В.Х.А. Суайфан

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Еремеева К.В.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Свистушкин В.М.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Русецкий Ю.Ю.

ФГАУ «Национальный медицинский исследовательский центр здоровья детей» Минздрава России;
ФГБУ ДПО «Центральная государственная медицинская академия» Управления делами Президента Российской Федерации

Морозова О.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Чернова О.В.

ФГАУ «НМИЦ здоровья детей» Минздрава России

Микробиом наружного слухового прохода и предоперационная подготовка пациентов в отохирургии (обзор литературы)

Авторы:

В.Х.А. Суайфан, Еремеева К.В., Свистушкин В.М., Русецкий Ю.Ю., Морозова О.А., Чернова О.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 3148 раз


Как цитировать:

В.Х.А. Суайфан, Еремеева К.В., Свистушкин В.М., Русецкий Ю.Ю., Морозова О.А., Чернова О.В. Микробиом наружного слухового прохода и предоперационная подготовка пациентов в отохирургии (обзор литературы). Вестник оториноларингологии. 2022;87(6):47‑54.
VHASuaifan, Eremeeva KV, Svistushkin VM, Rusetsky YuYu, Morozova OA, Chernova OV. Microbiome of the external auditory canal and preoperative preparation of patients in otosurgery (literature review). Russian Bulletin of Otorhinolaryngology. 2022;87(6):47‑54. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/otorino20228706147

Рекомендуем статьи по данной теме:
Фак­то­ры под­дер­жа­ния хро­ни­чес­ко­го вос­па­ле­ния при пси­хи­чес­ких за­бо­ле­ва­ни­ях. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(8):7-15

Введение

Антисептика и ее принципы, направленные на борьбу против раневой инфекции, сформировались на основании многочисленных трудов врачей разных эпох, в особенности хирургов XIX века. До появления асептики и антисептики летальность достигала 80% при любых, даже самых малых хирургических вмешательствах [1].

В современной медицине антисептика (лат. anti — против, septicus — гниение) представляет собой систему мероприятий, направленных на уничтожение микроорганизмов в ране, патологическом очаге, снижение опасности их проникновения в рану и развития в ней, для чего используются механические и физические методы воздействия, активные химические вещества и биологические факторы [2].

Антисептическая обработка кожи перед хирургическим вмешательством является медицинским стандартом ухода за больными во всем мире, она уменьшает количество раневых инфекций [3]. По данным литературы, нет конкретных указаний об обработке кожи наружного слухового прохода; в общей хирургии при наличии волос на коже предполагаемого места разреза, которые могут мешать хирургу во время операции, рекомендуется удалить их либо кремом, либо триммером, но не бритьем, далее производится обработка кожи антисептиком. Принимать душ нужно с обычным или антисептическим мылом за сутки до операции или непосредственно перед операцией. Антибиотики, в случае их применения, предпочтительно назначать не более чем за 120 мин перед операцией [4].

D.W. Stroman и соавт. собрали образцы мазков с кожи наружного слухового прохода (НСП) и серы у 164 здоровых добровольцев. Идентификация вида получена путем объединения фенотипических и генотипических данных. При культивировании образцов с кожи НСП в 17 пробах роста микроорганизмов не выявили. Из 147 образцов с кожи НСП получено 310 штаммов микроорганизмов, из них 8 изолятов грибов (Candida parapsilosis, Penicillium viridicatum и др.). Из 302 бактерий, выделенных с кожи НСП, 96% были грамположительными. Стафилококки (S. auricularis, S. epidermidis, S. capitis и др.) составили 63% среди бактерий. Коринеформные бактерии обнаружены в 19% случаев, доминирующим видом среди коринебактерий был Turicella otitidis. Стрептококкоподобные бактерии составляли 7%. В 16 образцах серы рост микроорганизмов не обнаружен, еще в 148 образцах серы идентифицировано 314 микроорганизмов, из них 23 — грибковая флора (Penicillium glabrum, Candida parapsilosis и др.). Подавляющее большинство (99%) бактерий, выделенных из образцов серы, также представлены грамположительными бактериями. Как и в образцах с кожи НСП, преобладающими бактериями в сере были различные виды стафилококков — 63%, коринеформные бактерии — 22%, в основном Turicella otitidis, и стрептококкоподобные бактерии — 10%, из которых вид Alloicoccus otitis составил более 95% как в образцах серы, так и в образцах с кожи НСП. Кроме того, выделено 15 изолятов грамотрицательных бактерий, включая четыре штамма Pseudomonas aeruginosa, как из серы, так и с кожи НСП [5].

