Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Наталия Леонидовна Шеремет

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней имени М.М. Краснова»

Андреева Н.А.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

Жоржоладзе Н.В.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

Мураховская Ю.К.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней имени М.М. Краснова»;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России

Шмелькова М.С.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

Крылова Т.Д.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»

Цыганкова П.Г.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»

Метаболические нарушения при наследственных оптических нейропатиях

Авторы:

Шеремет Н.Л., Андреева Н.А., Жоржоладзе Н.В., Мураховская Ю.К., Шмелькова М.С., Крылова Т.Д., Цыганкова П.Г.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2022;138(4): 29‑34

Прочитано: 1620 раз


Как цитировать:

Шеремет Н.Л., Андреева Н.А., Жоржоладзе Н.В., Мураховская Ю.К., Шмелькова М.С., Крылова Т.Д., Цыганкова П.Г. Метаболические нарушения при наследственных оптических нейропатиях. Вестник офтальмологии. 2022;138(4):29‑34.
Sheremet NL, Andreeva NA, Zhorzholadze NV, Murakhovskaya YuK, Shmelkova MS, Krylova TD, Tsygankova PG. Metabolic disorders in hereditary optic neuropathies. Russian Annals of Ophthalmology. 2022;138(4):29‑34. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma20221380429

Наследственные оптические нейропатии (НОН) входят в группу митохондриальных заболеваний, главной особенностью которых является нарушение работы электротранспортной цепи митохондрий, приводящее к снижению мембранного потенциала, росту продукции активных форм кислорода, снижению уровня аденозинтрифосфата (АТФ) — основного источника клеточной энергии [1]. Нарушение работы митохондрий приводит к разнообразным метаболическим сдвигам, возникающим вторично.

Хотя основной причиной НОН являются мутации митохондриальной ДНК (мтДНК) при наследственной оптической нейропатии Лебера (НОНЛ) и мутации ядерной ДНК при аутосомно-рецессивной оптической нейропатии (АРОН), аутосомно-доминантной оптической нейропатии, однако в настоящее время пристальное внимание уделяется вторичным факторам, приводящим к развитию клинической симптоматики заболевания [2].

Ткань сетчатки обладает высокими метаболическими потребностями, поэтому она особенно чувствительна даже к минимальным изменениям местного гомеостаза. Важную роль в жизненном цикле клетки играет обмен фолиевой кислоты (витамина В9). Производные фолиевой кислоты — фолаты действуют как коферменты в реакциях с переносом одноуглеродных групп и играют исключительно важную роль в биосинтезе ДНК, РНК, гормонов, нейротрансмиттеров, мембранных липидов и белков [3]. Производные фолиевой кислоты также взаимодействуют с витамином В12, являясь донором метильной группы при превращении гомоцистеина в метионин [4]. Таким образом, недостаток коферментов фолиевой кислоты влияет на большое количество метаболических путей и может привести к нарушению биосинтеза важнейших соединений.

Предположительно, в развитии митохондриальной дисфункции при дефиците фолиевой кислоты задействованы несколько патогенетических механизмов. Во-первых, фолатная недостаточность вызывает нарушение митохондриального метаболизма из-за изменений фолатного цикла, влияя на работу электронтранспортной цепи митохондрий и, таким образом, снижая выработку АТФ [5, 6]. Во-вторых, недостаток фолиевой кислоты не только препятствует процессу переноса электронов, но и способствует повышению уровня токсичного формиата (соли муравьиной кислоты), который сам по себе блокирует перенос электронов на кислород, усугубляя условия окислительного стресса, а также делает клетку более чувствительной к нему. Формиат ингибирует цитохромоксидазу, тем самым блокируя окислительное фосфорилирование митохондрий [5, 7]. В-третьих, фолатная недостаточность приводит к накоплению гомоцистеина, который вызывает гибель нейронов сетчатки, воздействуя на ее внутренний и внешний слои, на ганглиозные клетки [4, 5]. В-четвертых, недостаток фолиевой кислоты ведет к снижению активности ряда фолат-зависимых ферментов и нарушению процессов выживания, созревания и миелинизации олигодендроцитов [8, 9].

Предполагается, что дефицит фолиевой кислоты может сам по себе обусловливать развитие симптомов алиментарной оптической нейропатии, а может выступать в качестве триггерного фактора при наличии мутаций, характерных для НОН [2, 10]. Таким образом, поиск метаболических нарушений, которые сопровождают НОН, является актуальной задачей.

