Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Бровкина А.Ф.

ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России;
ГБУЗ «Московский многопрофильный научно-клинический центр им. С.П. Боткина» Департамента здравоохранения г. Москвы

Глюкокортикорезистентные формы эндокринной офтальмопатии

Авторы:

Бровкина А.Ф.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2024;140(6): 125‑130

Прочитано: 1453 раза


Как цитировать:

Бровкина А.Ф. Глюкокортикорезистентные формы эндокринной офтальмопатии. Вестник офтальмологии. 2024;140(6):125‑130.
Brovkina AF. Glucocorticoid-resistant forms of endocrine ophthalmopathy. Russian Annals of Ophthalmology. 2024;140(6):125‑130. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2024140061125

Рекомендуем статьи по данной теме:
Кли­ни­ко-пси­хо­па­то­ло­ги­чес­кие осо­бен­нос­ти ре­зис­тен­тной ши­зоф­ре­нии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(2):43-50

Эндокринная офтальмопатия (ЭОП) описана Р. Грейвсом (Лондон) в 1835 г., им же предложен и термин «эндокринная офтальмопатия», связавший поражение мягких тканей орбиты с патологией щитовидной железы. В настоящее время ЭОП расценивают как наиболее распространенное экстратиреоидное проявление болезни Грейвса [1, 2]. Частота заболеваемости ЭОП колеблется в пределах 3,3—8,0 случая на 100 тыс. населения в год у женщин и 0,9—1,6 случая на 100 тыс. населения в год у мужчин [3, 4]. В то же время есть сведения, что среди европейского населения в целом распространенность ЭОП составляет 10 случаев на 10 тыс. человек [5]. Заболевание чаще возникает у лиц старше 50 лет [3].

В патогенезе ЭОП обращает на себя внимание перекрестная иммунологическая активность антигенов щитовидной железы с мягкими тканями орбиты. Рецепторы тиреотропного гормона (TSHRs) и инсулиноподобного фактора роста 1 (IGF1Rs), синергически взаимодействуя, стимулируют клеточные реакции [6, 7]. IGF1Rs в качестве аутоантигена располагается на поверхности орбитальных фибробластов, которые и являются ключевыми клетками, ответственными за воспаление мягких тканей орбиты, и отличаются от фибробластов других локализаций нейроэктодермальным, а не мезодермальным происхождением [8]. Активация комплекса TSHRs/IGF1Rs сопровождается дифференцировкой орбитальных фибробластов в преадипоциты, а затем в адипоциты, что приводит к увеличению количества орбитальной клетчатки [9—13]. Именно фибробласты являются основными «жертвами» аутоиммунных атак.

В развитии аутоиммунного воспаления принимают участие преимущественно T-лимфоциты, которые, продуцируя различные цитокины, взаимодействуют с орбитальными фибробластами и индуцируют множественные сигнальные внутриклеточные каскады. Активная фаза ЭОП характеризуется инфильтрацией экстраокулярных мышц и ретробульбарной клетчатки CD4+ и CD8+ T-лимфоцитами, моноцитами, макрофагами, B-лимфоцитами, мононуклеарными клетками [9]. Орбитальные фибробласты после запуска аутоиммунных реакций через IGF1Rs продуцируют гликозаминогликаны, гидрофильность которых — основная причина отека орбитальной клетчатки и экстраокулярных мышц [14, 15]. Именно эти изменения формируют комплекс клинических симптомов, определяющих диагноз ЭОП [16].

Дополнительным фактором можно считать венозный застой в орбите, который развивается в результате компрессии верхней глазной вены увеличенными в объеме экстраокулярными мышцами, особенно у вершины орбиты [17].

Комбинация всех симптомов ЭОП вариабельна, степень их выраженности у больных различна, что требует персонализированного подхода к выбору лечения в каждом конкретном случае.

С целью уточнения тяжести заболевания и персонализации лечения предложено несколько классификаций ЭОП: G. Werner (1969), NOSPECS (1977), А.Ф. Бровкиной и соавт. (1983), M.P. Mourits и соавт. (1997). Но объединяющей классификации ЭОП все еще нет [18], а существующие не позволяют охарактеризовать то разнообразие клинических проявлений ЭОП, которое встречается в практике врача. Это послужило причиной появления в литературе последних лет указаний на необходимость создания единой классификации этого заболевания [19].