Полученные данные указывают на наличие постоянной сапрофитной флоры в НСП у здоровых людей, что не исключает риск инфицирования раны при хирургическом вмешательстве. Попадание микроорганизмов в среднее ухо (СУ) может спровоцировать развитие среднего отита, а также распространение инфекции во внутреннее ухо. Используя методы молекулярной диагностики и стандартные методы культивирования для обнаружения колонизирующих СУ микроорганизмов, многие авторы стремились подтвердить теорию о том, что здоровое СУ является обычно стерильным участком [6]. Однако S.B. Minami и соавт., используя метод 16S-ампликонового секвенирования, исследовали у 155 пациентов наличие микробиоты в СУ и пришли к выводу, что СУ человека населено разнообразными микробами и изменение микробиома СУ может способствовать развитию хронического среднего отита с активным воспалением [7]. J. Jervis-Bardy и соавт., в свою очередь, опровергли результаты исследования S.B. Minami, применяя методики культивирования возбудителей, микроскопии, количественной полимеразной цепной реакции (ПЦР) и секвенирования гена 16S рибосомальной РНК (рРНК) для оценки содержания бактерий у 25 взрослых пациентов, перенесших кохлеарную имплантацию, стапедотомию или транслабиринтную вестибулярную резекцию шванномы, они пришли к выводу, что количество бактерий в образцах СУ не было значительно выше, чем в неиспользованных контрольных мазках [8].

Молекулярно-филогенетический последовательный анализ обусловил новый взгляд на микробные сообщества, он позволил обнаруживать и идентифицировать микроорганизмы в отсутствие культивирования. D.N. Frank и соавт., используя широкоспецифичную амплификацию генов рибосомальной ДНК (рДНК) для исследования микроорганизмов, присутствующих в НСП, обнаружили, что из 24 человек у большинства испытуемых имелся различный набор микробных типов. Два наиболее распространенных типа последовательностей рДНК, которые идентифицированы у нескольких пациентов, соответствовали Alloiococcus otitis и Corynebacterium otitidis, которые обычно считаются ассоциированными исключительно с инфекциями СУ. Их результаты показывают, что НСП может служить резервуаром для условно-патогенных микробов, которые могут вносить вклад в патогенез инфицирования при внедрении в СУ [9].

Удаление ушной серы также является важным этапом предоперационной подготовки. Скопление серы имеет несколько последствий: может мешать осмотру барабанной перепонки, привести к кондуктивной потере слуха при обтурации слухового прохода, при контакте с барабанной перепонкой может вызвать дискомфорт и иногда головокружение, а также может способствовать инфицированию кожи [10]. Однако удаление серы, в свою очередь, может приводить к травматизации и инфицированию кожи [11], что особенно опасно для пациентов, готовящихся к операции. Таким образом, перед отохирургом возникают следующие вопросы: когда удалять серные массы, накануне хирургического вмешательства или непосредственно в операционной; как удалять, при помощи микроинструментов и аспиратора или промывая слуховой проход препаратами, обладающими церуменолитическими свойствами.

Если говорить об удалении волос в аспекте отохирургии, то дооперационное бритье является общепризнанной практикой среди многих врачей, особенно при классическом заушном доступе. Эта практика основана на убеждении, что бритье волос предотвращает послеоперационные раневые инфекции и облегчает хороший обзор операционного поля [12, 13]. Однако способы удаления волос при эндауральном доступе в литературе освещены недостаточно.

По данным Федеральной службы государственной статистики, за 2017 г. оториноларингологами выполнено 610 893 операции, из них 16 378 хирургических вмешательств с применением высоких медицинских технологий [14]. Учитывая современные тенденции к распространению и внедрению в отохирургическую практику малоинвазивных, эндоуральных, эндоскопических вмешательств на ухе, следует отметить, что вопрос подготовки операционного поля сохраняет свою актуальность.

Цель исследования — провести анализ эффективности методов антисептической и гигиенической предоперационной подготовки операционного поля в отохирургии.

Материал и методы

Выполнен обзор и дана оценка соответствующих цели исследования научных публикаций, содержащихся в базах данных PubMed, Google Scholar.

Результаты и обсуждение

В настоящее время в отологической хирургии сохраняется неопределенность относительно безопасности применения антисептических препаратов в ухе. Еще в 1971 г. P.G. Bicknell описал серии случаев у больных с различной степенью потери слуха, начиная от высокочастотной тугоухости и заканчивая «мертвыми ушами» после тимпанопластики, выполненной с 1961 по 1970 г., и указал на сходство между пациентами, которое заключалось в применении хлоргексидина в качестве предоперационного антисептика для обработки уха [15].

J. Aursnes в исследовании на морских свинках, направленном на обнаружение ототоксичности применяемых антисептиков при локальном воздействии на СУ, установил, что в базальных частях кортиевого органа, которые подвергались воздействию раствором йода или йодофора в 70% спирте в течение 30 мин, произошло незначительное повреждение, а при воздействии в течение 60 мин наблюдалось повреждение вестибулярных рецепторов. При воздействии раствором йода или йодофора в дистиллированной воде (использован препарат, содержащий йод в комплексе с солюбилизирующим агентом) повреждения чувствительного эпителия внутреннего уха не было [16].