Цель исследования — провести сравнительный анализ результатов определения содержания фолиевой кислоты, витамина В12 и гомоцистеина в сыворотке крови пациентов с НОНЛ и АРОН, оптическими нейропатиями другого генеза и группы контроля (ГК).

Материал и методы

Обследованы 58 пациентов с НОНЛ с мутациями мтДНК: m.1778G>А (n=20), m.3460 G>A (n=7), m.14484T>C (n=3), m.3635G>A (n=2), m.13513 G>A (n=3), m.4171C>A (n=1), m.3472Т>С (n=1), m.13379A>G (n=1), m.14597 A>G (n=1), m.14477A>G (n=1), а также пациенты с АРОН, ассоциированной с гомозиготной мутацией в ядерной ДНК [11, 12] с.152 A>G (n=18). Средний возраст пациентов составил 25,6±7,9 года. В ГК вошли 49 пациентов с оптической нейропатией (ОН) ишемического, воспалительного, травматического, компрессионного генеза (средний возраст 52,3±8,1 года). В группу сравнения (ГС) включены 20 здоровых добровольцев (средний возраст 26,1±7,1 года), не отличающихся по возрастному критерию от пациентов основной группы (p>0,05).

Для определения уровня фолиевой кислоты в сыворотке крови применяли микробиологический тест с использованием микропланшета, покрытого Lactobacillus rhamnosus. Рекомендованные референсные значения для фолиевой кислоты представлены в диапазоне 3,1—17,5 нг/мл. Уровень витамина В12 в сыворотке крови определяли с помощью хемилюминесцентного иммуноанализа на микрочастицах (анализатор Architect i2000, Abbott, США; рекомендованные референсные значения 187—883 пг/мл). Уровень гомоцистеина в сыворотке крови определяли методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуоресцентной детекцией (рекомендованные референсные значения 5,46—16,20 мкмоль/л).

Статистическая обработка материала выполнена с помощью программы Statictica 6.0. Данные количественных переменных представлены в виде средних значений и стандартного отклонения от среднего значения (M±SD), минимального и максимального значений параметра. Статистический анализ результатов проводили с использованием дисперсионного анализа Краскела—Уоллиса.

Результаты

В сыворотке крови пациентов с НОН выявлено снижение уровня фолиевой кислоты до нижней границы или ниже референсных значений — в среднем уровень составил 4,0±1,6 (1,4—7,8) нг/мл. В ГК, в которую вошли пациенты с заболеванием зрительного нерва иного генеза, содержание фолиевой кислоты составило 8,2±3,8 (3,1—22,0) нг/мл, а в группе сравнения (ГС), состоящей из здоровых людей соответствующего пациентам с НОН возраста, — 17,1±5,4 (10,9/28,0) нг/мл (рис. 1). Получены значимые различия при сравнении уровней фолиевой кислоты в группах НОН и ГК (p=1,3·10–8), НОН и ГС (p=1·10–17), а также при сравнении ГК и ГС (p=0,003). Выявленная разница между пациентами с ОН иного генеза (ГК) и ГС получена в связи с включением в ГК пациентов широкой возрастной группы, в том числе с ишемической ОН, у которых метаболические нарушения, возникшие с возрастом, могли быть причиной развития сосудистых нарушений.

Рис. 1. Содержание фолиевой кислоты в сыворотке крови у пациентов с НОН (группа 1), пациентов ГК (группа 2) и лиц из ГС (группа 3).

Содержание фолиевой кислоты в плазме крови не различалось в группах пациентов с НОНЛ и АРОН (таблица). При сравнении групп с различными мутациями выявлена и продемонстрирована вышеописанная тенденция.

Содержание фолиевой кислоты, витамина В12 и гомоцистеина в сыворотке крови в группах пациентов с НОНЛ и АРОН, в ГК и ГС

Группы

Число обследованных

Содержание фолиевой кислоты, нг/мл

Содержание витамина В12, пг/мл

Содержание гомоцистеина, мкмоль/л

НОНЛ

40

4,0±1,6

1,4—7,8

pНОНЛ–ГК=0,00001

pНОНЛ–ГС =4·10–11

394,9±184,9

143,0—806,0

pНОНЛ–ГС=0,001

13,9±5,5

6,7—32,6

pНОНЛ–ГС=0,00003

АРОН

18

4,0±1,5

2,1—7,4

pАРОН–ГК=0,0001

pАРОН–ГС=1·10–8

345,6±113,2

161,0—536,0

pАРОН–ГС=0,0006

14,3±5,9

7,2—32,2

pАРОН–ГС=0,0002

ГК

49

8,1±3,9

3,1—22,0

pГК–ГС=0,007

424,3±138,6

191,0—700,0

pГК–ГС=0,02

12,3±4,2

5,6—23,6

pГК–ГС=0,001

ГС

20

17,1±5,4

10,9—28,0

564,8±64,9

418,0—683,0

8,0±1,3

5,6—10,1

Примечание. * — данные представлены в виде: среднее значение ± стандартное отклонение; диапазон минимальных и максимальных значений; значимость различий между группами (р).

