Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Ризванова Л.Н.

Бюджетное учреждение Ханты-Мансийского автономного округа — Югры «Нижневартовская психоневрологическая больница», Нижневартовск, Россия, 628615

Апполонова С.А.

Бюджетное учреждение Ханты-Мансийского автономного округа — Югры «Нижневартовская психоневрологическая больница», Нижневартовск, Россия, 628615

Савчук С.А.

Отдел специальных лабораторных исследований ФГБУ «Российский центр судебно-медицинской экспертизы» Минздрава России, Москва, Россия, 125284;
лаборатория фармакокинетики и метаболомного анализа Института трансляционной медицины и биотехнологии Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова Минздрава России, Москва, Россия, 119992 , ,

Жевелик О.Д.

Бюджетное учреждение Ханты-Мансийского автономного округа — Югры «Нижневартовская психоневрологическая больница», Нижневартовск, Россия, 628615

Сравнение процедур пробоподготовки при химико-токсикологическом исследовании мочи на наличие наркотических средств, психотропных веществ и их метаболитов

Авторы:

Ризванова Л.Н., Апполонова С.А., Савчук С.А., Жевелик О.Д.

Подробнее об авторах

Просмотров: 1875

Загрузок: 120


Как цитировать:

Ризванова Л.Н., Апполонова С.А., Савчук С.А., Жевелик О.Д. Сравнение процедур пробоподготовки при химико-токсикологическом исследовании мочи на наличие наркотических средств, психотропных веществ и их метаболитов. Судебно-медицинская экспертиза. 2019;62(4):42‑46.
Rizvanova LN, Appolonova SA, Savchuk SA, Zhevelik OD. Comparison of sample preparation techniques in chemical-toxicological analysis of urine for the presence of narcotic drugs, psychotropic substances and their metabolites. Forensic Medical Expertise. 2019;62(4):42‑46. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/sudmed20196204142

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ва­ли­да­ция рус­ско­языч­ной вер­сии Гос­пи­таль­ной шка­лы тре­во­ги и деп­рес­сии в об­щей по­пу­ля­ции. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2023;(4):7-14
При­ме­не­ние ком­пью­тер­но­го зре­ния для про­фи­лак­ти­чес­ких ис­сле­до­ва­ний на при­ме­ре мам­мог­ра­фии. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2023;(6):117-123
Ха­рак­те­рис­ти­ка фа­го­ци­тар­но­го зве­на им­мун­ной сис­те­мы на ран­них ста­ди­ях ра­ка же­луд­ка. Он­ко­ло­гия. Жур­нал им. П.А. Гер­це­на. 2023;(4):30-34
Связь бел­ков ос­трой фа­зы вос­па­ле­ния в кро­ви с на­ли­чи­ем нес­та­биль­ных ате­рос­кле­ро­ти­чес­ких бля­шек при ко­ро­нар­ном ате­рос­кле­ро­зе. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2023;(8):76-81
Роль вра­ча-ги­не­ко­ло­га в вы­яв­ле­нии па­то­ло­гии мо­лоч­ной же­ле­зы и со­че­тан­ных ги­пер­про­ли­фе­ра­тив­ных за­бо­ле­ва­ний. Проб­ле­мы реп­ро­дук­ции. 2023;(5):6-17
Осо­бен­нос­ти ами­но­кис­лот­но­го про­фи­ля фол­ли­ку­ляр­ной жид­кос­ти у па­ци­ен­ток пос­ле COVID-19. Проб­ле­мы реп­ро­дук­ции. 2023;(5):25-36
Оп­ти­ми­за­ция ме­то­да вы­со­ко­эф­фек­тив­ной жид­кос­тной хро­ма­тог­ра­фии с масс-се­лек­тив­ным де­тек­ти­ро­ва­ни­ем для ко­ли­чес­твен­но­го оп­ре­де­ле­ния эве­ро­ли­му­са в кро­ви па­ци­ен­тов пос­ле трансплан­та­ции сер­дца. Ла­бо­ра­тор­ная служ­ба. 2023;(3):29-36
Роль дис­пан­се­ри­за­ции в вы­яв­ле­нии за­бо­ле­ва­ний тол­стой киш­ки. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2023;(11):34-38
Пер­вые ре­зуль­та­ты скри­нин­га ге­па­то­цел­лю­ляр­но­го ра­ка в груп­пе рис­ка. До­ка­за­тель­ная гас­тро­эн­те­ро­ло­гия. 2023;(4):54-59
Мар­шру­ти­за­ция взрос­ло­го на­се­ле­ния при про­фи­лак­ти­чес­ком ме­ди­цин­ском ос­мот­ре и дис­пан­се­ри­за­ции по вы­яв­ле­нию он­ко­ло­ги­чес­кой па­то­ло­гии. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2023;(12):7-11

