Коган Е.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Куклева А.Д.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Березовский Ю.С.

ФГБУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза»

Благова О.В.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Жарков Н.В.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Айнетдинова Д.Х.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России

Демяшкин Г.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» (Сеченовский университет) Минздрава России

Клинико-морфологическая характеристика SARS-CoV-2-ассоциированного миокардита, подтвержденного наличием РНК и белков вируса в ткани миокарда

Авторы:

Коган Е.А., Куклева А.Д., Березовский Ю.С., Благова О.В., Жарков Н.В., Айнетдинова Д.Х., Демяшкин Г.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2021;83(4): 5‑13

Прочитано: 3675 раз


Как цитировать:

Коган Е.А., Куклева А.Д., Березовский Ю.С., Благова О.В., Жарков Н.В., Айнетдинова Д.Х., Демяшкин Г.А. Клинико-морфологическая характеристика SARS-CoV-2-ассоциированного миокардита, подтвержденного наличием РНК и белков вируса в ткани миокарда. Архив патологии. 2021;83(4):5‑13.
Kogan EA, Kukleva AD, Berezovsky YuS, Blagova OV, Zharkov NV, Ainetdinova DKh, Demyashkin GA. Clinical and morphological characteristics of SARS-CoV-2-related myocarditis proven by the presence of viral RNA and proteins in myocardial tissue. Russian Journal of Archive of Pathology. 2021;83(4):5‑13. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol2021830415

Рекомендуем статьи по данной теме:
Па­то­ло­гия пе­че­ни при COVID-19. Ар­хив па­то­ло­гии. 2025;(1):53-59
мРНК-вак­ци­ны про­тив ра­ка: осо­бен­нос­ти проб­лем и кол­ли­зии. Мо­ле­ку­ляр­ная ге­не­ти­ка, мик­ро­би­оло­гия и ви­ру­со­ло­гия. 2025;(1):3-16

COVID-19 сопровождается развитием широкого спектра поражений сердечно-сосудистой системы. Клинические данные подтверждают возникновение у ряда пациентов с новой коронавирусной инфекцией инфарктов миокарда, острого коронарного синдрома, миокардитов, внезапной сердечной смерти [1—5]. У 19% пациентов, госпитализируемых с COVID-19, наблюдаются такие симптомы поражения сердца, как боли за грудиной, гипотензия, аритмии, признаки сердечной недостаточности. Хотя наиболее частой причиной смерти при COVID-19 является дыхательная недостаточность, однако сердечно-сосудистая недостаточность также вносит свой вклад в общую смертность [2, 6—8]. S. Shi и соавт. [2] при анализе причин смерти при новой коронавирусной инфекции обнаружили, что в 51% случаев смерть наступала от сердечных приступов. Q. Ruan и соавт. [9] при ретроспективном изучении историй болезни выявили, что из 68 умерших с подтвержденной коронавирусной инфекцией у 5 (7%) смерть наступила от сердечно-сосудистой недостаточности, у 22 (33%) — от легочно-сердечной недостаточности, у них при жизни фиксировали высокие уровни тропонина и миоглобина в сыворотке крови. Авторы высказывают предположение, что причиной летального исхода послужил фульминантный миокардит, однако данных аутопсии не приводится.

В литературе описаны разнообразные виды патологии миокарда при COVID-19 [10, 11]:

1) прямое повреждение миокарда вследствие взаимодействия вируса с АПФ-2 кардиомиоцитов [4];

2) ишемическое повреждение миокарда в результате нарастающей гипоксии в крови из-за респираторного дистресс-синдрома, а также на фоне атеросклеротических изменений коронарных артерий, коронариита, эндотелиальной дисфункции, вазоконстрикции и коагулопатии [12];

3) миокардит, развивающийся в результате прямого вирусного повреждения миокарда, ишемического и цитокинового повреждения миокарда, которое может возникать из-за системной инфекции и «цитокинового шторма» [13, 14];

4) апоптотические изменения, вероятнее всего, связанные с 3CLpro — ингибитором аминопептидаз, влияющих на активность клеточных протеасом [15].