Содержание витамина В12 составляло 380,8±168,1 (143,0—806,0) пг/мл в группе пациентов с НОН, 426,4±139,8 (191,0—700,0) и 564,8±64,9 (418,0—683,0) пг/мл соответственно в ГК и ГС (рис. 2). Только в группе с НОН получено снижение уровня витамина В12 ниже референсных значений у 6 пациентов. Получены значимые различия при сравнении пациентов с НОН и ГС (p<0,0001), а также ГК и ГС (p<0,01). Кроме того, значимые различия получены между группами пациентов с НОНЛ и АРОН по сравнению с показателями здоровых добровольцев (ГС) (см. таблицу).

Рис. 2. Содержание витамина В12 в сыворотке крови у пациентов с НОН (группа 1), пациентов ГК (группа 2) и лиц из ГС (группа 3).

Содержание гомоцистеина составляло 14,1±5,6 (6,7—32,7) мкмоль/л в группе пациентов с НОН, 12,3±4,2 (5,6—23,6) и 8,0±1,3 (5,6—10,1) мкмоль/л соответственно в ГК и ГС (рис. 3). При этом у 20 (34,5%) пациентов с НОН, средний возраст которых составлял 28,4±8,8 года, содержание гомоцистеина превышало верхнюю границу референсных значений, в то время как среди пациентов зрелого и пожилого возраста (57,8±17,9 года) с ОН ишемического генеза подобные изменения отмечены только у 5 (9,3%), а в ГС они отсутствовали. При сравнении трех групп выявлена значимая разница между ГС и группой пациентов с НОН (p<0,000003), а также ГК (p<0,0007). Получены значимые различия между группами пациентов с НОНЛ и АРОН по сравнению с показателями здоровых добровольцев (см. таблицу). Такое повышение уровня гомоцистеина в сыворотке крови молодых пациентов с НОН обусловлено пониженным содержанием фолиевой кислоты практически у всех этих пациентов и витамина В12 у части из них.

Рис. 3. Содержание гомоцистеина в сыворотке крови у пациентов с НОН (группа 1), пациентов ГК (группа 2) и лиц из ГС (группа 3).

Обсуждение

Концентрация гомоцистеина в плазме зависит от двух реакций метаболизма, включающих деметилирование гомоцистеина с образованием цистеина и реметилирование до метионина. Витамин В12 и фолат являются кофакторами в процессе реметилирования [4]. Основной причиной гипергомоцистеинемии является снижение активности и уровня ферментов, обеспечивающих метаболизм гомоцистеина.

Ранее было показано, что уже при уровне гомоцистеина >10 мкмоль/л, т.е. формально в пределах так называемых нормальных значений, отмечается значимое увеличение риска артериальных и венозных тромбозов. Снижение уровня гомоцистеина при значениях >10 мкмоль/л обязательно при вторичной профилактике тромбообразования в группах высокого риска, таких как курильщики, пациенты с артериальной гипертензией, нарушениями углеводного обмена, наличием протромботических мутаций [13]. В настоящее время большое внимание уделяется изучению содержания гомоцистеина при аутоиммунных заболеваниях, включая рассеянный склероз, и нейродегенеративных процессах [6, 8, 14, 15]. При обследовании 50 пациентов с рассеянным склерозом концентрация гомоцистеина, превышающая нормальные значения, была выявлена более чем в половине случаев [16]. Авторы отмечают, что полученные данные подтверждают возможное участие гипергомоцистеинемии в развитии эндотелиальной дисфункции при рассеянном склерозе, а также то, что она может быть одним из вероятных механизмов прогрессирования нейродегенерации.

В настоящем исследовании в выборке пациентов с НОН уровень гомоцистеина >10 мкмоль/л выявлен в 75% случаев, в ГК — в 5% случаев.

