Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Курышева Н.И.

Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ ГНЦ РФ «Федеральный биофизический центр им. А.И. Бурназяна» ФМБА России;
ФМБА России, ФГБУ ГНЦ РФ «ФМБЦ им. А.И. Бурназяна» ФМБА России;
АПО ФГБУ «ФНКЦ ФМБА» России

Ким В.Ю.

Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ ГНЦ РФ «Федеральный биофизический центр им. А.И. Бурназяна» ФМБА России;
ФМБА России, ФГБУ ГНЦ РФ «ФМБЦ им. А.И. Бурназяна» ФМБА России

Ким В.Е.

Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ ГНЦ РФ «Федеральный биофизический центр им. А.И. Бурназяна» ФМБА России;
ФМБА России, ФГБУ ГНЦ РФ «ФМБЦ им. А.И. Бурназяна» ФМБА России

Плиева Х.М.

Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ ГНЦ РФ «Федеральный биофизический центр им. А.И. Бурназяна» ФМБА России;
ФМБА России, ФГБУ ГНЦ РФ «ФМБЦ им. А.И. Бурназяна» ФМБА России

Значение структуры решетчатой мембраны склеры в диагностике и лечении глаукомы. Ремоделирование коллагена решетчатой мембраны и пути терапевтического воздействия на него

Авторы:

Курышева Н.И., Ким В.Ю., Ким В.Е., Плиева Х.М.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2023;139(4): 121‑126

Прочитано: 1596 раз


Как цитировать:

Курышева Н.И., Ким В.Ю., Ким В.Е., Плиева Х.М. Значение структуры решетчатой мембраны склеры в диагностике и лечении глаукомы. Ремоделирование коллагена решетчатой мембраны и пути терапевтического воздействия на него. Вестник офтальмологии. 2023;139(4):121‑126.
Kurysheva NI, Kim VYu, Kim VE, Pliyeva HM. The value of lamina cribrosa in the diagnosis and treatment of glaucoma. Remodeling of lamina cribrosa collagen and approaches to its therapeutic treatment. Russian Annals of Ophthalmology. 2023;139(4):121‑126. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2023139041121

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ней­роп­ро­тек­тор­ная те­ра­пия гла­уко­мы. Вес­тник оф­таль­мо­ло­гии. 2025;(1):83-90
Биомар­ке­ры ме­ха­низ­мов ста­ре­ния. Воп­ро­сы ку­рор­то­ло­гии, фи­зи­оте­ра­пии и ле­чеб­ной фи­зи­чес­кой куль­ту­ры. 2025;(5-2):108-119

Как и в случае любой поддерживающей ткани в организме, степень деформации, испытываемой решетчатой мембраной склеры (РМС) и перипапиллярной склерой (ppScl), зависит от морфологии и свойств клеток этих тканей, которые изменяются как с возрастом, так и вследствие глаукомного ремоделирования. Под последним понимают клеточную реакцию тканей в ответ на вызванное механическим стрессом напряжение, приводящую к изменению свойств РМС и ppScl. Это проявляется прежде всего повышением жесткости обеих структур. Данный механизм объясняет повышенную восприимчивость РМС к глаукомному повреждению, наблюдаемую с возрастом и с развитием глаукомного процесса.

В исследованиях диска зрительного нерва (ДЗН), проведенных на приматах методом оптической когерентной томографии (ОКТ) при различном уровне внутриглазного давления (ВГД) и фиксированном внутричерепном давлении, было выявлено, что деформация РМС происходит неравномерно по всей глубине и зависит от уровня ВГД [1].

Ключевым патологическим механизмом изменений в РМС является дезорганизация экстрацеллюлярного матрикса (ЭЦМ) [2—4]. Синтез ЭЦМ — важный компонент патогенеза глаукомы. Этот процесс пристально изучается с целью разработки новых методов лечения [5]. Модели на животных и тестирование посмертных тканей человека ex vivo показали, что жесткость склеры действительно повышается как с возрастом, так и при глаукоме. Это приводит к увеличению нагрузки на РМС и ДЗН [6, 7]. В модели глаукомы на приматах было показано, что структура РМС резко нарушается, а плотность коллагена изменяется по-разному в зависимости от подтипа коллагена [2, 8]. Авторы выявили аномальные линейные отложения коллагена IV типа и ламинина на краю РМС с повышенной плотностью в глазах с индуцированной глаукомой; иммунореактивность при проведении иммуногистохимического исследования коллагена III типа оказалась сходной с иммунореактивностью нормального глаза, но была немного сильнее на поверхности решетчатой пластинки [9].

