
Плейоморфизм цитокинового профиля в ткани полипов в зависимости от фенотипа полипозного риносинусита
Журнал: Вестник оториноларингологии. 2023;88(1):50-56.
DOI: 10.17116/otorino20228801150
Прочитано: 3227 раз
Резюме
Клинические фенотипы полипозного риносинусита (ПРС) характеризуются разными воспалительными паттернами экспрессии мРНК цитокинов и характером клинического течения в зависимости от наличия или отсутствия аллергического ринита (АР), аллергической бронхиальной астмы (аБА) и неаллергической бронхиальной астмы (нБА).
ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ
Сравнить особенности воспалительного ответа у пациентов с разными фенотипами ПРС по уровням секреции ключевых цитокинов в ткани носовых полипов.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Больные ПРС (n=292) разделены на четыре фенотипические группы: группа 1 — пациенты с ПРС без сопутствующей респираторной аллергии (РА) и без БА; группа 2а — пациенты с ПРС+АР с аБА; группа 2б — пациенты с ПРС+АР без аБА; группа 3 — пациенты с ПРС+нБА. Группа контроля (n=36) — больные с гипертрофическим ринитом без атопии и БА. Методом мультиплексного анализа выполнили исследование уровней IL-1β, IL-4, IL-5, IL-6, IL-13, IFN-γ, TGF-β1, TGF-β2, TGF-β3 в ткани носовых полипов.
РЕЗУЛЬТАТЫ
Оценка уровней цитокинов в ткани носовых полипов при различных фенотипах ПРС показала выраженную плейотропность секреции различных цитокинов в зависимости от той или иной коморбидной патологии при данном заболевании. У пациентов группы контроля выявлены минимальные уровни всех определяемых цитокинов по сравнению с пациентами всех групп с ПРС. Фенотип ПРС без сопутствующей РА и БА отличается повышенным уровнем локальных белков IL-5 и IL-13 и низким содержанием всех изоформ ростового фактора TGF-β. Сочетание ПРС с аллергическим ринитом выявило высокий уровень провоспалительных цитокинов IL-6 и IL-1β, а также TGF-β1 и TGF-β2. При комбинации ПРС с аБА отмечено минимальное содержание провоспалительных цитокинов IL-1β, IFN-γ; при сочетании ПРС с нБА выявлено максимальное содержание TGF-β1, TGF-β2 и TGF-β3 в ткани носовых полипов.
ВЫВОДЫ
Каждый фенотип полипозного риносинусита характеризуется определенным механизмом локального воспаления, что подтверждает необходимость диагностики бронхиальной астмы и респираторной аллергии у этих пациентов. Определение локального цитокинового профиля при фенотипах полипозного риносинусита в последующем может способствовать подбору таргетной антицитокиновой терапии для пациентов, у которых это заболевание плохо поддается базисной кортикостероидной терапии.
Ключевые слова
- полипозный риносинусит (ПРС)
- фенотипы
- мультиплексный анализ
- цитокины
- бронхиальная астма
- аллергический ринит
- интерлейкин
- трансформирующий фактор роста TGF-β1
- TGF-β2 и TGF-β3
Дата поступления: 31.08.2021
Дата принятия в печать: 29.03.2022
Дата публикации: 03.03.2023
Введение
Полипозный риносинусит (ПРС) характеризуется интенсивным воспалительным процессом, связанным с локальной продукцией целого ряда медиаторов и цитокинов и рядом структурных изменений. Под воздействием триггерных факторов активированные эпителиальные клетки являются первоначальным источником синтеза определенных цитокинов, индуцирующих хемотаксис в слизистую оболочку носа и околоносовых пазух (ОНП) воспалительных клеток, чаще всего эозинофилов, с последующей пролиферацией и активацией фибробластов и в конечном итоге с образованием полипов. Кроме эозинофилов в ткани полипов определяются нейтрофилы, плазматические, тучные клетки, макрофаги и лимфоциты, которые также играют свою роль в патологическом процессе. Одновременно происходит пролиферация эпителия и утолщение базальной мембраны с накоплением внеклеточного матрикса [1, 2].