В последние годы растет число синтетических психоактивных соединений. Это осложняет работу рутинных химико-токсикологических лабораторий, в которых исследуют биологические образцы, взятые от пациентов в состоянии интоксикации или в рамках проводимых медицинских освидетельствований на состояние опьянения.

Вновь появляющиеся психоактивные вещества практически не изучены: неизвестны клинические признаки интоксикации, пути метаболизма в организме человека, их фармакокинетические и фармакодинамические свойства. Большинство этих соединений нельзя обнаружить с помощью иммунохроматографических тестов, поэтому каждое химико-токсикологическое исследование становится ненаправленным и выполняется с применением хромато-масс-спектрометрического оборудования. Рутинный химико-токсикологический анализ стал в 2—3 раза более продолжительным по времени. В этих условиях актуальна задача разработки таких методов пробоподготовки и анализа, которые помогут не только повысить информативность химико-токсикологического исследования, но и увеличить пропускную способность лаборатории.

Задачи исследования:

— провести сравнительную оценку изолирования методами ЖЖЭ и ТФЭ наркотических, психотропных веществ и их метаболитов из мочи для исследования методами ГХМС и ВЭЖХ—МС/МС;

— апробировать процедуры подготовки проб для ГХМС и ВЭЖХ—МС/МС в ненаправленном химико-токсикологическом исследовании реальных образцов мочи.

Материал и методы

Для сравнительных испытаний использовали усредненные пробы мочи, содержащие наркотические и психотропные вещества и их метаболиты. В образцах, маркированных PT-8-urine и PT-9-urine, объединили пробы мочи, в которых при проведении химико-токсикологических исследований выявлялись метаболиты/маркеры употребления наркотических средств и психотропных веществ. До проведения исследования образцы хранились при температуре –20 °C.

Для апробации предлагаемых процедур пробоподготовки ретроспективно проанализировали образцы мочи пациентов, госпитализированных в Нижневартовскую психоневрологическую больницу в состоянии интоксикации после сочетанного употребления разных психоактивных соединений в октябре 2015 г. (проба Nv-42-urine) и в феврале 2016 г. (проба Nv-78-urine). У госпитализированных отмечали психоневрологические и соматические нарушения, по всей вероятности, вызванные сочетанным воздействием наркотических средств и их метаболитов. Образцы брали в течение первых 2 ч после госпитализации. До проведения ретроспективного исследования образцы хранили при температуре –20 °С.

Процедура ЖЖЭ. 3 мл мочи подвергали минеральному гидролизу с 200 мкл 10Н КОН 30 мин при температуре 50 °C. Экстрагировали 1,5 мл смеси дихлорметан/гептан/изопропанол в соотношении 6:3:1 при рН 8,0—9,0. После центрифугирования верхний органический слой переносили в емкость для упаривания. Водную фазу вновь подкисляли до рН 2,0—3,0 и экстрагировали 1,5 мл смеси гептан/этилацетат в соотношении 7:1. После центрифугирования верхний органический слой объединяли с предыдущим экстрактом и упаривали в вакуумном экстракторе при температуре 45 °C. Для ВЭЖХ—МС/МС сухой экстракт растворяли в 400 мкл ацетонитрила. Для ГХМС проводили дериватизацию с 50 мкл 1% ТМХС в БСТФА и 50 мкл этилацетата в течение 30 мин при температуре 100 °C. Финальный объем доводили до 200 мкл этилацетатом [1].