Коллагеновые пучки РМС служат защитой для проходящих через нее аксонов, тогда как сосуды обеспечивают поступление кислорода и питательных веществ в нервную ткань. Имеются достоверные данные о том, что сосудистая сеть и пучки коллагена РМС по-разному сохраняются при постоянном воздействии ВГД и что большая часть пучков РМС не содержат сосудистую сеть, а подавляющее большинство сосудов РМС не находятся внутри пучков [10].

Молекулярные механизмы реорганизации ЭЦМ в значительной степени связаны с трансформирующим фактором роста β (transforming growth factor β, TGF-β). TGF-β является важным профибротическим модулятором метаболизма ЭЦМ, уровни которого повышены в ткани решетчатой пластинки при первичной открытоугольной глаукоме (ПОУГ). TGF-β обычно инактивируется латентно-ассоциированным пептидом (latency associated peptide, LAP), следовательно, ферменты, которые расщепляют LAP, могут активировать TGF-β, позволяя ему связываться с комплексом TGF-рецептора и воздействовать на другие внутриклеточные белки, которые, в свою очередь, контролируют транскрипцию [11]. Этот путь приводит к еще большему увеличению выработки ЭЦМ и белков [12—14].

Предполагается, что при ПОУГ глиальные клетки РМС реагируют на повышенный уровень TGF-β, продуцируя ремоделированный ЭЦМ головки зрительного нерва [15]. Повышенная экспрессия и секреция активных матриксных металлопротеиназ (matrix metalloproteinases, MMPs) направлена на переработку компонентов ЭЦМ, приводя к его дезорганизации. В частности, в ответ на механический стресс в клетках РМС при глаукоме была обнаружена повышенная экспрессия и активность MMP-2 [16, 17] и тромбоспондина-1 (thrombospondin-1, TSP-1) [13, 14]. Важно подчеркнуть, что клетки РМС используют ЭЦМ в качестве каркаса и при локализованной деградации могут мигрировать кзади от ДЗН [18, 19].

Существует несколько потенциальных механизмов активации TGF-пути ремоделирования мембраны, которые включают в себя взаимодействие с MMPs, интегринами и TSP.

Клетки РМС человека, культивируемые в условиях гипоксии, демонстрировали повышенную экспрессию факторов, связанных с экстрацеллюлярным матриксом, таких как фактор, ингибирующий миграцию макрофагов, рецептор домена дискоидина и фактор, индуцируемый гипоксией 1-альфа [20—22]. Указанные события происходят как в ответ на механическое напряжение, вызванное повышением/флуктуациями ВГД, так и на окислительный стресс и гипоксию и заставляют клетки РМС экспрессировать и секретировать коллаген, а также другие фиброзные молекулы, снижающие ее эластичность и сопротивление повышенному ВГД.

Подобно другим типам клеток, склеральные фибробласты ppScl также продуцируют факторы ремоделирования ЭЦМ в ответ на триггеры глаукомного поражения, что было продемонстрировано на моделях тканей человека, приматов и мышей [8, 23]. Примечательной характеристикой этих клеток является то, что, будучи активными, они дифференцируются в миофибробласты, следовательно, экспрессируют α-актин гладкой мускулатуры [24—26]. Дифференцировка склеральных фибробластов может быть вызвана реакцией на повышенное ВГД и приводит к секреции материалов ЭЦМ, таких как коллаген, и факторов синтеза ЭЦМ, MMPs и их ингибиторов (тканевые ингибиторы MMPs — tissue inhibitor of matrix metalloproteinases, TIMPs) [16, 27]. Ответной реакцией на механическое воздействие на фибробласты склеры является экспрессия различных генов: гены клеточных рецепторов, протеинкиназ, факторов клеточного роста, белков ЭЦМ, липидного и белкового метаболизма, что можно обнаружить уже через 30 мин после механического воздействия на культуру тканей РМС человека [28].