Многолетние собственные наблюдения за такими больными, анализ результатов визуализирующих методов исследования, таких как ультразвуковое исследование, компьютерная (КТ) и магнитно-резонансная томография, позволили выделить три клинические формы ЭОП, переходящие в процессе прогрессирования патологического процесса от более легкой формы к более тяжелой: тиреотоксический псевдоэкзофтальм, в основе развития которого лежит избыточная активность симпатической нервной системы и спазм мышцы Мюллера; отечный экзофтальм (ОЭ) и эндокринную миопатию (ЭМ) [20]. Для последних двух форм характерно избирательное поражение экстраокулярных мышц и ретробульбарной клетчатки CD4+ и CD8+ T-лимфоцитами, моноцитами, макрофагами, B-лимфоцитами, мононуклеарными клетками [8]. Клиническая картина в своем развитии у этих больных представлена симптомами разной степени выраженности в зависимости от компенсации процесса (рис. 1—3). Представленные изменения проявляются в стадии активной клеточной инфильтрации и отека, которая при ОЭ длится до 18 мес, а при ЭМ — не более 4—5 мес. По истечении этого срока развивается фиброз пораженных экстраокулярных мышц и орбитальной клетчатки [21].

Рис. 1. Фотография больной 57 лет.

Диагноз — билатеральный компенсированный отечный экзофтальм. Давность заболевания — 7 мес.

Рис. 2. Фотография больного 62 лет.

Диагноз — билатеральный субкомпенсированный отечный экзофтальм. Давность заболевания — 7—8 мес.

Рис. 3. Фотография больной 49 лет.

Диагноз — билатеральный отечный экзофтальм (справа — декомпенсированный, слева — субкомпенсированный).

По локализации поражения ОЭ в свою очередь делят на миогенный (преобладает поражение прямых мышц глаза), липогенный (страдает орбитальная клетчатка и в меньшей степени прямые мышцы глаза) и смешанный, имеющий признаки первых двух [22]. Более тяжелое течение заболевания с возможностью утраты зрительных функций в результате вторичного поражения роговицы и/или зрительного нерва характерно для ОЭ миогенного и смешанного вариантов. Частота умеренной, тяжелой и очень тяжелой формы ОЭ по степени компенсации среди больных ЭОП колеблется в пределах 4,9—10% [23, 24]. Средней степени тяжести ЭОП у пациентов с болезнью Грейвса встречается в 30—50% наблюдений [3, 24]. Именно такие формы ЭОП и требуют медикаментозного лечения.

Медикаментозная терапия представлена глюкокортикоидами (ГК), дегидрирующими, седативными средствами, препаратами, активизирующими метаболические процессы в экстраокулярных мышцах. Терапию ГК при ЭОП используют на протяжении последних 65 лет. В основе ее лежит способность ГК давать быстрый и разносторонний эффект: противовоспалительный, противоотечный, ингибирующий деструктивные и фиброзирующие процессы в мягких тканях, а также, в определенной степени и иммуносупрессивный. Терапия ГК и сегодня составляет основу лечения больных суб- и декомпенсированным ОЭ. За прошедшие годы в литературе накоплен большой опыт использования различных методов введения ГК, но общим является начало лечения с больших доз ГК. Внутривенное введение ГК (пульс-терапия) — основа лечения суб- и декомпенсированных форм ОЭ [24—29]. Однако вопросы оптимального режима все еще дискутируются [26, 30].

