ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Диагностические возможности профилей циркулирующих микроРНК у пациентов с острым коронарным синдромом и стабильной ИБС

Диагностические возможности профилей циркулирующих микроРНК у пациентов с острым коронарным синдромом и стабильной ИБС

Авторы:
Стоногина Д.А.,
Желанкин А.В.,
Васильев С.В.,
Генерозов Э.В.,
Анна Сергеевна Аксельрод

Журнал: Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2024;17(2):125-132.

DOI: 10.17116/kardio202417021125

Прочитано: 1690 раз

Скачать PDF

Резюме

ЦЕЛЬ ИСЛЕДОВАНИЯ

Проанализировать уровень циркулирующих микроРНК (ц-микроРНК) плазмы у пациентов с различными формами ишемической болезни сердца (ИБС), учитывая основные преаналитические требования, необходимые для исследования ц-микроРНК.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Использована количественная полимеразная цепная реакция для определения относительных уровней ц-микроРНК (miR-21-5p, miR-155-5p, miR-17-5p, miR-92a-3p, miR-126-3p, miR-145-5p, miR-146a-5p и miR-375-3p), потенциально связанных с атеросклерозом.

РЕЗУЛЬТАТЫ

При обследовании 136 мужчин и женщин было обнаружено, что уровни miR-146a-5p и miR-21-5p значимо выше у больных с острым коронарным синдромом (ОКС). Показано, что уровень miR-17-5p ниже у больных с ОКС и стабильным течением ИБС как при сравнении со здоровыми лицами, так и при сравнении с пациентами с артериальной гипертензией без ИБС. У больных с ОКС не выявлено различий в уровнях описанных микроРНК среди пациентов с инфарктом миокарда и нестабильной стенокардией. Кроме того, уровни описанных микроРНК у больных с инфарктом миокарда с подъемом сегмента ST и без такового значимых различий также не продемонстрировали.

ВЫВОД

Таким образом, повышенный уровень miR-21-5p и miR-146a-5p плазмы можно рассматривать как достоверный биомаркер ОКС, в то время как уровень miR-17-5p следует расценивать как общий биомаркер ИБС.

Ключевые слова

  • микроРНК
  • ИБС
  • острый коронарный синдром
  • циркулирующие биомаркеры

Дата поступления: 29.12.2023

Дата принятия в печать: 10.01.2024

Дата публикации: 08.04.2024

Введение

На сегодняшний день широко исследован ряд биомаркеров, позволяющих диагностировать повреждение миокарда, прогнозировать риск инфаркта миокарда (ИМ) и сердечно-сосудистой смерти [1]. Ткань-специфические маркеры некроза миокарда, к которым прежде всего принято относить сердечные тропонины, позволяют достоверно диагностировать ИМ спустя несколько часов после появления симптомов [2]. Новые биомаркеры ишемической болезни сердца (ИБС) и острого коронарного синдрома (ОКС) — микроРНК — отражают различные аспекты развития атеросклероза: воспаление, фиброз, нестабильность атеросклеротической бляшки, активацию тромбоцитов, нейрогормональную активацию [1].

МикроРНК, которые также называют нуклеотидными ключами, являются малым классом некодирующих РНК. Именно эти варианты РНК отличаются одной важной особенностью: они стабильны во всех биологических жидкостях, где выявляются. Причиной этой стабильности являются особенности их транспортировки, которая осуществляется либо в составе внеклеточных микровезикул, либо при помощи циркулирующих белков. Именно эти варианты транспортировки защищают микроРНК от активности РНКазы и таким образом обеспечивают стабильность выявления [3].

Значительное количество недавних исследований рассматривает циркулирующие микроРНК (ц-микроРНК) в качестве потенциальных биомаркеров для диагностики и прогнозирования ОКС [4]. Как и для белковых маркеров ОКС, изменения уровней ц-микроРНК могут возникать на различных этапах атерогенеза [5].

