Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Алиева А.М.

ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Резник Е.В.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Теплова Н.В.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Меликулов А.А.

Клиника AKFA Medline

Ахмедова М.Ф.

Клиника AKFA Medline

Котикова И.А.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Никитин И.Г.

ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

МикроРНК-34а при сердечно-сосудистых заболеваниях: взгляд в будущее

Авторы:

Алиева А.М., Резник Е.В., Теплова Н.В., Меликулов А.А., Ахмедова М.Ф., Котикова И.А., Никитин И.Г.

Подробнее об авторах

Журнал: Кардиологический вестник. 2023;18(1): 14‑22

Прочитано: 2356 раз


Как цитировать:

Алиева А.М., Резник Е.В., Теплова Н.В., Меликулов А.А., Ахмедова М.Ф., Котикова И.А., Никитин И.Г. МикроРНК-34а при сердечно-сосудистых заболеваниях: взгляд в будущее. Кардиологический вестник. 2023;18(1):14‑22.
Alieva AM, Reznik EV, Teplova NV, Melikulov AA, Akhmedova MF, Kotikova IA, Nikitin IG. MicroRNA-34a in cardiovascular disease: a glimpse into the future. Russian Cardiology Bulletin. 2023;18(1):14‑22. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/Cardiobulletin20231801114

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Во всем мире активно изучаются эпигенетические процессы, участвующие в регуляции функции сердечно-сосудистой системы (ССС), к числу которых относят и регуляторную роль микрорибонуклеиновых кислот (микроРНК, miRNAs) [1]. MiRNAs — относительно новый класс эндогенных, некодирующих одноцепочечных малых RNAs, которые регулируют экспрессию генов на посттранскрипционном уровне и различные процессы в живом организме, такие как пролиферация, дифференцировка клеток, воспаление, фиброз, апоптоз и другие [2]. Было показано, что отдельные miRNAs регулируют экспрессию ряда генов, и, наоборот, экспрессия отдельных генов может регулироваться несколькими miRNAs [2]. С момента их открытия, чуть более 20 лет назад, miRNAs были идентифицированы как ключевые регуляторы сложных биологических процессов, связанных с множественными сердечно-сосудистыми патологиями, включая гипертрофию левого желудочка (ЛЖ), ишемическую болезнь сердца (ИБС), сердечную недостаточность (СН), артериальную гипертензию (АГ) и аритмии [1—3]. Кроме того, с момента обнаружения того, что miRNAs присутствуют в циркуляции, они были исследованы как новые биомаркеры, особенно в контексте острого инфаркта миокарда (ОИМ) и СН [1, 3].

Значимые изменения уровня экспрессии miRNAs при многих болезнях позволили рассматривать их в качестве перспективных биомаркеров. Для них характерны 3 ключевых критерия так называемого идеального маркера: 1) достаточно высокая стабильность в биологических жидкостях; 2) устойчивость к влияниям извне, что позволяет эффективно выделять циркулирующие miRNAs из биологических жидкостей; 3) сопоставимость профилей miRNAs в норме у мужчин и женщин, а также у людей разных возрастных категорий. Основной недостаток miRNAs — высокая вариабельность уровня экспрессии, зависящая от многих факторов [4].

MiRNAs в крови присутствуют в чрезвычайно низких концентрациях, но достаточных для их обнаружения при помощи стандартной методики количественной полимеразной цепной реакции в реальном времени [4—6].

На сегодняшний день miRNA-34a изучаются в роли диагностических биомаркеров и терапевтических мишеней при многих сердечно-сосудистых заболеваниях (ССЗ). Имеющиеся результаты экспериментальных и клинических исследований показали серьезную значимость miRNA-34a при ССЗ [7—9].

В данном обзоре мы рассмотрели основные исследования, продемонстрировавшие потенциальную роль miRNA-34a при ССЗ.

Материал и методы

Анализ источников литературы проводился в базах данных PubMed, РИНЦ, MedLine, Google Scholar, Science Direct. Рассматривались зарубежные и отечественные статьи. Поиск осуществлялся по следующим ключевым словам: микроРНК-34a, сердце, ССЗ, miRNA-34a, heart, cardiovascular diseases. Наш обзор в основном включает описания исследований, проведенных за последние 10 лет. Результаты различных наблюдений показывают, что существует серьезный научный интерес к роли miRNA-34a при кардиоваскулярной патологии.

Роль miRNA-34a в физиологии и патофизиологии сердечно-сосудистой системы

MiRNAs относятся к классу эндогенных, малых, некодирующих RNA длиной 18—25, в среднем — 18 нуклеотидов. MiRNAs связываются с 3’-нетранслированными областями (UTR) матричных РНК (mRNA), чтобы ингибировать их трансляцию или индуцировать их деградацию, тем самым подавляя экспрессию генов на посттранскрипционном уровне. MiRNAs регулируют транскрипцию порядка 60% генов, в том числе важных участников процессов пролиферации, дифференцировки, клеточного роста и тканевого ремоделирования при ССЗ [7, 9].

Семейство miRNA-34 состоит из трех членов: miRNA-34a, miRNA-34b и miRNA-34c. Семейство miRNA-34 транскрибируется из двух различных наборов генов, расположенных в хромосомах 1 и 11. Экспрессия miRNA-34a выше, чем экспрессия miRNA-34b/c в большинстве органов и тканей человека, за исключением легких. В настоящее время экспрессия miRNA-34a в основном регулируется эпигенетической модификацией, транскрипционной регуляцией и другими молекулярными механизмами. Примечательно, что miRNA-34a играет решающую роль в различных процессах, включая апоптоз, воспаление, аутофагию, старение и фиброз, которые в конечном итоге способствуют сердечной дисфункции, что говорит о терапевтическом потенциале и перспективе влияния на miRNA-34a при ССЗ [7, 9].

Уровни miRNA-34a увеличиваются с возрастом в мышцах, сердце и сосудах, способствуют патологическому ремоделированию и функциональным нарушениям. В сосудистой стенке miRNA-34a играет негативную роль при старении эндотелиальных клеток (EC) и гладкомышечных клеток сосудов (VSMC), главным образом за счет прямой понижающей регуляции своей наиболее известной мишени — гена, связанного с долголетием, сиртуина 1 (SIRT1). Таким образом, miRNA-34a признан важным регулятором при ССЗ [7, 9].