В литературе приводится крайне мало случаев описания миокардита у пациентов с COVID-19 с анализом биопсийного и аутопсийного материала. Отдельными авторами сообщается о нескольких случаях клинически диагностированного миокардита без гистологического подтверждения [3, 16—18]. Указывается случай посмертной диагностики лимфоцитарного миокардита с гистологическим подтверждением у пациента из Италии [19]. Одними из первых сообщили о наличии лимфоцитарных миокардитов при COVID-19, установленных морфологически, российские авторы в июне—июле 2020 г. [14, 20]. Вскоре появились описания SARS-CoV-2-позитивного миокардита группой авторов из клиники Шарите [21]. В первой из этих работ методом ПЦР была впервые обнаружена РНК вируса в прижизненных биоптатах правого желудочка — вирус наряду с признаками миокардита выявлен у 5 из 104 больных, которым биопсия была выполнена по поводу сердечной недостаточности неясного генеза [21]. Возможность РНК-позитивного миокардита показана у больных с отрицательными мазками из зева [22]. Позднее геном SARS-CoV-2 был ретроспективно идентифицирован в биоптатах правого желудочка от 29.02.20, симптоматика миокардита развилась незадолго до этого и регрессировала после иммуносупрессивной терапии в последующие 2 мес [23].

Следует отметить, что ни в одном из упомянутых клинических описаний уровень антикардиальных антител в крови не изучался, что не позволяет оценить вклад иммунных механизмов в формирование представленной клинической картины. Работы по изучению уровня и роли антикардиальных антител при COVID-19 и в постковидный период до сих пор отсутствуют в доступной медицинской литературе. Специальное исследование было проведено лишь в COVID-госпитале Сеченовского Университета: повышение титра антител к тем или иным антигенам сердца выявлено почти у ¾ больных с острой коронавирусной инфекцией и коррелировало не только с кардиальными симптомами (аритмиями, перикардитом), но и с тяжестью пневмонии, маркерами воспаления и прогнозом [24].

В связи с тем, что случаев миокардита, ассоциированного с COVID-19, в литературе описано крайне мало, приводим данные собственного исследования.

Цель исследования — изучить клинико-морфологические особенности SARS-CoV-2-ассоциированного миокардита с определением наличия РНК и белков вируса в ткани миокарда.

Материал и методы

Исследование выполнено на материале 32 аутопсий пациентов, умерших от тяжелой формы новой коронавирусной инфекции, сопровождавшейся развитием миокардита. Исследовали макро- и микропрепараты сердца. Кусочки миокарда вырезали из свободной стенки правого и левого желудочков, межжелудочковой перегородки, стенок правого и левого предсердия (5—7 образцов). Серийные парафиновые срезы окрашивали гематоксилином и эозином, толуидиновым синим и по Ван-Гизону. Проводили иммуногистохимическое (ИГХ) исследование иммунопероксидазным методом с использованием панели антител для характеристики клеточного состава инфильтрата и детекции белков вируса (табл. 1). Ставили положительные и отрицательные контрольные реакции. В качестве позитивного контроля использовали блоки из клеток 293Т со spike-белком и белком нуклеокапсида вируса SARS-CoV-2 (cell pellet block — GeneTex435640, GeneTex435641); в качестве негативного контроля — аутопсийный материал миокарда пациентов без миокардита и без COVID-19 и миокарда пациентов с COVID-19, но без миокардита. Согласно международным критериям Далласа, а также рекомендациям Европейского общества кардиологов и Европейского общества патологов, диагноз вирусного лимфоцитарного миокардита ставился при наличии в миокарде на 1 мм2 не менее 7 CD3+ лимфоцитов и не менее 14 CD45+ лимфоцитов.

Таблица 1. Панель первичных антител для ИГХ-исследования миокарда пациентов с COVID-19

Первичные антитела, производитель

Клон, разведение

Назначение первичных антител

CD3, «Cell Marque»

MRQ-39,

1:1000

Пан-T-лимфоцитарный маркер реагирует с антигеном, присутствующим на поверхности и в цитоплазме T-лимфоцитов

CD20, «Cell Marque», кроличьи моноклональные

SP32,

1:500

Трансмембранный белок в поздних предшественниках B-клеток и зрелых B-клетках, который играет роль в регулировании пролиферации и дифференциации

CD45, «Dako», мышиные моноклональные

4KB5,

1:100

Мембранный гликопротеин, общий лейкоцитарный антиген. Экспрессируется на различных типах лимфоцитов

CD68, «Dako», мышиные моноклональные

KP1,

1:50

Гликопротеин, экспрессируется на поверхности моноцитов и макрофагов

Nucleocapsid antibody SARS-CoV-2, «GeneTex», кроличьи поликлональные

1:500

Белок нуклеокапсида коронавируса (COVID-19)

Spike antibody SARS-CoV-2, «GeneTex», кроличьи поликлональные

1:500

Spike-белок коронавируса (COVID-19)