В нашем исследовании анализировали уровень ц-микроРНК плазмы у больных с различными вариантами ОКС (нестабильная стенокардия (НС), ИМ с подъемом сегмента ST (ИМпST) и без такового (ИМбпST)), а также у пациентов со стабильным течением ИБС. Контрольные группы сравнения были сформированы из здоровых мужчин и женщин, а также из пациентов с артериальной гипертензией (АГ), у которых по результатам предварительного инструментального обследования (стресс-тест, компьютерная томография коронарных артерий) была исключена ИБС. Для анализа различий были выбраны микроРНК, которые продемонстрировали перспективность дальнейшего исследования по предшествующим публикациям с точки зрения участия в атерогенезе и различий экспрессии в плазме пациентов с ИБС или ОКС. МикроРНК-кандидаты включали miR-17-5p, miR-92a-3p и miR-126-3p, которые экспрессируются в эндотелиоцитах [6—10] и ранее показали себя как потенциальные маркеры ИБС [6]. В исследование также были включены микроРНК, ассоциированные с воспалением: miR-155-5p и miR-146a-5p [11, 12]. Наиболее распространенные в клетках гладкой мускулатуры сосудов (СГМК) микроРНК, участвующие в процессе пролиферации и апоптоза (miR-21-5p и miR-145-5p [13]), были включены в исследование. Экспрессия miR-21-5p изменяется в сердце и сосудах при сердечно-сосудистых заболеваниях, и, по-видимому, эта микроРНК может использоваться в качестве маркера для различения ОКС и стабильной ИБС [14]. Кроме того, miR-375-3p также была включена в анализ, так как ее экспрессия отличается в плазме больных ИМ, согласно результатам секвенирования циркулирующих микроРНК [15].

Основная цель исследования — проанализировать, различаются ли уровни циркулирующих микроРНК у пациентов с ИБС и лиц без ИБС, у пациентов с ОКС и стабильной ИБС, а также внутри группы ОКС.

Поскольку ряд факторов влияет на измерение содержания ц-микроРНК в крови, мы выполнили основные преаналитические требования, предъявляемые к анализу микроРНК. Это было достигнуто за счет выбора плазмы вместо сыворотки в качестве внеклеточной биожидкости, стандартизированного двухэтапного процесса центрифугирования для выделения свободной от тромбоцитов плазмы, контроля гемолиза образца и использования стабильной эндогенной микроРНК плазмы в качестве контроля относительных измерений экспрессии микроРНК.

Исследуемая группа

В наше исследование включали пациентов мужского и женского пола в возрасте от 40 до 85 лет. По результатам клинических проявлений, лабораторных и инструментальных методов исследования формировали группы пациентов с ОКС (ИМпST, ИМбпST и НС), стабильным течением ИБС (СИБС), а также пациентов с АГ без ИБС. Контрольную группу здоровых лиц составили лица того же возраста, у которых по результатам обследования не выявлено сердечно-сосудистых заболеваний.

Все заболевания (НС, ИМпST, ИМбпST, СИБС и АГ) диагностировали в соответствии с рекомендациями Российского кардиологического общества (РКО) и Европейского общества кардиологов (ESC). Критерии исключения: хронические заболевания легких, почек, печени в фазе декомпенсации и в терминальной стадии, злокачественное новообразование, злоупотребление алкоголем и наркотическими веществами.

Получение образцов плазмы и их хранение

Цельная кровь была собрана в пробирки с консервантом K2-EDTA (BD, Franklin Lakes, NJ, США). Полученные образцы крови моментально нумеровали и сохраняли при комнатной температуре не более получаса до момента начала получения плазмы. С момента начала клинических проявлений ИМ до момента забора крови проходило в среднем около 2 сут. С целью получения свободной от тромбоцитов плазмы (СТП) образец цельной крови центрифугировали в два этапа, выделение микроРНК проводили в течение одного месяца после забора крови.

Оценки гемолиза в образцах плазмы

В исследование включали образцы без выявленных признаков гемолиза. Для этого образцы плазмы оценивали визуально, а затем анализировали на спектрофотометре NanoDrop 2000 (ThermoFisherScientific, Waltham, MA, USA). Образцы с HS >0,25 не были включены в это исследование.