F. Dong и соавт. обнаружили, что при ИМ сверхэкспрессия miRNA-34a способствует апоптозу путем ингибирования активности SIRT1 [10]. K. Iekushi и соавт. продемонстрировали, что инсулиноподобный фактор роста (IGF) ингибирует экспрессию предшественника miRNA-34a (pre-miRNA-34a) и тем самым уменьшает апоптоз кардиомиоцитов [11]. J. Baker и соавт. показали, что фосфатаза с двойной субстратной специфичностью (PTEN), отрицательный регулятор передачи сигналов фосфоинозитида-3-киназы (PI3K), была понижена, в то время как экспрессия miRNA-34a увеличена, а miRNA SIRT1 уменьшена в EC при окислительном стрессе [12]. Согласно данным M. He и соавт., M. Raddatz и соавт., гены Notch1 (кодирует трансмембранный рецепторный белок, входящий в семейство Notch), Smad4 (кодирует одноименный белок, который является транскрипционным фактором) и FOXO3 (кодирует белок из семейства факторов транскрипции Forkhead) являются генами-мишенями miRNA-34a [13, 14].

Результаты исследования K. Wu и соавт. продемонстрировали, что при врожденных пороках сердца miRNA-34a индуцирует дедукцию эмбриональных эндокардиальных клеток (ECC) и ускорение клеточного апоптоза за счет подавления Notch1 [15]. N. Yu и соавт. указали на то, что фактор, индуцируемый гипоксией 1-альфа (HIF-1α), ускоряет ангиогенез клеток трофобластов через сигнальный путь Notch1/ETBR (эндотелиновый рецептор типа B) [16]. Выводы J. Pan и соавт. показали, что miRNA-34a значительно стимулирует апоптоз кардиомиоцитов, индуцированный ишемией, путем нацеливания на Notch1 [17]. S. Sakai и соавт. выявили, что антагонист ETBR усиливает апоптоз и восприимчивость к апоптотическому агенту в гладкомышечных клетках легочной артерии человека, способствуя дальнейшему ремоделированию сосудов при легочной гипертензии [18].

Результаты Y. Huang и соавт. свидетельствуют о том, что miRNA-34a играет критическую роль в прогрессировании фиброза сердечной ткани путем прямого нацеливания на Smad4. Это позволяет предположить, что данная miRNA-34a может быть новым маркером прогрессирования сердечного фиброза, кроме того, ее ингибирование может стать многообещающей стратегией при лечении этой патологии [19].

G. Dorn выявил, что ингибирование miRNA-34a улучшало сердечную функцию во время старения и после ИМ за счет снижения гибели клеток и фиброза путем нацеливания на фосфатазу 1 ядерной таргетированной субъединицы (PNUTS), которая является важным регулятором эндогенной регенерации сердца [20].

H. Zhang и соавт. показали, что miRNA-34a ускоряла прогрессирование атеросклероза, регулируя экспрессию белка FOXO3. Как известно, FOXO3 играет решающую роль в сдерживании окислительного повреждения EC, индуцированных окисленными липопротеинами низкой плотности (oLDL), через сигнальный путь miRNA-34a/SIRT1/FOXO3 [21].

S. Natarajan и соавт. продемонстрировали, что FOXO3 ингибировал транскрипцию p53-зависимого модулятора апоптоза PUMA [22].

Было показано, что miRNA-34a подавляет аутофагию [7, 9]. Согласно данным H. Shao и соавт., miRNA-34a ингибирует аутофагию путем регулирования экспрессии фактора некроза опухоли-альфа (TNF-α) [23]. T. Ni и соавт. выявили, что ингибирование miRNA-34a усиливало аутофагию кардиомиоцитов и дополнительно улучшало сердечную функцию [24].

Фиброз — один из главных компонентов в прогрессировании большинства ССЗ, вызывающий структурные изменения миокарда и сосудистой стенки. Воспаление миокарда и окислительный стресс играют решающую роль в формировании фиброза и ремоделировании сердца. Было доказано, что miRNA-34a способствует сердечному фиброзу и старению [7, 9]. W. Bian и соавт. продемонстрировали важную роль miRNA-34a при апоптозе миокарда, гипертрофии миокарда, клеточном старении и нарушении метаболизма внеклеточного матрикса (ECM) [25]. C. Zhang и соавт. установили, что miRNA-34a может модулировать индуцированную трансформирующим фактором роста бета (TGF-β1) пролиферацию сердечных фибробластов путем нацеливания на ядерный протоонкоген c-ski, кроме того, ингибитор miRNA-34a уменьшает эти изменения [26]. Так, B. Bernardo и соавт. показали, что miRNA-34a ослаблял ИМ-индуцированное ремоделирование желудочков и увеличение предсердий и улучшал сердечную функцию при участии Notch1 [27].

Таким образом, miRNA-34a играет жизненно важную роль в контроле клеточного апоптоза, аутофагии, воспаления, старения, фиброза и ремоделирования посредством сигнальных путей Smad4/TGF-β1, FOXO3/PUMA, Notch1/ETBR, PTEN/PI3K/SIRT1 и FOXM1/NRF2/HO-1 [7, 9], (рис. 1).

Рис. 1. Регуляторные роли и основные механизмы miR-34a при сердечно-сосудистой патологии.

MiRNA-34a — микроРНК-34а; SIRT1 — сиртуин 1; Smad4 — ген, кодирующий одноименный белок, являющийся транскрипционным фактором; FOXO3 — ген, кодирующий белок из семейства факторов транскрипции Forkhead; Notch1 — ген, кодирующий трансмембранный рецепторный белок, входящий в семейство Notch; PTEN — фосфатаза с двойной субстратной специфичностью; PNUTS — фосфатаза 1 ядерной таргетированной субъединицы; TGF-β 1 — трансформирующий фактор роста бета; PUMA — проапоптотический протеин из семейства Bcl-2; ETBR — эндотелиновый рецептор типа B; PI3K — фосфоинозитид-3-киназа; NRF2 — фактор-2, связанный с эритроидным ядерным фактором; HO-1 — гемоксигеназа-1; E-cad — E-кадгерин; p62 — белок, также называемый секвестосомой 1; a-SMA — гладкомышечный актин альфа; IL — интерлейкин; ECM — внеклеточный матрикс; EMT — эпителиально-мезенхимальный переход; TNF-α — фактор некроза опухоли альфа.