Обнаружение вирусной РНК в образцах проводили с помощью ПЦР в реальном времени (РВ-ПЦР). Для выделения тотальной РНК из тканей, фиксированных в парафине, применяли RNeasy FFPE Kit («Qiagen, Hilden», Германия). РВ-ПЦР для SARS-CoV-2 выполняли с помощью набора N2, как описано в литературе [25]. Для проведения анализа использовали 20 мкл реакционной смеси, состоящей из 2 × Master Mix и RT из набора QuantiTect probe RT-PCR («Qiagen, Hilden», Германия), набор праймеров/зондов N2 (праймер NIID_2019-nCoV_N_F2, праймер NIID_2019-nCoV_N_R2 и зонд NIID_2019-nCoV_N_P2) и 5 мкл РНК, экстрагированной из образцов тканей, фиксированных в парафине, подвергали ПЦР в амплификаторе QuantStudio 5 («Thermo Scientific», США). Условия реакции были следующими: 50 °C в течение 30 мин, 95 °C —15 мин и 45 циклов 95 °C в течение 15 с и 60 °C — 1 мин. Для всех образцов, положительных по РВ-ПЦР, получены значения Ct. Значения Ct образцов сравнивали с таковыми Ct контрольных позитивных и негативных образцов (рис. 1).

Рис. 1. ПЦР с обратной транскрипцией в реальном времени (РТ-ПЦР).

Результаты исследования

1. Клиническая характеристика

Средний возраст пациентов составил 72,7±15,5 года. В группе преобладали (53%) лица мужского пола.

Основными клиническими проявлениями ковидного миокардита являются, по нашим наблюдениям, бивентрикулярная сердечная недостаточность (с/без дилатации и падением сократимости как левого, так и правого желудочка) и/или разнообразные нарушения ритма — от частой политопной экстрасистолии до непрерывно рецидивирующей мерцательной аритмии и желудочковой тахикардии. Раннее и выраженное поражение миокарда правого желудочка (вследствие его перегрузки в рамках легочной гипертензии, прямой тропности вируса к правым отделам сердца?) следует, вероятно, считать одной из характерных особенностей болезни. Средние и высокие уровни антикардиальных антител характерны для абсолютного большинства таких больных, тогда как общевоспалительные маркеры в крови практически никогда не превышают нормы.

2. Морфологическая характеристика

При макроскопическом исследовании средние размеры сердца составили 14,2×10,5×6,5 см. Масса сердца колебалась от 300 до 430 г, в среднем составляя 362±37 г. Толщина стенки левого желудочка в среднем 2,2—2,7 см, правого — 0,3—0,5 см. При вскрытии в 68% наблюдений отмечались дилатация камер и гипертрофия стенки левого желудочка сердца. На эндокарде в 9 (31%) случаях наблюдались пристеночные тромбы. Миокард дрябловатой консистенции, на разрезе темно-красного цвета, пестрого вида, с мелкими желтовато-красноватыми/белесоватыми очажками. Перикард отечный, в 4 (12%) случаях утолщен.

Гистологическое исследование. При гистологическом исследовании препаратов сердца обнаружена морфология миокардита, а в некоторых случаях — сочетание миокардита с эндокардитом и перикардитом. Результаты гистологического исследования сердца 32 пациентов с тяжелой формой новой коронавирусной инфекции представлены в табл. 2.

Таблица 2. Патология сердца при COVID-19 в группе из 32 пациентов

Вариант патологии сердца

Количество случаев

Миокардит, преимущественно лимфоцитарный

32

Эндокардит

6

Перикардит

4

Эндотелиит и деструктивно-продуктивный коронариит

26

Ишемические повреждения вплоть до развития очагов некроза миокарда

14

ДВС-синдром с тромбозами мелких веточек коронарных артерий, пристеночными тромбами в предсердиях, кровоизлияниями в миокарде

29

В ткани миокарда отмечаются дистрофические изменения кардиомиоцитов вплоть до некроза отдельных клеток, с лизисом ядер, фрагментацией цитоплазмы и потерей поперечной исчерченности, нередко наблюдаются полосы пересокращения. Отдельные кардиомиоциты гипертрофированы. В интерстиции склероз, отек и выраженная в разной степени лимфогистиоцитарная инфильтрация (в 32 случаях количество лимфоцитов >10 на 1 мм2). В 1 случае инфильтрат с примесью небольшого количества гигантских многоядерных симпластов (рис. 2, а, б), что также косвенно подтверждает вирусную этиологию процесса. Интерстиций неравномерно расширенный, отечный. Эндотелий мелких веточек венечных артерий набухший, с лимфоидными элементами, местами веточки коронарных артерий в состоянии деструктивно-продуктивного тромбоваскулита (рис. 2, в), что является особенностью коронавирусного миокардита. Следует отметить, что морфологические признаки лимфоцитарного миокардита более ярко выражены в правых отделах сердца.

