ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Регуляция аденилатциклазной сигнальной системы пептидами инсулинового семейства, эпидермальным фактором роста, лептином и ее функциональные нарушения в лимфоцитах пациентов с сахарным диабетом 2-го типа

Регуляция аденилатциклазной сигнальной системы пептидами инсулинового семейства, эпидермальным фактором роста, лептином и ее функциональные нарушения в лимфоцитах пациентов с сахарным диабетом 2-го типа

Авторы:
Кузнецова Л.А.,
Плеснева С.А.,
Чистякова О.В.,
Шарова Т.С.,
Перцева М.Н.

Журнал: Проблемы эндокринологии. 2011;57(4):32-36.

DOI:

Прочитано: 1255 раз

Скачать PDF

Резюме

Впервые показано стимулирующее влияние пептидов инсулинового семейства - инсулина, инсулиноподобного фактора роста 1 и релаксина, а также эпидермального фактора роста (ЭФР) на активность аденилатциклазной сигнальной системы (АЦСС) в лимфоцитах контрольной группы испытуемых. Эффект гормонов усиливался в присутствии гуанилилимидодифосфата (ГИДФ). Впервые выявлено стимулирующее действие лептина на активность АЦ в лимфоцитах контрольной группы, которое блокировалось антителами к рецептору лептина. Базальная активность АЦ увеличивалась в лимфоцитах больных сахарным диабетом 2-го типа (СД2), а стимуляция активности фермента изученными гормонами как без ГИДФ, так и в его присутствии резко снижалась. Влияние лептина на АЦ при СД2 обнаруживалось только при концентрации 10–8 М, и антитела к рецептору лептина блокировали стимуляцию АЦ. Полученные результаты свидетельствуют о том, что выявленные в лимфоцитах у пациентов с СД2 нарушения АЦ-стимулирующего действия гормонов связаны с функциональными дефектами, локализованными в случае лептина на рецепторном уровне, а в случае пептидов инсулинового семейства и ЭФР, скорее всего, на уровне Gs-белка и его сопряжения с АЦ. Эти данные подтверждают концепцию авторов о том, что молекулярные дефекты в гормональной АЦСС являются одной из основных причин развития СД2.

Ключевые слова

  • аденилатциклазная сигнальная система
  • пептиды инсулинового семейства
  • эпидермальный фактор роста
  • лептин
  • лимфоциты
  • сахарный диабет 2-го типа
  • аденилатциклазная сигнальная система
  • пептиды инсулинового семейства
  • эпидермальный фактор роста
  • лептин
  • лимфоциты
  • сахарный диабет 2-го типа

Дата публикации: 29.04.2020

Инсулин, инсулиноподобный фактор роста 1 (ИФР-1) и релаксин — пептиды инсулинового семейства, имеющие структурно-функциональное сходство. Инсулин контролирует углеводный и липидный метаболизм; ИФР-1 оказывает преимущественно ростстимулирующий эффект, а также регулирует глюкозный гомеостаз и применяется при лечении сахарного диабета (СД) [1]. Релаксин, функционально близкий к инсулину, регулирует у позвоночных репродуктивную систему, и его уровень положительно коррелирует с чувствительностью организма к инсулину, особенно при СД 2-го типа (СД2) [2]. Эпидермальный фактор роста (ЭФР) стимулирует клеточную пролиферацию с участием аденилатциклазы (АЦ) и цАМФ-зависимого механизма [3]. Лептин, продуцируемый адипоцитами, обладает широким спектром действия, включая регуляцию энергетического баланса, метаболизма глюкозы и функции инсулина [4].

Регуляция пептидами инсулинового семейства аденилатциклазной сигнальной системы (АЦСС) при СД2, за исключением наших работ, не изучена, а влияние лептина на АЦСС практически не исследовалось ни в норме, ни при СД2 [5—7]. Установлено, что активирующий АЦСС эффект инсулина и ИФР-1 реализуется через следующую сигнальную цепь: рецептор-тирозинкиназа → ингибирующий ГТФ-связывающий белок (Gi, βγ-димер) → фосфатидилинозитол 3-киназа → протеинкиназа С ζ (дзета) → стимулирующий ГТФ-связывающий белок (Gs) → АЦ [5, 6, 8]. Согласно развиваемой нами концепции, АЦСС участвует в регуляции пептидами инсулиновой природы основных процессов в клетке (метаболизм, клеточный рост, апоптоз, расслабление гладких мышц) [9].