Роль miRNA-34a при атеросклерозе и ишемической болезни сердца

Атеросклероз является хроническим воспалительным заболеванием, характеризующимся накоплением липидов в артериальных стенках и считается основной причиной ИБС. В последние годы активно изучается место miRNA-34a во многих процессах, связанных с атерогенезом, включая метаболизм липопротеинов, дисфункцию сосудистого эндотелия, активацию тромбоцитов и моноцитов, функционирование VSMC [7, 9, 28].

Ряд исследований показал, что макрофаги играют решающую роль в патогенезе атеросклероза, но молекулярные механизмы до сих пор остаются малоизученными [7]. Y. Xu и соавт. обнаружили, что miRNA-34a является ключевым регулятором оттока холестерина макрофагов и обратного транспорта холестерина путем модуляции аденозинтрифосфат-связывающего (АТФ) кассетного переносчика ABCA1 (ABCA1) и АТФ кассетного подсемейства G-члена 1 (ABCG1). Также исследователи выявили, что miRNA-34a регулирует поляризацию макрофагов M1 и M2 посредством Х-рецептора печени α (LXR α). Вместе с тем глобальная потеря miRNA-34a снижала всасывание холестерина в кишечнике путем ингибирования фермента суперсемейства цитохромов Р450 холестерол-7α-гидроксилазы (CYP7A1) и 12α-гидроксилазы стерола (CYP8B1). Ингибирование miRNA-34a способствовало регрессии атеросклероза и обращало вспять метаболические нарушения, вызванные диетой с высоким содержанием жиров (HFD). Исследование показало центральную роль miRNA-34a в регулировании оттока холестерина макрофагов, воспалении и атеросклерозе. Кроме того, полученные данные предполагают, что miRNA-34a является перспективной мишенью для лечения кардиометаболических заболеваний [29], (рис. 2).

Рис. 2. Участие miRNA-34a в регуляции атерогенеза.

MiRNA-34a — микроРНК-34а; ABCA1 — аденозинтрифосфат-связывающий кассетный переносчик; ABCG1 — аденозинтрифосфат-связывающее кассетное подсемейство G-члена 1; LXR-α — X-рецептор печени α; CYP7A1 — фермент суперсемейства цитохромов Р450 холестерол-7α-гидроксилазы; CYP8B1 — фермент 12α-гидроксилазы стерола; IL-6 — интерлейкин 6; ХС — холестерин; TNF-α — фактор некроза опухоли альфа; SR-BI — рецептор-мусорщик класса B-типа 1; MCP-1 — моноцитарный хемоаттрактантный белок 1; KLF4 — обогащенный кишечником Krüppel-подобный фактор; M — макрофаги.

Было показано, что несколько miRNAs участвуют в эндотелиальной дисфункции при атеросклерозе [6]. Тем не менее основные механизмы miRNA-34a в апоптозе EC, ассоциированных с атеросклерозом, остаются малоизученными.

В качестве модели атеросклероза in vivo G. Su и соавт. использовали мышей с дефицитом аполипопротеина E (ApoE–/–), находящихся на HFD. В качестве модели атеросклероза in vitro применяли обработанные окисленным липопротеином низкой плотности (ox-LDL) EC аорты человека (HAEC). Pecam-1+ (гликопротеин, мембранный белок из суперсемейства иммуноглобулинов, относится к классу молекул клеточной адгезии) выделяли из дуги аорты с помощью проточной цитометрии. Выявлено, что miRNA-34a повышалась у HFD-индуцированных мышей ApoE–/– и в HAEC, получавших ox-LDL. Ингибитор miRNA-34a уменьшал атеросклеротические поражения и апоптоз Pecam-1+ у мышей ApoE–/–. Кроме того, он значительно повышал жизнеспособность клеток, понижал остановку клеточного цикла и апоптоз в HAEC, обработанных ox-LDL. Регулятор апоптоза Bcl-2 был идентифицирован как мишень miRNA-34a, а miRNA-34a ингибировала экспрессию Bcl-2 посредством связывания с его 3’UTR. Избыточная экспрессия Bcl-2 резко обращала вспять опосредованное miRNA-34a ингибирование роста клеток и стимулирование апоптоза в HAEC, подвергшихся воздействию ox-LDL. Истощение miRNA-34a способствовало росту EC и блокировало апоптоз при атеросклерозе за счет усиления Bcl-2. Таким образом, получены весьма интересные данные о возможных новых терапевтических мишенях при лечении атеросклероза [30].

T. Ito и соавт. показали, что сверхэкспрессия miRNA-34a индуцирует старение EC, а также подавляет их пролиферацию путем ингибирования прогрессирования клеточного цикла. Авторы также обнаружили, что SIRT1 является мишенью miRNA-34a. Сверхэкспрессия miRNA-34a ингибировала экспрессию белка SIRT1, а нокдаун miRNA-34a усиливал экспрессию SIRT1. MiRNA-34a частично запускал старение эндотелия посредством SIRT1, поскольку форсированная экспрессия SIRT1 блокировала способность miRNA-34a индуцировать старение. Таким образом, полученные данные свидетельствуют о том, что miRNA-34a способствует старению эндотелия за счет подавления SIRT1 [31].

Y. Xu и соавт. выявили, что путь miRNA-34a/ядерный фактор гепатоцитов 4-альфа (HNF4α) может играть решающую роль в патогенезе неалкогольной жировой болезни печени и регулировать метаболизм липопротеинов плазмы. Кроме того, показано, что miRNA-34a снижает развитие атеросклероза при ApoE–/– мышей посредством ингибирования экспрессии HNF4α [29].

Как известно, при формировании хронической почечной недостаточности (ХПН) уремические токсины, в том числе индоксилсульфат (IS), являются основными факторами риска развития атеросклероза. X. Li и соавт. продемонстрировали, что IS может ингибировать пролиферацию, миграцию и способствовать апоптозу клеток эндотелия пупочной вены человека (HUVEC) и VSMC посредством сигнала Notch1 и белков, родственных miRNA-34a, путем повышающей регуляции miRNA-34a. Эти результаты могут дать новое представление об основном механизме атеросклероза при ХПН [32].