T. Ichibangase и соавт. использовали препарат повидон-йода (10%) для заполнения полости СУ у морских свинок, после чего через 24 ч, 7 дней и 28 дней на мембране круглого окна измеряли суммарный потенциал действия. Исследователи обнаружили, что у молодых животных чаще выявлялись признаки ототоксичности по сравнению со взрослыми особями. Одним из объяснений повышенной проницаемости мембраны круглого окна у молодых морских свинок по сравнению со взрослыми является ее толщина, поскольку мембрана утолщается с возрастом. На основании этого выдвинуто предположение, что более толстая мембрана круглого окна у человека может обеспечить бóльшую защиту улитки. Кроме того, промывание полости СУ физиологическим раствором во время операции должно минимизировать ототоксическое действие антисептика. Поскольку возраст животных повлиял на результаты эксперимента, препарат повидон-йода у детей следует использовать с осторожностью [17]. Сравнительный анализ ототоксичности разных концентраций раствора повидон-йода (5%, 7,5%, 10%) на 10-й день после введения в СУ у 24 крыс Sprague-Dawley показал, что коммерчески доступный 10% раствор повидон-йода может вызывать значительные ототоксические эффекты при местном применении через перфорированную барабанную перепонку, при этом токсический эффект не выявлен в группе с использованием 5% повидон-йода [18].

Скраб повидон-йод не рекомендовано использовать для отологических операций [17], так как он содержит детергенты, которые облегчают проникновение антисептика во внутреннее ухо [19, 20].

Исследование влияния 3% раствора перекиси водорода на СУ показало, что у большинства протестированных песчаных крыс средний акустический стволовой вызванный потенциал (auditory brainstem response — ABR) либо отсутствовал, либо был значительно повышен (в среднем с 55 дБ до 108 дБ) [21]. M.E. Nader и соавт. вводили 2 мл 3% раствора перекиси водорода 9 шиншиллам через искусственный ушной шунт в течение 5 мин с последующим дренированием, процедуру повторяли на следующий день и через 5 дней. Пришли к выводу, что клиническое использование 3% раствора перекиси водорода с целью профилактики блока ушных шунтов не вызывает ототоксичности [22].

Хлоргексидин (в концентрации 0,05% и 2%) применен в полость СУ у 12 кошек в качестве предоперационного антисептика, и в обеих концентрациях он вызывал ототоксическое поражение внутреннего уха с последующим прогрессированием на 4-й неделе от момента введения. Кроме того, препарат способствовал появлению обильного серозного отделяемого из уха [23].

При исследовании воздействия нескольких концентраций этанола — в диапазоне от 0,1% до 100% в полостях СУ морских свинок оказалось, что концентрация этанола более 10% является ототоксичной [24].

При оценке повреждения методом регистрации вызванных вестибулярных потенциалов (vestibular evoked potentials — VsEP) и акустических стволовых вызванных потенциалов (ABR) и при сравнении влияния хлоргексидина биглюконата 0,5%, повидон-йода 10% и этилового спирта 70% на функцию вестибулярного и улиткового отделов внутреннего уха песчаных крыс R. Perez и соавт. выявили, что хлоргексидина биглюконат и этиловый спирт оказали явное токсическое влияние на вестибулярную и улитковую функцию внутреннего уха крыс, кроме того, 70% этиловый спирт также вызвал выраженные патологические изменения в полости СУ, включая эритему и отек слизистой оболочки; повидон-йод токсического воздействия не оказал [25].

Все указанные выше исследования антисептиков выполнены на животных, в связи с чем не может быть проведена прямая корреляция с человеком. Различия в анатомии среднего и внутреннего уха, дозировке антисептических препаратов, продолжительности воздействия и других параметрах не позволяют прийти к однозначному выводу о степени вредности антисептиков по отношению к людям, при этом предполагается, что препарат повидон-йода 10% без содержания спирта и детергентов может быть наименее ототоксичным, но должен применяться с осторожностью.

I.B. Arslan и соавт. применили повидон-йод 10% у 63 пациентов для оценки изменения микроорганизмов НСП в процессе тимпанопластики I типа заушным доступом. Взяты мазки на микрокультуру из НСП до и после применения антисептика с помощью абсорбированной турунды. Идентификация микроорганизмов проводилась на основе микробиологических, морфологических и биохимических характеристик. В образцах найдены как условно-патогенные, так и патогенные микроорганизмы. Исследование послеоперационных образцов выявило, что все 7 (100%) выделенных изолятов (4 изолята Staphylococcus aureus и 3 изолята Candida albicans) уничтожены. Эти результаты свидетельствуют о том, что применение повидон-йодного антисептика перед тимпанопластикой является эффективным методом уничтожения микроорганизмов, особенно патогенных бактерий [26].

Для обработки кожных покровов используется антисептический препарат российского производства мирамистин (бензилдиметил [3-миристоиламино) пропил] аммоний хлорида моногидрата), который создан в рамках всесоюзной программы «Космические биотехнологии» для обработки кожи космонавтов в 80-х годах ХХ века. Обладает выраженным бактерицидным [27—29], противогрибковым [30, 31], противовирусным действием [32, 33], а также действует на возбудителей заболеваний, передающихся половым путем. Препарат не всасывается через кожу и слизистые оболочки. Мирамистин применяется в различных областях медицины: в хирургии [34], гинекологии [35], офтальмологии [36], стоматологии [37], оториноларингологии [38] и других [39]. В частности, данный антисептик применялся на тампонах после стапедопластики [40], в комплексном лечении наружного диффузного отита [41], хронического гнойного среднего отита [42]. Еще один российский препарат, окомистин, по составу отличается от мирамистина наличием натрия хлорида и широко применяется в офтальмологии [43], а также в оториноларингологии при комплексном лечении острого риносинусита, среднего отита и отомикоза [44]. При отитах применяется в виде капель или на марлевой турунде, помещаемой в НСП, а также в комплексном лечении с помощью аппаратного ультразвукового орошения или введения в барабанную полость совместно с антибиотиками [44]. Нет данных, указывающих на ототоксичность этих препаратов.

