленным атеросклерозом по сравнению со здоровыми людьми [27]. Больные АГ и лица с «предгипертензией» отличаются от нормотензивных лиц обеднением видового состава микробиоты, со снижением, в частности, Bacteroidetes («H2-продуцентов») и преобладанием бактерий Prevotella [28—30].

Возможно и прямое протективное действие H2 на сосудистую стенку. Индекс CAVI отражает степень именно артериосклероза (раннего старения) сосудистой стенки. Влияние традиционных факторов риска атеросклероза на развитие артериосклероза удается выявить не всегда, что предполагает альтернативные патофизиологические механизмы последнего [31]. Интересно, что именно CAVI показал себя независимым предиктором ССО у больных низкого/умеренного риска по данным 10-летнего наблюдения в нашем собственном исследовании [32].

Большое количество исследований демонстрирует связь между таксономическим составом, биомаркерами кишечной микробиоты и функциями мозга, что определяется как «ось кишечник-мозг) [33, 34]. Особый интерес вызывают выявленные ассоциации между газовым составом выдыхаемого воздуха и эмоциональной сферой. У наших больных мы обнаружили достаточно тесную отрицательную корреляцию между уровнем тревоги и Н2 и особенно соотношением H2/CH4 в выдыхаемом воздухе. В литературе мы встретили достаточно много упоминаний об ассоциации между эмоциональной сферой и составом микробиоты. Так, у л иц, у которых доминирующим типом в микробиоте были Bacteroides («H2-продуценты»), был больше объем серого вещества в перифронтальной коре мозга — структурах, вовлеченных в сложную обработку информации, — и в гиппокампе — структуре, связанной с процессами обработки памяти, — чем у тех, у кого доминировали Prevotella. Уровни тревоги и раздражительности в группе с доминированием Bacteroides были ниже [33, 34]. Результаты группы китайских авторов косвенно подтверждают полученные нами результаты. Они обнаружили более частые проявления депрессии и тревожности у 198 пожилых испытуемых (старше 60 лет) с более выраженными проявлениями функциональных запоров [35]. Хорошо известна высокая степень корреляции между возникновением запоров и активностью метаногенных архей, проявляющейся более высоким содержанием метана в выдыхаемом воздухе [36]. Сравнение полученных результатов позволяет нам предположить, что повышение уровня метана в выдыхаемом воздухе (средний возраст наших испытуемых — 46 лет) может быть более ранним критерием развития депрессии и тревожности, чем развитие функциональных запоров в более пожилом возрасте. Природа этой связи пока непонятна. Является ли она причинно-следственной, влияют ли некие бактериальные метаболиты на аффективные реакции или, напротив, аффективные расстройства влияют на состав микробиоты через особенности пищевого поведения? Возможно, имеются некие, пока нам неизвестные, общие звенья патогенеза как аффективных расстройств, так и нарушения состава микробиоты. Все эти вопросы пока только ждут решения.

Заключение

Результаты проведенного исследования позволяют рекомендовать проведение водородно-метанового дыхательного теста с целью более точной оценки риска развития ССО и персонифицированного подхода к их профилактике.