H. Han и соавт. определяли уровни miRNAs-34a, -21, -23a, -30a и -106b у 32 пациентов с ИБС и 20 здоровых людей (группа контроля). MiRNA-34a, -21 и -23a были значительно повышены у пациентов с ИБС по сравнению со здоровыми людьми (все p<0,01). Таким образом, данные miRNAs могут служить биомаркерами развития и прогрессирования ИБС [33].

A. Gatsiou и соавт. показали, что высокий уровень miRNA-34a был независимо обусловлен наличием ИБС (ОШ (отношение шансов) (95% ДИ (доверительный интервал) 3,87 (1,56—9,56); p=0,003). Повышенные уровни miRNA-34a обратно связаны с экспрессией SIRT1 и мембранным белком, лигандом для рецептора Notch1 (Jag1), Notch1, бета-катенином (CTNNB1) и циклическим AMP-зависимым фактором транскрипции (ATF-1). Лейкоцит-специфическое удаление miRNA-34a a/b/c уменьшало развитие атеросклеротических бляшек и увеличивало экспрессию Sirt1 и Jag1 в мышиной модели атеросклероза [34].

H. Li и соавт. определяли уровень miRNA-34a у пациентов с ИБС (203 пациентов и 100 здоровых человек контрольной группы). Уровень miRNA-34a был повышен у больных ИБС по сравнению с контрольной группой (p<0,001) и продемонстрировал диагностическую ценность (AUC (площадь под кривой): 0,899, 95% ДИ 0,865—0,934). Кроме того, у лиц, страдающих ИБС, уровень miRNA-34a положительно коррелировал с концентрацией триглицеридов (p<0,001), общего холестерина (p=0,022) и холестерина липопротеидов низкой плотности (ХЛНП) (p=0,004). Экспрессия miRNA-34a была положительно связана с С-реактивным белком (CRP) (p<0,001), TNF-α (p=0,005), интерлейкином (IL)-1β (p=0,020), IL-17A (p<0,001), молекулой адгезии сосудистых клеток 1 (VCAM-1) (p<0,001) и молекулой межклеточной адгезии-1 (ICAM-1) (p=0,010) у больных ИБС. Авторы пришли к выводу, что miRNA-34a может служить диагностическим маркером при ИБС [35].

Согласно данным J. Li и соавт., экспрессия miRNA-34a увеличилась у крыс с ИМ, что привело к апоптозу миокарда, фиброзу и сердечной дисфункции через канонический сигнальный путь Wnt/β-катенин. Это говорит в пользу того, что miRNA-34a может стать потенциальной терапевтической мишенью при ИМ [36].

Исследование H. Lakhani и соавт. посвящено изучению уровней miRNA-34a в первые сутки после развития ИМ у 43 лиц. Больные были разделены на три группы: пациенты с ИМ и нормальной ФВ ЛЖ (n=13), с ИМ с низкой ФВ (n=16) и здоровые добровольцы (n=14). Циркулирующие уровни miRNA-34a, miRNA-208b и miRNA-126 положительно коррелировали между собой и показали повышенные уровни в группе у пациентов с ИМ, особенно в группе низкой ФВ ЛЖ. Данные результаты подтверждают возможность применения этих биомаркеров в качестве диагностических инструментов у исследуемой категории больных [37].

MiRNA-34a и сердечная недостаточность

Показано увеличение микроРНК-34a при СН [7, 9, 38].

S. Matsumoto и соавт. провели работу по идентификации циркулирующих miRNAs, которые могут служить надежными предикторами развития ишемической СН у пациентов после ОИМ. Среди 377 исследованных miRNAs уровень только трех из них (miRNA-192, miRNA-194 и miRNA-34а) в сыворотке крови достоверно повышался у больных ОИМ с последующим развитием ишемической СН. Кроме того, уровни экспрессии miRNA-194 и miRNA-34a достоверно коррелировали с конечно-диастолическим размером левого желудочка (КДР ЛЖ) через 1 год после ОИМ. Таким образом, авторы предполагают, что уровни этих трех циркулирующих miRNAs имеют ценность для прогнозирования риска развития ишемической СН после ОИМ [39].

Результаты работы J. Hu и соавт. показали, что miRNA-34a является важным биомаркером для прогнозирования ремоделирования ЛЖ после ОИМ. Повышенные уровни miRNA-34a нарушают механизмы сокращения и возбуждения миокарда, что в дальнейшем приводит к сердечной дисфункции посредством нацеливания на соединительный белок 2 (юнктофилин 2, Jph2). Антагонист miRNA-34a значительно уменьшал выраженность СН [40].

P. Lv и соавт. изучали miRNAs у 359 пациентов, перенесших ИМ. Было выявлено, что повышенные уровни miRNAs были тесно связаны с риском смертности или СН в течение 6 мес (miRNA-208b: ОШ=17,91, 95% ДИ 2,07—98,81, p=0,003; miRNA-34а: ОШ=4,18, 95% ДИ 1,36—12,83, p=0,012; комбинация двух данных miRNAs: ОШ=18,73, 95% ДИ 1,96—101,23, p=0,000). Эти результаты показали, что циркулирующие miRNA-208b и miRNA-34a возможно позиционировать как прогностические биологические маркеры у больных, которые перенесли ИМ [41].

MiRNA-34a и ишемическое реперфузионное повреждение

Индуцированная ишемией/реперфузией (И/Р) гибель кардиомиоцитов является основным барьером, ограничивающим восстановление функции сердца у больных ОИМ. Активные формы кислорода, генерируемые митохондриями, приводят к гибели кардиомиоцитов при И/Р-повреждении (IRI) сердца [7].

Было продемонстрировано, что сверхэкспрессия miRNA-34a усугубляет IRI миокарда за счет увеличения апоптоза клеток и размера инфаркта, снижения функции ЛЖ, в то время как подавление miRNA-34a уменьшает IRI миокарда [42].