Рис. 2. Гистологическая характеристика панкардита при COVID-19.

а — лимфогистиоцитарные инфильтраты в миокарде; б — гигантские клетки типа Пирогова—Лангханса в миокарде; в — деструктивно-продуктивный тромбоваскулит мелких веточек коронарных артерий; г — лимфоидные инфильтраты в эндокарде; д — тромбоэндокардит правого желудочка; е — лимфоидные инфильтраты в перикарде. Окраска гематоксилином и эозином. а, б, е — ×40; д — ×10; в, г — ×100.

В 6 из 32 случаев обнаружены признаки тромбоэндокардита правого желудочка. Эндокард инфильтрирован лимфогистиоцитарными элементами с прилежащими тромботическими массами (рис. 2, г, д).

В 4 из 32 случаев выявлен лимфоцитарный перикардит (рис. 2, е).

Кроме того, у умерших от COVID-19 имелась также и предсуществующая патология сердца в виде хронической ИБС с постинфарктным и мелкоочаговым кардиосклерозом и атеросклероза коронарных артерий в 5 (18%) случаях, гипертонической болезни в 12 (38%) и ожирения сердца, в большинстве случаев не сочетавшегося с другими хроническими заболеваниями сердца, в 8 (27%).

3. Молекулярное и ИГХ-исследование

В 32 (100%) случаях методом РВ-ПЦР у пациентов посмертно в ткани миокарда выявлена РНК SARS-CoV-2, что подтверждает наличие генома вируса.

ИГХ-типирование клеток инфильтрата проводилось на посмертном материале ткани сердца. В препаратах сердца (в эндо-, мио- и перикарде) выявлено на 1 мм2 >7 CD3-положительных T-лимфоцитов, >14 CD45-положительных лимфоцитов и >7 CD68-положительных макрофагов. CD20-положительные B-лимфоциты отсутствовали во всех образцах (рис. 3, а—г). ИГХ-исследование белков SARS-CoV-2 проведено на материале аутопсии. Выявлена выраженная положительная экспрессия к нуклеокапсиду вируса в кардиомиоцитах и клетках инфильтрата (преимущественно в макрофагах) в миокарде (рис. 4, а, в). Положительная реакция к spike-белку обнаружена в эндотелии сосудов, клетках инфильтрата, включая инфильтрат в эндо- и перикарде (рис. 4, б, г).

Рис. 3. ИГХ-типирование клеточного инфильтрата миокарда.

а — >14 CD45-лимфоцитов на 1 мм2 в миокарде и эндокарде; б — >7 CD3 T-лимфоцитов на 1 мм2; в — >7 CD68-макрофагов на 1 мм2; г — отсутствие экспрессии CD20 B-лимфоцитов, ×40.

Рис 4. ИГХ-исследование на белки SARS-CoV-2.

а — положительная экспрессия белка нуклеокапсида SARS-CoV-2 в клетках инфильтрата в миокарде; б — положительная экспрессия spike-белка SARS-CoV-2 в эндотелии сосудов и отдельных кардиомиоцитах; в — положительная экспрессия белка нуклеокапсида SARS-CoV-2 в клетках инфильтрата в эндокарде; г — положительная экспрессия spike-белка SARS-CoV-2 в клетках инфильтрата в эндокарде; а—г — ×100.

В качестве примера приводим клинический случай пациентки, у которой ПЦР-исследование ткани сердца выявило РНК SARS-Cov-2 в миокарде.

Пациентка Н., 78 лет. Поступила с жалобами на повышение температуры тела до 39,3 °C, общую слабость, головокружение. Взятые мазки на ПЦР РНК коронавируса дважды положительны. При КТ легких в верхних и нижних долях обоих легких, больше справа, выявляются участки зоны уплотнения паренхимы по типу «матового стекла», наиболее крупные из них с ретикулярными изменениями, размеры зон достигают 7 см в максимальном измерении. Участки поражения локализованы преимущественно субплеврально в периферических отделах, отдельные — в центральных. Поражение занимает справа около 25—50%, слева до 25%. Очаговых изменений не определяется. Заключение: КТ-картина двусторонней (больше справа) полисегментарной пневмонии, вероятно, вирусной природы (в том числе Covid), КТ-2 — среднетяжелая степень. В общем анализе крови лимфопения, в биохимическом анализе — нарастание уровня лактатдегидрогеназы (до 22 950 Ед/л) и C-реактивного белка (132 мг/л). Пациентке проводилось лечение гидроксихлорохином, клексаном, цефтриаксоном, оксигенотерапия. На 20-й день госпитализации зафиксированы ухудшение состояния, резкий лейкоцитоз, признаки септического шока. Наступила биологическая смерть.

