Гндоян И.А.

ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России

Петраевский А.В.

ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России

Дятчина А.И.

ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России

Аутофлюоресценция глазного дна в диагностике возрастной макулярной дегенерации

Авторы:

Гндоян И.А., Петраевский А.В., Дятчина А.И.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2020;136(5): 136‑141

Прочитано: 3790 раз


Как цитировать:

Гндоян И.А., Петраевский А.В., Дятчина А.И. Аутофлюоресценция глазного дна в диагностике возрастной макулярной дегенерации. Вестник офтальмологии. 2020;136(5):136‑141.
Gndoyan IA, Petrayevskiy AV, Dyatchina AI. Fundus autofluorescence in the diagnosis of age-related macular degeneration. Russian Annals of Ophthalmology. 2020;136(5):136‑141. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2020136051136

Рекомендуем статьи по данной теме:

Возрастная макулярная дегенерация (ВМД) — это заболевание центральной области глазного дна, характеризующееся прогрессирующим необратимым поражением фотоактивной зоны сетчатки и приводящее к потере зрения и инвалидизации среди населения старше 50 лет [1—3]. Этиопатогенез ВМД является многофакторным и включает в себя такие компоненты, как генетическая предрасположенность, липофусциогенез, друзогенез, хроническое воспаление и неоваскуляризация [4—8]. Учитывая распространенность данной патологии и возможность перехода ее начальной стадии в позднюю с потерей центрального зрения, проблема раннего выявления ВМД является актуальной в современной офтальмологии [9—11].

Определенное значение в диагностике ВМД до сих пор придается сбору жалоб и анамнеза [12]. Пациенты могут отмечать как микросимптомы в виде незначительного снижения зрения и зрительного дискомфорта, знаменующие начальную стадию заболевания, так и признаки более продвинутых стадий ВМД (промежуточной и поздней): микро- и макропсии, а также метаморфопсии и положительные скотомы в центральной части поля зрения. Однако ведущими методами диагностики ВМД, безусловно, являются инструментальные. Важное место среди них занимает исследование зрительных функций методами визометрии и статической периметрии в различных модификациях [13, 14]. В число рутинных клинических методик исследования при ВМД входит офтальмоскопия — прямая и в обратном виде. Более высокой чувствительностью обладает биомикроофтальмоскопия с линзой Гольдмана [15], однако она уступает прецизионным высокоточным методикам [16]. К ним относятся флюоресцентная ангиография (ФАГ) с введением флюоресцеина и индоциана зеленого, оптическая когерентная томография (ОКТ), в том числе с функцией ангиографии, и исследование аутофлюоресценции (АФ) [11, 17].

АФ глазного дна — это явление, основанное на способности определенных флюорофоров, содержащихся в сетчатке, создавать флюоресценцию под воздействием коротко- или длинноволнового света. Изучение АФ представляет собой неинвазивный метод оценки состояния пигментного эпителия сетчатки (ПЭС) in vivo в процессе старения и при различной патологии глазного дна [18]. Многие отечественные и зарубежные авторы в диагностике ранних стадий ВМД отдают предпочтение исследованию АФ, поскольку данный метод имеет ряд преимуществ перед другими. К этим преимуществам относятся возможность многократного проведения (что ценно не только для скрининг-исследования, но и с точки зрения динамического наблюдения за ПЭС), относительная простота технического выполнения и достаточно высокая информативность [14, 19—21].

Воздействие возбуждающего света с длиной волны 488 нм на липофусцин, содержащийся в ПЭС, вызывает коротковолновую АФ глазного дна. Накопление липофусцина в клетках пигментного эпителия может быть обусловлено естественным инволюционным или патологическим процессом. Одной из важных функций ПЭС является фагоцитоз наружных сегментов фоторецепторов и их переработка в лизосомальном аппарате своих клеток. Часть вещества, не подвергающаяся химическому разложению и накапливающаяся в лизосомальном аппарате клеток ПЭС, представлена липофусцином [22]. Результаты спектрофотометрических исследований F.C. Delori и соавт. [23, 24] показали прямую зависимость интенсивности аутофлюоресценции in vivo от содержания липофусцина в клетках ПЭС. Кроме того, была определена связь между высоким уровнем липофусцина и дегенерацией клеток ПЭС и расположенных рядом фоторецепторов [25]. Некоторые авторы считают основным фактором развития ВМД именно поражение ПЭС [19, 26—28]. Они полагают, что образование и накопление липофусциновых гранул (ЛГ) в клетках ретинального эпителия происходит в связи с избыточной фагоцитарной активностью ПЭС, что далее запускает механизм развития ВМД [19, 29—31].