Степень эффективности терапии ГК также не равнозначна. Оказалось, что до 20% пациентов ЭОП не реагируют на высокие дозы ГК и примерно у каждого третьего больного после их отмены рано возникают рецидивы [13, 31]. Одной из причин неэффективности ГК у больных с аутоиммунными заболеваниями считали наличие полиморфизма генов глюкокортикоидного рецептора NR3C1 [32]. ГК обладают плейотропным действием благодаря связыванию с родственным им глюкокортикоидным рецептором человека (hGR), в экспрессии которого принимает участие ген NR3C1, расположенный на хромосоме 5 (5q31.3). Нарушение передачи сигнала ГК может сопровождаться разными неблагоприятными последствиями для человека. Одно из них — резистентность к глюкокортикоидной терапии [33]. Исследования секвенирования гена NR3C1 в группе здоровых лиц не выявили ни полиморфизма, ни мутаций, но была подтверждена вариабельная чувствительность к ГК, чем и объяснили различие терапевтических ответов и частоту побочных эффектов глюкокортикоидной терапии [33]. В более ранних исследованиях анализ роли четырех полиморфизмов гена рецептора ГК (N363S, ER22/23EK, A3669G и BclI) у больных ЭОП не выявил преимущества ни одного из них по сравнению с контролем [34]. Причину отрицательных результатов авторы объяснили низкой частотой полиморфизма гена NR3C1 и, возможно, малой когортой пациентов для генетического исследования. Наряду с этим истинную резистентность к ГК у больных ЭОП объясняют присутствием полиморфного варианта 39739G> A/rs6189 гена NR3C1 по гетерозиготному типу [35]. В группе обследованных и пролеченных нами 75 пациентов с ОЭ и ЭМ в активной стадии и в стадии фибротизации терапия ГК была неэффективной в 32 случаях. Результаты генетических исследований у этих больных оказались близки к данным, представленным G. Vannucchi и соавт. [34]: какой-либо закономерности в распределении носителей гомо- и гетерозиготных генотипов полиморфных маркеров A6986G гена CYP3A5, C>Tintron 6 гена CYP3A4 и rs6190 гена NR3C1, их влияния на глюкокортикоидный ответ не выявлено [36]. Но общим критерием резистентности к ГК в этих 32 наблюдениях оказался длительный анамнез заболевания с клинико-инструментальными признаками усиленного адипозогенеза или фиброза мягких тканей орбиты. Таким образом, и сегодня сведения о роли полимофизма гена NR3C1 в формировании резистентности ЭОП к ГК остаются не подтвержденными.

Первые публикации об ответственности тиреотропин-рецептора микроРНК за передачу информации и регулировку течения болезни Грейвса и ЭОП появились в конце XX в. [37]. В начале XXI в. публикуются доказательства связи аномальной экспрессии микроРНК с патогенезом ЭОП через иммунную функцию, апоптоз, развитие, дифференцировку, пролиферацию клеток и метаболизм [38]. Изучение профиля микроРНК у больных ЭОП выявило многочисленные нарушения их экспрессии [39—41]. К настоящему времени сформировалось четкое мнение: микроРНК, как эпигенетические факторы, ответственны за передачу информации, регулировку течения ЭОП, возникновения ее рецидивов [41]. Наибольшую роль в развитии более агрессивного течения ЭОП отводят активизации функций микроРНК-21, -27a, -27b, -146a, -155 [41—45]. Проведенные нами исследования уровня экспрессии микроРНК-146 и -155 в плазме крови больных ЭОП подтвердило повышение экспрессии указанных микроРНК у всех больных ЭОП. Но в группе с отрицательным ответом на глюкокортикоидную терапию их экспрессия оказалась в 6,6 раза выше, чем в группе положительного ответа [46]. Наиболее высокую экспрессию имели микроРНК-146 в плазме крови пациентов с липогенным вариантом ОЭ при анамнезе заболевания более 20 мес (экспрессия увеличена почти в 57,9 раза по сравнению с нормой1) и с ЭМ с давностью заболевания более 7 мес (экспрессия по сравнению с нормой увеличена в 26,5 раза). Что касается микроРНК-155, то показатели ее экспрессии характеризовались той же тенденцией к увеличению, но в меньшей степени (соответственно в 2,6 и 2,3 раза по сравнению с нормой). Увеличение объема орбитальной клетчатки у больных липогенным ОЭ доказано специальной КТ-программой вычисления объема зоны интереса при исследовании орбит [16]. В группе больных ЭМ, имевших анамнез заболевания более 7 мес к моменту исследования уровня экспрессии микроРНК-146 и -155, в биоптатах прямых мышцах глаза патоморфологически были доказаны признаки перехода стадии неспецифического воспаления в фиброз. Известно, что микроРНК-146а и -155 — это многофункциональные эпигены, они могут работать в качестве активаторов как клеточной пролиферации, так и апоптоза. Увеличение экспрессии микроРНК-146 в плазме крови больных ОЭ и ЭМ сопровождается подавлением клеточного апоптоза, что увеличивает жизнеспособность и митоз орбитальных фибробластов, их дифференцировку в адипоциты, активизируя таким образом липогенез и фиброз мягких тканей орбиты [47]. Напротив, микроРНК-155 способны менять свои функции: регулировать пролиферацию клеток, подавляя дифференцировку адипоцитов, усиливая апоптоз и доминируя в стимуляции иммунных ответов, активизируя T-лимфоциты [39, 48]. Таким образом, микроРНК-146a и -155 характеризуются противоположным влиянием на воспалительные реакции, осуществляемые T-лимфоцитами у больных ЭОП, и, по-видимому, имеют несколько мишеней в ее патогенезе.