Возможные стратегии терапевтического воздействия на РМС

Было предложено несколько терапевтических подходов, нацеленных на клетки, которые создают ЭЦМ, в попытке ингибировать молекулярные пути, запускающие его секрецию (см. таблицу). Примечательно, что многие из исследуемых препаратов направлены на какой-либо из элементов TGF-путей, упомянутых ранее. Например, лозартан ингибирует Smad-21-фосфорилирование и является мишенью для TGF-лиганда [29]. Авторами исследования установлено, что при пероральном введении лозартана мышам с экспериментально индуцированной глаукомой потеря ганглиозных клеток сетчатки предотвращалась в связи с ингибированием рецептора ангиотензина II (angiotensin II receptor type 1, AT1R) [30]. Однако побочным эффектом лозартана оказалось снижение артериального давления, что крайне нежелательно при глаукоме.

Возможные стратегии терапевтического воздействия на РМС

Механизм действия

Лекарственное средство

Воздействие на процессы ремоделирования

Объекты исследования

Агонисты рецепторов простагландина F

Латанопрост, тафлупрост

Увеличение экспрессии MMP-1, -3, -9

Морские свинки [31]

Агонисты рецепторов простагландина F + донатор оксида азота

Латанопростин бунод

Увеличение экспрессии MMPs и снижение клеточной сократимости

Мыши, кролики, собаки, обезьяны, люди [32]

Антагонист β-адренорецепторов

Бетаксолол

Увеличивает скорость кровотока

Мыши [33]

Агонист α2-адренорецепторов

Бримонидин

Антиапоптотический эффект, снижение скорости истончения ганглиозного комплекса сетчатки

Мыши, крысы, морские свинки, кролики, коты, собаки, свиньи, обезьяны, люди [34]

Ингибитор карбонангидразы

Бринзоламид

Увеличение ретинального кровотока

Мыши, кролики [35]

Ингибитор Rho-ассоциированной протеинкиназы

Нетарсудил

Уменьшает сокращение и миграцию фибробластов, ингибирует продукцию ЭЦМ

Крысы [36]

Ингибитор секреции TGF-β

Траниласт

Предотвращает опосредованные TGF-β локальные реакции

Кролики [37]

Ингибитор транскрипции TGF-β

ISTH0 036, T-β RII (RNAi)

Уменьшение экспрессии TGF-β

Люди [38]

Селективный иммуносупрессор TGF-β

Лерделимумаб

Предотвращение связывания с рецептором

Люди [39]

Ингибитор TSP1

LSKL

Ингибирует опосредованную TSP1 активацию TGF-β

Мыши [40]

Селективный иммуносупрессор CTGF*

Памревлумаб

Ингибирует взаимодействие CTGF и TGF-β

Люди [17]

Ингибитор экспрессии YAP** и CTGF

Вертепорфин

Снижает сократимость клеток через YAP, снижает взаимодействие CTGF и TGF-β

Мыши, люди [41]

Увеличение продукции оксида азота

Аторвастатин

Ингибирует Rhoa/ROCK-путь, снижает уровень MMP-2, -9, уменьшает сократимость всех клеток

Мыши [42]

Блокатор рецепторов АТ1

Лозартан

Ингибирует фосфорилирование Smad2

Крысы [43]

Фермент, разрушающий гликозамингликаны

Хондроитиназа ABC

Ослабляет ЭЦМ (снижает жесткость РМС)

Крысы [44]

Ингибиторы фосфорилирования легких цепей миозина

Ингибитор SRC-семейства тирозинкиназ (PP2)***

Снижает сократимость клеток и проницаемость клеточных слоев, изменяет клеточную адгезию

Кролики, люди [45]

Примечание. *CTGF (connective tissue growth factor) — фактор роста соединительной ткани, участвует в регуляции взаимодействия клеток с внеклеточным матриксом, клеточной подвижности, адгезии и сигнализации; **YAP (Yes-associated protein) — белок, контролирующий рост тканей и размеры органов, действует как коактиватор и отвечает за контроль транскрипции определенных генов из ДНК в матричную РНК; ***SRC-семейства тирозинкиназ (PP2) — тирозинкиназа, не связанная с клеточным рецептором, участвует в процессах эмбрионального развития и клеточного роста. Модифицировано из Strickland RG, 2022 [46].