Диоксидин (гидроксиметилхиноксилиндиоксид) — еще один российский препарат с широким антибактериальным спектром действия, способствует более быстрому очищению раневой поверхности, стимулирует репаративную регенерацию и краевую эпителизацию. В оториноларингологии местно применяется 0,25% раствор диоксидина. В исследовании А.Ю. Овчинникова и С.С. Егияна на 80 пациентах применен диоксидин в качестве антимикробного препарата для лечения воспалительных заболеваний при наружном и среднем отите. Результаты показали высокую эффективность, безопасность и отсутствие ототоксичности [45, 46]. Но перед назначением диоксидина необходимо выполнить определение чувствительности к этому препарату для всех лиц, принимающих или когда-либо принимавших диоксидин, в связи с развитием резистентности к данному препарату [47]. Диоксидин также применяют в лечении острого тонзиллофарингита [48]. Данные об ототоксичности данного препарата отсутствуют.

Важной частью предоперационной подготовки НСП является удаление скопившейся ушной серы. Для пациентов, идущих на плановые ушные операции, требуется оптимальный метод удаления серных масс с наименьшей вероятностью возникновения побочных реакций в НСП, занимающий наименьшее количество времени для выполнения и способствующий лучшему обзору хирургического поля, что значительно облегчает работу хирурга.

Механические методы удаления серы бывают двух типов: сухой и влажный. При сухой очистке сера удаляется при помощи ушной кюретки или аспиратора, при этом высок риск травматизации НСП. При влажном методе серные массы отмывают при помощи шприца Жане, противопоказанием к данной процедуре является наличие перфорации барабанной перепонки. Данные процедуры осуществляются в том числе с помощью современных установок (комбайнов), в которых есть система подачи воды и приспособления для аспирации, что существенно облегчает процедуру удаления серы. Средства для самостоятельного применения (церуменолитики) включают использование капель или спрея для смягчения и выведения серы, что может привести к естественному самоочищению НСП [49] или к более легкому и эффективному удалению серных масс механическим путем [50, 51].

Анализ исследований, направленных на оценку эффективности разных препаратов-церуменолитиков, показал, что капли, используемые в течение 5 дней, по сравнению с отсутствием лечения могут повысить вероятность того, что НСП полностью очистится от серных масс. Эффект от применения церуменолитических средств может быть незначительным или выраженным, вплоть до полного устранения серных масс, но при этом сохраняется высокая вероятность самопроизвольного клиренса без какого-либо лечения [52—55]. В нескольких отдельных исследованиях по оценке и сравнению эффективности двух церуменолитиков не найдены доказательства превосходства того или иного средства [56—58]. Не было различий между лечением активными препаратами на масляной и немасляной основах [52]. Исследования показали превосходство простых, нетоксичных и дешевых средств, таких как миндальное масло, над запатентованными препаратами, которые стоят в 9—15 раз дороже [59]. Так, физиологический раствор показал себя как достаточно эффективный церуменолитик [58]. Некоторые препараты могут вызывать раздражение кожи НСП [56, 60], поэтому, прежде чем использовать церуменолитик, надо быть готовым к побочным эффектам, о чем пациент должен быть осведомлен.

Волосы в перепончато-хрящевом отделе НСП также могут быть потенциальной средой для обитания как условно-патогенных, так и патогенных микроорганизмов. Большое количество волос в НСП может вызывать повторные инфекции и мешать оптимальному использованию слуховых аппаратов, а также служить причиной оталгии, икоты и шума в ухе [61—64].

Существует несколько методов удаления волос: при помощи ножниц, триммера или депиляционного крема. В исследовании I. Ono использован лазер для эпиляции кожных трансплантатов после реконструктивных операций при пороках ушной раковины [65].

Использование ножниц может привести к травме НСП, и результат бывает неудовлетворительным, так как очень трудно подстригать волосы на одном уровне с кожей. Результаты нескольких исследований указывают на то, что предоперационное бритье волос значительно увеличивает риск инфицирования хирургического поля (surgical site infection — SSI) из-за вызванных бритвой микротравм и разрушения поверхностного барьера кожи [3, 4, 66, 67].