На вскрытии макроскопически легкие увеличены в размерах, массой по 2200 г, темно-красного цвета, плотноватой консистенции, с множеством суховатых вишнево-красных пестрых участков, сливающихся между собой. Гистологически во всех отделах правого и левого легких обнаружен фибринозно-геморрагический альвеолит. Альвеолярные перегородки инфильтрированы лимфогистиоцитарными элементами. Макроскопически миокард дряблой консистенции, пестрого вида, в переднеперегородочной области левого желудочка с очагом белесоватого цвета, плотной консистенции неправильной формы, размером 2,0×1,5 см. При исследовании миокарда отмечались неравномерная гипертрофия и выраженные дистрофические изменения кардиомиоцитов вплоть до лизиса ядер, воспалительная инфильтрация в стенках коронарных артерий и лимфоидная инфильтрация в интерстициальной ткани миокарда (>14 лимфоцитов в 10 полях зрения). Лимфоидная инфильтрация зафиксирована и в перикарде. Также присутствовали явления эндотелиита мелких веточек коронарных артерий, деструктивно-продуктивного коронариита. Кроме того, обнаружены обширные поля соединительной ткани на месте постинфарктного кардиосклероза, выявленного при макроскопическом исследовании. При окраске пикрофуксином по Ван-Гизону — периваскулярный и перимускулярный кардиосклероз. Для подтверждения диагноза проведено ИГХ-исследование с антителами к CD3, CD20, перфоринам, TLR-4, TLR-9. По результатам ИГХ-реакции отмечается выраженная экспрессия CD3+ лимфоцитов в интерстиции (>7 клеток на 1 мм2) и тромботических массах. CD20+ B-лимфоциты отсутствуют. NK-клетки составляют около 25% клеток инфильтрата. Отмечается выраженная экспрессия TLR 4-го типа в цитоплазме всех кардиомиоцитов, лимфомакрофагальных и лейкоцитарных элементов инфильтрата, клеток эндотелия сосудов, перицитов, а также гладкомышечных клеток сосудистой стенки. На TLR 9-го типа наблюдается слабая реакция цитоплазмы кардиомиоцитов и отдельных лейкоцитов.

Обсуждение

В проведенном исследовании представлено клиническое и морфологическое подтверждение существования миокардита, эндокардита и перикардита, вызванного SARS-CoV-2. При этом можно выделить следующие особенности SARS-CoV-2-ассоциированного поражения сердца, подтвержденного гистологическим, ИГХ-исследованием и ПЦР:

— миокардит сопровождается развитием эндотелиита и коронариита мелких веточек коронарных артерий;

— вовлечение в воспалительный процесс эндо-, мио- и перикарда с развитием коронавирусного кардита и панкардита;

— гигантоклеточная реакция в миокарде.

Присутствие РНК коронавируса в миокарде, а также белка нуклеокапсида и spike-белка в кардиомиоцитах подтверждает возможность прямого патогенного действия вируса на кардиомиоциты. Обнаружено также наличие белка нуклеокапсида и spike-белка в макрофагах инфильтрата и эндотелии микрососудов. Следовательно, можно думать о трех патогенетических механизмах развития миокардита при COVID-19: путем прямого повреждения кардиомиоцитов вирусом, ишемического повреждения, в том числе за счет коронариитов и коагулопатии с последующей воспалительной реакцией, а также вследствие выброса цитокинов клетками воспалительного инфильтрата при «цитокиновом шторме». В литературе также обсуждается механизм аутоиммунного поражения миокарда [26].

Повреждение кардиомиоцитов развивается вследствие прямого взаимодействия с вирусом. Вирус SARS-CoV-2 использует spike-белок для связывания с рецептором к АПФ2 и входа в кардиомиоцит, тем самым инициируя воспалительный процесс в миокарде. До своего связывания с рецептором spike-белок должен быть расщеплен на S1/S2-сайты (расщепление опосредуется трансмембранным сериновым белком TMPRSS2), и S2-сайт spike-белка связывается с рецептором к АПФ2 [27].