На сегодняшний день из всех рассматриваемых стратегий терапевтического воздействия на РМС наиболее практически реализуемо лечение аналогами простагландинов. Первым представителем этого класса гипотензивных препаратов стал латанопрост. Это эстерифицированный предшественник простагландина F2α, который оказывает высокоселективное действие на FP-простаноидные рецепторы, расположенные в цилиарном теле. Гипотензивный эффект латанопроста реализуется, главным образом, путем увеличения увеосклерального оттока внутриглазной жидкости [47], что связано с активацией MMPs [48] и, как следствие, увеличением межклеточных пространств в коллагене цилиарной мышцы [49]. Именно с этой точки зрения рассматривается патогенетически ориентированное действие латанопроста в отношении РМС. Как известно, основной причиной ремоделирования коллагена мембраны является избыточный синтез ЭЦМ и недостаточное его расщепление вследствие сниженной активности MMPs, точнее, дисбаланс между MMPs и их ингибиторами (TIMPs) под влиянием гиперпродукции TGF-β. Последний не только снижает активность MMPs, но и повышает экспрессию их ингибиторов (TIMP-2).

Как известно, этот процесс наиболее выражен при псевдоэксфолиативной глаукоме, которая характеризуется как высокими флуктуациями ВГД [50, 51], так и особенно выраженным истончением и деформацией РМС [52—55] наряду с повышением жесткости ее коллагена [52]. Примечательно, что деформация РМС при псевдоэксфолиативной глаукоме (ПЭГ), в отличие от ПОУГ, не связана с повышенным ВГД, а скорее объясняется именно нарушениями свойств самой мембраны, что и лежит в основе быстрого прогрессирования этой формы заболевания [52].

Было замечено, что при ПЭГ имеется высокое содержание TGF-β1 в водянистой влаге. При этом у больных ПЭГ, получавших латанопрост (Ксалатан), концентрация TGF-β в водянистой влаге ниже, чем у пациентов, лечившихся тимололом [56]. Авторы заключили, что латанопрост является препаратом патогенетического действия при ПЭГ, снижающим прогрессирование заболевания в отдаленном периоде [57]. Этим можно объяснить преимущество латанопроста перед другими аналогами простагландинов, в частности травопростом, в лечении ПЭГ [58].

Исходя из описанных свойств латанопроста, который влияет на синтез MMPs и их ингибиторов, можно заключить, что его действие направлено на защиту РМС от деформации и при других формах глаукомы [46].

В свете новых данных о потенциальных субстанциях для лечения РМС встает вопрос о путях их введения с целью достижения заднего полюса глаза и непосредственно склеры. Для этого разрабатываются альтернативные формы препаратов, например в виде наночастиц, а также введение интравитреальных имплантов и другие методы [59]. Однако не следует забывать, что и при инстилляциях глазных капель содержащиеся в них субстанции также могут проникать к глубоким структурам глаза. Так, было показано, что объем одной капли латанопроста составляет около 50 мкл, а 250 мкг препарата могут проникать в стекловидное тело. Учитывая молекулярную массу латанопроста, в полости стекловидного тела можно ожидать его концентрацию около 0,2 мкмоль [60]. Это означает, что латанопрост в клинической дозе может оказывать достаточное влияние на глубокие структуры глаза, включая РМС.

Заключение

РМС является важной структурой и объектом лечения при глаукоме, которое не связано напрямую со снижением ВГД, а направлено на улучшение механических свойств склеры в области РМС и перипапиллярной зоне. Исследования в этой области продолжаются и сконцентрированы на выяснении необходимого баланса как триггеров, так и самих субстанций, участвующих в ремоделировании экстраклеточного матрикса. Цель этого лечения — повышение устойчивости зрительного нерва к глаукомному повреждению. Комбинация препаратов или свойств одного препарата, направленных одновременно на гипотензивный эффект и лечение склеры, — наиболее перспективный аспект будущей терапии глаукомы.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования: Н.К.

Сбор и обработка материала: Н.К., В.Ю.К., В.Е.К., Х.П.

Написание текста: Н.К., В.Ю.К., В.Е.К., Х.П.

Редактирование: Н.К.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.