Следует отметить, что явление АФ характерно не только для структур глазного дна. Наличие «собственной флюоресценции» было описано А.М. Водовозовым и А.В. Петраевским в 1978 г. среди периваскулярных феноменов в бульбарной конъюнктиве у пациентов с сахарным диабетом [32]. Ими было отмечено, что гиалиноподобные отложения в виде каплевидных вкраплений в конъюнктиве и лимбе, а также студенистая гиперплазия, нередко встречающиеся у больных с сосудистой патологией, обладают яркой собственной флюоресценцией в условиях съемки с установленными возбуждающим и барьерным фильтрами для флюоресцентной ангиографии. Дальнейшие исследования показали отсутствие связи между наличием студенистой гиперплазии конъюнктивы, степенью ее выраженности и особенностями течения сахарного диабета или состоянием глазного дна [33]. В то же время значительное учащение данного признака было зафиксировано с возрастом, что приводит к предположению о наблюдении процессов, аналогичных сенильному липофусциногенезу, протекающему в ПЭС, поскольку известно, что роговица и конъюнктива могут накапливать липофусцин при старении и при некоторых патологических состояниях [34, 35].

Возвращаясь к вопросу об образовании и накоплении флюорофоров в сетчатке, нельзя не упомянуть о другой важной функции ПЭС — регенерации витамина А (ретиналя) в процессе зрительного цикла. Нарушение превращения ретиналя в наружных сегментах фоторецепторов и клетках ПЭС приводит к избыточному накоплению флюорофоров в ЛГ. Под действием света запускаются процессы фотоокисления и фотодеградации самого агрессивного флюорофора А2Е (пиридиниума бисретиноида) с образованием фототоксичных продуктов, что является следующим пусковым механизмом в развитии ВМД. При старении и дегенерации сетчатки содержание и соотношение различных флюорофоров и/или групп флюорофоров в ЛГ ПЭС может варьировать [19, 36]. Сигнал АФ глазного дна может быть записан при помощи модифицированных фундус-камер, оптических когерентных томографов с функцией АФ и конфокальной сканирующей лазерной офтальмоскопии. На сегодняшний день доступным в клинической практике конфокальным сканирующим лазерным офтальмоскопом является гейдельбергский ретинальный ангиограф [16, 37, 38]. Прибор может работать в режиме с индоцианом зеленым без введения контрастного вещества и позволяет получить АФ глазного дна в части спектра, близкой к инфракрасному, поскольку используется длина волны возбуждающего света 787 нм. Последние данные литературы указывают на то, что источниками такой длинноволновой АФ выступают меланин и меланолипофусцин в клетках ПЭС, а также меланин в слоях хориокапилляров [16, 39—42]. Коротковолновая АФ глазного дна отражает состояние только ПЭС. Исследование АФ в инфракрасном режиме длин волн позволяет оценить состояние глубжележащих слоев, включая хориоидею. Сочетание двух режимов исследования в разном диапазоне длин волн может дать более полное представление о состоянии комплекса «ПЭС — хориокапилляры» [16, 37]. Новейшие конфокальные сканирующие офтальмоскопы способны не только выполнять цифровую ангиографию с флюоресцеином/индоцианином зеленым, но и регистрировать АФ, строить изображения в бескрасном и инфракрасном спектре, а также выполнять спектральную ОКТ на одном приборе [16, 37].

Для корректной интерпретации данных исследования АФ необходима систематизация выявляемых этим методом изменений на глазном дне. В 2005 г. A. Bindewold и соавт. [43] предложили классификацию паттернов АФ, которая используется и в настоящее время. Согласно данной классификации, помимо нормальной АФ выделяют минимальные изменения АФ, фокальное усиление АФ, а также различные варианты патологических паттернов: пятнистый, линейный, крапчатый, сетчатый и кружевоподобный.

На кафедре офтальмологии с клиникой СПбГМУ имени академика И.П. Павлова было проведено исследование по сравнительной оценке использования конфокальной сканирующей лазерной офтальмоскопии и ОКТ у пациентов с сухой формой ВМД [16]. Применяя в своей работе вышеупомянутую классификацию, авторы установили, что в сетчатке при сухой форме ВМД с минимальными изменениями чаще встречалось фокальное усиление АФ, а в более развитых случаях неэкссудативной формы заболевания выявлялись крапчатые и кружевоподобные паттерны АФ. Следует отметить, что данные исследования АФ не только подтверждали результаты офтальмоскопии и фотографирования глазного дна, но и дополняли представления о состоянии ПЭС, поскольку при этом фиксировались изменения, которые невозможно было зарегистрировать ни одним другим доступным методом. К ним относились, например, зоны гиперфлюоресценции, соседствующие с полем географической атрофии. Именно они, как полагают авторы, указывают наиболее вероятное направление расширения зоны атрофии при прогрессирующем течении болезни [16].