Снижение уровней фолиевой кислоты и витамина В12 может наблюдаться у людей, злоупотребляющих алкоголем. Так, U. Lachmund и D.S. Mojon в своем исследовании выявили в сыворотке крови низкие уровни фолиевой кислоты и витамина В12 у пациента с мутацией m.11778G>A, ассоциированной с НОНЛ. Однако в анамнезе пациента исследователи отмечают злоупотребление алкоголем, который сам по себе является триггерным фактором для развития клинической симптоматики НОНЛ, а также причиной снижения уровня фолиевой кислоты [15]. Дефицит витамина В12 и в отсутствие генетических нарушений может приводить к развитию симптомов ОН. Согласно исследованиям, цианокобаламин инактивирует пероксидные радикалы и обладает нейропротекторной активностью [4, 10]. При его выраженном дефиците (при недостаточном поступлении с пищей или ввиду нарушений всасывания в желудочно-кишечном тракте) у пациентов развиваются симптомы, характерные для алиментарной ОН.

A. Aleyasin и соавторы, учитывая существующую связь между митохондриями и производными фолиевой кислоты, провели исследование по выявлению полиморфизмов генов MTHFR и MTRR, участвующих в синтезе 5-метилтетрагидрофолата и метионина соответственно, у 21 иранского пациента с НОНЛ и 150 лиц группы контроля [17]. Между пациентами с НОНЛ и контрольной группой наблюдалась значительная разница в частотном распределении генотипов MTHFR C677T и MTRR A66G. Была выявлена сильная ассоциация между НОНЛ и полиморфизмами C677T гена MTHFR (p=0,00) и A66G гена MTRR (p=0,00). По мнению авторов, нарушение метаболизма митохондрий в сочетании с изменением генов фолатного цикла может повлиять на транспорт электронов и приводить к митохондриальной дисфункции и снижению уровня АТФ, что может способствовать тяжести НОНЛ.

Несмотря на имеющиеся публикации, посвященные роли фолиевой кислоты при митохондриальных заболеваниях, сообщений о дефиците фолатов у пациентов с НОН нам не удалось обнаружить.

На сегодняшний день зарегистрированы генетические дефекты почти каждого фермента метаболизма фолиевой кислоты, и большинство из них имеют неврологические последствия. Относительно часто встречается церебральный фолатный дефицит, который определяют как дефицит 5-метилтетрагидрофолата в спинномозговой жидкости в сочетании, как правило, с нормальными показателями фолиевой кислоты в плазме крови. Были описаны различные причины церебрального фолатного дефицита, начиная от врожденных метаболических нарушений, таких как недостаточность дигидрофолатредуктазы (DHFR) и метилентетрагидрофолатредуктазы (MTHFR) и нарушения всасывания фолатов в кишечнике (например, дефекты рецептора фолата 1FRA, кодируемого FOLR1 и связанного с протоном переносчика фолата PCFT, кодируемого SLC46A1), и заканчивая другими нарушениями транспорта фолатов [8, 18, 19].

В литературе приводятся различные доказательства, подтверждающие потенциальную вовлеченность нарушенного метаболизма фолатов в патофизиологию митохондриальных нарушений. Многие исследователи предполагают, что глубокий системный дефицит фолата может способствовать его митохондриальному дефициту. Ключевая роль цитозольного фолата в биосинтезе нуклеотидов, дефицит которого, в свою очередь, может повлиять на механизм репликации мтДНК, заключается в обеспечении энергии транспорта фолата в митохондрии. При этом дефицит АТФ является ключевым патофизиологическим фактором при митохондриальных заболеваниях [8].

Причины дефицита фолиевой кислоты у пациентов с НОН на настоящий момент не определены. Однако их поиск является чрезвычайно актуальным для определения роли фолатного дефицита в развитии НОН, а также возможности его фармакологической компенсации.

Заключение

Таким образом, у пациентов с НОН выявлено выраженное снижение уровней фолиевой кислоты и витамина В12, а также распространенность гипергомоцистеинемии по сравнению с пациентами с ОН иного генеза и группой здоровых добровольцев. Полученные результаты свидетельствуют о значительных метаболических нарушениях у пациентов с НОН. Поиск причин метаболических нарушений является чрезвычайно актуальным для определения роли фолатного дефицита в развитии НОН, а также возможности его фармакологической коррекции.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования: Н.Ш.

Сбор и обработка материала: Н.Ш., Н.А., Н.Ж., Ю.М., М.Ш.,Т.К.,Т.Ц.

Статистический анализ данных: Н.Ш.

Написание текста: Н.Ш., М.Ш.