Получение образцов микроРНК

Сначала микроРНК выделяли из 30 мкл супернатанта плазмы после центрифугирования с использованием набора Nucleo Spin miRNA Plasma (Macherey-Nagel, Düren, Germany) в соответствии с рекомендациями производителя.

Определения микроДНК: синтез комплементарной ДНК и количественная ПЦР

После получения образцов микроРНК (объем 2 мкл) производили синтез комплементарной ДНК с помощью набора TaqMan Advanced miRNA (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, CIF). Одиннадцать коммерчески доступных микроРНК TaqMan Advanced с TaqMan Fast Advanced MasterMix (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, CIF) использовали для количественной полимеразной цепной реакции (кПЦР) в соответствии с протоколом производителя (табл. 1). В качестве эндогенного контроля для нормализации была выбрана hsa-miR-16-5p. Мы провели кПЦР с использованием системы QuantStudio 5 (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA). Влияние гемолиза эритроцитов на ц-микроРНК оценивали на основе обнаруженного с помощью кПЦР отношения гемолиз-зависимой микроРНК miR-451а и miR-23a-3p [16].

Таблица 1. МикроРНК, использованные для кПЦР

Общепринятое обозначение микроРНК

Функция микроРНК

miR-16-5p

Обеспечение нормализации уровней микроРНК

miR-375-3p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-92a-3p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-126-3p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-21-5p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-146a-5p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-155-5p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-17-5p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-145-5p

Биомаркер-кандидат ОКС

miR-23a-3p

Контроль гемолиза

miR-451a

Контроль гемолиза

Анализ данных

U-критерий Манна—Уитни был применен для попарного сравнения относительных уровней микроРНК в плазме и характеристик образцов между исследуемыми группами. Различия значений при p<0,05 считали статистически значимыми. Значения p в анализе множественной линейной регрессии (MLR) были получены с поправкой Бонферрони—Холма для множественных сравнений. Анализировали дополнительные факторы: наличие сахарного диабета 2-го типа, степень выраженности гемолиза (HS, dCq miR-23a-3p-miR-451a значения). Различия считали статистически значимыми при p<0,1.

Результаты

В исследование включены 136 пациентов в соответствии с критериями включения и исключения. На включение больных также влияли требования к качеству образцов плазмы и микроРНК. Все включенные лица были распределены в следующие группы:

— 1-я группа — ОКС (50 пациентов, в том числе 26 с НС и 24 с ИМ); среди пациентов с ИМ было 13 пациентов с ИМпST и 11 пациентов с ИМбпST;

— 2-я группа — СИБС (26 пациентов со стабильной ИБС);

— 3-я группа — АГ (30 больных с АГ без ИБС);

— 4-я группа — контрольная группа (30 здоровых мужчин и женщин).

Основные характеристики исследуемых групп выборки представлены в табл. 2.

Таблица 2. Характеристики групп исследуемой выборки

Показатель

Контрольная группа

АГ

СИБС

ОКС

Всего

Всего пациентов, n

30

30

26

50

136

Возраст, годы

47,2±5,5

57,6±9,6

64,8±7,6

61,1±10,9

58,0±10,7

Пол, n (мужчины/женщины)

15/15

17/13

5/11

40/10

87/49

Наличие СД 2-го типа, n

0

0

6

13

19

Гиперлипидемия, n

0

7

22

35

64

Наличие АГ, n

0

30

24

42

96

Наличие ФП, n

0

0

1

2

3

Наличие ИМ в анамнезе, n

0

0

0

16

16

Коронарный атеросклероз, n

0

0

15

34

49

Липидный спектр

общий холестерин, ммоль/л

4,56±0,8

5,18±0,9

5,34±1,3

4,96±1,4

4,97±1,19

триглицериды, ммоль/л

1,12±0,3

1,47±0,6

1,62±0,6

1,81±0,7

1,54±0,6

ЛПНП, ммоль/л

2,13±0,6

2,68±0,7

2,97±1,0

2,97±1,2

2,80±1,0

ЛПВП, ммоль/л

1,86±0,5

1,84±0,5

1,53±0,6

1,06±0,3

1,51±0,6

Медикаментозная терапия

бета-адреноблокаторы, n

2

15

23

24

64

антагонисты кальция, n

0

4

13

4

21

иАПФ, n

0

12

12

32

56

диуретики, n

0

4

9

16

29

нитраты, n

0

1

9

2

12

антиагреганты, n

0

9

17

42

68

антикоагулянты, n

0

3

9

16

28

статины, n

1

11

20

41

73

Оценка гемолиза

HS

0,124±0,046

0,143±0,052

0,102±0,032

0,122±0,053

0,122±0,051

dCq (miR-23a-3p — miR-451a)