Ограничением исследования является малое количество наблюдений, что не позволяет сделать однозначных выводов. Необходимо дальнейшее изучение с включением большего количества больных с разным уровнем сердечно-сосудистого риска.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Gebrayel P, Nicco C, Al Khodor S, Bilinski J, Caselli E, Comelli EM, Egert M, Giaroni C, Karpinski TM, Loniewski I, Mulak A, Reygner J, Samczuk P, Serino M, Sikora M, Terranegra A, Ufnal M, Villeger R, Pichon C, Konturek P, Edeas M. Microbiota medicine: towards clinical revolution. Journal of Translational Medicine. 2022;20(1):111.  https://doi.org/10.1186/s12967-022-03296-9
  2. Mousavinasab F, Karimi R, Taheri S, Ahmadvand F, Sanaaee S, Najafi S, Halvaii MS, Haghgoo A, Zamany M, Majidpoor J, Khosravifar M, Baniasadi M, Talebi M, Movafagh A, Aghaei-Zarch SM, Khorram N, Farnia P, Kalhor K. Microbiome modulation in inflammatory diseases: Progress to microbiome genetic engineering. Cancer Cell International. 2023;23(1):271.  https://doi.org/10.1186/s12935-023-03095-2
  3. Simmering R, Taras D, Schwiertz A, Le Blay G, Gruhl B, Lawson PA, Collins MD, Blaut M. Ruminococcus luti sp. nov., isolated from a human faecal sample. Systematic and Applied Microbiology. 2002;25(2):189-193.  https://doi.org/10.1078/0723-2020-00112
  4. Suzuki A, Ito M, Hamaguchi T, Mori H, Takeda Y, Baba R, Watanabe T, Kurokawa K, Asakawa S, Hirayama M, Ohno K. Quantification of hydrogen production by intestinal bacteria that are specifically dysregulated in Parkinson’s disease. PLoS One. 2018;13(12):e0208313. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0208313
  5. Duncan SH, Flint HJ. Proposal of a neotype strain (A1-86) for Eubacterium rectale. Request for an opinion. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2008;58(Pt 7):1735-1736. https://doi.org/10.1099/ijs.0.2008/004580-0
  6. Steer T, Collins MD, Gibson GR, Hippe H, Lawson PA. Clostridium hathewayi sp. nov., from human faeces. Systematic and Applied Microbiology. 2001;24(3):353-357.  https://doi.org/10.1078/0723-2020-00044
  7. Chassard C, Delmas E, Lawson PA, Bernalier-Donadille A. Bacteroides xylanisolvens sp. nov., a xylan-degrading bacterium isolated from human faeces. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2008;58(Pt 4):1008-1013. https://doi.org/10.1099/ijs.0.65504-0
  8. Carbonero F, Benefiel AC, Gaskins HR. Contributions of the microbial hydrogen economy to colonic homeostasis. Nature Reviews. Gastroenterology and Hepatology. 2012;9(9):504-518.  https://doi.org/10.1038/nrgastro.2012.85
  9. Levitt MD. Volume and Composition of Human Intestinal Gas Determined by Means of an Intestinal Washout Technic. New England Journal of Medicine. 1971;284(25):1394-1398. https://doi.org/10.1056/nejm197106242842502
  10. Ohsawa I, Nishimaki K, Yamagata K, Ishikawa M, Ohta S. Consumption of hydrogen water prevents atherosclerosis in apolipoprotein E knockout mice. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2008;377(4):1195-1198. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2008.10.156
  11. Iketani M, Sekimoto K, Igarashi T, Takahashi M, Komatsu M, Sakane I, Takahashi H, Kawaguchi H, Ohtani-Kaneko R, Ohsawa I. Administration of hydrogen-rich water prevents vascular aging of the aorta in LDL receptor-deficient mice. Scientific Reports. 2018;8(1):16822. https://doi.org/10.1038/s41598-018-35239-0
  12. Li X, Li L, Liu X, Wu J, Sun X, Li Z, Geng YJ, Liu F, Zhou Y. Attenuation of Cardiac Ischaemia-reperfusion Injury by Treatment with Hydrogen-rich Water. Current Molecular Medicine. 2019;19(4):294-302.  https://doi.org/10.2174/1566524019666190321113544