1 Smads (или SMADS2) представляют собой семейство структурно сходных белков, которые являются основными передатчиками сигналов для рецепторов суперсемейства TGF-β, которые критически важны для регуляции развития и роста клеток.

Литература / References:

  1. Glidai Y, Lucy KA, Schuman JS, et al. Microstructural Deformations Within the Depth of the Lamina Cribrosa in Response to Acute In Vivo Intraocular Pressure Modulation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2022;63(5):25.  https://doi.org/10.1167/iovs.63.5.25
  2. Hernandez MR, Andrzejewska WM, Neufeld AH. Changes in the extracellular matrix of the human optic nerve head in primary open-angle glaucoma. Am J Ophthalmol. 1990;109(2):180-188.  https://doi.org/10.1016/s0002-9394(14)75984-7
  3. Hernandez MR. Ultrastructural immunocytochemical analysis of elastin in the human lamina cribrosa. Changes in elastic fibers in primary open-angle glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1992;33(10):2891-2903.
  4. Sawaguchi S, Yue BY, Fukuchi T, et al. Collagen fibrillar network in the optic nerve head of normal monkey eyes and monkey eyes with laser-induced glaucoma — a scanning electron microscopic study. Curr Eye Res. 1999; 18(2):143-149.  https://doi.org/10.1076/ceyr.18.2.143.5385
  5. Lee SH, Kim TW, Lee EJ, Girard MJA, Mari JM. Focal lamina cribrosa defects are not associated with steep lamina cribrosa curvature but with choroidal microvascular dropout. Sci Rep. 2020;10(1):6761. Published 2020 Apr 21.  https://doi.org/10.1038/s41598-020-63681-6
  6. Quigley HA. The contribution of the sclera and lamina cribrosa to the pathogenesis of glaucoma: Diagnostic and treatment implications. Prog Brain Res. 2015;220:59-86.  https://doi.org/10.1016/bs.pbr.2015.04.003
  7. Fazio MA, Grytz R, Morris JS, et al. Age-related changes in human peripapillary scleral strain. Biomech Model Mechanobiol. 2014;13(3):551-563.  https://doi.org/10.1007/s10237-013-0517-9
  8. Quigley HA, Dorman-Pease ME, Brown AE. Quantitative study of collagen and elastin of the optic nerve head and sclera in human and experimental monkey glaucoma. Curr Eye Res. 1991;10(9):877-888.  https://doi.org/10.3109/02713689109013884
  9. Fukuchi T, Sawaguchi S, Hara H, Shirakashi M, Iwata K. Extracellular matrix changes of the optic nerve lamina cribrosa in monkey eyes with experimentally chronic glaucoma. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1992;230(5): 421-427.  https://doi.org/10.1007/BF00175926
  10. Waxman S, Brazile BL, Yang B, et al. Lamina cribrosa vessel and collagen beam networks are distinct. Exp Eye Res. 2022;215:108916. https://doi.org/10.1016/j.exer.2021.108916
  11. Prendes MA, Harris A, Wirostko BM, Gerber AL, Siesky B. The role of transforming growth factor β in glaucoma and the therapeutic implications. Br J Ophthalmol. 2013;97(6):680-686.  https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2011-301132
  12. Zode GS, Sethi A, Brun-Zinkernagel AM, Chang IF, Clark AF, Wordinger RJ. Transforming growth factor-β2 increases extracellular matrix proteins in optic nerve head cells via activation of the Smad signaling pathway. Mol Vis. 2011;17:1745-1758.
  13. Kirwan RP, Crean JK, Fenerty CH, Clark AF, O’Brien CJ. Effect of cyclical mechanical stretch and exogenous transforming growth factor-beta1 on matrix metalloproteinase-2 activity in lamina cribrosa cells from the human optic nerve head. J Glaucoma. 2004;13(4):327-334.  https://doi.org/10.1097/00061198-200408000-00011
  14. Kirwan RP, Fenerty CH, Crean J, Wordinger RJ, Clark AF, O’Brien CJ. Influence of cyclical mechanical strain on extracellular matrix gene expression in human lamina cribrosa cells in vitro. Mol Vis. 2005;11:798-810. Published 2005 Sep 23. 