11,11±1,0

11,57±1,1

11,02±1,1

10,73±1,2

11,06±1,2

Примечание. СД — сахарный диабет; ФП — фибрилляция предсердий; иАПФ — ингибиторы ангиотензинпревращающего фермента; ЛПНП — липопротеины низкой плотности; ЛПВП — липопротеины высокой плотности; HS — показатель гемолиза.

Большинство (~60%) пациентов с НС из 1-й группы (ОКС) имели в анамнезе ИМ (средний период после последнего ИМ 7,3 года). У большинства пациентов с ИМ уровень тропонина Т (ТнТ) в плазме составил 0,2—4,6 нг/мл со средним значением 1,6 нг/мл. У двух пациентов с ИМпST уровень ТнТ был значительно повышен (8,3 и 22,0 нг/мл).

Уровни плазменных ц-микроРНК

Все микроРНК обнаруживали в плазме с помощью метода кПЦР со средними значениями Cq от 13,9 до 29,6. Для оценки согласованности наших данных с российскими и зарубежными исследованиями профилей микроРНК в плазме сравнивали относительные уровни микроРНК в плазме с уровнями, представленными в двух публикациях, где использовали секвенирование малых РНК в плазме здоровых взрослых [17, 18]. Согласованность результатов между двумя исследованиями секвенирования анализируемых микроРНК была выше, чем между нашими результатами и любым из этих исследований. Хотя направление изменений для большинства микроРНК между собой было сходным, наше исследование показало значительно более низкие относительные уровни в плазме для большинства miR-16-5p-нормализованных микроРНК по сравнению с данными микроРНК секвенирования.

Уровень ц-микроРНК у пациентов со СИБС и ОКС

Мы сравнили относительные уровни анализируемых микроРНК в плазме между группами исследования, используя критерий Манна—Уитни для попарных сравнений. На рисунке представлены диаграммы распределения относительного уровня микроРНК в исследуемых группах образцов.

Относительные уровни микроРНК в плазме в группах исследования.

На оси ординат показаны относительные уровни микроРНК в плазме (нормализованные к miR-16-5p).

Как видно из представленных данных, уровни miR-17-5p у пациентов с ОКС и СИБС были значимо снижены по сравнению со здоровыми лицами контрольной группы и пациентами группы АГ (табл. 3).

Таблица 3. Результаты попарных сравнений исследуемых образцов при выявлении различий относительных уровней микроРНК в плазме

Вид микроРНК

Достоверность (вариант анализа)

Группы сравнения

ОКС/Контроль

ОКС/АГ

ОКС/СИБС

СИБС/Контроль

СИБС/АГ

АГ/Контроль

miR-126-3p

ОУ

1,54

1,76

1,27

1,22

1,4

0,88

p<0,05 (М—У)

*

p<0,05 (М—У_кор)

p<0,1 (МЛР)

miR-145-5p

ОУ

0,94

1,37

0,99

0,95

1,38

0,69

p<0,05 (М—У)

p<0,05 (М—У_кор)

p<0,1 (МЛР)

miR-146a-5p

ОУ

2,8

2,26

1,98

1,38

1,14

1,3

p<0,05 (М—У)

*

*

*

*

p<0,05 (М—У_кор)

*

*

p<0,1 (МЛР)

*

*

*

miR-155-5p

ОУ

1,8

1,72

1,61

1,12

1,07

1,05

p <0,05 (—У)

p<0,05 (М—У_кор)

p<0,1 (МЛР)

miR-17-5p

ОУ

0,43

0,7

0,94

0,46

0,64

0,8

p<0,05 (М—У)