СД2 можно считать «семейной» формой болезни, связанной с ожирением и являющейся причиной целого ряда функциональных нарушений. Патогенез заболевания сложен и полностью не выяснен. Наша лаборатория в течение ряда лет занимается изучением молекулярных дефектов в АЦСС при СД2 у человека, а также на крысиных моделях [10, 11]. Согласно современной точке зрения, при СД2 функции почти всех отделов эндокринной системы нарушены [12]. Нарушения функций инсулиновой системы подтверждаются результатами исследований, которые выявили молекулярные дефекты регуляторных функций не только инсулина, но и родственных пептидов (ИФР-1, релаксин) на уровне АЦСС [10, 13]. Совокупность имеющихся к настоящему времени данных привели нас к выводу о полигормональном генезе сахарного диабета [11, 14].

Представления о патогенезе СД2 значительно расширяются благодаря исследованиям, проводимым на клеточном уровне. Объектом подобных исследований, как правило, служат клетки крови, в том числе лимфоциты. Лимфоциты играют важную роль при развитии целого ряда заболеваний, для которых характерны иммунорегуляторные взаимодействия и процессы иммуноаллергического воспаления. К таким заболеваниям можно отнести бронхиальную астму, СД2, инсулиновую и лептиновую резистентность, ожирение и др. Особый интерес к этим клеткам можно объяснить: 1) полноценностью метаболизма, что дает основания говорить о лимфоците как о своеобразном ферментном «зеркале» многих тканей; 2) присутствием в лимфоцитах АЦСС, чувствительной к целому ряду гормонов; 3) высокой жизнеспособностью лимфоцитов и наличием доступных методов получения достаточного количества этих клеток; 4) обнаружением нарушения функций ферментных систем лимфоцитов, что является одним из звеньев в развитии патогенеза СД2 [15, 16]. Цель работы состояла в исследовании функционального состояния механизмов передачи гормональных сигналов, реализуемых через АЦСС в лимфоцитах контрольной группы лиц и пациентов с СД2.

Материал и методы

В исследовании участвовали пациенты контрольной группы и больные со средне-тяжелой формой СД2. Диагноз устанавливали на основании клинических проявлений болезни и данных лабораторного исследования (табл. 1).

Лимфоциты получали методом центрифугирования в одноступенчатом градиенте плотности фиколл-урографин. После градиента обогащенную общую популяцию лимфоцитов отмывали центрифугированием в буфере для определения активности АЦ.

Активность АЦ определяли по методу [10] в реакционной смеси (конечный объем 50 мкл, мМ): 25 трис-HCl (pH 7,5), 5 MgCl2, 0,1 ATФ, 1 цAMФ, 20 креатинфосфата, 1 мкКи [α-32P]ATФ, 0,2 мкг/мл креатинфосфокиназы и 15—20 мкг мембранного белка, при 37 °C в течение 3 мин при действии гормонов и 10 мин при влиянии негормональных агентов. Активность АЦ оценивали по количеству образовавшегося цАМФ и выражали в пикомолях цАМФ/мг белка/мин. Каждый эксперимент выполнен 2 раза в 4 параллельных пробах.

Для определения функции отдельных компонентов АЦСС использовали комплекс функциональных тестов. При действии форсколина выявлялась функция каталитического компонента АЦ. Использование фторида натрия и гуанинового нуклеотида гуанилилимидодифосфата (ГИДФ) позволяло оценить участие ГТФ-связывающих G-белков. Влияние пептидов (10-8 М) на активность АЦ выявлялось при коротком сроке действия — 3 мин. О сопряжении между компонентами АЦСС судили по потенцированию (усилению) эффекта ГИДФ при действии исследуемых пептидов на АЦ.

Антитела к рецепторам лептина добавляли к пробам с мембранами лимфоцитов и преинкубировали в течение 10 мин при комнатной температуре при перемешивании, затем вносили гормон и определяли активность АЦ. Контролем служили пробы с 25 мМ трис-НС1, рН 7,4. Содержание белка определяли методом Лоури.

