Сидоркина А.Г.

ФГБОУ ВО «Читинская государственная медицинская академия» Минздрава России

Мудров В.А.

ФГБОУ ВО «Читинская государственная медицинская академия» Минздрава России

Современные представления о патогенезе развития хронической плацентарной недостаточности

Авторы:

Сидоркина А.Г., Мудров В.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2339 раз


Как цитировать:

Сидоркина А.Г., Мудров В.А. Современные представления о патогенезе развития хронической плацентарной недостаточности. Российский вестник акушера-гинеколога. 2024;24(1):12‑18.
Sidorkina AG, Mudrov VA. Modern ideas about the pathogenesis of chronic placental insufficiency. Russian Bulletin of Obstetrician-Gynecologist. 2024;24(1):12‑18. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rosakush20242401112

Рекомендуем статьи по данной теме:
К воп­ро­су о фак­то­рах рис­ка не­дос­та­точ­но­го рос­та пло­да. Рос­сий­ский вес­тник аку­ше­ра-ги­не­ко­ло­га. 2025;(6):52-58

Введение

Плацентарная дисфункция является основным фактором, способствующим задержке роста плода. Задержка роста плода реализуется за счет хронической гипоксии плода вследствие недостаточной плацентарной перфузии. Нарушение ангиогенеза является наиболее распространенным патогенетическим механизмом, способствующим нарушению развития плода [1, 2]. Задержка роста плода является основной причиной мертворождения, гипотрофии и нарушения антенатального развития нервной системы. Плод обладает способностью реагировать на гипоксию путем адаптивных механизмов, позволяющих регулировать рост на фоне недостатка питательных веществ. Однако при прогрессирующей плацентарной дисфункции гипоксия в ряде случаев приводит к тому, что плод больше не может адаптироваться, и это приводит к развитию дистресса [3, 4].

Частота задержки роста плода составляет 5—10%, при отягощенном акушерско-гинекологическом анамнезе и осложненной беременности — 10—25%. Частота задержки роста плода обратно пропорциональна сроку донашивания беременности и может достигать 60% среди родившихся недоношенными. При массе плода менее 10-го процентиля отмечается более высокий риск перинатальной смертности, а также мертворождения. Наиболее высокий риск данных осложнений наблюдался у плодов с массой тела при рождении менее 3-го процентиля. Задержка роста плода — фактор риска интранатальных осложнений, а также различных, нередко тяжелых, неврологических и ментальных нарушений после рождения [5].

Хроническая плацентарная недостаточность (ХрПН) оказывает непосредственное влияние на развитие нервной системы плода. В результате гипоксии плода происходит перераспределение кровотока, которое направлено на обеспечение жизненно важных органов, в том числе и головного мозга. Маточно-плацентарный комплекс пытается создать условия для развития в первую очередь центральной нервной системы плода, но этих компенсаторных механизмов зачастую бывает недостаточно. Неврологические проявления наиболее часто встречаются у детей, у которых была диагностирована задержка роста. На результаты развития нервной системы влияют сроки реализации плацентарной недостаточности и тяжесть задержки роста плода, гестационный возраст. Задержка роста плода широко связана с уменьшением общего объема мозга и измененным объемом и структурой коры, уменьшением общего количества клеток и дефицитом миелинизации. Внутримозговые связи также могут быть нарушены, о чем свидетельствует дефицит миграции нейронов и снижение интенсивности процесса образования дендритов [6—8].

Немаловажным остается и тот факт, что ХрПН приводит не только к задержке роста плода, но и является причиной развития преэклампсии. Инвазия трофобласта и его способность ремоделировать спиральные артерии матки играют ключевую роль в правильном формировании плаценты, что в свою очередь является залогом успешного прогрессирования беременности. Плацента является переходным органом, который поддерживает развитие плода. Она регулирует газообмен, обмен питательными веществами и отходами между матерью и плодом, а также секретирует многие гормоны, которые важны для роста плода и прогрессирования беременности. Соответственно, при нарушении формирования плаценты нарушается ее эндокринная функция. В результате неадекватной выработки биологически активных веществ плацентой происходит вазоконстрикция сосудов материнского русла с формированием гипертензивных расстройств и преэклампсии. Таким же образом гормональный дефицит приводит к недостаточному росту плода [9, 10].