Редактирование: Н.Ш., Н.А., Ю.М.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Carelli V, Ross-Cisneros FN, Sadun AA. Mitochondrial dysfunction as a cause of optic neuropathies. Prog Retin Eye Res. 2004;23(1):53-89.  https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2003.10.003
  2. Sadun AA. Metabolic optic neuropathies. Semin Ophthalmol. 2002;17(1):29-32.  https://doi.org/10.1076/soph.17.1.29.10290
  3. Blom HJ, Smulders Y. Overview of homocysteine and folate metabolism. With special references to cardiovascular disease and neural tube defects. J Inherit Metab Dis. 2011;34(1):75-81.  https://doi.org/10.1007/s10545-010-9177-44
  4. Froese DS, Fowler B, Baumgartner MR. Vitamin B12, folate, and the methionine remethylation cycle — biochemistry, pathways, and regulation. J Inherit Metab Dis. 2019;42(4):673-685.  https://doi.org/10.1002/jimd.12009
  5. Sijilmassi O. Folic acid deficiency and vision: a review. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2019;257(8):1573-1580. https://doi.org/10.1007/s00417-019-04304-3
  6. Rodan LH, Qi W, Ducker GS, et al. 5,10-methenyltetrahydrofolate synthetase deficiency causes a neurometabolic disorder associated with microcephaly, epilepsy, and cerebral hypomyelination. Mol Genet Metab. 2018;125(1-2): 118-126.  https://doi.org/10.1016/j.ymgme.2018.06.006
  7. de Silva P, Jayamanne G, Bolton R. Folic acid deficiency optic neuropathy: A case report. J Med Case Reports. 2008;2:299.  https://doi.org/10.1186/1752-1947-2-299
  8. Ormazabal A, Casado M, Molero-Luis M, et al. Can folic acid have a role in mitochondrial disorders? Drug Discov Today. 2015;20(11):1349-1354. https://doi.org/10.1016/j.drudis.2015.07.002
  9. Weng Q, Wang J, Wang J, et al. Folate Metabolism Regulates Oligodendrocyte Survival and Differentiation by Modulating AMPKα Activity. Sci Rep. 2017;7(1):1705. https://doi.org/10.1038/s41598-017-01732-1
  10. Oliveira C. Toxic-Metabolic and Hereditary Optic Neuropathies: Contin Lifelong Learn Neurol. 2019;25(5):1265-1288. https://doi.org/10.1212/CON.0000000000000769
  11. Stenton SL, Sheremet NL, Catarino CB, et al. Impaired complex I repair causes recessive Leber’s hereditary optic neuropathy. J Clin Invest. 2021; 131(6):138267. https://doi.org/10.1172/jci138267
  12. Шеремет Н.Л., Крылова Т.Д., Цыганкова П.Г. Новые возможности диагностики наследственных оптических нейропатий. Вестник офтальмологии. 2021;137(5-2):361-366.  https://doi.org/10.17116/oftalma2021137052361
  13. Ansari R, Mahta A, Mallack E, Luo JJ. Hyperhomocysteinemia and Neurologic Disorders: A Review. J Clin Neurol. 2014;10(4):281.  https://doi.org/10.3988/jcn.2014.10.4.281
  14. Herrmann W, Lorenzl S, Obeid R. [Review of the role of hyperhomocysteinemia and B-vitamin deficiency in neurological and psychiatric disorders — current evidence and preliminary recommendations]. Fortschr Neurol Psychiatr. 2007;75(9):515-527. (In German). https://doi.org/10.1055/s-2007-980112
  15. Lachmund U, Mojon DS. [Leber’s hereditary optic neuropathy in malnutrition: A case report]. Klin Monatsbl Augenheilkd. 2006;223(5):393-396. (In German). https://doi.org/10.1055/s-2006-926559
  16. Спирина Н.Н., Спирин Н.Н., Киселева Е.В., Дубченко Е.А., Бойко А.Н. Гомоцистеин и маркеры эндотелиальной дисфункции при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2021; 121(7-2):90-93.  https://doi.org/10.17116/jnevro202112107290
  17. Aleyasin A, Ghazanfari M, Houshmand M. Leber Hereditary Optic Neuropathy: Do Folate Pathway Gene Alterations Influence the Expression of Mitochondrial DNA Mutation? Iran J Public Health. 2010;39(3):53-60. 
  18. Quijada-Fraile P, O’Callaghan M, Martín-Hernández E, et al. Follow-up of folinic acid supplementation for patients with cerebral folate deficiency and Kearns-Sayre syndrome. Orphanet J Rare Dis. 2014;9:217.  https://doi.org/10.1186/s13023-014-0217-2
  19. Pope S, Artuch R, Heales S, Rahman S. Cerebral folate deficiency: Analytical tests and differential diagnosis. J Inherit Metab Dis. 2019;42(4):655-672.  https://doi.org/10.1002/jimd.12092

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.