Резюмируя изложенное, позволю себе заключить, что клиническими наблюдениями и генетическими исследованиями доказано существование липогенного варианта ОЭ как самостоятельной формы ЭОП. Следует признать, что в основе механизма формирования резистентности липогенного ОЭ к ГК лежат активизация пролиферации фибробластов микроРНК-146а в зрелые адипоциты и увеличение количества орбитальной клетчатки. Все это позволяет оценивать их в качестве биомаркеров липогенного ОЭ2. Длительность анамнеза ЭОП с учетом ее клинических форм, показатели экспрессии микроРНК-146а и -155 могут быть использованы в качестве доказательства формирования стадии фиброза и прогнозирования отрицательной реакции на терапию ГК.

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.

1 За норму принимали показатели экспрессии микроРНК у волонтеров близких возрастных групп, не имеющих ни опухолевых, ни аутоиммунных заболеваний.

2 Патент «Способ диагностики липогенного варианта отечного экзофтальма». Бровкина А.Ф., Торопова О.С. Патент №2021123794 от 10.08.2021.

Литература / References:

  1. Chin YH, Ng CH, Lee MH, Koh JWH, Kiew J, Yang SP, Sundar G, Khoo CM. Prevalence of thyroid eye disease in Graves’ disease: A meta-analysis and systematic review. Clin Endocrinol (Oxf). 2020;93(4):363-374.  https://doi.org/10.1111/cen.14296
  2. Ippolito S, Cusini C, Lasalvia P, Gianfagna F, Veronesi G, Gallo D, Masiello E, Premoli P, Sabatino J, Mercuriali A, Lai A, Piantanida E, Tanda ML, Bartalena L. Change in newly diagnosed Graves’ disease phenotype between the twentieth and the twenty-first centuries: meta-analysis and meta-regression. J Endocrinol Invest. 2021;44(8):1707-1718. https://doi.org/10.1007/s40618-020-01479-z
  3. Piantanida E, Tanda ML, Lai A, Sassi L, Bartalena L. Prevalence and natural history of Graves’ orbitopathy in the XXI century. J Endocrinol Invest. 2013;36(6):444-9.  https://doi.org/10.3275/8937
  4. Bartalena L, Piantanida E, Gallo D, Lai A, Tanda ML. Epidemiology, Natural History, Risk Factors, and Prevention of Graves’ Orbitopathy. Front Endocrinol (Lausanne). 2020;11:615993. https://doi.org/10.3389/fendo.2020.615993
  5. Perros P, Hegedüs L, Bartalena L, Marcocci C, Kahaly GJ, Baldeschi L, Salvi M, Lazarus JH, Eckstein A, Pitz S, Boboridis K, Anagnostis P, Ayvaz G, Boschi A, Brix TH, Currò N, Konuk O, Marinò M, Mitchell AL, Stankovic B, Törüner FB, von Arx G, Zarković M, Wiersinga WM. Graves’ orbitopathy as a rare disease in Europe: a European Group on Graves’ Orbitopathy (EUGOGO) position statement. Orphanet J Rare Dis. 2017; 12(1):72.  https://doi.org/10.1186/s13023-017-0625-1
  6. Pritchard J, Han R, Horst N, Cruikshank WW, Smith TJ. Immunoglobulin activation of T cell chemoattractant expression in fibroblasts from patients with Graves’ disease is mediated through the insulin-like growth factor I receptor pathway. J Immunol. 2003;170(12):6348-6354. https://doi.org/10.4049/jimmunol.170.12.6348
  7. Krieger CC, Morgan SJ, Neumann S, Gershengorn MC. Thyroid Stimulating Hormone (TSH)/Insulin-like Growth Factor 1 (IGF1) Receptor Cross-talk in Human Cells. Curr Opin Endocr Metab Res. 2018;2:29-33.  https://doi.org/10.1016/j.coemr.2018.01.007