Наши данные согласуются с результатами исследования G. Tavazzi и соавт. [28], которые описывают случай вирусного миокардита, подтвержденного обнаружением РНК-вируса методом ПЦР в макрофагах в биоптате миокарда. При этом можно предположить, что локализация вируса в макрофагах может способствовать выбросу ими большого количества цитокинов, а также хронизации инфекции. Механизмы повреждения миокарда в результате выброса большого количества цитокинов также обсуждаются в литературе. Активация TLR, CLR и NOD-подобных рецепторов приводит к «цитокиновому шторму», что также остается одним из возможных путей развития миокардита. Высокие уровни цитокинов способствуют генерализации воспаления, в том числе вовлечению в воспалительный процесс миокарда. Интерлейкин-6 (ИЛ-6), являясь центральным медиатором «цитокинового шторма», организует цитокиновые реакции иммунных клеток, включая T-лимфоциты. Происходят активация T-лимфоцитов и дальнейшее высвобождение воспалительных цитокинов, которые стимулируют еще большее количество T-лимфоцитов. Возникает положительная обратная связь активации иммунной системы и повреждения миокарда. G. Chen и соавт. [29] в ходе исследования выявили высокие уровни интерлейкинов-2, -6, -10 и фактора некроза опухоли среди пациентов с коронавирусной инфекцией. Также у пациентов с COVID-19 могут развиваться фатальные аритмии, не связанные с воспалением сердца и поражением непосредственно кардиомиоцитов, а ассоциированные, например, с аритмогенными провоспалительными цитокинами или перикардитом/коронариитом [30].

Для детальной характеристики точного механизма повреждения миокарда, связанного с COVID-19, необходимы дальнейшие про- и ретроспективные когортные исследования, что возможно только в условиях тесного взаимодействия между морфологами и кардиологами.

Выводы

1. Доказано существование вирусного миокардита при COVID-19 по данным клиники, морфологии, а также на основании обнаружения белка нуклеокапсида и spike-белка SARS-CoV-2 в кардиомиоцитах, клетках воспалительного инфильтрата и эндотелии сосудов.

2. Особенностью SARS-CoV-2-ассоциированного миокардита является его сочетание с коронариитом и ДВС-синдромом.

3. Выявлено, что при коронавирусном поражении сердца могут развиться миокардит, эндо-, перикардит и панкардит.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Е.А. Коган, А.Д. Куклева

Сбор и обработка материала — Е.А. Коган, Ю.С. Березовский, О.В. Благова, Д.Х. Айнетдинова, А.Д. Куклева, Г.А. Демяшкин

ИГХ-исследование — Н.В. Жарков, А.Д. Куклева

Статистическая обработка — Е.А. Коган, А.Д. Куклева

Написание текста — О.В. Благова, А.Д. Куклева, Г.А. Демяшкин

Редактирование — Е.А. Коган

Работа выполнена при поддержке гранта РФФИ №20-315-90021/20.

Литература / References:

  1. Kochi AN, Tagliari AP, Forleo GB, Fassini GM, Tondo C. Cardiac and arrhythmic complications in patients with COVID-19. J Cardiovasc Electrophysiol. 2020;31(5):1003-1008. https://doi.org/10.1111/jce.14479
  2. Shi S, Qin M, Shen B, Cai Y, Liu T, Yang F, Gong W, Liu X, Liang J, Zhao Q, Huang H, Yang B, Huang C. Association of cardiac injury with mortalityin hospitalized patients with COVID-19 in Wuhan, China. JAMA Cardiol. 2020;5(7):802-810. Accessed May 20, 2020. https://doi.org/10.1001/jamacardio.2020.0950
  3. Guzik TJ, Mohiddin SA, Dimarco A, Patel V, Savvatis K, Marelli-Berg FM, Madhur MS, Tomaszewski M, Maffia P, D’Acquisto F, Nicklin SA, Marian AJ, Nosalski R, Murray EC, Guzik B, Berry C, Touyz RM, Kreutz R, Wang DW, Bhella D, Sagliocco O, Crea F, Thomson EC, McInnes IB. COVID-19 and the cardiovascular system: implications for risk assessment, diagnosis, and treatment options. Cardiovasc Res. 2020;116(10):1666-1687. https://doi.org/10.1093/cvr/cvaa106
  4. Xiong TY, Redwood S, Prendergast B, Chen M. Coronaviruses and the cardiovascular system: acute and long-term implications. Eur Heart J. 2020;41(19):1798-1800. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehaa231
  5. Xu Z, Shi L, Wang Y, Zhang J, Huang L, Zhang C, Liu S, Zhao P, Liu H, Zhu L, Tai Y, Bai C, Gao T, Song J, Xia P, Dong J, Zhao J, Wang FS. Pathological findings of COVID-19 associated with acute respiratory distress syndrome. Lancet Respir Med. 2020;8(4):420-422.  https://doi.org/10.1016/S2213-2600(20)30076-X
  6. Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, Fan G, Xu J, Gu X, Cheng Z, Yu T, Xia J, Wei Y, Wu W, Xie X, Yin W, Li H, Liu M, Xiao Y, Gao H, Guo L, Xie J, Wang G, Jiang R, Gao Z, Jin Q, Wang J, Cao B. Clinical features of patients infected with2019 novel coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020; 395(10223):497-506.  https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)30183-5
  7. Mehra MR, Ruschitzka F. COVID-19 illness and heart failure: a missing link? JACC Heart Fail. 2020;8(6):512-514.  https://doi.org/10.1016/j.jchf.2020.03.004
  8. Yang J, Zheng Y, Gou X, Pu K, Chen Z, Guo Q, Ji R, Wang H, Wang Y, Zhou Y. Prevalence of comorbidities in the novel Wuhan coronavirus (COVID-19) infection: a systematic review and meta-analysis. Int J Infect Dis. 2020;94:91-95.  https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.03.017
  9. Ruan Q, Yang K, Wang W, Jiang L, Song J. Clinical predictors ofmortality due to COVID-19 based on an analysis of data of 150 patientsfrom Wuhan, China. Intensive Care Med. 2020;46(5):846-848.  https://doi.org/10.1007/s00134-020-05991-x
  10. Bansal M. Cardiovascular disease and COVID-19. Diabetes Metab Syndr. 2020;14(3):247-250.  https://doi.org/10.1016/j.dsx.2020.03.013
  11. Hanff TC, Harhay MO, Brown TS, Cohen JB, Mohareb AM. Is there an association between COVID-19 mortality and the renin-angiotensin system? A call for epidemiologic investigations. Clin Infect Dis. 2020;71(15):870-874.  https://doi.org/10.1093/cid/ciaa329
  12. Bikdeli B, Madhavan MV, Jimenez D, Chuich T, Dreyfus I, Driggin E, Nigoghossian CD, Ageno W, Madjid M, Guo Y, Tang LV, Hu Y, Giri J, Cushman M, Quéré I, Dimakakos EP, Gibson CM, Lippi G, Favaloro EJ, Fareed J, Caprini JA, Tafur AJ, Burton JR, Francese DP, Wang EY, Falanga A, McLintock C, Hunt BJ, et al. COVID-19 and thrombotic or thromboembolic disease: implications for prevention, antithrombotic therapy, and follow-up. J Am Coll Cardiol. 2020;75(23):2950-2973. https://doi.org/10.1016/j.jacc.2020.04.031
  13. Коган Е.А., Березовский Ю.С., Куклева А.Д., Курилина Э.В., Семенова Л.А., Благова О.В., Жарков Н.В. Лимфоцитарный миокардит у пациентов с COVID-19 (4 аутопсийных наблюдения). Архив патологии. 2020;82(5):57-62.  https://doi.org/10.17116/patol20208205157
  14. Коган Е.А., Березовский Ю.С., Проценко Д.Д., Багдасарян Т.Р., Грецов Е.М., Демура С.А., Демяшкин Г.А., Калинин Д.В., Куклева А.Д., Курилина Э.В., Некрасова Т.П., Парамонова Н.Б., Пономарев А.Б., Раденска-Лоповок С.Г., Семенова Л.А., Тертычный А.С. Патологическая анатомия инфекции, вызванной SARS-CoV-2. Судебная медицина. 2020; 6(2):8-30.  https://doi.org/10.19048/2411-8729-2020-6-2-8-30
  15. Болевич С.Б., Болевич С.С. Комплексный механизм развития COVID-19. Сеченовский вестник. 2020;11(2):50-61.  https://doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.2.50-61