Q. Li и соавт. наблюдали, что уровень miRNA-34a был значительно повышен у крыс с IRI по сравнению с грызунами контрольной группы. Инъекция аденовируса, ингибирующего miRNA-34a, в переднюю стенку ЛЖ улучшала функцию сердца и уменьшала повреждение миокарда. Кардиомиоциты H9c2, подвергнутые реоксигенации (H/R), демонстрировали очевидное увеличение экспрессии miRNA-34a. Кроме того, ингибитор miRNA-34a облегчал H/R-индуцированное повреждение митохондрий. Регулятор апоптоза Bcl-2 был идентифицирован как целевой ген miRNA-34a. Нокдаун Bcl-2 нивелировал кардиопротективный эффект ингибитора miRNA-34a в клетках H9c2. Таким образом, данное исследование демонстрирует, что ингибирование miRNA-34a обладает терапевтическим потенциалом при лечении IRI [43].

Было продемонстрировано, что метформин оказывает благотворное воздействие при IRI. Цель работы W. Li и соавт. состояла в том, чтобы определить механизмы, с помощью которых метформин уменьшает апоптоз миокарда при IRI. В модели IRI in vivo у крыс метформин уменьшал площадь повреждения миокарда и подавлял индукцию каспазы-3 (CASP3), одного из ферментов, принимающих участие в развитии апоптоза. Также метформин снижал экспрессию miRNA-34a, которая активируется при IRI, что, в свою очередь, приводило к соответствующим изменениям экспрессии регулятора апоптоза Bcl-2. Как было выявлено, Bcl-2 является прямой мишенью miRNA-34a как in vitro, так и in vivo. Для дальнейшего изучения роли miRNA-34a клетки H9C2 трансфицировали миметиком и ингибитором miRNA-34a. Сверхэкспрессия miRNA-34a увеличивала апоптоз в клетках H9C2. Метформин снижал активность деацетилирования SIRT1, что приводило к снижению уровней miRNA-34a. Таким образом, метформин может быть полезен при лечении IRI миокарда [44].

Роль miRNA-34a при кардиомиопатиях

В настоящее время существует небольшое количество работ, посвященных изучению роли miRNA-34a при кардиомиопатиях (КМП). Было показано, что miRNA-34a является отрицательным регулятором при гипертрофической КМП, усугубляя воспаление клеток миокарда через сигнальный путь трансформирующего фактора роста бета TGF-β/канонический путь Smad [45]. Согласно данным S. Costantino и соавт., miRNA-34a чрезмерно экспрессировалась при диабетической КМП и способствовала апоптозу при данной патологии [46]. L. Gao и соавт. показали, что miRNA-34a усиливала глюкозо-индуцированное воспаление, окислительный стресс и гибель клеток, нацеливаясь на SIRT1 в клетках H9C2 [47]. T. Ni и соавт. продемонстрировали, что трансфекция ингибитором miRNA-34a значительно снижала клеточный апоптоз при диабетической КМП; лечение дигидромирицетином уменьшало экспрессию miRNA-34a и сердечную дисфункцию, восстанавливало аутофагию при рассматриваемом заболевании [48]. B. Bernardo и соавт. в своем исследовании установили повышение miRNA-34a в сердцах мышей с диабетической КМП, кроме того, авторы выявили, что винкулин является мишенью miRNA-34a. Было показано, что ингибирование miRNA-34a не оказывает существенного влияния на диастолическую функцию ЛЖ и размер предсердий, но умеренно воздействует на уменьшение фиброза сердца и экспрессии мозгового натрийуретического пептида (BNP) [49].

Роль miRNA-34a при фибрилляции предсердий

Фибрилляция предсердий (ФП) является наиболее часто встречающейся аритмией. Было показано, что miRNAs играют важную роль при ФП. Калиевый канал TASK-1 представляет собой предсердно-специфический ионный канал, активность которого повышается при ФП. Ингибирование тока TASK-1 удлиняет продолжительность предсердного потенциала действия до тех же уровней, что и у пациентов с синусовым ритмом. F. Wiedmann и соавт. установили, что miRNA-34a увеличивала экспрессию и ток TASK-1. КДР ЛЖ, конечно-систолический размер левого желудочка (КСР ЛЖ), диаметр левого предсердия, предсердный коллаген альфа-1 типа I и экспрессия канала TASK-1 были связаны с повышенной экспрессией miRNA-25, -21, -34a, -23a, -124, -1 и -29b, а также со снижением экспрессии miRNA-9 и miRNA-485. Эти результаты свидетельствуют о важном патофизиологическом участии miRNAs в регуляции экспрессии калиевого канала TASK-1 в предсердиях у пациентов с ФП [50].

Недавно было продемонстрированно, что анкирин-B (Ank-B), адаптерный белок, связан с ФП. Работа Y. Zhu и соавт. была направлена на изучение того, играет ли miRNA-34a роль при ФП посредством регуляции экспрессии Ank-B. Обнаружено, что уровень экспрессии Ank-B был ниже в ткани предсердий у пациентов с ФП по сравнению с больными без ФП. Показано, что 3’-нетранслируемая область Ankyrin 2 (ген, кодирующий Ank-B) содержит сайты связывания miRNA-34a. Кроме того, уровни экспрессии Ank-B и натрий-кальциевого обменника 1 (партнер по связыванию Ank-B, важный для гомеостаза Ca2+), а также внутриклеточная передача сигналов Ca2+ были изменены после модуляции miRNA-34a. Таким образом, miRNA-34a может иметь большое значение в электрофизиологическом ремоделировании и развитии ФП посредством регуляции экспрессии Ank-B [51].

Исследование S. Xiao и соавт. было направлено на выявление потенциальных новых биомаркеров при персистирующей ФП. Авторы установили, что miRNA-34a, которая может нацеливаться на регулятор кальциневрина 1 (RCAN1) и кальциневриновую субъединицу B типа 1 (PPP3R1) через сигнальный путь кальцинейрин-ядерный фактор активированных Т-клеток (NFAT), играет весомую роль при ФП [52].

Заключение

Использование miRNAs в медицине в качестве диагностических и прогностических биологических маркеров является предметом активного изучения, но пока далеко от практической реализации. Все еще не созданы диагностические панели, основанные на оценке уровней miRNAs, которые были бы более чувствительны, специфичны и экономически выгодны, чем имеющиеся на данный момент биомаркеры. Применение miRNAs в качестве терапевтической мишени тоже пока не реализовано. В настоящее время широко проводятся испытания, посвященные аспектам внедрения антисмысловых олигонуклеотидов, миметиков и ингибиторов различных miRNAs как лекарственные средства.