Целью исследования явилось изучение современных представлений о патогенезе развития плацентарной недостаточности. В ходе исследования проведен детальный систематический анализ современной отечественной и зарубежной литературы, посвященной патогенетическим механизмам развития хронической плацентарной недостаточности. В исследовании использовались такие информационные базы, как: e-library, PubMed, ФИПС с момента создания до декабря 2022 г.

Роль фибриноида в патогенезе плацентарной недостаточности

Фибриноид — это сложное вещество, образованное за счет белков и полисахаридов, распадающихся коллагеновых волокон и основного вещества, а также плазменных белков крови и нуклеопротеидов разрушенных клеток соединительной ткани. В настоящее время в плаценте принято выделять два вида фибриноида (матричный и фибриноидный типы). Образование фибриноида матричного типа считают стереотипной реакцией на повреждение синцитиотрофобласта. Матричный фибриноид накапливается в межворсинчатом пространстве в ответ на снижение перфузии, которая может быть обусловлена нарушением ремоделирования спиральных артерий вследствие недостаточности ранней волны инвазии цитотрофобласта. Ворсины, окруженные фибриноидом, выключаются из кровотока и не участвуют в диффузии газов и метаболитов. Мальперфузия (плодная и материнская) значительно нарушает основную функцию плаценты — диффузию и ярче всего выражается в плацентах плодов с экстремально низкой массой тела. В 2014 г. коллективом зарубежных авторов было показано, что отложение фибрина в плаценте встречается в 9,2% мертворождений и 1,5% живорождений. А профессором А.Г. Франком и соавт. [11] в 2017 г. было доказано, что при скоплении фибриноида, захватывающего более 20% базальной пластины, зачастую наблюдается гипотрофия плода и нередко — преждевременные роды [11], а также мертворождение [12].

Опираясь на вышеперечисленные данные, можно сделать вывод, что фибриноид играет существенную роль в развитии ХрПН. Но остается неясной природа образования фибриноида. Существует ряд исследований, направленных на изучение патогенеза его образования. В качестве маркера был использован CD42b (мембранный белок, основной компонент тромбоцитарного комплекса). Фибриноид фибриноидного типа был связан с тромбоцитарными агрегатами, положительными при иммуноокрашивании CD42b в субхорионных и базальных областях пластинок, обращенных к материнской части кровотока и межворсинчатым пространствам. Следовательно, можно сделать вывод, что локальный застой крови в микроциркуляторном русле, турбулентность или повреждение слоя синцитиотрофобласта могут активировать материнские тромбоциты в плацентарном межворсинчатом пространстве и привести к образованию фибриноида фибриноидного типа. Фибриноид матричного типа не окрашивался CD42b, и он был обнаружен в межворсинчатых пространствах, трофобласте, внутриворсинчатых тканевых областях и сосудистых стенках при децидуальной васкулопатии. На основании данного исследования можно сделать вывод, что фибриноид фибриноидного типа в основном является результатом изменения ламинарного кровотока, что приводит к активации коагуляторных каскадов. Патогенез образования фибриноида матричного типа остается неясным [13, 14].

По мнению J. Guettler и соавт. [15], в процессе образования фибриноида существенную роль играют тромбоциты. Во время беременности количество тромбоцитов уменьшается с каждым триместром, в неосложненных случаях число тромбоцитов снижается примерно на десять процентов в течение всего периода гестации и восстанавливается до прежнего уровня через несколько недель после родов. Время, когда материнские тромбоциты начинают появляться в хориальной ткани, скорее всего совпадает с появлением слабо сплоченных эндоваскулярных трофобластных пробок, локализующихся в капиллярных каналах к середине I триместра. В это время тромбоциты накапливаются в межклеточных промежутках анкерных частей трофобластных колонн и начинают адгезироваться на хорионической пластинке. Это считается нормальным процессом, который способствует развитию плаценты, воздействуя как на экстравиллозный, так и на ворсинчатый трофобластный компонент. Высвобождение тромбоцитарного «груза» в межклеточные промежутки анкерных клеточных колонок может влиять на частичный эпителиально-мезенхимальный переход и инвазивность экстравиллозных трофобластов, а также на отложение фибриноидов в базальной пластине. Активация материнских тромбоцитов на ворсинчатой поверхности приводит к перивиллозному фибриноидному отложению, способствуя формированию развивающихся плацентарных ворсинок и межворсинчатого пространства. Напротив, избыточная активация тромбоцитов на ворсинчатой поверхности приводит к дерегуляции эндокринной активности, стерильному воспалению и местному апоптозу синцитиотрофобласта [15, 16].