  16. Hu H, Ma F, Wei X, Fang Y. Coronavirus fulminant myocarditis saved with glucocorticoid and human immunoglobulin. Eur Heart J. 2021;42(2):206.  https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehaa190
  17. Inciardi RM, Lupi L, Zaccone G, Italia L, Raffo M, Tomasoni D, Cani DS, Cerini M, Farina D, Gavazzi E. Cardiac involvement in a patient with coronavirus disease 2019 (COVID-19). JAMA Cardiol. 2020;5(7):819-824.  https://doi.org/10.1001/jamacardio.2020.1096
  18. Zeng JH, Liu XY, Yuan J, Wang F, Wu W, Li J, Wang L, Gao H, Wang Y, Dong C, et al. First case of COVID-19 complicated with fulminant myocarditis complication: case report and insights. Infection. 2020;48(5):773-777.  https://doi.org/10.1007/s15010-020-01424-5
  19. Sala S, Peretto G, Gramegna M, Palmisano A, Villatore A, Vignale D, De Cobelli F, Tresoldi M, Cappelletti AM, Basso C, Godino C, Esposito A. Acute myocarditis presenting as a reverse Tako-Tsubo syndrome in a patient with SARS-CoV-2 respiratory infection. Eur Heart J. 2020;41(19):1861-1862. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehaa286
  20. Коган Е.А., Березовский Ю.С., Благова О.В., Куклева А.Д., Богачева Г.А., Курилина Э.В., Калинин Д.В., Багдасарян Т.Р., Семенова Л.А., Грецов Е.М., Эргешов А.Э., Фомин В.В. Миокардит у пациентов с COVID-19, подтвержденный результатами иммуногистохимического исследования. Кардиология. 2020;60(7):4-10.  https://doi.org/10.18087/cardio.2020.7.n1209
  21. Escher F, Pietsch H, Aleshcheva G, Bock T, Baumeier C, Elsaesser A, Wenzel P, Hamm C, Westenfeld R, Schultheiss M, Gross U, Morawietz L, Schultheiss HP. Detection of viral SARS-CoV-2 genomes and histopathological changes in endomyocardial biopsies. ESC Heart Fail. 2020;7(5):2440-2447. https://doi.org/10.1002/ehf2.12805
  22. Wenzel P, Kopp S, Göbel S, Jansen T, Geyer M, Hahn F, Kreitner KF, Escher F, Schultheiss HP, Münzel T. Evidence of SARS-CoV-2 mRNA in endomyocardial biopsies of patients with clinically suspected myocarditis tested negative for COVID-19 in nasopharyngeal swab. Cardiovasc Res. 2020;116(10):1661-1663. https://doi.org/10.1093/cvr/cvaa160
  23. Hudowenz O, Klemm P, Lange U, Rolf A, Schultheiss HP, Hamm C, Müller-Ladner U, Wegner F. Case report of severe PCR-confirmed COVID-19 myocarditis in a European patient manifesting in mid January 2020. Eur Heart J Case Rep. 2020; 4(6):1-6.  https://doi.org/10.1093/ehjcr/ytaa286
  24. Благова О.В., Вариончик Н.В., Зайденов В.А., Савина П.О., Саркисова Н.Д. Оценка уровня антикардиальных антител у больных с тяжелым и среднетяжелым течением COVID-19 (корреляции с клинической картиной и прогнозом). Российский кардиологический журнал. 2020;25(11):4054. https://doi.org/10.15829/29/1560-4071-2020-4054
  25. Shirato K, Nao N, Katano H, Takayama I, Saito S, Kato F, Katoh H, Sakata M, Nakatsu Y, Mori Y, Kageyama T, Matsuyama S, Takeda M. Development of genetic diagnostic methods for detection for novel coronavirus 2019(nCoV-2019) in Japan. Jpn J Infect Dis. 2020;73(4):304-307.  https://doi.org/10.7883/yoken.JJID.2020.061
  26. Reddy J, Massilamany C, Buskiewicz I, Huber SA. Autoimmunity inviral myocarditis. Curr Opin Rheumatol. 2013;25(4):502-508.  https://doi.org/10.1097/BOR.0b013e3283620036
  27. Hoffmann M, Kleine-Weber H, Schroeder S. SARS-CoV-2 cell entry depends on ACE2 and TMPRSS2 and is blocked by a clinically proven protease inhibitor. Cell. 2020;181(2):271-80.e8.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.02.052
  28. Tavazzi G, Pellegrini C, Maurelli M, Belliato M, Sciutti F, Bottazzi A, Sepe PA, Resasco T, Camporotondo R, Bruno R, et al. Myocardial localization of coronavirus in COVID-19 cardiogenic shock. Eur J Heart Fail. 2020;22(5):911-9115. https://doi.org/10.1002/ejhf.1828
  29. Chen G, Wu D, Guo W, Cao Y, Huang D, Wang H, Wang T, Zhang X, Chen H, Yu H, Zhang X, Zhang M, Wu S, Song J, Chen T, Han M, Li S, Luo X, Zhao J, Ning Q. Clinical and immunologic features insevere and moderate forms of coronavirus disease 2019. J Clin Invest. 2020;130(5):2620-2629. https://doi.org/10.1172/JCI137244
  30. Siripanthong B, Nazarian S, Muser D, Deo R, Santangeli P, Khanji MY, Cooper LT Jr, Chahal CAA. Recognizing COVID-19-related myocarditis: the possible pathophysiology and proposed guide-line for diagnosis and management. Heart Rhythm. 2020;17(9):1463-1471. Accessed May 19, 2020. https://doi.org/10.1016/j.hrthm.2020.05.001

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.