Экспериментальные и клинические исследования продемонстрировали весомую значимость miRNA-34a при ССЗ. Было выявлено, что гиперэкспрессия miRNA-34a подавляет аутофагию и способствует апоптозу, воспалению, фиброзу, ремоделированию, старению и дисфункции сердца. Показано, что ингибирование miRNA-34a усиливает аутофагию, уменьшает апоптоз, оказывает антиоксидантное и антифиброзное действие на ССС. В приведенном обзоре систематически представлена регуляторная роль miRNA-34a при сердечно-сосудистой патологии и приведены доказательства пользы использования miRNA-34a в качестве потенциальной терапевтической мишени. Необходимы дальнейшие дополнительные доклинические и клинические испытания для выявления потенциальных преимуществ и побочных эффектов ингибиторов miRNA-34a при ССЗ.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Алиева А.М., Теплова Н.В., Кисляков В.А., Воронкова К.В., Шнахова Л.М., Валиев Р.К., Рахаев А.М., Эльмурзаева Д.А., Малкарова Д.С., Никитин И.Г. Биомаркеры в кардиологии: микроРНК и сердечная недостаточность. Терапия. 2022;1:60-70.  https://doi.org/10.18565/therapy.2022.1.60-70
  2. Khan AA, Gupta V, Mahapatra NR. Key regulatory miRNAs in lipid homeostasis: Implications for cardiometabolic diseases and development of novel therapeutics. Drug Discovery Today. 2022;27(8):2170-2180. https://doi.org/10.1016/j.drudis.2022.05.003
  3. Ромакина В.В., Жиров И.В., Насонова С.Н., Засеева А.В., Кочетов А.Г., Лянг О.В., Терещенко С.Н. МикроРНК как биомаркеры сердечно-сосудистых заболеваний. Кардиология. 2018;58(1):66-71.  https://doi.org/10.18087/cardio.2018.1.10083
  4. Чулкова С.В., Рябчиков Д.А., Дудина И.А., Казаков А.М., Егорова А.В., Титов К.С., Хагажеева М.Н., Гладилина И.А., Галаева З.М., Лепкова Н.В., Тупицын Н.Н. Перспективы использования микроРНК в качестве диагностических и прогностических биомаркеров меланомы. Российский биотерапевтический журнал. 2019;18:51-57.  https://doi.org/10.17650/1726-9784-2019-18-4-51-56
  5. Qiao E, Huang Z, Wang W. Exploring potential genes and pathways related to calcific aortic valve disease. Gene. 2022;808:145987. https://doi.org/10.1016/j.gene.2021.145987
  6. Kalayinia S, Arjmand F, Maleki M, Malakootian M, Singh CP. MicroRNAs: roles in cardiovascular development and disease. Cardiovascular Pathology. 2021;50:107296. https://doi.org/10.1016/j.carpath.2020.107296
  7. Hua CC, Liu XM, Liang LR, Wang LF, Zhong JC. Targeting the microRNA-34a as a Novel Therapeutic Strategy for Cardiovascular Diseases. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 2022;8:784044. https://doi.org/10.3389/fcvm.2021.784044
  8. Cartas-Espinel I, Telechea-Fernandez M, Manterola Delgado C, Avila Barrera A, Saavedra Cuevas N, Riffo-Campos AL. Novel molecular biomarkers of cancer therapy-induced cardiotoxicity in adult population: a scoping review. ESC Heart Failure. 2022;9(3):1651-1665. https://doi.org/10.1002/ehf2.13735
  9. Raucci A, Macrì F, Castiglione S, Badi I, Vinci MC, Zuccolo E. MicroRNA-34a: the bad guy in age-related vascular diseases. Cellular and Molecular Life Sciences. 2021;78(23):7355-7378. https://doi.org/10.1007/s00018-021-03979-4
  10. Dong F, Dong S, Liang Y, Wang K, Qin Y, Zhao X. MiR-34a promotes myocardial infarction in rats by inhibiting the activity of SIRT1. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 2019;23(16):7059-7065. https://doi.org/10.26355/eurrev_201908_18750
  11. Iekushi K, Seeger F, Assmus B, Zeiher AM, Dimmeler S. Regulation of cardiac microRNAs by bone marrow mononuclear cell therapy in myocardial infarction. Circulation. 2012;125(14):1765-1773. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.111.079699
  12. Baker JR, Vuppusetty C, Colley T, Papaioannou AI, Fenwick P, Donnelly L, Ito K, Barnes PJ. Oxidative stress dependent microRNA-34a activation via PI3Kα reduces the expression of sirtuin-1 and sirtuin-6 in epithelial cells. Scientific Reports. 2016;6:35871. https://doi.org/10.1038/srep35871
  13. He M, Gao L, Zhang S, Tao L, Wang J, Yang J, Zhu M. Prognostic significance of miR-34a and its target proteins of FOXP1, p53, and BCL2 in gastric MALT lymphoma and DLBCL. Gastric Cancer. 2014;17(3):431-441.  https://doi.org/10.1007/s10120-013-0313-3
  14. Raddatz MA, Vander Roest MJ, Merryman WD. Notch1 suppression by microRNA-34a: a new mechanism of calcific aortic valve disease. Cardiovascular Research. 2020;116(5):871-873.  https://doi.org/10.1093/cvr/cvz280
  15. Wu KH, Xiao QR, Yang Y, Xu JL, Zhang F, Liu CM, Zhang ZM, Lu YQ, Huang NP. MicroRNA-34a modulates the Notch signaling pathway in mice with congenital heart disease and its role in heart development. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 2018;114:300-308.  https://doi.org/10.1016/j.yjmcc.2017.11.015
  16. Yu N, Wu JL, Xiao J, Fan L, Chen SH, Li W. HIF-1α regulates angiogenesis via Notch1/STAT3/ETBR pathway in trophoblastic cells. Cell Cycle. 2019;18(24):3502-3512. https://doi.org/10.1080/15384101.2019.1689481