Результаты работы J.J. Miller и соавт. поставили под вопрос целесообразность применения методов депиляции: сравнение двух групп пациентов с предоперационной депиляцией и без нее не выявило существенной разницы в уровне послеоперационного инфицирования [68]. A.J. Mangram и соавт. не рекомендуют удалять волосы перед операцией, если только они не мешают хирургическому вмешательству на месте разреза, в таком случае данную процедуру следует проводить с помощью ножниц, а не бритвой [3]. Центры по контролю и профилактике заболеваний США (Centers for Disease Control and Prevention — CDC) придерживаются указанной рекомендации относительно волосяного покрова при предоперационной подготовке операционного поля. D.H. Lee и соавт. также не выявили статистически значимой разницы в бактериальной обсемененности до разреза и частоте инфицирования хирургического поля между группами небритых и бритых пациентов при операциях с применением заушного доступа [69]. Все существующие работы посвящены исследованию состояния операционного поля заушной области, и нет никаких рекомендаций по подготовке слухового прохода при эндауральном доступе.

Одним из вариантов удаления волос является химическая депиляция. P.W. Vestal (1952) был первым, кто использовал депиляционный крем для предоперационного удаления волос и микроорганизмов, находящихся на поверхности кожи, и показал превосходство данного метода депиляции в предоперационной подготовке [70]. Результаты нескольких исследований показали, что крем для удаления волос является наиболее эффективным и быстрым методом, а затраты компенсируются быстротой и легкостью применения [71—73]. В исследовании P. Thur de Koos и B. McComas, проведенном с участием 253 пациентов, не выявлена статистическая разница в количестве раневых инфекционно-воспалительных осложнений между бритьем и использованием крема для депиляции. Авторы считают, что крем имеет преимущество при депиляции в труднодоступных местах, удобен, если за несколько дней до операции в той же операционной зоне нужно провести диагностическую или хирургическую процедуру, и значительно экономит время, позволяя удалить волосы за день до операции без увеличения риска воспалительных осложнений [72, 73]. В другой работе сообщается, что к преимуществам депиляционного крема можно отнести возможность его использования для ран с грануляциями и то, что он не поддерживает рост бактерий [74]. Описание использования депиляционного крема в НСП нами найдено только в одной работе — M.H. Mir и соавт. [75]. Применять депиляционный крем нужно с осторожностью, так как он может вызывать кожные реакции и ожог [75, 76].