Процедура ТФЭ. Патрон для ТФЭ (SampliQ Evidex, 200 мг, 3 мл) предварительно концентрировали последовательным пропусканием 1 мл метанола, 2 мл воды и 2 мл 0,1 М фосфатного буфера с рН 6,0. Затем 3 мл мочи подвергали минеральному гидролизу с 200 мкл 10Н КОН в течение 30 мин при температуре 50 °C. Доводили значение рН до 6,0—7,0 концентрированной НСl и добавляли 3 мл 0,1 М фосфатного буфера рН 6,0. После центрифугирования супернатант загружали в патрон для ТФЭ со скоростью 1—2 мл/мин. Промывали патрон последовательным пропусканием 3 мл воды и 2 мл 0,1 М ацетатного буфера рН 4,0. После вакуумного подсушивания в течение 1 мин патрон промывали 0,5 мл метанола и продолжали подсушивать еще в течение 5 мин. Элюирование проводили 2 мл смеси дихлорметан/аммиак концентрированный в соотношении 98:2. Упаривали в вакуумном экстракторе при температуре 45 °C. Для ВЭЖХ—МС/МС сухой экстракт растворяли в 400 мкл ацетонитрила, а для ГХМС проводили дериватизацию с 50 мкл 1% ТМХС в БСТФА и 50 мкл этилацетата 30 мин при температуре 100 °C. Финальный объем доводили до 200 мкл этилацетатом.

Процедура ПВ 4:1 для ВЭЖХ—МС/МС. 400 мкл мочи и 100 мкл ацетонитрила перемешивали 10 с и центрифугировали в течение 10 мин при 15 000 об/мин. Затем 400 мкл супернатанта переносили в виалу для хроматографирования.

Процедура ПВ 1:1 для ВЭЖХ—МС/МС. 250 мкл мочи и 250 мкл ацетонитрила перемешивали 10 с и центрифугировали в течение 10 мин при 15 000 об/мин. Затем 400 мкл супернатанта переносили в виалу для хроматографирования.

Метод ГХМС. Анализатор — Agilent 7890A/5975C с кварцевой капиллярной колонкой Rxi-5ms длиной 30 м, диаметром 0,25 мм, толщиной пленки нанесенной неподвижной фазы (5%-фенил)-полиметилсилоксана 0,25 мкм. Анализ в режиме постоянного потока газа-носителя гелия 1,2мл/мин. Объем вводимого образца 1 мкл, без разделения потока. Температура инжектора 280 °C, интерфейса 280 °C. Программа термостатирования колонки: 1 мин при температуре 100 °C, увеличение температуры до 290 °C со скоростью 25 °C в 1 мин, 7 мин при температуре 290 °C. Режим сканирования по полному ионному току (SCAN). Температура источника ионов 230 °C, температура анализатора 150 °C. Диапазон масс m/z 41—650 а.е.м. Идентификацию целевых соединений выполняли с помощью программ AMDIS и MSD ChemStation с использованием библиотек масс-спектров MWP2011, NIST11, Wiley 9, SUDMED_2288_AMDISLIB/NISTLIB/ACSLIB_20160314 [1—3].

Метод ВЭЖХ—МС/МС. Применялся метод, представленный в информационном письме ННЦ наркологии Минздрава России в 2014 г. [4].

Результаты

Целевые соединения — наркотические средства, психотропные вещества и их метаболиты в образцах мочи PT-8-urine и PT-9-urine ранее определены по результатам 2-го раунда многоцентровых сличительных испытаний МежтоксЛаб в 2016 г. [5].