  17. Pan J, Zhou L, Lin C, Xue W, Chen P, Lin J. MicroRNA-34a Promotes Ischemia-Induced Cardiomyocytes Apoptosis through Targeting Notch1. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2022;2022:1388415. https://doi.org/10.1155/2022/1388415
  18. Sakai S, Maruyama H, Kimura T, Tajiri K, Honda J, Homma S, Aonuma K, Miyauchi T. Antagonists to endothelin receptor type B promote apoptosis in human pulmonary arterial smooth muscle cells. Life Sciences. 2016;159:116-120.  https://doi.org/10.1016/j.lfs.2016.03.044
  19. Huang Y, Qi Y, Du JQ, Zhang DF. MicroRNA-34a regulates cardiac fibrosis after myocardial infarction by targeting Smad4. Expert Opinion on Therapeutic Targets. 2014;18(12):1355-1365. https://doi.org/10.1517/14728222.2014.961424
  20. Dorn G. miR-34a and the cardiomyopathy of senescence: SALT PNUTS, SALT PNUTS! Cell Metabolism. 2013;17(5):629-630.  https://doi.org/10.1016/j.cmet.2013.04.004
  21. Zhang H, Zhao Z, Pang X, Yang J, Yu H, Zhang Y, Zhou H, Zhao J. MiR-34a/sirtuin-1/foxo3a is involved in genistein protecting against ox-LDL-induced oxidative damage in HUVECs. Toxicology Letters. 2017;277:115-122.  https://doi.org/10.1016/j.toxlet.2017.07.216
  22. Natarajan S, Stringham B, Mohr A, Wehrkamp C, Lu S, Phillippi M, Harrison-Findik D, Mott J. FoxO3 increases miR-34a to cause palmitate-induced cholangiocyte lipoapoptosis. Journal of Lipid Research. 2017;58(5):866-875.  https://doi.org/10.1194/jlr.M071357
  23. Shao H, Yang L, Wang L, Tang B, Wang J, Li Q. MicroRNA-34a protects myocardial cells against ischemia-reperfusion injury through inhibiting autophagy via regulating TNFα expression. Biochemistry and Cell Biology. 2018;96(3):349-354.  https://doi.org/10.1139/bcb-2016-0158
  24. Ni T, Lin N, Lu W, Sun Z, Lin H, Chi J, Guo H. Dihydromyricetin Prevents Diabetic Cardiomyopathy via miR-34a Suppression by Activating Autophagy. Cardiovascular Drugs and Therapy. 2020;34(3):291-301.  https://doi.org/10.1007/s10557-020-06968-0
  25. Bian W, Tian F, Jiang L, Sun Y, Wu S, Gao B, Kang Z, Zhuo Z, Zhang X. Influence of miR-34a on myocardial apoptosis in rats with acute myocardial infarction through the ERK1/2 pathway. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 2019;23(7):3034-3041. https://doi.org/10.26355/eurrev_201904_17585
  26. Zhang C, Zhang Y, Zhu H, Hu J, Xie Z. MiR-34a/miR-93 target c-Ski to modulate the proliferaton of rat cardiac fibroblasts and extracellular matrix deposition in vivo and in vitro. Cellular Signalling. 2018;46:145-153.  https://doi.org/10.1016/j.cellsig.2018.03.005
  27. Bernardo B, Gao X, Winbanks C, Boey E, Tham Y, Kiriazis H, Gregorevic P, Obad S, Kauppinen S, Du X, Lin R, McMullen J. Therapeutic inhibition of the miR-34 family attenuates pathological cardiac remodeling and improves heart function. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2012;109(43):17615-17620. https://doi.org/10.1073/pnas.1206432109
  28. Mahjoob G, Ahmadi Y, Fatima Rajani H, Khanbabaei N, Abolhasani S. Circulating microRNAs as predictive biomarkers of coronary artery diseases in type 2 diabetes patients. Journal of Clinical Laboratory Analysis. 2022;36(5):e24380. https://doi.org/10.1002/jcla.24380
  29. Xu Y, Xu Y, Zhu Y, Sun H, Juguilon C, Li F, Fan D, Yin L, Zhang Y. Macrophage miR-34a Is a Key Regulator of Cholesterol Efflux and Atherosclerosis. Molecular Therapy. 2020;28(1):202-216.  https://doi.org/10.1016/j.ymthe.2019.09.008
  30. Su G, Sun G, Liu H, Shu L, Liang Z. Downregulation of miR-34a promotes endothelial cell growth and suppresses apoptosis in atherosclerosis by regulating Bcl-2. Heart Vessels. 2018;33(10):1185-1194. https://doi.org/10.1007/s00380-018-1169-6
  31. Ito T, Yagi S, Yamakuchi M. MicroRNA-34a regulation of endothelial senescence. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2010;398(4):735-740.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2010.07.012
  32. Li X, Lu Z, Zhou F, Jin W, Yang Y, Chen S, Xie Z, Zhao Y. Indoxyl sulfate promotes the atherosclerosis through up-regulating the miR-34a expression in endothelial cells and vascular smooth muscle cells in vitro. Vascular Pharmacology. 2020;131:106763. https://doi.org/10.1016/j.vph.2020.106763
  33. Han H, Qu G, Han C, Wang Y, Sun T, Li F, Wang J, Luo S. MiR-34a, miR-21 and miR-23a as potential biomarkers for coronary artery disease: a pilot microarray study and confirmation in a 32-patient cohort. Experimental and Molecular Medicine. 2015;47(2):e138. https://doi.org/10.1038/emm.2014.81
  34. Gatsiou A, Georgiopoulos G, Vlachogiannis N, Pfisterer L, Fischer A, Sachse M, Laina A, Bonini F, Delialis D, Tual-Chalot S, Zormpas E, Achangwa R, Jiang L, Kontogiannis C, Patras R, Hermeking H, Zeiher AM, Stamatelopoulos K, Dimmeler S. Additive contribution of microRNA-34a/b/c to human arterial ageing and atherosclerosis. Atherosclerosis. 2021;327:49-58.  https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2021.05.005
  35. Li H, Chen M, Feng Q, Lin Zhu, Bai Z, Wang B, Guo Z, Hou A, Li H. MicroRNA-34a in coronary heart disease: Correlation with disease risk, blood lipid, stenosis degree, inflammatory cytokines, and cell adhesion molecules. Journal of Clinical Laboratory Analysis. 2022;36(1):e24138. https://doi.org/10.1002/jcla.24138