Выводы

Подготовка хирургического поля перед операцией на ухе ставит перед хирургом ряд вопросов, таких как наличие волос и серы, которые частично или полностью затрудняют обзор барабанной перепонки, кроме того, наружный слуховой проход не стерилен (выделяют большое разнообразие микроорганизмов, обитающих на коже). Все это свидетельствует о необходимости дооперационной подготовки для повышения эффективности хирургических вмешательств на ухе и профилактики развития воспалительных осложнений. Трудность выбора средств для антисептической подготовки операционного поля обусловлена необходимостью применения препарата с низким риском развития ототоксичности при длительном воздействии на анатомические структуры среднего уха, но при этом с широким спектром действия на возбудителей. На наш взгляд, этому требованию отвечают препараты повидон-йод 5—10%, мирамистин и окомистин. Однако анализ литературы показал недостаточное количество исследований эффективности применения данных антисептиков для подготовки к отохирургическому вмешательству. Методики очистки слухового прохода от серы и освобождения волос также весьма противоречивы и субъективны, что служит основанием для дальнейшего исследования.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Гостищев В.К. Общая хирургия. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2015.
  2. Петров С.В. Общая хирургия. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2010.
  3. Mangram AJ, Horan TC, Pearson ML, Silver LC, Jarvis WR. Guideline for Prevention of Surgical Site Infection, 1999. Infection Control and Hospital Epidemiology. 1999;20(4):247-280.  https://doi.org/10.1086/501620
  4. World Health Organization. Global guidelines for the prevention of surgical site infection. Geneva: World Health Organization Press; 2016.
  5. Stroman DW, Roland PS, Dohar J, Burt W. Microbiology of normal external auditory canal. Laryngoscope. 2001;111(11 Pt 1):2054-2059. https://doi.org/10.1097/00005537-200111000-00035
  6. Westerberg BD, Kozak FK, Thomas EE, Blondel-Hill E, Brunstein JD, Patrick DM. Is the healthy middle ear a normally sterile site? Otology and Neurotology. 2009;30(2):174-177.  https://doi.org/10.1097/MAO.0b013e31819225a0
  7. Minami SB, Mutai H, Suzuki T, Horii A, Oishi N, Wasano K, Katsura M, Tanaka F, Takiguchi T, Fujii M, Kaga K. Microbiomes of the normal middle ear and ears with chronic otitis media. Laryngoscope. 2017;127(10):371-377.  https://doi.org/10.1002/lary.26579
  8. Jervis-Bardy J, Leong LEX, Papanicolas LE, Ivey KL, Chawla S, Woods CM, Frauenfelder C, Ooi EH, Rogers GB. Examining the Evidence for an Adult Healthy Middle Ear Microbiome. mSphere. 2019;4(5):e00456-004519. https://doi.org/10.1128/mSphere.00456-19
  9. Frank DN, Spiegelman GB, Davis W, Wagner E, Lyons E, Pace NR. Culture-independent molecular analysis of microbial constituents of the healthy human outer ear. Journal of Clinical Microbiology. 2003;41(1):295-303.  https://doi.org/10.1128/jcm.41.1.295-303.2003
  10. Keane EM, Wilson H, McGrane D, Coakley D, Walsh JB. Use of solvents to disperse ear wax. British Journal of Clinical Practice. 1995;49(2):71-72. 
  11. Zivic RC, King S. Cerumen-impaction management for clients of all ages. The Nurse Practitioner. 1993;18(3):29-39.  https://doi.org/10.1097/00006205-199303000-00011
  12. Jackson CG. Principles of temporal bone and skull base surgery. In: Glasscock ME, Gulya AJ, eds. Glasscock-Shambaugh Surgery of the Ear. 5th ed. Hamilton (OT): BC Decker Inc; 2003:263-288. 
  13. Fayad JN, Hoskins BS, Benecke EJ Jr. Otologic instrumentation. In: Brackmann DE, Shelton C, Arriaga MA, eds. Otologic Surgery. 3rd ed. Philadelphia (PA): Saunders; 2010.
  14. Суринов А.Е. Российский статистический ежегодник. 2018: Статистический сборник. М.: Росстат; 2018.
  15. Bicknell PG. Sensorineural deafness following myringoplasty operations. The Journal of Laryngology and Otology. 1971;85(9):957-961.  https://doi.org/10.1017/s0022215100074272
  16. Aursnes J. Ototoxic effect of iodine disinfectants. Acta Otolaryngologica. 1982;93(1-6):219-226.  https://doi.org/10.3109/00016488209130875
  17. Ichibangase T, Yamano T, Miyagi M, Nakagawa T, Morizono T. Ototoxicity of Povidone-Iodine applied to the middle ear cavity of guinea pigs. International Journal of Pediatric Otorhinolaryngology. 2011;75(9):1078-1081. https://doi.org/10.1016/j.ijporl.2011.05.013
  18. Ozkiriş M, Kapusuz Z, Saydam L. Ototoxicity of different concentrations povidone-iodine solution applied to the middle ear cavity of rats. Indian Journal of Otolaryngology and Head and Neck Surgery. 2013;65(2):168-172.  https://doi.org/10.1007/s12070-012-0615-5
  19. Morizono T, Sikora MA. The ototoxicity of topically applied povidone-iodine preparations. Archives of Otolaryngology. 1982;108(4): 210-213.  https://doi.org/10.1001/archotol.1982.00790520010004
  20. Morizono T, Sikora MA. Compound action potential input-output decruitment. Effect of topically applied antiseptics. Archives of Otolaryngology. 1983;109(10):677-681.  https://doi.org/10.1001/archotol.1983.00800240043008
  21. Perez R, Freeman S, Cohen D, Sichel JY, Sohmer H. The effect of hydrogen peroxide applied to the middle ear on inner ear function. Laryngoscope. 2003;113(11):2042-2046. https://doi.org/10.1097/00005537-200311000-00035