Основным подходом в персонализированной медицине является разделение пациентов на подгруппы на основе их специфических фенотипов или эндотипов и подбор лечения в каждой из них. Первоначально это было применено при оценке бронхиальной астмы (БА), затем изучено при других патологических процессах, в том числе при ПРС. Считается, что дифференциация позволит более эффективно и результативно лечить эти воспалительные состояния, а также позволит улучшить анализ результатов лечения.
По эндотипам ПРС можно классифицировать на основе поляризации типа иммунного ответа. Иммунный ответ 1-го типа поддерживается Th1-поляризацией, связанной с нейтрофильной инфильтрацией и избыточной продукцией IFN-γ; этот эндотип наиболее распространен в Азии. Воспалительный ответ 2-го типа определяется интерлейкинами (IL)-4, IL-5 и IL-13 и преобладанием эозинофилов, тучных клеток, базофилов и Т-хелперных 2 (Th2) клеток в ткани носовых полипов и часто сопровождается сопутствующей патологией в виде бронхиальной астмы (БА) и респираторной аллергией (РА). Иммунный ответ 3-го типа характеризуется повышенным высвобождением цитокинов семейства IL-17, он связан с частыми обострениями. Следует отметить, что ПРС является плейоморфным заболеванием и при нем часто отмечается смешанный локальный иммунный ответ — 1-го и 2-го типов с периодическим наложением воспаления 3-го типа. Этот плейоморфизм в основном зависит от пластичности врожденных лимфоидных клеток 2-го типа, которые усиливают воспаление 2-го типа независимо от сопутствующей РА [3].
Поэтому, с одной стороны, идентификация биомаркеров может быть полезна для точного выявления конкретных биологических механизмов, лежащих в основе патологического процесса, но, с другой стороны, эти исследования являются экспериментальными и не могут применяться в повседневной практике ввиду технической сложности, отсутствия стандартизированных методик и необходимости финансовых затрат [2]. Гетерогенность воспалительного процесса привела к неудачным попыткам разработать универсальные схемы ведения этого контингента больных, а ранжирование пациентов с единым механизмом развития полипозного процесса в отдельные группы оказалось невозможным из-за отсутствия утвержденных показателей конкретных биомаркеров, исследование которых было бы возможным в медицинских учреждениях любого уровня. Поэтому выделение клинических фенотипов полипозного риносинусита по наличию или отсутствию определенной коморбидной патологии является наиболее приемлемым в условиях реальной медицинской практики. Ранее при исследовании уровня экспрессии генов в ткани носовых полипов методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР РВ) нами выявлены разные воспалительные паттерны при ПРС в зависимости от наличия или отсутствия аллергического ринита (АР), аллергической (аБА) и неаллергической бронхиальной астмы (нБА) [4]. Одновременно статистически значимые различия установлены при изучении клинического течения, анализе данных лабораторных и патоморфологических исследований, что доказывает различия в характере течения патологического процесса при фенотипах ПРС [5]. Определение экспрессии генов цитокинов позволяет дать оценку потенциальным возможностям клеток к синтезу определенных биомолекул. Но определение реального содержания непосредственно самих рассматриваемых цитокинов при предложенных нами фенотипах ПРС позволит более детально изучить механизм локального воспалительного процесса у этих пациентов.
Цель исследования — сравнить особенности воспалительного ответа у пациентов с разными фенотипами ПРС по уровню секреции ключевых цитокинов в ткани носовых полипов.
Материал и методы
В ГБУЗ МО «МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского» за период 2016—2019 гг. проведено обследование 292 больных ПРС (средний возраст 52,12±13,04 года), из них 126 мужчин и 166 женщин. Диагноз двустороннего ПРС подтвержден данными компьютерной томографии ОНП, эндоскопическим исследованием полости носа и результатами патоморфологического исследования.
Критерии невключения в исследование: односторонний процесс, наличие генетических синдромов (аллергический эозинофильный или гранулематозный ангиит, муковисцидоз, синдром Черджа—Стросс), онкологической и аутоиммунной патологии. В ФГБУ «ФНКЦ ФМБА России» всем пациентам проведено аллергологическое обследование, которое включало сбор анамнеза, скарификационные кожные пробы с атопическими аллергенами, и выполнена диагностика БА методом спирометрии (модель спирографа MS-IOS Digital, Jaeger, Viasys Healthcare GmbH, Германия) с проведением теста с бронхолитиком для определения обратимости бронхиальной обструкции.