  36. Li J, Dai J, Han B, Wu G, Wang C. MiR-34a regulates cell apoptosis after myocardial infarction in rats through the Wnt/β-catenin signaling pathway. European Reviews for Medical and Pharmacological Sciences. 2019;23(6):2555-2562. https://doi.org/10.26355/eurrev_201903_17404
  37. Lakhani H, Khanal T, Gabi A, Yousef G, Alam MB, Sharma D, Aljoudi H, Puri N, Thompson E, Shapiro JI, Sodhi K. Developing a panel of biomarkers and miRNA in patients with myocardial infarction for early intervention strategies of heart failure in West Virginian population. PLoS One. 2018;13(10):e0205329. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0205329
  38. Zhou R, Wang L, Zhao G, Chen D, Song X, Momtazi-Borojeni AA, Yuan H. Circulating exosomal microRNAs as emerging non-invasive clinical biomarkers in heart failure: Mega bio-roles of a nano bio-particle. IUBMB Life. 2020;72(12):2546-2562. https://doi.org/10.1002/iub.2396
  39. Matsumoto S, Sakata Y, Suna S, Nakatani D, Usami M, Hara M, Kitamura T, Hamasaki T, Nanto S, Kawahara Y, Komuro I. Circulating p53-responsive microRNAs are predictive indicators of heart failure after acute myocardial infarction. Circulation Research. 2013;113(3):322-326.  https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.113.301209
  40. Hu J, Gao C, Wei C, Xue Y, Shao C, Hao Y, Gou LT, Zhou Y, Zhang J, Ren S, Chen J, Wang Y, Fu XD. RBFox2-miR-34a-Jph2 axis contributes to cardiac decompensation during heart failure. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2019;116(13):6172-6180. https://doi.org/10.1073/pnas.1822176116
  41. Lv P, Zhou M, He J, Meng W, Ma X, Dong S, Meng X, Zhao X, Wang X, He F. Circulating miR-208b and miR-34a are associated with left ventricular remodeling after acute myocardial infarction. International Journal of Molecular Sciences. 2014;15(4):5774-5788. https://doi.org/10.3390/ijms15045774
  42. Fu B, Lang J, Zhang D, Sun L, Chen W, Liu W, Liu K, Ma C, Jiang S, Li R, Tian H. Suppression of miR-34a Expression in the Myocardium Protects Against Ischemia-Reperfusion Injury Through SIRT1 Protective Pathway. Stem Cells and Development. 2017;26(17):1270-1282. https://doi.org/10.1089/scd.2017.0062
  43. Li Q, Ge Z, Xiang Y, Tian D, Tang Y, Zhang YC. Upregulation of microRNA-34a enhances myocardial ischemia-reperfusion injury via the mitochondrial apoptotic pathway. Free Radical Research. 2022;56(3-4):229-244.  https://doi.org/10.1080/10715762.2021.1953004
  44. Li W, Jin S, Hao J, Shi Y, Li W, Jiang L. Metformin attenuates ischemia/reperfusion-induced apoptosis of cardiac cells by downregulation of p53/microRNA-34a via activation of SIRT1. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 2021;99(9):875-884.  https://doi.org/10.1139/cjpp-2020-0180
  45. Sun Y, Ren J, Wu W. Effect of MiR-34a on hypertension-induced hypertrophic cardiomyopathy in rats via the TGF-β1/Smads signaling pathway. Minerva Medica. 2021;112(3):405-406. 
  46. Costantino S, Paneni F, Luscher T, Cosentino F. MicroRNA profiling unveils hyperglycaemic memory in the diabetic heart. European Heart Journal. 2016;37(6):572-576.  https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehv599
  47. Gao L, Wang X, Guo S, Lili Xiao, Liang C, Wang Z, Li Y, Liu Y, Yao R, Liu Y, Zhang Y. LncRNA HOTAIR functions as a competing endogenous RNA to upregulate SIRT1 by sponging miR-34a in diabetic cardiomyopathy. Journal of Cellular Physiology. 2019;234(4):4944-4958. https://doi.org/10.1002/jcp.27296
  48. Ni T, Lin N, Lu W, Sun Z, Lin H, Chi J, Guo H. Dihydromyricetin Prevents Diabetic Cardiomyopathy via miR-34a Suppression by Activating Autophagy. Cardiovascular Drugs and Therapy. 2020;34(3):291-301.  https://doi.org/10.1007/s10557-020-06968-0
  49. Bernardo BC, Yildiz GS, Kiriazis H, Harmawan CA, Tai CMK, Ritchie RH, McMullen JR. In Vivo Inhibition of miR-34a Modestly Limits Cardiac Enlargement and Fibrosis in a Mouse Model with Established Type 1 Diabetes-Induced Cardiomyopathy, but Does Not Improve Diastolic Function. Cells. 2022;11(19):3117. https://doi.org/10.3390/cells11193117
  50. Wiedmann F, Kraft M, Kallenberger S, Buscher A, Paasche A, Blochberger PL, Seeger T, Javorszky N, Warnecke G, Arif R, Kremer J, Karck M, Frey N, Schmidt C. MicroRNAs Regulate TASK-1 and Are Linked to Myocardial Dilatation in Atrial Fibrillation. Journal of the American Heart Association. 2022;11(7):e023472. https://doi.org/10.1161/JAHA.121.023472
  51. Zhu Y, Feng Z, Cheng W, Xiao Y. MicroRNA-34a mediates atrial fibrillation through regulation of Ankyrin-B expression. Molecular Medicine Reports. 2018;17(6):8457-8465. https://doi.org/10.3892/mmr.2018.8873
  52. Xiao S, Zhou Y, Liu A, Wu Q, Hu Y, Liu J, Zhu H, Yin T, Pan D. Uncovering potential novel biomarkers and immune infiltration characteristics in persistent atrial fibrillation using integrated bioinformatics analysis. Mathematical Biosciences and Engineering. 2021;18(4):4696-4712. https://doi.org/10.3934/mbe.2021238

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.