  22. Nader ME, Kourelis M, Daniel SJ. Hydrogen peroxide ototoxicity in unblocking ventilation tubes: A chinchilla pilot study. Otolaryngology —— Head and Neck Surgery. 2007;136(2):216-220.  https://doi.org/10.1016/j.otohns.2006.10.038
  23. Igarashi Y, Suzuki J. Cochlear ototoxicity of chlorhexidine gluconate in cats. Archives of Otolaryngology. 1985;242(2):167-176.  https://doi.org/10.1007/BF00454417
  24. Morizono T, Sikora MA. Ototoxicity of ethanol in the tympanic cleft in animals. Acta Otolaryngologica. 1981;92(1-2):33-40.  https://doi.org/10.3109/00016488109133235
  25. Perez R, Freeman S, Sohmer H, Sichel JY. Vestibular and cochlear ototoxicity of topical antiseptics assessed by evoked potentials. Laryngoscope. 2000;110(9):1522-1527. https://doi.org/10.1097/00005537-200009000-00021
  26. Arslan IB, Genc S, Kayhan BC, Gumussoy M, Ozel G, Cukurova I. Bacterial change in external auditory canal upon antisepsis with povidone-iodine during tympanoplasty. European Archives of Oto-Rhino-Laryngology. 2015;272(3):551-555.  https://doi.org/10.1007/s00405-013-2864-7
  27. Agafonova MN, Kazakova RR, Lubina AP, Zeldi MI, Nikitina EV, Balakin KV, Shtyrlin YG. Antibacterial activity profile of miramistin in in vitro and in vivo models. Microbial Pathogenesis. 2020;142:104072. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2020.104072
  28. Данилова Т.А., Данилина Г.А., Аджиева А.А., Минко А.Г., Николаева Т.Н., Жуховицкий В.Г., Пронин А.В. Влияние мирамистина и фоспренила на микробные биопленки. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017;163(4): 435-439. 
  29. Васильева Т.В., Раскидайло А.С., Арутчева А.А. Антибактериальная активность и клиническая эффективность нового антисептического препарата мирамистина. Антибиотики и химиотерапия. 1993;38(8-9):61-63. 
  30. Шляга И.Д., Редько Д.Д., Ядченко Е.С. Принципы лечения микозов в оториноларингологии. Медицинский журнал. 2014;(1):49-53. 
  31. Osmanov A, Wise A, Denning DW. In vitro and in vivo efficacy of miramistin against drug-resistant fungi. Journal of Medical Microbiology. 2019;68(7):1047-1052. https://doi.org/10.1099/jmm.0.001007
  32. Агафонов А.П., Скарнович М.О., Петрищенко В.А. Изучение in vitro антивирусных свойств Мирамистина в отношении вирусов кори и паротита. Антибиотики и химиотерапия. 2005;50(5-6):17-19. 
  33. Криворутченко Ю.Л., Кривошеин Ю.С., Маренникова С.С., Степанова Л.Г., Носик Д.Н., Калнина Л.Б., Рудко А.П. Исследование анти-ВИЧ активности мирамистина. Вопросы вирусологии. 1994;39(6):267-269. 
  34. Блатун Л.А. Местное медикаментозное лечение ран. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2011;(4):51-59. 
  35. Кириченко И.М. Использование препарата Мирамистин при инфекционной патологии в гинекологии. Поликлиника. 2013;(6):98-100. 
  36. Рудько А.П., Кривошеин Ю.С. Глазной антисептик. 2001.
  37. Материалы 17-го Всероссийского стоматологического форума и выставки-ярмарки «Дентал-ревю 2020», 10.02.20—12.02.20, Москва, Россия. Российская стоматология. 2020;13(3):21-67.  https://doi.org/10.17116/rosstomat20201303121
  38. Мальцева Г.С. Обоснование применения антисептических препаратов в практике оториноларинголога. Лечебное дело. 2017;(4):16-21. 
  39. Кириченко И.М. Антисептический препарат «Мирамистин» для профилактики и лечения инфекционно-воспалительных заболеваний. Медицинский алфавит. 2012;4(24):60-62. 
  40. Крюков А.И., Гаров Е.В., Зеленкова В.Н., Сударев П.А., Антонян Р.Г. Способ лазерной стапедэктомии у больных отосклерозом. Патент RU 2 479 275 C1, опубл. 20.04.2013.
  41. Горяева Т.Н. Лечение тубоотитов, сочетанных с аденориносинуситами и наружными отитами. Российская ринология. 2009;17(2):135-135. 
  42. Гаров Е.В. Хронический гнойный средний отит: терминология, диагностика и лечебная тактика. РМЖ. 2011;19(6): 390-393. 
  43. Позднякова В.В., Майчук Ю.Ф. Глазные капли Окомистин в лечении инфекционных конъюнктивитов различной этиологии. Офтальмологические ведомости. 2012;5(2):67-71. 
  44. Добрецов К.П. Актуальные моменты лечения хронического гнойного среднего отита. Современная медицина. 2017;3(7): 126-128. 
  45. Овчинников А.Ю., Егиян С.С. Эффективность антимикробного препарата диоксидин при лечении воспалительных заболеваний наружного и среднего уха. Вестник оториноларингологии. 2016;81(2):61-66.  https://doi.org/10.17116/otorino201681261-66
  46. Егиян С.С., Наумова А.А. Местная терапия при воспалительных заболеваниях наружного уха. Областная научно-практическая конференция «Перспективы развития оториноларингологии в Тюменской области». Тюмень; 2019:40. 
  47. Мазанко М.С., Чистяков В.А., Празднова Е.В., Покудина И.О., Чурилов М.Н., Чмыхало В.К., Батюшин М.М. Диоксидин индуцирует антибиотикорезистентность бактерий. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2016;34(4):149-154. 
  48. Никифорова Г.Н., Свистушкин В.М., Дедова М.Г. Возможности местной терапии инфекционно-воспалительных заболеваний ЛОР-органов. РМЖ. 2015;23(6):346-349. 
  49. Wright T. Ear wax. BMJ Clin Evid. 2015;2015:0504.
  50. Burton MJ, Doree C. Ear drops for the removal of ear wax. The Cochrane Database of Systematic Reviews. 2009;(1):CD004326. https://doi.org/10.1002/14651858.CD004326.pub2
  51. Hand C, Harvey I. The effectiveness of topical preparations for the treatment of earwax: a systematic review. The British Journal of General Practice. 2004;54(508):862-867. 