  15. Kirwan RP, Leonard MO, Murphy M, Clark AF, O’Brien CJ. Transforming growth factor-beta-regulated gene transcription and protein expression in human GFAP-negative lamina cribrosa cells. Glia. 2005;52(4):309-324.  https://doi.org/10.1002/glia.20247
  16. Shelton L, Rada JS. Effects of cyclic mechanical stretch on extracellular matrix synthesis by human scleral fibroblasts. Exp Eye Res. 2007;84(2):314-322.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2006.10.004
  17. Wallace DM, Clark AF, Lipson KE, Andrews D, Crean JK, O’Brien CJ. Anti-connective tissue growth factor antibody treatment reduces extracellular matrix production in trabecular meshwork and lamina cribrosa cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2013;54(13):7836-7848. https://doi.org/10.1167/iovs.13-12494
  18. Yang H, Williams G, Downs JC, et al. Posterior (outward) migration of the lamina cribrosa and early cupping in monkey experimental glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2011;52(10):7109-7121. Published 2011 Sep 9.  https://doi.org/10.1167/iovs.11-7448
  19. Yang H, Thompson H, Roberts MD, Sigal IA, Downs JC, Burgoyne CF. Deformation of the early glaucomatous monkey optic nerve head connective tissue after acute IOP elevation in 3-D histomorphometric reconstructions. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2011;52(1):345-363. Published 2011 Jan 21.  https://doi.org/10.1167/iovs.09-5122
  20. Kirwan RP, Felice L, Clark AF, O’Brien CJ, Leonard MO. Hypoxia regulated gene transcription in human optic nerve lamina cribrosa cells in culture. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53(4):2243-2255. Published 2012 Apr 24.  https://doi.org/10.1167/iovs.11-6729
  21. Tezel G, Wax MB. Hypoxia-inducible factor 1alpha in the glaucomatous retina and optic nerve head. Arch Ophthalmol. 2004;122(9):1348-1356. https://doi.org/10.1001/archopht.122.9.1348
  22. McElnea EM, Quill B, Docherty NG, et al. Oxidative stress, mitochondrial dysfunction and calcium overload in human lamina cribrosa cells from glaucoma donors. Mol Vis. 2011;17:1182-1191.
  23. Cone-Kimball E, Nguyen C, Oglesby EN, Pease ME, Steinhart MR, Quigley HA. Scleral structural alterations associated with chronic experimental intraocular pressure elevation in mice. Mol Vis. 2013;19:2023-2039.
  24. Hinz B, Phan SH, Thannickal VJ, Galli A, Bochaton-Piallat ML, Gabbiani G. The myofibroblast: one function, multiple origins. Am J Pathol. 2007; 170(6):1807-1816. https://doi.org/10.2353/ajpath.2007.070112
  25. Hinz B, Phan SH, Thannickal VJ, et al. Recent developments in myofibroblast biology: paradigms for connective tissue remodeling. Am J Pathol. 2012;180(4):1340-1355. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2012.02.004
  26. Hinz B. Myofibroblasts. Exp Eye Res. 2016;142:56-70.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2015.07.009
  27. Oglesby EN, Tezel G, Cone-Kimball E, et al. Scleral fibroblast response to experimental glaucoma in mice. Mol Vis. 2016;22:82-99. Published 2016 Jan 29. 
  28. Cui W, Bryant MR, Sweet PM, McDonnell PJ. Changes in gene expression in response to mechanical strain in human scleral fibroblasts. Exp Eye Res. 2004;78(2):275-284.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2003.10.007
  29. Ehanire T, Ren L, Bond J, et al. Angiotensin II stimulates canonical TGF-β signaling pathway through angiotensin type 1 receptor to induce granulation tissue contraction. J Mol Med (Berl). 2015;93(3):289-302.  https://doi.org/10.1007/s00109-014-1211-9
  30. Quigley HA, Pitha IF, Welsbie DS, et al. Losartan Treatment Protects Retinal Ganglion Cells and Alters Scleral Remodeling in Experimental Glaucoma. PLoS One. 2015;10(10):e0141137. Published 2015Oct27. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0141137