  13. Gao Q, Song H, Wang XT, Liang Y, Xi YJ, Gao Y, Guo QJ, LeBaron T, Luo YX, Li SC, Yin X, Shi HS, Ma YX. Molecular hydrogen increases resilience to stress in mice. Scientific Reports. 2017;7(1):9625. https://doi.org/10.1038/s41598-017-10362-6
  14. Nava GM, Carbonero F, Croix JA, Greenberg E, Gaskins HR. Abundance and diversity of mucosa-associated hydrogenotrophic microbes in the healthy human colon. The ISME Journal. 2012;6(1):57-70.  https://doi.org/10.1038/ismej.2011.90
  15. Gottlieb K, Wacher V, Sliman J, Pimentel M. Review article: inhibition of methanogenic archaea by statins as a targeted management strategy for constipation and related disorders. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 2016;43(2):197-212.  https://doi.org/10.1111/apt.13469
  16. Mahnert A, Blohs M, Pausan MR, Moissl-Eichinger C. The human archaeome: methodological pitfalls and knowledge gaps. Emerging Topics in Life Sciences. 2018;2(4):469-482.  https://doi.org/10.1042/ETLS20180037
  17. Cummings JH, Englyst HN. Measurement of starch fermentation in the human large intestine. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 1991;69(1):121-129.  https://doi.org/10.1139/y91-018
  18. Beflin AM, Borresen EC, Kirkwood JS, Boot CM, Whitney AK, Lu S, Brown RJ, Broeckling CD, Ryan EP, Weir TL. Dietary supplementation with rice bran or navy bean alters gut bacterial metabolism in colorectal cancer survivors. Molecular Nutrition & Food Research. 2017;61(1):10.1002/mnfr.201500905. https://doi.org/10.1002/mnfr.201500905
  19. Zigmond AS, Snaith RP. The hospital anxiety and depression scale. Acta Psychiatrica Scandinavica. 1983;67(6):361-70.  https://doi.org/10.1111/j.1600-0447.1983.tb09716.x
  20. Hammer HF, Fox MR, Keller J, Salvatore S, Basilisco G, Hammer J, Lopetuso L, Benninga M, Borrelli O, Dumitrascu D, Hauser B, Herszenyi L, Nakov R, Pohl D, Thapar N, Sonyi M; European H2-CH4-breath test group. European guideline on indications, performance, and clinical impact of hydrogen and methane breath tests in adult and pediatric patients: European Association for Gastroenterology, Endoscopy and Nutrition, European Society of Neurogastroenterology and Motility, and European Society for Paediatric Gastroenterology Hepatology and Nutrition consensus. United European Gastroenterology Journal. 2022;10(1):15-40.  https://doi.org/10.1002/ueg2.12133
  21. Ивашкин В.Т., Маев И.В., Абдулганиева Д.И., Алексеева О.П., Алексеенко С.А., Зольникова О.Ю., Корочанская Н.В., Медведев О.С., Полуэктова Е.А., Симаненков В.И., Трухманов А.С., Хлынов И.Б., Цуканов В.В., Шифрин О.С., Ивашкин К.В., Лапина Т.Л., Масленников Р.В., Фадеева М.В., Ульянин А.И. Практические рекомендации Научного сообщества по содействию клиническому изучению микробиома человека (НСОИМ) и Российской гастроэнтерологической ассоциации (РГА) по диагностике и лечению синдрома избыточного бактериального роста у взрослых. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2022;32(3):68-85.  https://doi.org/10.22416/1382-4376-2022-32-3-68-85
  22. Clarke G, Stilling RM, Kennedy PJ, Stanton C, Cryan JF, Dinan TG. Minireview: Gut microbiota: the neglected endocrine organ. Molecular Endocrinology. 2014;28(8):1221-38.  https://doi.org/10.1210/me.2014-1108
  23. Menni C, Lin C, Cecelja M, Mangino M, Matey-Hernandez ML, Keehn L, Mohney RP, Steves CJ, Spector TD, Kuo CF, Chowienczyk P, Valdes AM. Gut microbial diversity is associated with lower arterial stiffness in women. European Heart Journal. 2018;39(25):2390-2397. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehy226
  24. Pluznick JL, Protzko RJ, Gevorgyan H, Peterlin Z, Sipos A, Han J, Brunet I, Wan LX, Rey F, Wang T, Firestein SJ, Yanagisawa M, Gordon JI, Eichmann A, Peti-Peterdi J, Caplan MJ. Olfactory receptor responding to gut microbiota-derived signals plays a role in renin secretion and blood pressure regulation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2013;110(11):4410-5.  https://doi.org/10.1073/pnas.1215927110