По результатам обследования больные разделены на четыре фенотипические группы: группа 1 — ПРС без сопутствующей БА и сенсибилизации к атопическим аллергенам, 100 человек, средний возраст 51,58±1,49 года; группа 2а — ПРС в сочетании с аБА и АР, 49 человек, средний возраст 50,39±2,42 года; группа 2б — ПРС в сочетании с АР без аБА, 46 человек, средний возраст 51,37±3,25 года; группа 3 — ПРС в сочетании с нБА, 97 человек, средний возраст 54,71±2,49 года. В группу контроля вошли больные с гипертрофическим ринитом на фоне длительного приема сосудосуживающих препаратов при отсутствии непереносимости нестероидных противовоспалительных препаратов, РА, БА и другой хронической оториноларингологической патологии в анамнезе — 36 человек (19 женщин и 17 мужчин, средний возраст 43±11,7 года). Хирургическое лечение проведено пациентам в состоянии ремиссии — в объеме эндовидеоскопической полипотомии носа у пациентов с ПРС и резекции задних концов нижних носовых раковин у пациентов с гипертрофическим ринитом. Резецированную ткань очищали от крови, гомогенизировали, центрифугировали и собирали супернатант. Последний помещали в пластиковую микропробирку и замораживали при температуре –60°C. Перед проведением исследования в иммунологической лаборатории ИИФ УрО РАН производили единовременное быстрое размораживание всего материала, после чего пробирки центрифугировали 10 мин со скоростью 1500 об/мин. В надосадочной жидкости методом мультиплексного анализа на иммуноанализаторе MAGPIX-100 (Luminex Corporation, США) с использованием системы мультиплексного анализа Bio-Plex (Bio-Rad, США) выполнили исследование уровня IL-1β, IL-4, IL-5, IL-6, IL-13, IFN-γ, TGF-β1, TGF-β2, TGF-β3. Одновременно пирогаллоловым методом определяли содержание общего белка с последующим перерасчетом содержания цитокинов на концентрацию белка 1 мг/мл для стандартизации метода [6].
Статистические расчеты выполнены при помощи программы IBM SPSS Statistics 23.0 (SPSS Inc., США). При определении средних значений использовали методы непараметрической статистики, показатели указаны в виде медианы и межквартильного интервала (Me [Q1; Q3]). При сравнении двух групп между собой использовали критерий Манна—Уитни, при множественном сравнении — критерий Краскела—Уоллиса. Различия при p<0,05 рассматривались как статистически значимые.
Результаты
При исследовании уровней содержания изучаемых нами цитокинов в тканях носовых полипов при разных фенотипах ПРС выявлены статистически значимые различия. У пациентов группы контроля выявлены минимальные уровни всех определяемых цитокинов, которые статистически значимо ниже по сравнению с показателями пациентов с ПРС всех групп. Повышение уровней провоспалительных цитокинов IL-1β, IL-6 и IFN-γ в ткани носовых полипов свидетельствует о локальном персистирующем хроническом воспалительном процессе даже у пациентов с ПРС вне периода обострения. Уровни IL-1β (3,33 [1,2; 5,71] пг/мг) и IFN-γ (1,6 [0,93; 1,9] пг/мг) статистически значимо ниже у пациентов группы 2а, а уровень IL-6 статистически значимо выше у пациентов группы 2б (2,66 [1,18; 3,16] пг/мг) (таблица). Остальные группы по этим показателям не различаются между собой. Наибольшее содержание Т2/Th2-белков — цитокинов IL-5 (22 [1,8; 3,39] пг/мг) и IL-13 (8,69 [1,86; 17,0] пг/мг) в ткани носовых полипов выявлено у пациентов группы 1. У пациентов группы 3 уровень IL-5 (2,15 [0,13; 3,84] пг/мг) статистически значимо выше по сравнению с пациентами групп 2а и 2б. По содержанию IL-13 пациенты групп 2б и 3 статистически значимо не различаются.