Все данные представлены в виде средней ± cтандартная ошибка средней (М±m). Различия в пределах контрольной группы при действии пептидов и между контрольной и диабетической группами были статистически обработаны с использованием программы ANOVA и считались достоверными при р<0,05.

В работе использованы реактивы: креатинфосфат, креатинфосфокиназа (3500 Ед/мг белка), ГИДФ, форсколин, трис-НСl, окись алюминия для колоночной хроматографии, АТФ, цАМФ, имидазол, кристаллический инсулин человека, ЭФР, ИФР-1 и лептин от фирмы «Sigma» (США). Кристаллический релаксин 2 человека был любезно предоставлен доктором J. Wide (Австралия). Антитела к рецепторам лептина (мышь) в разведении 1:1000 («Sigma — Aldrich», США). α-[32Р]АТФ (4 Ки/ммоль) от фирмы «Изотоп» (Россия).

Результаты и обсуждение

Исследование АЦСС мембран лимфоцитов контрольной группы пациентов показало, что негормональные агенты форсколин, фторид натрия и ГИДФ (табл. 2),

а также пептиды — инсулин, ИФР-1, релаксин и ЭФР (рис. 1),
Рисунок 1. Влияние in vitro пептидов инсулинового семейства и ЭФР, а также совместно пептидов и ГИДФ на активность АЦ в лимфоцитах контрольной группы лиц и пациентов с СД2. По вертикали: % стимуляции фермента, рассчитанный по разности между стимулированной и базальной активностью АЦ в контроле и при СД2. По горизонтали: влияние агентов, М: 1 — ГИДФ, 10–6; 2 — инсулин, 10–8; 3 — ИФР-1, 10–8; 4 — релаксин, 10–8; 5 — ЭФР, 10–8; 6 — инсулин + ГИДФ; 7 — ИФР-1 + ГИДФ; 8 — релаксин +ГИДФ; 9 — ЭФР + ГИДФ. * — достоверные отличия активности АЦ при СД2 от контрольных величин. Величина базальной активности АЦ в лимфоцитах составляла у контрольной группы лиц и пациентов с СД2 13,0±1,4 и 30,2±5,3 пикомолей цАМФ /мг белка/мин соответственно.
оказывают стимулирующее влияние на активность АЦ. Эффект пептидов усиливался в присутствии ГИДФ.

У пациентов с СД2 обнаружено увеличение базальной активности АЦ, что свидетельствует о повышенной каталитической функции фермента. Повышение каталитической способности АЦ при СД2 может происходить за счет влияния гипергликемии, как было показано ранее [16]. Наряду с этим выявлено снижение стимулирующего влияния фторида натрия на АЦСС при сопряжении с Gs-белком (см. табл. 2). Эффекты форсколина и ГИДФ не изменялись. У пациентов с СД2 снижалось стимулирующее действие исследованных пептидов, а потенцирование их эффектов в присутствии ГИДФ практически отсутствовало (см. рис. 1).

Лептин in vitro (3 мин) достоверно стимулировал активность АЦ при концентрациях 10-11—10-8 М в мембранах лимфоцитов контрольных испытуемых (рис. 2).

Рисунок 2. Влияние in vitro антител к рецептору лептина на стимуляцию лептином активности АЦ в лимфоцитах контрольной группы лиц и пациентов с СД2. 1 — контроль; 2 — СД2; 3 — контроль+антитела; 4 — СД2+антитела. По вертикали: % стимуляции фермента, рассчитанный по разности между стимулированной и базальной активностью АЦ в контроле и при СД2. * — достоверные отличия активности АЦ при СД2 от контрольных величин; # — достоверное влияние антител на активность АЦ в контроле и при СД2.
Для доказательства участия рецепторов лептина в стимуляции АЦ были применены специфические антитела. Обработка мембран антителами вызывала отчетливое подавление стимуляции АЦ лептином. Представленные данные свидетельствуют об участии рецепторов лептина в стимулирующем влиянии гормона на АЦ в лимфоцитах при изученных концентрациях у контрольной группы пациентов. При СД2 на фоне увеличения активности АЦ лептин не стимулировал фермент при концентрациях 10-11—10-9 М (см. рис. 2). Ослабленный АЦ-стимулирующий эффект выявлялся только при 10-8 М. Антитела блокировали это влияние гормона.