При изучении АФ-картины глазного дна у пациентов с миопией и дистрофическими изменениями в центральной области глазного дна было показано, что увеличение площади гипоаутофлюоресценции происходит не только при увеличении аксиальных размеров глаза, но и при старении организма, что, по мнению исследователей, требует динамического наблюдения пациентов с миопией на протяжении всей жизни, а не только в период прогрессирования заболевания, связанного с ростом глаза в молодом возрасте [44, 45].

Исследования при начальных стадиях ВМД выявили наличие интактной АФ-картины и жизнеспособности ретинального пигментного эпителия, что обеспечивает возможность обновления наружных сегментов фоторецепторов, а следовательно, хороший прогноз и благоприятную перспективу лечения [46]. При наличии хориоретинальной неоваскуляризации данные изучения АФ позволяют определить ее действительные размеры и состояние ПЭС. При далекозашедшей стадии ВМД сниженная АФ означает функциональную гибель пигментного эпителия и фоторецепторов, а перспективы лечения крайне сомнительны [45, 47]. Особый интерес вызывают работы, в которых изучались возможные маркеры АФ при сухой и влажной формах ВМД [20, 21]. Так, в исследовании P. Bingöl Kiziltunç и F. Şermet [48] самым часто встречаемым паттерном при сухой форме макулодистрофии был ретикулярный (сетчатый), причем как самостоятельно, так и в комбинации с другими паттернами. Поэтому наличие ретикулярной структуры при АФ расценивалось ими как фактор риска прогрессирования при возрастной макулопатии. Другими исследователями ранее был подтвержден факт того, что зоны гипераутофлюоресценции на границах очагов географической атрофии могут быть важным прогностическим показателем прогрессирования сухой формы ВМД [49]. Кроме того, было показано, что самый высокий риск развития неоваскулярной мембраны был связан с пятнистым паттерном АФ [50].

Анализ публикаций, посвященных данной проблеме, свидетельствует о том, что изменения АФ-картины выступают в качестве неинвазивных индикаторов морфологического состояния ПЭС и наружных слоев сетчатки. Усиление явления АФ указывает на наличие патологического накопления липофусцина в постмитотических клетках ПЭС. Следовательно, данный феномен является симптомом дисфункции ПЭС, что наблюдается при самых разных заболеваниях сетчатки, в частности, при неэкссудативной форме ВМД. Поэтому исследование АФ может стать методом выбора для ранней диагностики ВМД в повседневной клинической практике [51, 52]. Ряд авторов отмечают, что этот метод обладает высокой чувствительностью и специфичностью в выявлении сухой формы ВМД, причем данные, полученные при его помощи, имеют более выраженную корреляцию с результатами ФАГ, нежели данные, например, биомикроскопии, цветного фотографирования глазного дна или ОКТ [14, 16, 53]. Отдельные авторы указывают на наличие тех же корреляций и для ВМД с хориоидальной неоваскуляризацией [54].

Помимо этого вследствие своей неинвазивности данный метод исследования имеет безусловное преимущество перед ФАГ, так как может применяться у пациентов с аллергической реакцией на красители (флюоресцеин и индоцианин) [16]. Наконец, как неинвазивность, так и простота технического выполнения и интерпретации результатов исследования АФ позволяют надеяться на его использование в качестве метода ранней диагностики и мониторинга состояния центральной части глазного дна при ВМД [16, 45, 52, 55].