Таблица. Уровень цитокинов в ткани носовых полипов при фенотипах полипозного риносинусита
Цитокин, пг/мг | Группы пациентов с ПРС | ||||
группа 1, ПРС (n=100) | группа 2 | группа 3, ПРС+нБА (n=97) | группа контроля, гипертрофический ринит без АР и БА (n=36) | ||
группа 2а, ПРС+АР с аБА (n=49) | группа 2б, ПРС+АР без аБА (n=46) | ||||
IL-1β | 5,79 [2,94; 6,98]* | 3,33 [1,2; 5,71]# * | 5,64 [2,61; 6,58]& * | 4,45 [1,04; 10,49]& * | 0,05 [0,02; 0,11] |
IL-6 | 1,6 [1,4; 2,09]* | 1,6 [1,19; 2,14]* | 2,66 [1,18; 3,16]* # & £ | 1,45 [0,41; 3,43]* | 0,04 [0,01; 0,13] |
IFN-γ | 2,58 [1,67; 2,78]* | 1,6 [0,93; 1,9]* # | 2,61 [1,76; 3,33]* & | 2,27 [1,18; 3,79]* & | 0,2 [0,14; 0,36] |
IL-4 | 2,56 [1,48; 2,78]* | 1,7 [1,03; 2,14]* # | 2,5 [1,53; 2,61]* & | 1,96 [0,7; 3,75]* | 0,1 [0,06; 0,14] |
IL-5 | 2,22 [1,8; 3,39]* | 1,62 [0,77; 2,0]* # | 1,74 [1,53; 1,9]* # £ | 2,15 [0,13; 3,84]* # & | 0,15 [0,08; 0,18] |
IL-13 | 8,69 [1,86; 17,0]* | 4,17 [0,95; 5,81]* # | 2,63 [1,3; 2,69]* # | 2,83 [1,24; 21,03]* # | 0,12 [0,09; 0,13] |
TGF-β1 | 3,43 [2,11; 4,29]* | 3,54 [2,6; 4,71]* # | 4,76 [3,33; 5,94]* # | 5,68 [3,75; 8,79]* | 0 [0; 0,001] |
TGF-β2 | 9,02 [6,2; 11,84]* | 14 [8,2; 17,5]* # | 17 [11,02; 25,69]* # | 24,12 [14,11; 40,12]* & # | 0 [0; 0,001] |
TGF-β3 | 3,61 [2,11; 4,29]* | 4,24 [1,52; 4,29]* | 7,81 [3,9; 10,0]* # & £ | 7,97 [4,68; 17,8]* # & | 0 [0; 0,001] |
Примечание. * — статистически значимая разница между референсными показателями и показателями у пациентов групп 1 и 3; # — статистически значимая разница между показателями у пациентов группы 1 и пациентов групп 2 и 3; & — статистически значимая разница между показателями у пациентов группы 2а и пациентов групп 2б и 3; £ — статистически значимая разница между показателями у пациентов группы 2б и пациентов группы 3.
Напротив, наименьшее содержание трансформирующего фактора роста TGF-β1 и TGF-β2 выявлено у пациентов группы 1 (3,43 [2,11; 4,29] пг/мг и 9,02 [6,2; 11,84] пг/мг соответственно). При сравнении фенотипических групп ПРС с сопутствующей патологией статистически значимая разница относительно этих двух изоформ трансформирующего фактора роста найдена между группами пациентов с БА, причем с меньшими значениями в группе 2а: 3,54 [2,6; 4,71] пг/мг TGF-β1 и 14 [8,2; 17,5] пг/мг TGF-β2. Статистически значимых различий между группами 2б и 3 относительно TGF-β1 (4,76 [3,33; 5,94] пг/мг и 5,68 [3,75; 8,79] пг/мг соответственно) и TGF-β2 (17 [11,02; 25,69] пг/мг и 24,12 [14,11; 40,12] пг/мг соответственно) не выявлено. По максимальному уровню TGF-β3 статистически значимо от групп 1 и 2а отличается группа 3 (7,97 [4,68; 17,8] пг/мг); у пациентов группы 2б также выявлено статистически значимо более высокое содержание TGF-β3 (7,81 [3,9; 10,0] пг/мг) по сравнению с пациентами групп 1 и 2а.
