Лабораторная диагностика «ключевых» инфекций, передаваемых половым путем (обзор литературы). Часть I

Негашева Е.С.

ГБУЗ «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения города Москвы»

ORCID: 0000-0001-5613-6482

Васильцова М.Ю.

ORCID: 0000-0002-6912-4779

Фриго Н.В.

1. ГБУЗ «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения города Москвы»;
2. МБУ ИНО ФГБУ «Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна» Федерального медико-биологического агентства России

ORCID: 0000-0001-6231-971X

Гущин А.Е.

ORCID: 0000-0002-0399-1167

Доля О.В.

1. ГБУЗ «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения города Москвы»;
2. ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»

ORCID: 0000-0001-5019-4593

Китаева Н.В.

ORCID: 0000-0002-3620-2494

Марданлы С.Г.

ГОУ ВО Московской области «Государственный гуманитарно-технологический университет»

ORCID: 0000-0003-3650-2363

Заторская Н.Ф.

ORCID: 0000-0002-3876-6517

Лабораторная диагностика «ключевых» инфекций, передаваемых половым путем (обзор литературы). Часть I

Авторы:

Негашева Е.С., Васильцова М.Ю., Фриго Н.В., Гущин А.Е., Доля О.В., Китаева Н.В., Марданлы С.Г., Заторская Н.Ф.

Подробнее об авторах

Журнал: Клиническая дерматология и венерология. 2023;22(6): 643‑650

DOI: 10.17116/klinderma202322061643

Загрузок: 11

Связаться с автором

Оглавление

Как цитировать:

Негашева Е.С., Васильцова М.Ю., Фриго Н.В., Гущин А.Е., Доля О.В., Китаева Н.В., Марданлы С.Г., Заторская Н.Ф. Лабораторная диагностика «ключевых» инфекций, передаваемых половым путем (обзор литературы). Часть I. Клиническая дерматология и венерология. 2023;22(6):643‑650.
Negasheva ES, Vasiltsova MYu, Frigo NV, Gushchin AE, Dolya OV, Kitaeva NV, Mardanli SG, Zatorskaya NF. Laboratory diagnostics of «key» sexually transmitted infections (literature review). Part 1. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2023;22(6):643‑650. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma202322061643

Использование инфографики авторами научных работ

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Возможности оценки инволюционных изменений кожи в эстетической медицине. Роль ультразвуковой диагностики. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(1):92-98

Хронический верхнечелюстной ателектаз, или синдром молчащего синуса. Российская ринология. 2023;(1):60-65

Диагностика и лечение неврологических орофациальных болевых синдромов. Российский журнал боли. 2023;(1):5-12

Спектральный анализ ротовой жидкости пациентов с хроническими формами нарушения мозгового кровообращения. Российская стоматология. 2023;(1):3-6

Десятилетний опыт диагностики и лечения закрытых травм поджелудочной железы. Эндоскопическая хирургия. 2023;(2):34-38

Патология эндометрия и клинико-диагностическое значение гликоделина. Российский вестник акушера-гинеколога. 2023;(2):53-62

Кератоконус: основные направления исследований. Вестник офтальмологии. 2023;(3):11-20

Гиперсомния при психических расстройствах. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2023;(5-2):63-68

Способ моделирования и лечения абсцесса брюшной полости в хирургическом эксперименте. Оперативная хирургия и клиническая анатомия (Пироговский научный журнал). 2023;(2):5-12

Диагностика и хирургическая тактика при грыжах Богдалека у взрослых. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2023;(6):48-55