  8. Dik WA, Virakul S, van Steensel L. Current perspectives on the role of orbital fibroblasts in the pathogenesis of Graves’ ophthalmopathy. Exp Eye Res. 2016;142:83-91.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2015.02.007
  9. Naik VM, Naik MN, Goldberg RA, Smith TJ, Douglas RS. Immunopathogenesis of thyroid eye disease: emerging paradigms. Surv Ophthalmol. 2010;55(3):215-226.  https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2009.06.009
  10. Kumar S, Nadeem S, Stan MN, Coenen M, Bahn RS. A stimulatory TSH receptor antibody enhances adipogenesis via phosphoinositide 3-kinase activation in orbital preadipocytes from patients with Graves’ ophthalmopathy. J Mol Endocrinol. 2011;46(3):155-163.  https://doi.org/10.1530/JME-11-0006
  11. Hodgson NM, Rajaii F. Current Understanding of the Progression and Management of Thyroid Associated Orbitopathy: A Systematic Review. Ophthalmol Ther. 2020;9(1):21-33.  https://doi.org/10.1007/s40123-019-00226-9
  12. Hai YP, Lee ACH, Frommer L, Diana T, Kahaly GJ. Immunohistochemical analysis of human orbital tissue in Graves’ orbitopathy. J Endocrinol Invest. 2020;43(2):123-137.  https://doi.org/10.1007/s40618-019-01116-4
  13. Moi L, Hamedani M, Ribi C. Long-term outcomes in corticosteroid-refractory Graves’ orbitopathy treated with tocilizumab. Clin Endocrinol (Oxf). 2022;97(3):363-370.  https://doi.org/10.1111/cen.14655
  14. Smith TJ, Hoa N. Immunoglobulins from patients with Graves’ disease induce hyaluronan synthesis in their orbital fibroblasts through the self-antigen, insulin-like growth factor-I receptor. J Clin Endocrinol Metab. 2004; 89(10):5076-5080. https://doi.org/10.1210/jc.2004-0716
  15. Zheng J, Duan H, You S, Liang B, Chen Y, Huang H. Research progress on the pathogenesis of Graves’ ophthalmopathy: Based on immunity, noncoding RNA and exosomes. Front Immunol. 2022;13:952954. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.952954
  16. Бровкина А.Ф, Яценко О.Ю. Характеристика мягких тканей орбиты у больных отечным экзофтальмом в свете КТ исследования. Офтальмология. 2006;3(1):26-30. 
  17. Бровкина А.Ф. Оптическая нейропатия и отёчный экзофтальм: симптом или осложнение? Офтальмологические ведомости. 2020; 13(1):71-76.  https://doi.org/10.17816/OV25334
  18. Петунина Н.А., Трухина Л.В., Мартиросян Н.С. Эндокринная офтальмопатия: современный взгляд. Проблемы эндокринологии. 2012;58(6):24-32. 
  19. Bartalena L, Tanda ML. Current concepts regarding Graves’ orbitopathy. J Intern Med. 2022;292(5):692-716.  https://doi.org/10.1111/joim.13524
  20. Бровкина А.Ф., Стоюхина А.С. Классификация эндокринной офтальмопатии. Проблемы эндокринологии. 2006;52(5):11-15. 
  21. Бровкина А.Ф. Эндокринная офтальмопатия: реальность и перспективы. Офтальмологические ведомости. 2012;5(2):31-34. 
  22. Бровкина А.Ф., Яценко О.Ю. О целесообразности выделения клинической формы липогенного варианта отечного экзофтальма. Вестник офтальмологии. 2013;129(2):28-32. 
  23. Krieger CC, Neumann S, Place RF, Marcus-Samuels B, Gershengorn MC. Bidirectional TSH and IGF-1 receptor cross talk mediates stimulation of hyaluronan secretion by Graves’ disease immunoglobins. J Clin Endocrinol Metab. 2015;100(3):1071-1077. https://doi.org/10.1210/jc.2014-3566