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Литература / References:

  1. Будзинская М.В., Воробьева М.В., Киселева Т.Н., Лагутина Ю.М., Полунин Г.С. Современные подходы к лечению и профилактике возрастной макулярной дегенерации. РМЖ «Клиническая офтальмология». 2007;8(2):78-82. 
  2. Klein R, Klein BEK, Lee KE, Cruickshanks KJ, Chappell RJ. Changes in visual acuity in a population over a 10-year period. The beaver dam eye study. Ophthalmology. 2001;108(10):1757-1766. https://doi.org/10.1016/s0161-6420 (01)00769-2
  3. Williams RA, Brody BL, Thomas RG, Kaplan RM, Brown SI. The Psychosocial impact of macular degeneration. Arch Ophthalmol. 1998;116(4):514-520.  https://doi.org/10.1001/archopht.116.4.514
  4. Акопян В.С. Классификация возрастной макулярной дегенерации. В сб.: Макула; 2004: Тез. докл. Ростов-на-Дону; 2004;90-93. 
  5. Sparrow JR, Boulton M. RPE lipofuscin and its role in retinal pathobiology. Exp Eye Res. 2005;80(5):595-606.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2005.01.007
  6. Klein R, Peto T, Bird A, Vannewkirk MR. The epidemiology of age-related macular degeneration. Am J Ophthalmol. 2004;137(3):486-495.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2003.11.069
  7. Ehrlich R, Harris A, Kheradiya NS, Winston DM, Ciulla TA, Wirostko B. Age-related macular degeneration and the aging eye. Clin Interv Aging. 2008; 3:473-482.  https://doi.org/10.2147/cia.s2777
  8. Edwards AO, Ritter R 3rd, Abel KJ, Manning A, Panhuysen A, Farrer LA. Complement factor H polymorphism in age-related macular degeneration. Science. 2005;308(5720):421-424.  https://doi.org/10.1126/science.1110189
  9. Офтальмология. Национальное руководство. Под ред. Аветисова С.Э., Егорова Е.А., Мошетовой Л.К., Нероева В.В., Тахчиди Х.П. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2008.
  10. Эфендиева М.Х., Рудько А.С., Карпилова М.А. Патофизиологические аспекты возрастной макулярной дегенерации и глаукомы. Национальный журнал глаукома. 2016;15(3):81-88. 
  11. Гветадзе А.А., Королева И.А. Возрастная макулярная дегенерация. Современный взгляд на проблему (обзор литературы). РМЖ «Клиническая Офтальмология». 2015;15(1):37-41. 
  12. Бикбов М.М., Файзрахманов Р.Р., Ярмухаметова А.Л. Возрастная макулярная дегенерация. М.: Апрель; 2013.
  13. Лисочкина А.Б., Нечипоренко П.А. Микропериметрия — преимущества метода и возможности практического применения. Офтальмологические ведомости. 2009;2(1):18-23. 
  14. Соломин В.А., Магарамов Д.А., Качалина Г.Ф. Арбуханова П.М. Диагностическая ценность аутофлюоресценции и микропериметрии у пациентов с влажной формой возрастной макулярной дегенерации. Офтальмохирургия. 2012;1:82-84. 
  15. Гндоян И.А., Дятчина А.И. Диагностическое значение различных методов визуализации центральной области глазного дна в выявлении ранних стадий возрастной макулярной дегенерации. Российский общенациональный офтальмологический форум. 2018;1:52-54. 
  16. Астахов Ю.С., Лисочкина А.Б., Нечипоренко П.А. Современные методы диагностики сухой формы возрастной макулярной дегенерации. Офтальмологические ведомости. 2010;3(2):41-47. 
  17. Семенова Н.С., Акопян В.С., Родин А.С. Вариабельность макулярных друз: возможности мультимодальной визуализации. Вестник офтальмологии. 2016;132(6):78-86.  https://doi.org/10.17116/oftalma2016132678-86
  18. Delori FC, Fleckner MR, Goger DG, Weiter JJ, Dorey CK. Autofluorescence distribution associated with drusen in age-related macular degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000;41(2):496-504. 
  19. Егоров Е.А., Гветадзе А.А. Каротиноиды или макулярные пигменты. Что мы о них знаем? (обзор литературы). РМЖ «Клиническая офтальмология». 2015;15(1):7. 
  20. Hopkins J, Walsh A, Chakravarthy U. Fundus autofluorescence in age-related macular degeneration: an epiphenomenon? Invest Ophthalmol Vis Sci. 2006;47(6):2269. https://doi.org/10.1167/iovs.05-1482
  21. Dysli C, Wolf S, Zinkernagel M. Autofluorescence lifetimes in geographic atrophy in patients with age-related macular degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016;57(6):2479. https://doi.org/10.1167/iovs.15-18381