*

*

*

*

*

p<0,05 (М—У_кор)

*

*

*

*

p<0,1 (МЛР)

*

*

*

*

*

miR-21-5p

ОУ

2,69

2,43

1,79

1,6

1,37

1,12

p<0,05 (М—У)

*

*

*

*

*

p<0,05 (М—У_кор)

*

*

*

*

*

p<0,1 (МЛР)

*

*

*

*

miR-375-3p

ОУ

0,46

0,95

0,79

0,58

1,19

0,49

p<0,05 (М—У)

*

p<0,05 (М—У_кор)

*

p<0,1 (МЛР)

*

*

miR-92a-3p

ОУ

1,16

1,26

1,28

0,92

0,99

0,94

p<0,05 (М—У)

*

*

p<0,05 (М—У_кор)

*

*

p<0,1 (МЛР)

Примечание. * — статистически значимые различия между группами; ОУ — относительный уровень (изменения относительных уровней микроРНК в плазме для попарных сравнений).

Значимые различия отмечали и при анализе микроРНК miR-21-5p и miR-146a-5p (см. рисунок, табл. 3). При сравнении относительных уровней этих микроРНК у пациентов со СИБС и здоровых лиц контрольной группы было выявлено повышение относительных уровней этих микроРНК в патологической группе ИБС.

Также было отмечено повышение уровня плазменной miR-21-5p при сравнении больных СИБС с пациентами с АГ: этот показатель был выше у пациентов со СИБС. При этом у больных ОКС уровни miR-146a-5p и miR-21-5p плазмы были более чем в 2 раза повышены при сравнении со всеми остальными участниками исследования.

Наше исследование также продемонстрировало увеличение в 1,5—1,75 раза относительных уровней miR-126-3p и miR-155-5p у больных ОКС при сравнении с пациентами с АГ и здоровыми лицами контрольной группы.

Чтобы оценить, различаются ли относительные уровни микроРНК в плазме исследуемых образцов, учитывая возможное влияние гемолиза и наличие СД 2-го типа, был проведен анализ множественной линейной регрессии со смешанными факторами (СД 2-го типа и индексами гемолиза) (см. табл. 3). Результаты этого анализа продемонстрировали относительный уровень miR-21-5p в качестве независимого биомаркера-кандидата ОКС. Пониженная экспрессия miR-17-5p позволила дифференцировать пациентов с ОКС и СИБС от больных АГ и здоровых лиц контрольной группы.

При этом повышенная экспрессия биомаркера-кандидата miR-146a-5p была характерна для пациентов с ОКС при сравнении и с больными СИБС, и со здоровыми лицами контрольной группы.

Суммируя все вышеизложенное, можно сделать вывод, что повышенная экспрессия miR-146a-5p и miR-21-5p в плазме является возможным маркером ОКС, а пониженная экспрессия miR-17-5р в плазме может рассматриваться как маркер ИБС, характерный как для ОКС, так и для СИБС. Для других анализируемых микроРНК изменения у больных ОКС при сравнении с пациентами других групп не были выражены.

Кроме того, при сравнении в группе ОКС относительных уровней miR-17-5p, miR-146a-5p и miR-21-5p у пациентов с ИМ (ИМпST и ИМбпST) и НС статистически значимых различий мы не получили (критерий Манна—Уитни, p>0,05). При этом относительные уровни miR-17-5, m1iR-146a-5p и miR-21-5p не коррелировали с уровнем ТнТ у пациентов с ИМ.

Обсуждение

В настоящее время проводится множество исследований по выявлению основных ц-микроРНК крови у пациентов с ОКС, однако имеющиеся данные противоречивы. В этом исследовании мы провели анализ ц-микроРНК плазмы у пациентов со СИБС и ОКС.

Мы сочли необходимым обратить особое внимание на преаналитические параметры, поскольку они необходимы для корректности измерения.