  24. Bartalena L, Kahaly GJ, Baldeschi L, Dayan CM, Eckstein A, Marcocci C, Marinò M, Vaidya B, Wiersinga WM; EUGOGO. The 2021 European Group on Graves’ orbitopathy (EUGOGO) clinical practice guidelines for the medical management of Graves’ orbitopathy. Eur J Endocrinol. 2021 Aug 27; 185(4):G43-G67.  https://doi.org/10.1530/EJE-21-0479
  25. Lazarus JH. Epidemiology of Graves’ orbitopathy (GO) and relationship with thyroid disease. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2012;26(3):273-279.  https://doi.org/10.1016/j.beem.2011.10.005
  26. Wiersinga WM. Advances in treatment of active, moderate-to-severe Graves’ ophthalmopathy. Lancet Diabetes Endocrinol. 2017;5(2):134-142.  https://doi.org/10.1016/S2213-8587(16)30046-8
  27. González-García A, Sales-Sanz M. Treatment of Graves’ ophthalmopathy. Med Clin (Barc). 2021 Feb 26;156(4):180-186.  https://doi.org/10.1016/j.medcli.2020.07.031
  28. Li H, Yang L, Song Y, Zhao X, Sun C, Zhang L, Zhao H, Pan Y. Comparative effectiveness of different treatment modalities for active, moderate-to-severe Graves’ orbitopathy: a systematic review and network meta-analysis. Acta Ophthalmol. 2022;100(6):e1189-e1198. https://doi.org/10.1111/aos.15074
  29. Yu CY, Ford RL, Wester ST, Shriver EM. Update on thyroid eye disease: Regional variations in prevalence, diagnosis, and management. Indian J Ophthalmol. 2022;70(7):2335-2345. https://doi.org/10.4103/ijo.IJO_3217_21
  30. Jia J, Dong J, Deng L. Network Meta-Analysis of Different Intravenous Glucocorticoid Regimes for the Treatment of Graves’ Orbitopathy. Front Pharmacol. 2022;13:785757. https://doi.org/10.3389/fphar.2022.785757
  31. Zang S, Ponto KA, Kahaly GJ. Clinical review: Intravenous glucocorticoids for Graves’ orbitopathy: efficacy and morbidity. J Clin Endocrinol Metab. 2011;96(2):320-332.  https://doi.org/10.1210/jc.2010-1962
  32. Quax RA, Koper JW, Huisman AM, Weel A, Hazes JM, Lamberts SW, Feelders RA. Polymorphisms in the glucocorticoid receptor gene and in the glucocorticoid-induced transcript 1 gene are associated with disease activity and response to glucocorticoid bridging therapy in rheumatoid arthritis. Rheumatol Int. 2015;35(8):1325-1333. https://doi.org/10.1007/s00296-015-3235-z
  33. Nicolaides NC, Charmandari E. Primary Generalized Glucocorticoid Resistance and Hypersensitivity Syndromes: A 2021 Update. Int J Mol Sci. 2021;22(19):10839. https://doi.org/10.3390/ijms221910839
  34. Vannucchi G, Covelli D, Campi I, Origo D, Currò N, Cirello V, Dazzi D, Beck-Peccoz P, Salvi M. The therapeutic outcome to intravenous steroid therapy for active Graves’ orbitopathy is influenced by the time of response but not polymorphisms of the glucocorticoid receptor. Eur J Endocrinol. 2013;170(1):55-61.  https://doi.org/10.1530/EJE-13-0611
  35. Саакян С.В., Пантелеева О.Г., Батырбекова Ф.Х., Сирмайс О.С., Мартиросян Н.С., Петунина Н.А., Цыганков А.Ю., Логинов В.И., Бурденный А.М. Генетические факторы развития резистентности к глюкокортикоидам у больных эндокринной офтальмопатией. Эффективная фармакотерапия. 2019;15(33):18-23. 