Обсуждение
ПРС — это многогранное заболевание, часто характеризующееся множеством фенотипов и эндотипов, которые могут смешиваться между собой. Вектор течения воспалительного процесса при ПРС зависит не от единственной конкретной клеточной единицы, а от одновременного взаимодействия нескольких клеточных субпопуляций, синтезирующих определенный, характерный для каждой клетки набор цитокинов. Поскольку основой патологического процесса является именно локальное воспаление слизистой оболочки ОНП, исследование уровня цитокинов крови в отличие от цитокинов непосредственно в ткани полипов не имеет большой диагностической ценности. IL-1β, IL-6 и IFN-γ являются провоспалительными цитокинами, которые синтезируются в фибробластах, эндотелиальных и эпителиальных клетках. Они стимулируют выработку Th2-лимфоцитами и эозинофилами хемокинов RANTES (regulated upon activation normal T-cell expressed and secreted), эотаксина-1 (CCL11), эотаксина-2 (CCL24), эотаксина-3 (CCL26), что вызывает хемотаксис в очаг воспаления тучных клеток, гранулоцитов, макрофагов, разных популяций лимфоцитов, повышая проницаемость сосудов, гиперсекрецию слизи, отек ткани, пролабирование слизистой оболочки и рост полипов [7]. IL-1β индуцирует выработку тимусного стромального лимфопоэтина (TSLP) в эпителиоцитах, который через миелоидные дендритные клетки вызывает дифференцировку Th0 в Th2 [4]; IL-6 в сочетании с трансформирующим фактором роста β стимулирует поляризацию Th17 или Tc17 [8], играет решающую роль для рекрутирования, выживания и сохранения эффекторных Т-клеток, предотвращения их апоптоза в ткани полипов [9—11]. Синтез в фибробластах, эндотелиальных и эпителиальных клетках IL-6 и IL-1 повышен при повторных операциях в связи с рецидивами ПРС [12].
IFN-γ, IL-4 и IL-13 нарушают плотные соединения эпителиальных клеток за счет снижения экспрессии белков и ослабляют трансэпителиальную устойчивость [13]. Увеличение уровня IL-6 в назальных смывах ранее описано при астматической триаде [14]. IFN-γ играет протективную роль при ПРС, снижая риск развития БА [15]; IL-6 также повышен при ПРС и важен для рекрутирования, выживания и сохранения эффекторных Т-клеток, предотвращения их апоптоза в полипозной ткани [9—11]. Цитокины иммунного ответа 2-го типа IL-4, IL-5 и IL-13 ответственны за хемотаксис воспалительных клеток и активацию эозинофильного воспаления, гиперплазию бокаловидных клеток и переключение плазмоцитов на продукцию IgE [16], способствуют дифференцировке Th2-лимфоцитов из наивных Th0-лимфоцитов [17]. Дополнительно IL-4 способствует альтернативной активации макрофагов, а IL-5 индуцирует эозинофилию посредством рекрутирования, активации и выживания эозинофилов [18]. Цитокины семейства TGF-β представляют собой провоспалительные модуляторы активности фибробластов, которые регулируют активацию, пролиферацию и дифференцировку клеток и приводят к активному образованию соединительной ткани при ПРС [19, 20].
Отмечено, что уровни всех исследуемых нами цитокинов значительно выше, чем у пациентов группы контроля, что подтверждает наличие персистирующего воспалительного процесса при ПРС, хотя все пациенты прооперированы в состоянии ремиссии. ПРС без сопутствующей РА и БА (группа 1) характеризовался самым высоким среди всех фенотипов содержанием IL-5 и IL-13 и низким содержанием всех изоформ TGF-β при единственном отсутствии значимого различия — концентрации TGF-β3 с таковой в группе 2а. В группе 1 уровни провоспалительных цитокинов IL-1β и IFN-γ статистически значимо выше, чем в группе 2а, а уровень IL-6 меньше, чем в группе 2б. В группе 2а провоспалительные цитокины IL-1β, IFN-γ выявлены в минимальном количестве по сравнению со всеми другими группами, IL-4 — на уровне группы 3, а IL-5 — на уровне группы 2б, но меньше, чем в группах 1 и 3. Уровни всех изоформ фактора роста TGF-β при аБА также меньше, чем при нБА.