  31. Arfaee F, Armin A. A comparison between the effect of topical tafluprost and latanoprost on intraocular pressure in healthy male guinea pigs. J Exotic Pet Med. 2021;39:91-95.  https://doi.org/10.1053/j.jepm.2021.08.019.
  32. Mehran NA, Sinha S, Razeghinejad R. New glaucoma medications: latanoprostene bunod, netarsudil, and fixed combination netarsudil-latanoprost. Eye (Lond). 2020;34(1):72-88.  https://doi.org/10.1038/s41433-019-0671-0
  33. Millar JC, Clark AF, Pang IH. Assessment of aqueous humor dynamics in the mouse by a novel method of constant-flow infusion. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2011;52(2):685-694. Published 2011 Feb 3.  https://doi.org/10.1167/iovs.10-6069
  34. Schnichels S, Hurst J, de Vries JW, et al. Improved Treatment Options for Glaucoma with Brimonidine-Loaded Lipid DNA Nanoparticles. ACS Appl Mater Interfaces. 2021;13(8):9445-9456. https://doi.org/10.1021/acsami.0c18626
  35. Li T, Wang Y, Chen J, et al. Co-delivery of brinzolamide and miRNA-124 by biodegradable nanoparticles as a strategy for glaucoma therapy. Drug Deliv. 2020;27(1):410-421.  https://doi.org/10.1080/10717544.2020.1731861
  36. Kitaoka Y, Sase K, Tsukahara C, et al. Axonal Protection by Netarsudil, a ROCK Inhibitor, Is Linked to an AMPK-Autophagy Pathway in TNF-Induced Optic Nerve Degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2022;63(1):4.  https://doi.org/10.1167/iovs.63.1.4
  37. Spitzer MS, Sat M, Schramm C, et al. Biocompatibility and antifibrotic effect of UV-cross-linked hyaluronate as a release-system for tranilast after trabeculectomy in a rabbit model — A pilot study. Curr Eye Res. 2012;37:463-470.  https://doi.org/10.3109/02713683.2012.658593
  38. Pfeiffer N, Voykov B, Renieri G, et al. First-in-human phase I study of ISTH0036, an antisense oligonucleotide selectively targeting transforming growth factor beta 2 (TGF-β2), in subjects with open-angle glaucoma undergoing glaucoma filtration surgery. PLoS One. 2017;12(11):e0188899. Published 2017 Nov 30.  https://doi.org/10.1371/journal.pone.0188899
  39. CAT-152 0102 Trabeculectomy Study Group; Khaw P, Grehn F, et al. A phase III study of subconjunctival human anti-transforming growth factor beta(2) monoclonal antibody (CAT-152) to prevent scarring after first-time trabeculectomy. Ophthalmology. 2007;114(10):1822-1830. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2007.03.050
  40. Shan SW, Do CW, Lam TC, Li HL, Stamer WD, To CH. Thrombospondin-1 mediates Rho-kinase inhibitor-induced increase in outflow-facility. J Cell Physiol. 2021;236(12):8226-8238. https://doi.org/10.1002/jcp.30492
  41. Chen WS, Cao Z, Krishnan C, Panjwani N. Verteporfin without light stimulation inhibits YAP activation in trabecular meshwork cells: Implications for glaucoma treatment. Biochem Biophys Res Commun. 2015;466(2):221-225.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2015.09.012
  42. Song XY, Chen YY, Liu WT, et al. Atorvastatin reduces IOP in ocular hypertension in vivo and suppresses ECM in trabecular meshwork perhaps via FGD4. Int J Mol Med. 2022;49(6):76.  https://doi.org/10.3892/ijmm.2022.5132
  43. Agarwal R, Krasilnikova A, Mohamed SNL. Topical losartan reduces IOP by altering TM morphology in rats with steroid-induced ocular hypertension. Indian J. Physiol. 2018;62:238-248. 
  44. Tribble JR, Williams PA, Caterson B, Sengpiel F, Morgan JE. Digestion of the glycosaminoglycan extracellular matrix by chondroitinase ABC supports retinal ganglion cell dendritic preservation in a rodent model of experimental glaucoma. Mol Brain. 2018;11(1):69. Published 2018 Nov 21.  https://doi.org/10.1186/s13041-018-0412-5
  45. Chow A, McCrea L, Kimball E, Schaub J, Quigley H, Pitha I. Dasatinib inhibits peripapillary scleral myofibroblast differentiation. Exp Eye Res. 2020; 194:107999. https://doi.org/10.1016/j.exer.2020.107999