При использовании в статистическом анализе факта наличия СД 2-го типа и показателей гемолиза как искажающих факторов мы отметили изменение относительных уровней большинства исследуемых микроРНК у больных ОКС или СИБС по сравнению со здоровыми лицами контрольной группы или пациентами с АГ без ИБС. Мы уверены, что существует по меньшей мере несколько причин, препятствующих общепринятому использованию микроРНК в качестве диагностического биомаркера:

1) измерение уровней микроРНК в плазме крайне чувствительно к преаналитическим факторам, включая протокол подготовки плазмы, гемолиз образца плазмы, метод обнаружения микроРНК и стратегию нормализации;

2) активация тромбоцитов in vivo или in vitro существенно влияет на уровни микроРНК в плазме [19—21].

3) антитромбоцитарные препараты, антикоагулянты и другие лекарственные препараты могут изменять профили микроРНК в плазме [20, 22].

Одним из самых главных результатов нашего исследования является более чем двукратное увеличение относительных уровней miR-21-5p и miR-146a-5p плазмы у пациентов с ОКС по сравнению со здоровыми лицами контрольной группы, а также с больными АГ и пациентами со СИБС.

Можно предположить, что повышенные уровни этих биомаркеров-кандидатов отражают общие этапы атерогенеза и развития ИБС, поскольку их относительные уровни были выше у пациентов со СИБС при сравнении с больными АГ и здоровыми лицами контрольной группы. Указанные два биомаркера-кандидата являются одними из наиболее популярных по публикациям, посвященным микроРНК. Известно, что они активируются при ОКС, но этой активации не наблюдается при стабильном течении ИБС [23]. По результатам нашего исследования значительно повышенные уровни этих микроРНК были при любом варианте ОКС: мы не отметили статистически значимых различий между пациентами с ИМпST, ИМбпST и НС. В недавних исследованиях с использованием анализа микроРНК TaqMan Advanced для обнаружения циркулирующей микроРНК относительный уровень miR-21-5p в плазме был повышен как в группах пациентов с ИБС, так и в группах больных с хронической сердечной недостаточностью по сравнению с контролем [14, 24]. Представляется также важным, что повышение уровней этих микроРНК уже неоднократно упоминалось при состояниях, ассоциированных с воспалением [25, 26]. При этом, по нашим результатам, у пациентов с ОКС уровень других микроРНК, ассоциированных с воспалением, либо не был повышен (miR-145-5р), либо его повышение было незначительным (miR-155-5р).

При сравнении пациентов с ОКС и СИБС с лицами контрольной группы отмечалось более чем двукратное снижение уровня miR-17-5p. Этот же вариант микроРНК среди пациентов с АГ продемонстрировал более высокий (в 1,6 раза) относительный уровень по сравнению с пациентами группы ОКС и СИБС. В доступной на сегодняшний день литературе имеющиеся данные о miR-17-5p как маркере ИБС и ОКС противоречивы [27, 28].

По сути, в нашем исследовании было две контрольные группы (пациенты с АГ без ИБС и здоровые лица). Подобным образом ранее формировались контрольные группы для выявления биомаркеров-кандидатов у пациентов с пароксизмальной формой фибрилляции предсердий [29].

Мы осознаем, что в нашей когорте имеются половые и возрастные различия между здоровыми лицами контрольной группы и пациентами с ИБС, что является естественным и неизбежным в силу особенностей патогенеза ИБС.

Другое важное ограничение данного исследования — разница во времени между ИМ и взятием крови у больных (от нескольких часов до нескольких дней). Представляется логичным, что плазменные уровни некоторых микроРНК, особенно сердечно-специфических, могут резко изменяться в постинфарктном периоде [30]. Однако это ограничение не могло быть преодолено в существующих клинических условиях из-за особенностей организации помощи таким пациентам.