В обзоре обобщена информация по лабораторным методам диагностики наиболее распространенных в Российской Федерации инфекций, передаваемых преимущественно половым путем (ИППП), вызываемых бактериальными и протозойными патогенами — N. gonorrhoeae, C. trachomatis, M. genitalium, T. vaginalis. Дана оценка методам диагностики и определено место каждого из них при диагностике гонококковой и хламидийной инфекций, урогенитального трихомониаза и инфекции, вызываемой M. genitalium. Абсолютным приоритетом в диагностике ИППП являются прямые методы идентификации возбудителей, среди которых предпочтение в настоящее время отдается молекулярно-биологическим методам, или методам амплификации нуклеиновых кислот, обладающим рядом важных преимуществ по сравнению с другими методами (микроскопия, культура, POC-тесты): высокая чувствительность и специфичность, отсутствие потребности в живом возбудителе, возможность одновременной идентификации нескольких возбудителей в одной пробе биоматериала и количественной оценки ДНК/РНК возбудителей (Real-time PCR), быстрота получения результата (по сравнению с культуральным методом). Чрезвычайно востребованным в современных условиях является использование методов амплификации нуклеиновых кислот для одновременного определения наиболее распространенных возбудителей ИППП (C. trachomatis, N. gonorrhoeae, М. genitalium, T. vaginalis). Выявление «ключевых» возбудителей ИППП должно являться базовой диагностической процедурой при обследовании пациентов с подозрением на ИППП, а также при проведении профилактических обследований.

Ключевые слова:

гонококковая инфекция

урогенитальный хламидиоз

венерическая лимфогранулема

диагностика

N.Gonorrhoeae

C.trachomatis

молекулярно-биологические методы

МАНК

Авторы:

Негашева Е.С.

ORCID: 0000-0001-5613-6482

Васильцова М.Ю.

ORCID: 0000-0002-6912-4779

Фриго Н.В.

ORCID: 0000-0001-6231-971X

Гущин А.Е.

ORCID: 0000-0002-0399-1167

Доля О.В.

ORCID: 0000-0001-5019-4593

Китаева Н.В.

ORCID: 0000-0002-3620-2494

Марданлы С.Г.

ГОУ ВО Московской области «Государственный гуманитарно-технологический университет»

ORCID: 0000-0003-3650-2363

Заторская Н.Ф.

ORCID: 0000-0002-3876-6517

Дата поступления:

02.03.2023

Дата принятия в печать:

09.09.2023

Список литературы:

https://www.cdc.gov/std/statistics/2021/default.htm(AccessedMars03,2023).
https://www.ecdc.europa.eu/sites/default/files/documents/gonorrhoea-annual-epidemiological-report-2018.pdf(AccessedMars03,2023).
Ресурсы и деятельность медицинских организаций дерматовенерологического профиля. Заболеваемость инфекциями, передаваемыми половым путем, заразными кожными болезнями и болезнями кожи за 2020–2021 годы. Статистические материалы. М. 2022.
Unemo M, Ross JDC, Serwin AB, Gomberg M, Cusini M, Jensen JS. 2020 European guideline for the diagnosis and treatment of gonorrhoea in adults. International Journal of STD & AIDS 0(0) 1–17! The Author(s) 2020 Article reuse guidelines: sagepub.com/journals-permissions. Accessed Mars 03, 2023. https://iusti.org/wp-content/uploads/2020/10/IUSTI-Gonorrhoea-2020.pdfhttps://doi.org/10.1177/0956462420949126
STI Treatment pocket European Guidelines 2019; Accessed Mars 03, 2023. https://iusti.org/wp-content/uploads/2020/07/P0cketGuideline2019.pdf
Гонококковая инфекция. Клинические рекомендации 2021. Дата обращения 03.03.23. https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/218_1
CDC’s Sexually Transmitted Infections (STI) Treatment Guidelines 2021; Accessed Mars 03, 2023. https://www.cdc.gov/std/treatment-guidelines/gonorrhea.htm
Centers for Disease Control and Prevention. Laboratory diagnostic testing for Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae (2009). American Public Health Laboratories website 2019.
Workowski KA, Bachmann LH, Chan PA, Johnston CM, Muzny CA, Park I, Reno H, Zenilman JM, Bolan GA. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021. MMWR Recomm Rep. 2021;4(70):1-187.
Coorevits L, Traen A, Bingé L, Van Dorpe J, Praet M, Boelens J, Padalko E. Identifying a consensus sample type to test for Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma genitalium, Trichomonas vaginalis and human papillomavirus. Clinical Microbial Infect. 2018;12(24):1328-1332.
Fajardo-Bernal L, Angel-Müller E, Aponte-Gonzalez J, Rincon C, Gaitán HG, Low N. Home-based versus clinic-based management strategy for Chlamydia trachomatis and Neisseria gon0rrh0eae. Cochrane Database of Systematic Reviews. 2015;9:CD011317.
Hook EW III, Handsfield HH. Gonococcal infections in the adult. In Holmes KK, Sparling PF, et al, Sexually Transmitted Diseases 4th ed. New Y0rk, NY. McGraw Hill; 2008;627-645.
Sherrard J, Barlow D. Gonorrhoea in men: clinical and diagnostic aspects. Genitourin Med. 1996;72:422-426.
Taylor SN, DiCarlo RP, Martin DH. Comparison of methylene blue/gentian violet stain to Gram’s stain for the rapid diagnosis of gonococcal urethritis in men. Sex Trans Dis. 2011;38:995-996.
Jephcott AE. Microbiological diagnosis of gonorrhoea. Genitourin Med. 1997;73:245-252. https://doi.org/10.1136/sti.73.4.245
Цеслюк М.В., Гущин А.Е., Савочкина Ю.А., Быков А.С., Шипулин Г.А. Сравнение методов лабораторной диагностики Neisseria gonorrhoeae с применением «расширенного золотого стандарта». Клиническая лабораторная диагностика. 2008;7:48-53.
Association of Public Health Laboratories (APHL). Laboratory diagnostic testing for Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae. Expert consultation meeting summary report, 13—15 January 2009 Atlanta, GA. Silver Spring, MD, APHL; 2009.
https://www.aphl.org/programs/infectious_disease/std/D0cuments/ID_2009Jan_CTGCLab-Guidelines-Meeting-Report.pdf(AccessedMars03,2023).
Кожные и венерические болезни: учебник. Под ред. Олисовой О.Ю. 2-е. изд., доп. М. 2019.
Кубанова А.А., Сидоренко С.В., Фриго Н.В., Лесная И.Н., Кубанов А.А., Соломка В.С. Новые биомедицинские технологии в контроле над распространением инфекций, передаваемых половым путем, на территории Российской Федерации. Вестник дерматологии и венерологии. 2008;2:4-14.
Kubanova A, Frigo N, Kubanov A, Sidorenko S, Priputnevich T, Vachnina T, AI-Khafaji N, Polevshikova S, Solomka V, Domeika M, Unemo M. National surveillance of antimicrobial susceptibility in Neisseria gonorrhoeae in 2005-2006 and recommendations of first-line antimicrobial drugs for gonorrhoea treatment in Russia. Sexually transmitted infections. 2008;4(84): 285-289.
Kubanova A, Frigo N, Kubanov A, Sidorenko S, Lesnaya I, Polevshikova S, Solomka V, Bukanov N, Domeika M, Unemo M. The Russian gonococcal antimicrobial susceptibility programme (RU-GASP) -national resistance prevalence in 2007 and 2008, and trends during 2005-2008. Eurosurveillance. 2010;14(15):10-14.