  46. Strickland RG, Garner MA, Gross AK, Girkin CA. Remodeling of the Lamina Cribrosa: Mechanisms and Potential Therapeutic Approaches for Glaucoma. Int J Mol Sci. 2022;23(15):8068. Published 2022 Jul 22.  https://doi.org/10.3390/ijms23158068
  47. Nilsson SF, Samuelsson M, Bill A, Stjernschantz J. Increased uveoscleral outflow as a possible mechanism of ocular hypotension caused by prostaglandin F2 alpha-1-isopropylester in the cynomolgus monkey. Exp Eye Res. 1989;48(5):707-716.  https://doi.org/10.1016/0014-4835(89)90011-0
  48. Weinreb RN, Lindsey JD. Metalloproteinase gene transcription in human ciliary muscle cells with latanoprost. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2002;43(3): 716-722. 
  49. Sagara T, Gaton DD, Lindsey JD, Gabelt B’AT, Kaufman PL, Weinreb RN. Topical prostaglandin F2 α treatment reduces collagen types I, III, and IV in the monkey uveoscleral outflow pathway. Arch Ophthalmol. 1999;117:794-801.  https://doi.org/10.1001/archopht.117.6.794
  50. Konstas AG, Mantziris DA, Stewart WC. Diurnal intraocular pressure in untreated exfoliation and primary open-angle glaucoma. Arch Ophthalmol. 1997;115(2):182-185.  https://doi.org/10.1001/archopht.1997.01100150184006
  51. Ritch R, Schlötzer-Schrehardt U, Konstas AG. Why is glaucoma associated with exfoliation syndrome? Prog Retin Eye Res. 2003;22(3):253-275.  https://doi.org/10.1016/s1350-9462(02)00014-9
  52. Won HJ, Sung KR, Shin JW, Jo YH, Song MK. Comparison of Lamina Cribrosa Curvature in Pseudoexfoliation and Primary Open-Angle Glaucoma. Am J Ophthalmol. 2021;223:1-8.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2020.09.028
  53. Kim S, Sung KR, Lee JR, Lee KS. Evaluation of lamina cribrosa in pseudoexfoliation syndrome using spectral-domain optical coherence tomography enhanced depth imaging. Ophthalmology. 2013;120(9):1798-1803. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2013.02.015
  54. Ersöz MG, Kunak Mart D, Hazar L, Ayıntap E, Botan Güneş İ, Konya HÖ. Evaluation of Prelaminar Region and Lamina Cribrosa with Enhanced Depth Imaging Optical Coherence Tomography in Pseudoexfoliation Glaucoma. Turk J Ophthalmol. 2018;48(3):109-114.  https://doi.org/10.4274/tjo.05882
  55. Moghimi S, Nekoozadeh S, Motamed-Gorji N, et al. Lamina Cribrosa and Choroid Features and Their Relationship to Stage of Pseudoexfoliation Glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2018;59(13):5355-5365. https://doi.org/10.1167/iovs.18-25035
  56. Konstas AG, Koliakos GG, Karabatsas CH, et al. Latanoprost therapy reduces the levels of TGF beta 1 and gelatinases in the aqueous humour of patients with exfoliative glaucoma. Exp Eye Res. 2006;82(2):319-322.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2005.07.004
  57. Курышева Н.И. Новые возможности и перспективы использования латанопроста (Ксалатан, Pfizer, США) в лечении псевдоэксфолиативной глаукомы. Офтальмологические ведомости. 2013;6(1):61-65.  https://doi.org/10.17816/ov2013161-65
  58. Konstas A, Kozobolis V. Efficacy and safety of latanoprost versus travaprost in exfoliative glaucoma patients. Ophthalmology. 2007;114(4):653-657.  https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2006.07.064
  59. Vanrell RH. Novel drug delivery systems for the treatment of glaucoma. Acta Ophthalmol. 2022;100.  https://doi.org/10.1111/j.1755-3768.2022.15606
  60. Lingor P, Tönges L, Pieper N, et al. ROCK inhibition and CNTF interact on intrinsic signalling pathways and differentially regulate survival and regeneration in retinal ganglion cells. Brain. 2008;131(Pt 1):250-263.  https://doi.org/10.1093/brain/awm284

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.