  52. Aaron K, Cooper TE, Warner L, Burton MJ. Ear drops for the removal of ear wax. The Cochrane Database of Systematic Reviews. 2018;7(7):CD012171. https://doi.org/10.1002/14651858.CD012171.pub2
  53. Oron Y, Zwecker-Lazar I, Levy D, Kreitler S, Roth Y. Cerumen removal: comparison of cerumenolytic agents and effect on cognition among the elderly. Archives of Gerontology and Geriatrics. 2011;52(2):228-232.  https://doi.org/10.1016/j.archger.2010.03.025
  54. Singer AJ, Sauris E, Viccellio AW. Ceruminolytic effects of docusate sodium: A randomized, controlled trial. Annals of Emergency Medicine. 2000;36(3):228-232.  https://doi.org/10.1067/mem.2000.109166
  55. Carr MM, Smith RL. Ceruminolytic efficacy in adults versus children. Journal of Otolaryngology. 2001;30(3):154-156.  https://doi.org/10.2310/7070.2001.20001
  56. Lyndon S, Roy P, Grillage MG, Miller AJ. A comparison of the efficacy of two ear drop preparations (‘Audax’ and ‘Earex’) in the softening and removal of impacted ear wax. Current Medical Research and Opinion. 1992;13(1):21-25.  https://doi.org/10.1185/03007999209115218
  57. Dummer DS, Sutherland IA, Murray JA. A single-blind, randomized study to compare the efficacy of two ear drop preparations (‘Audax’ and ‘Cerumol’) in the softening of ear wax. Current Medical Research and Opinion. 1992;13(1):26-30.  https://doi.org/10.1185/03007999209115219
  58. Robbins B. Randomized clinical trial of docusate, triethanolamine polypeptide, and irrigation in cerumen removal in children. The Journal of Pediatrics. 2004;145(1):138-139.  https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2004.04.043
  59. Vanlierde MJ, Murray JA, Tse E. A Study to look at the efficary of Almond Oil and Cerumol Ear Drops in the removal of ear wax. South African Family Practice. 1991;12(8).
  60. Jaffé G, Grimshaw J. A multicentric clinical trial comparing Otocerol with Cerumol as cerumenolytics. Journal of International Medical Research. 1978;6(3):241-244.  https://doi.org/10.1177/030006057800600312
  61. Papay FA, Levine HL, Schiavone WA. Facial fuzz and funny findings. Facial hair causing otalgia and oropharyngeal pain. Cleveland Clinic Journal of Medicine. 1989;56(3):273-276.  https://doi.org/10.3949/ccjm.56.3.273
  62. Trapp JD. An unusual cause of intractable hiccups: a hair in the external auditory canal. Southern Medical Journal. 1963;56:325-326.  https://doi.org/10.1097/00007611-196303000-00021
  63. Goldman G, Toher L. A hair in the ear canal as a cause of noise. The New England Journal of Medicine. 1982;306(25):1553. https://doi.org/10.1056/nejm198206243062518
  64. Бобров В.М. Волос в наружном слуховом проходе — причина тягостного и изнуряющего ушного шума. Вестник оториноларингологии. 2013;78(2):71-72. 
  65. Ono I. Therapeutic effect of using a long-pulsed alexandrite laser system with a cooling device for epilation in reconstructive surgery of auricular malformations. Annals of Plastic Surgery. 2002;48(2):115-123.  https://doi.org/10.1097/00000637-200202000-00001
  66. Allegranzi B, Bischoff P, de Jonge S, Kubilay NZ, Zayed B, Gomes SM, Abbas M, Atema JJ, Gans S, van Rijen M, Boermeester MA, Egger M, Kluytmans J, Pittet D, Solomkin JS; WHO Guidelines Development Group. New WHO recommendations on preoperative measures for surgical site infection prevention: an evidence-based global perspective. Lancet. Infectious Diseases. 2016;16(12):e276-e287. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(16)30398-X
  67. Reichman DE, Greenberg JA. Reducing surgical site infections: A review. Reviews in Obstetrics and Gynecology. 2009;2(4):212-221. 
  68. Miller JJ, Weber PC, Patel S, Ramey J. Intracranial surgery: to shave or not to shave? Otology and Neurotology. 2001;22(6): 908-911.  https://doi.org/10.1097/00129492-200111000-00033
  69. Lee DH, Yoo S, Shin E, Cho Y. Nonshaved Ear Surgery: Effect of Hair on Surgical Site Infection of the Middle Ear/Mastoid Surgery and Patients’ Preference for the Hair Removal. Journal of Audiology and Otology. 2018;22(3):160-166.  https://doi.org/10.7874/jao.2018.00101
  70. Vestal PW. Preoperative preparation of the skin with a depilatory cream and a detergent. American Journal of Surgery. 1952;83(3):398-402.  https://doi.org/10.1016/0002-9610(52)90277-8
  71. Hamilton HW, Hamilton KR, Lone FJ. Preoperative hair removal. Canadian Journal of Surgery. 1977;20(3):269-275. 
  72. Thur de Koos P, McComas B. Shaving versus skin depilatory cream for preoperative skin preparation. A prospective study of wound infection rates. American Journal of Surgery. 1983;145(3):377-378.  https://doi.org/10.1016/0002-9610(83)90205-2
  73. Jaffray B, King PM, Macleod DA, Wiseman R. Bacterial colonization of the skin after chemical depilation. Journal of the Royal College of Surgeons of Edinburgh. 1990;35(4):243-244. 
  74. Powis SJ, Waterworth TA, Arkell DG. Preoperative skin preparation: clinical evaluation of depilatory cream. British Medical Journal. 1976;2(6045):1166-1168. https://doi.org/10.1136/bmj.2.6045.1166
  75. Mir MH, Osiname A, Fergie N, Ali S. Hairy canals and hair removal cream. Clinical Otolaryngology. 2008;33(2):183-184.  https://doi.org/10.1111/j.1749-4486.2008.01636.x
  76. Haque AK, Al-Ghazal S. Burn from hair removal cream — a case report. Burns. 2004;30(8):866-867.  https://doi.org/10.1016/j.burns.2004.06.013

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.