Роль соединительнотканной дисплазии в патогенезе плацентарной недостаточности

Проблема дисплазии соединительной ткани (ДСТ), которая вызывает в последние годы повышенный интерес в различных областях медицины, обусловлена широким диапазоном ее частоты от 26 до 80% и разнообразными висцеральными проявлениями. В акушерстве ДСТ также является актуальной проблемой ввиду развития различных осложнений беременности у данной группы пациенток. Комплексное изучение последов при плацентарной недостаточности у пациенток с ДСТ с использованием обзорных методик и иммуногистохимического исследования (ИГХ) матриксных металлопротеиназ (ММП) 2-го и 9-го типов позволило установить снижение средней массы плаценты, увеличение концентрации солей кальция и фибриноида с формированием псевдоинфарктов, отставание созревания ворсинчатого хориона на 2—4 нед с преобладанием ворсин промежуточного типа, а также высокие значения уровней экспрессии ММП 2-го и 9-го типов. Во время беременности ММП являются важными регуляторами ремоделирования сосудов матки. Увеличение ММП 2-го и 9-го типов приводит к дилатации спиральных артерий, что способствует полноценной плацентации. Аномальная экспрессия маточно-плацентарных интегринов, цитокинов и ММП при ДСТ может привести к снижению апоптоза инвазивных клеток трофобласта, неадекватному ремоделированию спиральных артерий и снижению перфузионного давления в матке, что становится причиной ХрПН, а также гипертензивных расстройств во время беременности [17—19].

У пациенток, страдающих ДСТ, интенсивность ИГХ-реакции ММП повышена в синцитиотрофобласте терминальных ворсин и децидуальных клетках, но снижена в трофобласте базальной пластинки. При ХрПН интенсивность экспрессии ММП увеличивается. Важно отметить, что интенсивность экспрессии ММП 2-го и 9-го типов в плацентарной ткани коррелирует с тяжестью ДСТ. Повышение экспрессии ММП сопровождается нарушениями в межклеточной кооперации, вызванными протеолизом компонентов внеклеточного матрикса. Протеолиз влечет за собой структурные нарушения и дисфункцию последа [16, 19, 20]. Помимо изменения экспрессии ММП у пациенток с ДСТ изменяется экспрессия гена ADAMTS5, который кодирует дезинтегрин и ММП. Фермент, кодируемый этим геном, принимает участие в синтезе главного протеогликана хрящевой ткани. В 2016 г. S. Ozler и соавт. [21] доказали, что повышенные уровни ADAMTS5 наблюдались в случаях плацентарной недостаточности. Экспрессия ADAMTS5 выше в группе пациенток с задержкой роста плода, чем в контрольной группе. Наблюдалась отрицательная корреляция между уровнями ADAMTS5 в сыворотке крови и массой тела при рождении в группе пациенток с задержкой роста плода [21, 22].

Как известно, соединительная ткань является каркасом и для сосудистой стенки. Одной из причин венозной недостаточности, которая часто встречается у беременных, может быть ДСТ. Венозная недостаточность, в свою очередь, связана с повышением окислительных процессов в венозной стенке. В зарубежной литературе есть данные, которые указывают, что повреждение плаценты, обнаруженное у женщин с венозной недостаточностью, характеризуется гиперэкспрессией маркеров окислительного стресса, таких как: NOX1, NOX2 и iNOS (генов, кодирующих различные оксидазы). Ни для кого не секрет, что нарушение окислительно-восстановительного гомеостаза является ключевым моментом многих патологических состояний. Как основной компонент клеточных мембран липиды играют незаменимую роль в поддержании структурной целостности клеток. Чрезмерное окисление липидов, которое встречается при венозной недостаточности, способствует изменению физических свойств клеточных мембран и может вызвать ковалентную модификацию белков и нуклеиновых кислот, что, в свою очередь, приводит к повреждению плаценты и формированию ХрПН [23—25]. Таким образом, опираясь на все вышеперечисленные данные, можно сделать вывод, что ХрПН является одним из многочисленных проявлений ДСТ.