  22. Von Ruckmann A, Fitzke FW, Bird AC. Distribution of fundus autofluorescence with a scanning laser ophthalmoscope. Br J Ophthalmol. 1995;79(5): 407-412.  https://doi.org/10.1136/bjo.79.5.407
  23. Delori FC, Dorey CK, Staurenghi G, Arend O, Goger DG, Weiter JJ. In vivo fluorescence of the ocular fundus exhibits retinal pigment epithelium lipofuscin characteristics. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1995;36(3):718-729. 
  24. Delori FC, Staurenghi G, Arend O, Dorey CK, Goger DG, Weiter JJ. In vivo measurement of lipofuscin in Stargardt’s disease-fundus flavimaculatus. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1995;36(11):2327-2331.
  25. Dorey CK, Wu G, Ebenstein D, Garsd A, Weiter JJ. Cell loss in the aging retina. Relationship to lipofuscin accumulation and macular degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1989;30(8):1691-1699.
  26. Киселева Т.Н., Лагутина Ю.М., Кравчук Е.А. Современные аспекты патогенеза, клиники и медикаментозного лечения неэкссудативных форм возрастной макулярной дегенерации. РМЖ «Клиническая офтальмология». 2006;3:99. 
  27. Holz FG, Pauleikhoff D, Spaide RF, Bird AC. Age-related macular degeneration. Berlin: Heidelberg:Springer-Verlag; 2013. https://doi.org/10.1007/978-3-642-22107-1
  28. Childs AL, Bressler NM, Bass EB, Hawkins BS, Mangione CM, Marsh MJ, Miskala PH; Submacular Surgery Trials (SST) research group. Surgery for hemorrhagic choroidal neovascular lesions of age-related macular degeneration: Quality-of-life findings: SST report no. 14. Ophthalmology. 2004; 111(11):2007-2014. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2004.07.024
  29. Островский М.А., Донцов А.Е., Сакина Н.Л., Боултон М., Джарвис-Эванс Дж. Способность липофусциновых гранул из ретинального пигментного эпителия глаза человека к фотосенсибилизированному перекисному окислению липидов при действии видимого света. Сенсорные гастемы. 1992;6(3):51-54. 
  30. Островский М.А. Молекулярные механизмы повреждающего действия света на структуры глаза и системы защиты от такого повреждения. Успехи биологической химии. 2005;45:173-204. 
  31. Holz FG, Schutt F, Kopitz J, Eldred GE, Kruse FE, Völcker HE, Cantz M. Inhibition of lysosomal degradative functions in RPE cells by a retinoid component of lipofuscin. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1999;40(3):737-743. 
  32. Водовозов А.М., Петраевский А.В. Изучение микроциркуляции методом флюоресцентной ангиографии бульбарной конъюнктивы и лимба. Офтальмологический журнал. 1978;7:484-487. 
  33. Петраевский А.В. Флюоресцентная ангиография с морфометрическим анализом в оценке микроциркуляции бульбарной конъюнктивы и лимба у больных сахарным диабетом. Офтальмологический журнал. 1981;8:485-489. 
  34. Вит В.В. Строение зрительной системы человека. Одесса: Астропринт; 2003.
  35. Cohn RM, Roth KS. Metabolic diseases. A guide to early recognition. Philadelphia: WB Saunders; 1983.
  36. Арбуханова П.М., Яковлева М.А., Фельдман Т.Б., Борзенок С.А., Островский М.А. Спектры флюоресценции и состав флуорофоров липофусциновых гранул ретинального пигментного эпителия кадаверных глаз человека в норме и в случае визуализируемой патологии. Офтальмохирургия. 2012;3:54-58. 
  37. Астахов Ю.С., Лисочкина А.Б., Нечипоренко П.А. Исследование аутофлюоресценции глазного дна с помощью конфокального сканирующего лазерного офтальмоскопа. Офтальмологические ведомости. 2008;1(3):40-45. 
  38. Алябьева Ж.Ю. Новые горизонты сканирующей лазерной офтальмоскопии. РМЖ «Клиническая Офтальмология». 2005;1:4. 
  39. Ayata A, Tatlipinar S, Kar T, Unal M, Ersanli D., Bilge A.H. Near infrared and short-wavelength autofluorescence imaging in central serous chorioretinopathy. Br J Ophthalmol. 2009;93(1):79-82.  https://doi.org/10.1136/bjo.2008.141564
  40. Keilhauer CN, Delori FC. Near-infrared autofluorescence imaging of the fundus: visualization of ocular melanin. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2006; 47(8):3556-3564. https://doi.org/10.1167/iovs.06-0122