Наличие АР отличает группу с самым высоким содержанием IL-6 — группу 2б, уровень IL-1β в этой группе достоверно выше, чем в группах с сопутствующей БА, а содержание Th2-цитокинов — IL-4, IL-5, IL-13 находится в пределах средних показателей. Уровни TGF-β также отличаются в группе 2б высокими цифрами: TGF-β1 и TGF-β2 — на уровне группы 3 и выше, чем в группах 1 и 2а, а TGF-β3 — на уровне группы 2а и ниже, чем в группе 3. При комбинации ПРС с нБА (группа 3) наблюдается максимальное содержание TGF-β3, а по уровням TGF-β1 и TGF-β2 в группе 3 отмечаются также высокие значения и отсутствие разницы с группой 2б.
Полученные различия уровней цитокинов в носовых полипах в разных группах еще раз [4, 21] доказывают разное течение и плейотропность воспалительного процесса при ПРС в зависимости от наличия или отсутствия сопутствующей БА или РА. Персонализированная медицина определяется как способность идентифицировать субпопуляции, которые различаются по своей восприимчивости, патогенезу или прогнозу течения того или иного заболевания либо по их реакции на конкретное лечение [22]. При этом проведение эндоскопического осмотра полости носа, анализ данных КТ, данных патогистологического анализа и установление врачом-аллергологом наличия или отсутствия БА или РА для определения фенотипа ПРС с целью выработки дальнейшей терапевтической стратегии — абсолютно реально выполнимая задача в условиях медицинских учреждений практически любого уровня.
Разработка терапии моноклональными антителами ко многим ключевым регуляторным молекулам поможет решить проблемы ПРС с постоянными рецидивами, но при этом первой линией препаратов остаются универсальные противовоспалительные препараты локального действия — интраназальные кортикостероиды; при необходимости их можно комбинировать с другими лекарственными веществами, в том числе с биологическими препаратами [23], внедрение которых в практику обеспечит подбор персонализированной терапии у этих пациентов [24]. Разделение пациентов на фенотипы можно рассматривать как полезный инструмент в ведении амбулаторных пациентов с ПРС, поскольку такое разделение позволяет оптимально определить наиболее подходящую терапию.
Выводы
Оценка уровней цитокинов в носовых полипах при различных фенотипах полипозного риносинусита показала выраженную плейотропность секреции различных цитокинов в зависимости от той или иной коморбидной патологии при данном заболевании.
Фенотип полипозного риносинусита без респираторной аллергии и бронхиальной астмы отличает повышенный уровень локальных белков IL-5 и IL-13 и низкое содержание всех изоформ фактора роста TGF-β. При сочетании полипозного риносинусита с аллергическим ринитом выявлен высокий уровень провоспалительных цитокинов IL-6 и IL-1β, а также TGF-β1 и TGF-β2. При комбинации полипозного риносинусита с аллергической бронхиальной астмой отмечается минимальное содержание провоспалительных цитокинов IL-1β, IFN-γ, при сочетании полипозного риносинусита с неаллергической бронхиальной астмой наблюдается максимальное содержание TGF-β1, TGF-β2 и TGF-β3 в ткани носовых полипов.
Каждый фенотип полипозного риносинусита характеризуется определенным механизмом локального воспаления, что подтверждает необходимость активного поиска бронхиальной астмы и респираторной аллергии у этих пациентов.