В заключение хотелось бы сказать, что анализ преаналитических и аналитических условий, вариантов медикаментозной терапии и факта наличия сопутствующих заболеваний представляется крайне важным. При этом указанные выше ограничения не препятствовали проведению нашего исследования в соответствии с последними международными рекомендациями по исследованию ц-микроРНК. Полученные результаты являются важным дополнением базы данных биомаркеров-кандидатов ОКС и СИБС.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References
  1. Wang J, Tan G-J, Han L-N, et al. Novel Biomarkers for Cardiovascular Risk Prediction. J Geriatr Cardiol. 2017;14:135-150.
  2. Korley FK, Jaffe AS. Preparing the United States for High-Sensitivity Cardiac Troponin Assays. J Am Coll Cardiol. 2013;61:1753-1758.
  3. Bronze-da-Rocha E. MicroRNAs Expression Profiles in Cardiovascular Diseases. Biomed Res Int. 2014;2014:958408.
  4. Ahlin F, Arfvidsson J, Vargas KG, et al. MicroRNAs as Circulating Biomarkers in Acute Coronary Syndromes: A Review. Vasc Pharmacol. 2016;81:15-21.
  5. Feinberg MW, Moore KJ. MicroRNA Regulation of Atherosclerosis. Circ Res. 2016;118:703-720.
  6. Liu Y, Li Q, Hosen MR, et al. Atherosclerotic Conditions Promote the Packaging of Functional MicroRNA-92a-3p Into Endothelial Microvesicles. Circ Res. 2019;124:575-587.
  7. Chamorro-Jorganes A, Lee MY, Araldi E, et al. VEGF-Induced Expression of MiR-17-92 Cluster in Endothelial Cells Is Mediated by ERK/ELK1 Activation and Regulates Angiogenesis. Circ Res. 2016;118:38-47.
  8. Bonauer A, Carmona G, Iwasaki M, et al. MicroRNA-92a Controls Angiogenesis and Functional Recovery of Ischemic Tissues in Mice. Science. 2009;324:1710-1713.
  9. Wang S, Aurora AB, Johnson BA, et al. An Endothelial-Specific MicroRNA Governs Vascular Integrity and Angiogenesis. Dev Cell. 2008;15:261-271.
  10. Fish JE, Santoro MM, Morton SU, et al. MiR-126 Regulates Angiogenic Signaling and Vascular Integrity. Dev Cell. 2008;15:272-284.
  11. Labbaye C, Testa U. The Emerging Role of MIR-146A in the Control of Hematopoiesis, Immune Function and Cancer. J Hematol Oncol. 2012;5:13.
  12. Faraoni I, Antonetti FR, Cardone J, Bonmassar E. miR-155 Gene: A Typical Multifunctional MicroRNA. BiochimicaBiophysicaActa BBA Mol. BasisDis. 2009;1792:497-505.
  13. Cheng Y, Zhang C. MicroRNA-21 in Cardiovascular Disease. J Cardiovasc Transl Res. 2010;3:251-255.
  14. Baulina N, Osmak G, Kiselev I, et al. NGS-Identified Circulating MiR-375 as a Potential Regulating Component of Myocardial Infarction Associated Network. J Mol Cell Cardiol. 2018;121:173-179.
  15. Binderup HG, Madsen JS, Heegaard NHH, et al. Quantification of MicroRNA Levels in Plasma — Impact of Preanalytical and Analytical Conditions. PLoS One. 2018;13:e0201069.
  16. Blondal T, Jensby Nielsen S, Baker A, et al. Assessing Sample and MiRNA Profile Quality in Serum and Plasma or Other Biofluids. Methods. 2013;59:S1-S6.
  17. Godoy PM, Bhakta NR, Barczak AJ, et al. Large Differences in Small RNA Composition Between Human Biofluids. Cell Rep. 2018;25:1346-1358.
  18. Max KEA, Bertram K, Akat KM, et al. Human Plasma and Serum Extracellular Small RNA Reference Profiles and Their Clinical Utility. Proc Natl Acad Sci USA. 2018;115:E5334-E5343.
  19. Sunderland N, Skroblin P, Barwari T, et al. MicroRNA Biomarkers and Platelet Reactivity. Circ Res. 2017;120:418-435.
  20. Krammer TL, Mayr M, Hackl M. MicroRNAs as Promising Biomarkers of Platelet Activity in Antiplatelet Therapy Monitoring. Int J Mol Sci. 2020;21:561.
  21. Willeit P, Zampetaki A, Dudek K, et al. Circulating MicroRNAs as Novel Biomarkers for Platelet Activation. Circ Res. 2013;112:595-600.
  22. De Boer HC, van Solingen C, Prins J, et al. Aspirin Treatment Hampers the Use of Plasma MicroRNA-126 as a Biomarker for the Progression of Vascular Disease. Eur Heart J. 2013;34:3451-3457.
  23. Kaur A, Mackin ST, Schlosser K, et al. Systematic Review of MicroRNA Biomarkers in Acute Coronary Syndrome and Stable Coronary Artery Disease. Cardiovasc Res. 2020;116 1113-1124.
  24. D’Alessandra Y, Chiesa M, Carena MC, et al. Differential Role of Circulating MicroRNAs to Track Progression and Pre-Symptomatic Stage of Chronic Heart Failure: A Pilot Study. Biomedicines. 2020;8:597.
  25. Muñoz-San Martín M, Reverter G, Robles-Cedeño R, et al. Analysis of MiRNA Signatures in CSF Identifies Upregulation of MiR-21 and MiR-146a/b in Patients with Multiple Sclerosis and Active Lesions. J Neuroinflammation. 2019;16:220.
  26. Hammad Mahmoud Hammad R, Hamed DHED, Eldosoky MAER, et al. Plasma MicroRNA-21, MicroRNA-146a and IL-13 Expression in Asthmatic Children. InnateImmun. 2018;24:171-179.
  27. Xue S, Liu D, Zhu W, et al. Circulating MiR-17-5p, MiR-126-5p and MiR-145-3p Are Novel Biomarkers for Diagnosis of Acute Myocardial Infarction. Front Physiol. 2019;10:123.
  28. Stephan F, De Salvatore R, Henrik F, et al. Circulating MicroRNAs in Patients With Coronary Artery Disease. Circ Res. 2010; 107:677-684.
  29. Zhelankin AV, Vasiliev SV, Stonogina DA, et al. Elevated Plasma Levels of Circulating Extracellular MiR-320a-3p in Patients with Paroxysmal Atrial Fibrillation. Int J Mol Sci. 2020;21:3485.
  30. D’Alessandra Y, Devanna P, Limana F, et al. Circulating MicroRNAs Are New and Sensitive Biomarkers of Myocardial Infarction. Eur Heart J. 2010;31:2765-2773.
slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Эпигенетические механизмы влияния неполифенольных компонентов пищевых веществ на развитие атеросклероза.Профилактическая медицина. 2026;29(7):126-132