Таким образом, при СД2 наблюдаются изменения в регуляции АЦ: на фоне возрастания базальной активности фермента влияния изученных гормонов инсулинового семейства, ЭФР и лептина, а также фторида натрия на АЦСС ослабевают. Эти данные свидетельствуют о нарушении АЦ-стимулирующего действия как негормонального агента (фторида натрия), так и гормонов не только инсулиновой группы, но и лептина и ЭФР. Полученные результаты могут служить подтверждением нашей гипотезы о системном ответе эндокринной системы организма на дефекты в функционировании АЦСС при действии гормонов различной природы и полигормональном генезе молекулярных дефектов в АЦСС. Можно предположить, что нарушения в АЦ-стимуляции гормонами возникают как на рецепторных (что видно на примере лептина), так и на пострецепторных этапах передачи сигналов через АЦСС, и конкретно — на этапе взаимодействия Gs-белка и АЦ. Снижение функции Gs-белка при нарушении гормональной стимуляции АЦ подкрепляют данные о том, что чувствительность фермента к фториду натрия также снижается.

Выводы

1. Впервые показано стимулирующее влияние пептидов инсулинового семейства, ЭФР и лептина на активность АЦ в лимфоцитах человека.

2. При СД2 в лимфоцитах человека увеличивается базальная активность АЦ и снижается чувствительность АЦСС к фториду натрия, пептидам инсулинового семейства, ЭФР и лептину. Нарушения гормональной регуляции активности АЦ при СД2 связаны с функциональными дефектами, локализованными в случае лептина на рецепторном уровне, а в случае пептидов инсулинового семейства и ЭФР, скорее всего, на уровне Gs-белка и его сопряжения с АЦ.

Работа поддержана грантами: РФФИ 10-04-01052 и «Фундаментальные науки — медицине», 2011 г. Благодарим Е.А. Манову, к.м.н., врача-эндокринолога Клинической больницы РАН, Санкт-Петербург, за подбор больных и помощь в получении экспериментального материала.

slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

К вопросу о влиянии гестационного сахарного диабета на здоровье матери и ребенка после родов (обзор научных публикаций за 10-летний период).Российский вестник акушера-гинеколога. 2026;26(3):66-73

Влияние особенностей питания на метаболизм кишечной микробиоты у пациентов с сахарным диабетом 2-го типа.Доказательная гастроэнтерология. 2026;15(2):23-34

Динамическая оценка показателей функции внешнего дыхания у больных с сочетанием ХОБЛ и сахарного диабета 2 типа. (Результаты проспективного наблюдения).Респираторная медицина. 2026;2(1):15-21

Сравнительная эффективность терапии ингибиторами натрий-глюкозного котранспортера 2-го типа и бариатрических вмешательств в лечении пациентов с ожирением I степени и сахарным диабетом 2-го типа.Эндоскопическая хирургия. 2026;32(1):5-12

Перспективы применения минеральной воды «Нагутская №26» для коррекции углеводного и липидного обмена у пациентов с различной степенью выраженности инсулиновой резистентности.Восстановительные биотехнологии, профилактическая, цифровая и предиктивная медицина. 2025;2(4):20-28

Характеристика иммунного микроокружения рака эндометрия в зависимости от MMR-статуса опухоли.Архив патологии. 2025;87(5):11-19

Особенности субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови у детей с первично выявленной нелеченой ретинобластомой.Вестник офтальмологии. 2025;141(4):5-11

Ассоциации адипокинов и нарушений сна у лиц 25—44 лет.Профилактическая медицина. 2025;28(8):41-47

Оценка специфической иммунологической активности in vitro комплекса рекомбинантных белков бруцелл.Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2024;42(4):30-36

Изучение эффективности разных методов наружной терапии псориаза в новой экспериментальной модели хронического воспаления.Клиническая дерматология и венерология. 2024;23(5):552-557

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026