Определение локального цитокинового профиля при фенотипах полипозного риносинусита в последующем может способствовать подбору таргетной антицитокиновой терапии для пациентов, у которых это заболевание плохо поддается базисной кортикостероидной терапии.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
- Lou H, Meng Y, Piao Y, Zhang N, Bachert C, Wang C, Zhang L. Cellular phenotyping of chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Rhinology. 2016;54(2):150-159. https://doi.org/10.4193/Rhino15.271
- Passali D, Bellussi LM, Damiani V, Tosca MA, Motta G, Ciprandi G. Chronic rhinosinusitis with nasal polyposis: The role of personalized and integrated medicine. Acta Biomedica. 2020; 91(1 S):11-18. https://doi.org/10.23750/abm.v91i1-S.9243
- White AA, Doherty TA. Role of group 2 innate lymphocytes in aspirin-exacerbated respiratory disease pathogenesis. American Journal of Rhinology and Allergy. 2018;32(1):7-11. https://doi.org/10.2500/ajra.2018.32.4498
- Савлевич Е.Л., Курбачева О.М., Егоров В.И., Дынева М.Е., Шиловский И.П., Хаитов М.Р. Уровень экспрессии генов цитокинов при разных фенотипах полипозного риносинусита. Вестник оториноларингологии. 2019;84(6):42-47. https://doi.org/10.17116/otorino20198406142
- Савлевич Е.Л., Дынева М.Е., Гаганов Л.Е., Егоров В.И., Герасимов А.Н., Курбачева О.М. Лечебно-диагностический алгоритм при разных фенотипах полипозного риносинусита. Российский аллергологический журнал. 2019;16(2):50-60. https://doi.org/10.36691/RJA1198
- Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: РИО УрО РАН; 2018.
- Ozturan A, Eyigor H, Eyigor M, Osma U, Yilmaz MD, Selcuk OT, Renda L, Gultekin M. The role of IL-25 and IL-33 in chronic rhinosinusitis with or without nasal polyps. European Archives of Oto-Rhino-Laryngology. 2017;274(1):283-288. https://doi.org/10.1007/s00405-016-4260-6
- Kimura A, Kishimoto T. IL-6: regulator of Treg/Th17 balance. European Journal of Immunology. 2010;40(7):1830-1835. https://doi.org/10.1002/eji.201040391
- Peters AT, Kato A, Zhang N, Conley DB, Suh L, Tancowny B, Carter D, Carr T, Radtke M, Hulse KE, Seshadri S, Chandra R, Grammer LC, Harris KE, Kern R, Schleimer RP. Evidence for altered activity of the IL-6 pathway in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2010;125(2):397-403. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2009.10.072
- Divekar RD, Samant S, Rank MA, Hagan J, Lal D, O’Brien EK, Kita H. Immunological profiling in chronic rhinosinusitis with nasal polyps reveals distinct VEGF and GM-CSF signatures during symptomatic exacerbations. Clinical and Experimental Allergy. 2015;45(4):767-778. https://doi.org/10.1111/cea.12463
- Ickrath P, Scherzad A, Kleinsasser N, Ginzkey C, Hagen R, Hackenberg S. Influence of nasal polyp tissue on the differentiation and activation of T lymphocytes in a co-culture system. Biomedical Reports. 2019;10(2):119-126. https://doi.org/10.3892/br.2019.1185
- Van Zele T, Holtappels G, Gevaert P, Bachert C. Differences in initial immunoprofiles between recurrent and nonrecurrent chronic rhinosinusitis with nasal polyps. American Journal of Rhinology and Allergy. 2014;28(3):192-198. https://doi.org/10.2500/ajra.2014.28.4033
- Soyka MB, Wawrzyniak P, Eiwegger T, Holzmann D Treis A, Wanke K, Kast JI, Akdis CA. Defective epithelial barrier in chronic rhinosinusitis: the regulation of tight junctions by IFN-γ and IL-4. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2012;130(5):1087-1096. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2012.05.052
- Лаптева А.М., Коленчукова О.А., Смирнова С.В. Особенности иммунного статуса и назального микробиоценоза при полипозном риносинусите и астматической триаде. Медицинская иммунология. 2016;18(6):563-568. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2016-6-563-568
- Bachert C, Zhang N, Holtappels G, De Lobel L, van Cauwenberge P, Liu S, Lin P, Bousquet J, Van Steen K. Presence of IL-5 protein and IgE antibodies to staphylococcal enterotoxins in nasal polyps is associated with comorbid asthma. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2010;126(5):962-968. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2010.07.007