Факторы стресса в семье и на работе, ассоциированные с распространенностью ишемической болезни сердца среди мужчин, работающих в экспедиционно-вахтовых условиях производств Арктического региона.Профилактическая медицина. 2026;29(5):53-59

Прогностическое значение экспрессии miR-130, miR-148, miR-194 и miR-605 в сыворотке больных глиобластомой.Вопросы нейрохирургии имени Н.Н. Бурденко. 2026;90(3):20-26

Когнитивные нарушения у 2775 амбулаторных пациентов с артериальной гипертонией и ИБС: связь между показателями выживаемости и смертности по данным пятилетнего наблюдения.Кардиологический вестник. 2026;21(2):46-56

Перспективы терапии шизофрении с использованием ретроэлементов в качестве мишеней.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(4):22-27

Клинические характеристики больных с острым коронарным синдромом по данным регистра регионального сосудистого центра.Кардиологический вестник. 2026;21(1):31-40

Дерегуляция микроРНК как метод оценки эффективности брахитерапии меланом хориоидеи.Вестник офтальмологии. 2026;142(1):21-26

Диагностический потенциал малых некодирующих РНК в материале пайпель-биопсии при эндометриозе.Проблемы репродукции. 2026;32(1):92-102

Динамика фракции выброса и отдаленные исходы у пациентов, перенесших острый коронарный синдром, с различной функцией почек.Кардиологический вестник. 2025;20(4-2):155-163

Определение перфузии и метаболической активности миокарда методами радионуклидной диагностики.Восстановительные биотехнологии, профилактическая, цифровая и предиктивная медицина. 2024;1(4):12-19

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026