  25. Santisteban MM, Kim S, Pepine CJ, Raizada MK. Brain-Gut-Bone Marrow Axis: Implications for Hypertension and Related Therapeutics. Circulation Research. 2016;118(8):1327-36.  https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.116.307709
  26. Brugère JF, Borrel G, Gaci N, Tottey W, O’Toole PW, Malpuech-Brugère C. Archaebiotics: proposed therapeutic use of archaea to prevent trimethylaminuria and cardiovascular disease. Gut Microbes. 2014;5(1):5-10.  https://doi.org/10.4161/gmic.26749
  27. Sun X, Jiao X, Ma Y, Liu Y, Zhang L, He Y, Chen Y. Trimethylamine N-oxide induces inflammation and endothelial dysfunction in human umbilical vein endothelial cells via activating ROS-TXNIP-NLRP3 inflammasome. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2016;481(1-2):63-70.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2016.11.017
  28. Liu H, Chen X, Hu X, Niu H, Tian R, Wang H, Pang H, Jiang L, Qiu B, Chen X, Zhang Y, Ma Y, Tang S, Li H, Feng S, Zhang S, Zhang C. Altera-tions in the gut microbiome and metabolism with coronary artery disease severity. Microbiome. 2019;7(1):68.  https://doi.org/10.1186/s40168-019-0683-9
  29. Li J, Zhao F, Wang Y, Chen J, Tao J, Tian G, Wu S, Liu W, Cui Q, Geng B, Zhang W, Weldon R, Auguste K, Yang L, Liu X, Chen L, Yang X, Zhu B, Cai J. Gut microbiota dysbiosis contributes to the development of hypertension. Microbiome. 2017;5(1):1-19.  https://doi.org/10.1186/s40168-016-0222-x
  30. Verhaar BJH, Collard D, Prodan A, Levels JHM, Zwinderman AH, Bäckhed F, Vogt L, Peters MJL, Muller M, Nieuwdorp M, van den Born BH. Associations between gut microbiota, faecal short-chain fatty acids, and blood pressure across ethnic groups: the HELIUS study. European Heart Journal. 2020;41(44):4259-4267. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehaa704
  31. Согласованное мнение российских экспертов по оценке артериальной жесткости в клинической практике (конгресс РКО, 2015). Кардиовасклярная терапия и профилактика. 2016;15(2):4-19.  https://doi.org/10.15829/1728-8800-2016-2-4-19
  32. Смирнова М.Д., Свирида О.Н., Фофанова Т.В., Бланова З.Н., Яровая Е.Б., Агеев Ф.Т., Бойцов С.А. Субклинические депрессия и тревога как дополнительный фактор риска сердечно-сосудистых осложнений у больных с низким и умеренным риском (по данным десятилетнего наблюдения). Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2021;20(4):2762. https://doi.org/10.15829/1728-8800-2021-2762
  33. Shandilya S, Kumar S, Kumar Jha N, Kumar Kesari K, Ruokolainen J. Interplay of gut microbiota and oxidative stress: Perspective on neurodegeneration and neuroprotection. Journal of Advanced Research. 2021;38:223-244.  https://doi.org/10.1016/j.jare.2021.09.005
  34. Gebrayel P, Nicco C, Al Khodor S, Bilinski J, Caselli E, Comelli EM, Egert M, Giaroni C, Karpinski TM, Loniewski I, Mulak A, Reygner J, Samczuk P, Serino M, Sikora M, Terranegra A, Ufnal M, Villeger R, Pichon C, Konturek P, Edeas M. Microbiota medicine: towards clinical revolution. Journal of Translational Medicine. 2022;20(1):111.  https://doi.org/10.1186/s12967-022-03296-9
  35. Liang J, Zhao Y, Xi Y, Xiang C, Yong C, Huo J, Zou H, Hou Y, Pan Y, Wu M, Xie Q, Lin Q. Association between Depression, Anxiety Symptoms and Gut Microbiota in Chinese Elderly with Functional Constipation. Nutrients. 2022;14(23):5013. https://doi.org/10.3390/nu14235013
  36. Pimentel M, Saad RJ, Long MD, Rao SSC. ACG Clinical Guideline: Small Intestinal Bacterial Overgrowth. American Journal of Gastroenterology. 2020;115(2):165-178.  https://doi.org/10.14309/ajg.0000000000000501

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.