- Holgate ST. Innate and adaptive immune responses in asthma. Nature Medicine. 2012;18(5):673-683. https://doi.org/10.1038/nm.2731
- Lavigne P, Lee SE. Immunomodulators in chronic rhinosinusitis. World Journal of Otorhinolaryngology — Head and Neck Surgery. 2018;4(3):186-192. https://doi.org/10.1016/j.wjorl.2018.09.002
- Kato A, Peters A, Suh L, Carter R, Harris KE, Chandra R, Conley D, Grammer LC, Kern R, Schleimer RP. Evidence of a role for B cell-activating factor of the TNF family in the pathogenesis of chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2008;121(6):1385-1392. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2008.03.002
- Little SC, Early SB, Woodard CR, Shonka DC Jr, Han JK, Borish L, Steinke JW. Dual action of TGF-beta1 on nasal-polyp derived fibroblasts. Laryngoscope. 2008;118(2):320-324. https://doi.org/0.1097/MLG.0b013e318159cc0b
- Yarmohammadi ME, Saderi H, Izadi P, Afshin MS, Hashemi M. The role of transforming growth factor beta 1 (TGFβ1) in nasal and paranasal sinuses polyposis. Iranian Journal of Pathology. 2010;5(2):72-76. https://ijp.iranpath.org/article_8828_3fb52d40157e1026bc7da566349c02b4.pdf
- Савлевич Е.Л., Курбачева О.М. Особенности течения полипозного риносинусита в сочетании с аллергическим ринитом. Медицинский совет. 2019;20:38-43. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2019-20-38-43
- Kaur R, Chupp G. Phenotypes and endotypes of adult asthma: Moving toward precision medicine. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2019;144(1):1-12. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2019.05.031
- Roth-Walter F, Adcock IM, Benito-Villalvilla C, Bianchini R, Bjermer L, Caramori G, Cari L, Chung KF, Diamant Z, Eguiluz-Gracia I, Knol EF, Kolios AGA, Levi-Schaffer F, Nocentini G, Palomares O, Puzzovio PG, Redegeld FA, van Esch BCAM, Stellato C. Comparing biologicals and small molecule drug therapies for chronic respiratory diseases: An EACCI Taskforce on the immunopharmacology position paper. Allergy. 2019;74(3):432-448. https://doi.org/10.1111/all.13642
- Савлевич Е.Л., Козлов В.С., Курбачева О.М. Современные тенденции диагностического поиска и терапии полипозного риносинусита. Российская ринология. 2018;26(2):41-47. https://doi.org/10.17116/rosrino201826241
Рекомендуем статьи по данной теме:
Биомаркеры кератоконуса в слезной жидкости.Вестник офтальмологии. 2026;142(4):99-104
Регистры бронхиальной астмы: роль в оптимизации медицинской помощи пациентам.Профилактическая медицина. 2026;29(6):118-124
Электронная аускультация легких в пульмонологии: от клинического навыка к цифровой диагностике.Респираторная медицина. 2026;2(2):47-55
Влияние различных стратегий контроля симптомов аллергического ринита на течение сопутствующей бронхиальной астмы у детей.Российская ринология. 2026;34(2):40-51
Оценка воспалительной реакции после имплантации различных типов факичных интраокулярных линз при высокой миопии.Вестник офтальмологии. 2026;142(3):38-44
Стресс как междисциплинарная проблема в клинике иммунозависимых заболеваний.Адаптивная медицинская иммунология и вопросы общественного здоровья. 2026;2(1):71-77
Оценка фармакоэкономической обоснованности применения фиксированных комбинаций, объединяющих интраназальные глюкокортикостероиды и интраназальные антигистаминные препараты.Адаптивная медицинская иммунология и вопросы общественного здоровья. 2026;2(1):20-24
Клинико-прогностическое значение мониторинга IL-6 и IL-2 у пациентов с тяжелой черепно-мозговой травмой.Вопросы нейрохирургии имени Н.Н. Бурденко. 2026;90(3):12-19
Влияние возраста и пола на значения доменов синоназального теста SNOT-22 у детей и подростков с бронхиальной астмой.Российская ринология. 2025;33(3):197-204
Изучение роли интерлейкина 1β в сыворотке крови у пациентов с акне.Клиническая дерматология и венерология. 2025;24(4):421-424