  41. Theelen T, Boon CJ, Klevering BJ, Hoyng CB, Theelen T. Fundus autofluorescence in patients with inherited retinal diseases. Ophthalmologe. 2008; 105(11):1013-1022. https://doi.org/10.1007/s00347-008-1695-1
  42. Weinberger A, Lappas A, Kirschkamp T, Mazinani BA, Huth JK, Mohammadi B, Walter P. Fundus near infared fluorescence correlate with fundus near infared reflectance. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2006;47(7):3098-3108. https://doi.org/10.1167/iovs.05-1104
  43. Bindewald A, Bird AC, Dandekar SS, Dolar-Szczasny J, Dreyhaupt J, Fitzke FW, Einbock W, Holz FG, Jorzik JJ, Keilhauer C, Lois N, Mlynski J, Pauleikhoff D, Staurenghi G, Wolf S. Classification of fundus autofluorescence patterns in early age-related macular disease. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2005;46(9):3309-3314. https://doi.org/10.1167/iovs.04-0430
  44. Будзинская М.В., Стоюхина А.С., Жабина О.А., Эфендиева М.Х., Плюхова А.А., Андреева И.В. Анализ аутофлюоресцентной картины глазного дна у пациентов с миопической макулопатией. Точка зрения. Восток-Запад. 2017;2:23-25. 
  45. Марченко Л.Н., Далидович А.А., Кривоносов В.В, Качан Т.В., Батютова А.В. Аутофлюоресценция сетчатки при заболеваниях глазного дна. ARS medica. Искусство медицины: офтальмология. 2011;16:278-279. 
  46. Vaclavik V, Vujosevic S, Dandekar SS, Bunce C, Peto T, Bird AC. Autofluorescence imaging in age-related macular degeneration complicated by choroidal neovascularization: a prospective study. Ophthalmology. 2008;115(2): 342-346.  https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2007.04.023
  47. Тахчиди Х.П., Качалина Г.Ф., Толстухина Е.А., Тимохов В.Л. Аутофлюоресценция сетчатки и ее особенности при хориоидальной неоваскуляризации, вызванной возрастной макулярной дегенерацией. Офтальмохирургия. 2009;4:20-24. 
  48. Bingöl Kiziltunç P, Şermet F. Fundus autofluorescence changes in age-related maculopathy. Turk J Ophthalmol. 2018;48(6):304-308.  https://doi.org/10.4274/tjo.69260
  49. Holz FG, Bindewald-Wittich A, Fleckenstein M, Dreyhaupt J, Scholl HPN, Schmitz-Valckenberg S; FAM Study Group. Progression of geographic atrophy and impact of fundus autofluorescence patterns in age-related macular degeneration. Am J Ophthalmol. 2007;143(3):463-472.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2006.11.041
  50. Einbock W, Messner A, Schnurrbusch UE, Holz FG, Wolf S; FAM Study Group. Changes in fundus autofluorescence in patients with age-related maculopathy. Correlation to visual function: a prospective study. Graefe’s Arch Clin Exp Ophthalmol. 2005;243(4):300-305.  https://doi.org/10.1007/s00417-004-1027-3
  51. Нероев В.В., Лантух Е.П., Зуева М.В., Цапенко И.В., Фролов М.А., Рябина М.В., Гончар П.А. Электроретинография у больных с неэкссудативной возрастной макулярной дегенерацией. Российский офтальмологический журнал. 2013;6(3):48-53. 
  52. Bellmann C, Rubin GS, Kabanarou SA, et al. Fundus autofluorescence imaging compared with different confocal ophthalmoscopes. Br J Ophthalmol. 2003;87(11):1381-1386. https://doi.org/10.1136/bjo.87.11.1381
  53. Эфендиева М.Х., Будзинская М.В. Сопоставление характеристик патологических изменений при сухой форме возрастной макулярной дегенерации по данным оптической когерентной томографии и аутофлюоресценции глазного дна. Практическая медицина. 2017;3(104):108-110. 
  54. Vujosevic S, Vaclavik V, Bird AC, Leung I, Dandekar S, Peto T. Combined grading for choroidal neovascularisation: colour, fluorescein angiography and autofluorescence images. Graefe’s Arch Clin Exp Ophthalmol. 2007; 245(10):1453-1460. https://doi.org/10.1007/s00417-007-0574-9
  55. Кочергин С.А., Слонимский С.Ю., Овсянко А.А., Гупало О.Д. Некоторые аспекты применения сканирующей лазерной офтальмоскопии в диагностике офтальмопатологии. Офтальмология. 2017;14(3): 227-232.  https://doi.org/10.18008/1816-5095-2017-3-227-232

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.