Сидоренко С.В., Фриго Н.В., Кухарева Е.Н., Соломка В.С., Буканов Н.А., Полевщикова С.А. Генетическое разнообразие штаммов Neisseria gonorrhoeae, выявленных от больных гонореей из территорий Российской Федерации. Вестник дерматологии и венерологии. 2008;3:31-36.
Van Dyck E, Ieven M, Pattyn S, Van Damme L, Laga M. Detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae by enzyme immunoassay, culture and three nucleic acid amplification tests. J Clin Microbiol. 2001;39: 1751-1756.
Хламидийная инфекция. Клинические рекомендации 2021. Дата обращения 03.03.23. https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/194_1
Rowley J, Vander Hoorn S, Korenromp E, Low N, Unemo M, Abu-Raddad LJ, Chico RM, Smolak A, Newman L, Gottlieb S, Thwin SS, Broutet N, Taylor MM. Chlamydia, gonorrhoea, trichomoniasis and syphilis: Global prevalence and incidence estimates, 2016. Bull World Health Organ. 2019; 97(8):548-562.
Гладин Д.П., Королюк А.М., Дробот И.В., Кириллова Н.П., Козлова Н.С., Анненкова И.Д. Хламидии и хламидиозы. Российские биомедицинские исследования. 2021;6(4):37-46.
Медицинские лабораторные технологии. Руководство по клинической лабораторной диагностике в 2 т. М. 2013.
Третьяк А.Т., Востокова Л.П., Чухловин А.Б. Роль и место ДНК диагностики в инфекционной клинике. Педиатр. 2013;4(4):84-92. https://doi.org/10.17816/PED4484-92
Хламидийная инфекция. Методические рекомендации. М. 2022. Дата обращения 03.03.23. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=49512075
2015 European guideline on the management of Chlamydia trachomatis infections. E Lanjouw, S Ouburg, HJ de Vries, A Stary, K Radcliffe and M Unemo. Int. J STD AIDS OnlineFirst, published on November 24, 2015 as Accessed Mars 03, 2023. https://doi.org/10.1177/0956462415618837
https://www.bashhguidelines.org/current-guidelines/urethritis-and-cervicitis/chlamydia-2015.AccessedMars03,2023.
Soler M, Belushkin A, Cavallini A, Kebbi-Beghdadi C, Greub G, Altug H. Multiplexed nanoplasmonic biosensor for one-step simultaneous detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae in urine. Biosens Bioelectron. 2017;94:560-567.
Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, Yonekawa T, Watanabe K, Amino N, Hase T. Loop-mediated isothermal amplification of DNA. Nucleic Acids Res. 2000;28(12):E63.
Francois P, Tangomo M, Hibbs J, Bonetti E-J, Boehme CC, Notomi T, Perkins MD, Schrenzel J. Robustness of a loop-mediated isothermal amplification reaction for diagnostic applications. FEMS Immunol Med Microbiol. 2011;62(1):41-48.
Ereku LT, Mackay RE, Craw P, Naveenathayalan A, Stead T, Branavan M, Balachandran W. RPA using a multiplexed cartridge for low cost point of care diagnostics in the field. Anal Biochem. 2018;547:84-88.
Krolov K, Frolova J, Tudoran O, Julia Suhorutsenko J, Taavi Lehto T, Hiljar Sibul H, Imre Mäger I, Made Laanpere M, Indrek Tulp I, Langel Ü. Sensitive and rapid detection of Chlamydia trachomatis by recombinase polymerase amplification directly from urine samples. J Mol Diagn. 2014;16(1): 127-135.
Aslan K, Geddes CD. A review of an ultrafast and sensitive bioassay platform technology: Microwave-accelerated metal-enhanced fluorescence. Plasmonics. 2008;3(2-3):89-101.
Rawre J, Juyal D, Dhawan B. Molecular typing of Chlamydia trachomatis: An overview. Indian J Med Microbiol. 2017;35(1):17-26. https://doi.org/10.4103/ijmm.IJMM_16_341
Götz H, Nieuwenhuis R, Ossewaarde T, Thio B, van der Meijden W, Dees J, de Zwart O. Preliminary report of an outbreak of lymphogranuloma venereum in homosexual men in the Netherlands, its implications for other countries in western Europe. Eurosurveillance. 2004;8(4):441-442.
Федина Е.Д., Бахирев Д.Е., Колкова Н.И., Зигангирова Н.А. Венерическая лимфогранулема: эпидемия «старой» болезни в новых регионах. Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. 2013;4(15):261-269.
Yuriy A Tyulenev, Alexander E Guschin, Igor S Titov, Natalia V Frigo, Nikolai N Potekaev, Magnus Unemo. First reported lymphogranuloma venereum cases in Russia discovered in men who have sex with men attending proctologists. Int J STD AIDS. 2022;5(33):456-461.

Закрыть метаданные