  36. Бровкина А.Ф., Сычев Д.А., Торопова О.С. Влияние полиморфизма генов CYP3A4, CYP3A5 и NR3C1 на эффективность глюкокортикоидной терапии у больных эндокринной офтальмопатией. Вестник офтальмологии. 2020;136(6):125-132.  https://doi.org/10.17116/oftalma2020136062125
  37. Feliciello A, Porcellini A, Ciullo I, Bonavolontà G, Avvedimento EV, Fenzi G. Expression of thyrotropin-receptor mRNA in healthy and Graves’ disease retro-orbital tissue. Lancet. 1993;342(8867):337-338.  https://doi.org/10.1016/0140-6736(93)91475-2
  38. Liu S, Yang Y, Wu J. TNFα-induced up-regulation of miR-155 inhibits adipogenesis by down-regulating early adipogenic transcription factors. Biochem Biophys Res Commun. 2011;414(3):618-624.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2011.09.131
  39. Li K, Du Y, Jiang BL, He JF. Increased microRNA-155 and decreased microRNA-146a may promote ocular inflammation and proliferation in Graves’ ophthalmopathy. Med Sci Monit. 2014;20:639-643.  https://doi.org/10.12659/MSM.890686
  40. Hu ZJ, He JF, Li KJ, Chen J, Xie XR. Decreased microRNA-146a in CD4+T cells promote ocular inflammation in thyroid-associated ophthalmopathy by targeting NUMB. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2017;21(8):1803-1809.
  41. Wang N, Chen FE, Long ZW. Mechanism of MicroRNA-146a/Notch2 Signaling Regulating IL-6 in Graves Ophthalmopathy. Cell Physiol Biochem. 2017;41(4):1285-1297. https://doi.org/10.1159/000464430
  42. Tatulashvili S, Baudry C, Sadoul JL, Bihan H. New perspectives for the diagnosis and prognosis of Graves’ disease. Ann Endocrinol (Paris). 2018;79 Suppl 1:S31-S39.  https://doi.org/10.1016/S0003-4266(18)31239-3
  43. Tong BD, Xiao MY, Zeng JX, Xiong W. MiRNA-21 promotes fibrosis in orbital fibroblasts from thyroid-associated ophthalmopathy. Mol Vis. 2015; 21:324-334. 
  44. Jang SY, Chae MK, Lee JH, Lee EJ, Yoon JS. MicroRNA-27 inhibits adipogenic differentiation in orbital fibroblasts from patients with Graves’ orbitopathy. PLoS One. 2019;14(8):e0221077. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0221077
  45. Woeller CF, Roztocil E, Hammond C, Feldon SE. TSHR Signaling Stimulates Proliferation Through PI3K/Akt and Induction of miR-146a and miR-155 in Thyroid Eye Disease Orbital Fibroblasts. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2019;60(13):4336-4345. https://doi.org/10.1167/iovs.19-27865
  46. Бровкина А.Ф., Сычев Д.А., Торопова О.С. МикроРНК и эндокринная офтальмопатия, участие в глюкокортикоидном ответе. Точка зрения. Восток-Запад. 2021;(2):12-15.  https://doi.org/10.25276/2410-1257-2021-2-12-15
  47. Jang SY, Park SJ, Chae MK, Lee JH, Lee EJ, Yoon JS. Role of microRNA-146a in regulation of fibrosis in orbital fibroblasts from patients with Graves’ orbitopathy. Br J Ophthalmol. 2018;102(3):407-414.  https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2017-310723
  48. Huffaker TB, Hu R, Runtsch MC, Bake E, Chen X, Zhao J, Round JL, Baltimore D, O’Connell RM. Epistasis between microRNAs 155 and 146a during T cell-mediated antitumor immunity. Cell Rep. 2012;2(6):1697-1709. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2012.10.025

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.