В образце PT-8-urine обнаружили вещества и/или метаболиты веществ: амфетамин, MDPV, aPVP, кодеин, морфин, THC-СООН, PB-22 °F, XLR11, AB-CHMINACA, в образце PT-9-urine — вещества и/или метаболиты веществ: MDPV, aPVP, 5F-AB-PINACA, AB-CHMINACA, XLR11, MDMB (N)-bz-F (табл. 1).

Таблица 1. Сравнение результатов хромато-масс-спектрометрии образцов PT-8-urine и PT-9-urine

Целевые соединения наркотические средства, психотропные вещества и их метаболиты в образцах мочи Nv-42-urine и Nv-78-urine ранее определены по результатам химико-токсикологических исследований методами, представленными в информационных письмах ННЦ наркологии [3, 4], в день госпитализации пациентов.

В образце Nv-42-urine обнаружили вещества и/или метаболиты веществ: aPVP, кодеин, морфин, AB-CHMINACA, в образце Nv-78-urine – обнаружены вещества и/или метаболиты веществ: aPVP, 5F-AB-PINACA, MDMB (N)-2201 (табл. 2).

Таблица 2. Сравнение результатов хромато-масс-спектрометрии образцов мочи Nv-42-urine и Nv-78-urine

Обсуждение

Для изолирования и концентрирования целевых соединений протестировали два метода: ЖЖЭ при рН 8,0—9,0 и при рН 2,0—3,0 после щелочного гидролиза и ТФЭ при рН 6,0—7,0 после щелочного гидролиза. Как видно из данных табл. 1 и 2, более эффективным методом изолирования и концентрирования из мочи наркотических средств, психотропных веществ и их метаболитов при химико-токсикологическом скрининге можно считать ТФЭ.

Провели сравнительную оценку процедур ЖЖЭ, ТФЭ и ПВ для ВЭЖХ—МС/МС. Установили, что несомненным преимуществом прямого ввода образца для метода ВЭЖХ—МС/МС является возможность выявления и идентификации глюкуронидов целевых соединений (в том числе этилглюкуронида). Способы подготовки проб без концентрирования позволили выявить методом ВЭЖХ—МС/МС лишь часть каннабимиметиков, присутствовавших в образцах (см. табл. 1, 2). Очевидно, несмотря на привлекательность данного способа пробоподготовки, для определения продуктов метаболизма синтетических каннабимиметиков и тетрагидроканнабинола необходимы процедуры изолирования после предшествующего гидролиза и концентрирования.

Психостимуляторы aPVP и MDPV выявляли независимо от способа пробоподготовки и инструментального метода. Методы изолирования и концентрирования не имеют никакого преимущества в интенсивности отклика соединений на хроматограмме по сравнению с методом прямого ПВ (см. табл. 1, 2).

Выводы

1. Для идентификации маркеров наркотических средств и психоактивных веществ в моче методом ГХМС более эффективна (в 1,5—2 раза) процедура пробоподготовки ТФЭ, чем ЖЖЭ. Для исследования методом ВЭЖХ—МС/МС эффективность процедур пробоподготовки ЖЖЭ и ТФЭ практически равнозначна.

2. Преимущество процедур ПВ 4:1 и ПВ 1:1 для метода ВЭЖХ—МС/МС состоит в возможности определения глюкуронидов целевых соединений. Нецелесообразно применять только этот метод при проведении скринингового химико-токсикологического исследования, так как он позволяет выявить методом ВЭЖХ—МС/МС часть маркеров каннабимиметиков, присутствующих в образцах мочи (в данном эксперименте 11 из 15 целевых аналитов).

3. Сочетание ГХМС с процедурой пробоподготовки ТФЭ и одновременно ВЭЖХ—МС/МС с процедурой пробоподготовки ПВ 4:1 позволяет в 1,5 раза повысить выявляемость целевых соединений при проведении ненаправленного химико-токсикологического исследования.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

The authors declare no conflicts of interest.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail



Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.