Роль атероза спиральных артерий в патогенезе плацентарной недостаточности

Физиологическая трансформация с ремоделированием маточных спиральных артерий является ключом к успешной плацентации и нормальному функционированию плаценты. Это сложный процесс, который не ограничивается сложными взаимодействиями между материнскими децидуальными иммунными клетками и инвазией трофобласта в эндометрий. При нормальной беременности гладкомышечные клетки маточно-плацентарных спиральных артерий замещаются вторгающимся трофобластом, а диаметр артерий увеличивается в 5—10 раз. Неполное ремоделирование маточных спиральных артерий связано с формированием ХрПН, которая может проявляться ранней преэклампсией или задержкой роста плода. Нарушение экстравиллозной эндогландулярной и эндовенозной инвазии трофобласта в настоящее время рассматривается в качестве потенциальных факторов, способствующих развитию как преэклампсии, так и задержки роста плода. В последнее время существует мнение, что к нарушению ремоделирования спиральных артерий приводит острый атероз. Острый атероз — это пеноклеточное поражение маточно-плацентарных спиральных артерий, связанное с неполноценным ремоделированием, которое часто встречается при преэклампсии. Он имеет некоторые морфологические сходства с ранними стадиями атеросклероза, но в настоящее время обнаружены несколько молекулярных различий между этими патологическими процессами. Учитывая, что пенистые клетки атеросклеротических поражений возникают из гладкомышечных клеток или макрофагов, существует предположение, что множественные формы воспаления децидуальных сосудов могут вызывать острый атероз. Липид-ассоциированные белки FABP4 (белок, связывающий жирные кислоты), перилипин-2 (белок, связанный с дифференцировкой жировой ткани) и LOX-1 (лектиноподобный окисленный рецептор ЛПНП) участвуют в образовании клеток атеросклеротической пены. Повышенные уровни этих белков в плацентарной ткани были связаны с преэклампсией. Перилипин-2 и FABP4 экспрессируются пенистыми клетками острого атероза, которые похожи на атеросклеротическое поражение. В отличие от атеросклероза LOX-1 не присутствует при остром атерозе, что, возможно, объясняется специфическими для беременности путями к генерации пенистых клеток decidua basalis [26—29].

Роль иммунных клеток в патогенезе плацентарной недостаточности

При имплантации эмбрион экспрессирует аллоантигены отцовского происхождения, что вызывает воспалительный ответ, который может стать причиной неблагоприятного исхода беременности. Для обеспечения полноценной плацентации большое значение имеет активное состояние иммунной толерантности матери, опосредованное регуляторными T-клетками CD4+. Клетки CD4+ ингибируют эффекторный иммунитет, сдерживают воспаление и поддерживают материнскую сосудистую адаптацию, тем самым облегчая инвазию трофобласта. Недостаточное количество CD4+ или их неадекватная функциональная компетентность связаны с идиопатическим бесплодием и повторным выкидышем, а также с более поздними осложнениями беременности, которые являются следствием плацентарной недостаточности (преэклампсия или задержка роста плода) [30, 31].

Преэклампсия и задержка роста плода остаются главными причинами материнской и перинатальной заболеваемости. Доказано, что клетки CD4+ способствуют сосудистому гомеостазу, но влияют ли клетки CD4+ на сосудистые адаптации, необходимые для физиологической беременности, неизвестно. Таким образом, используя мышиную модель истощения CD4+ клеток, A. Care и соавт. [32] в 2018 г. исследовали гипотезу о том, что истощение клеток CD4+ вызывает повышенное воспаление и нарушение функции маточной артерии. Они продемонстрировали, что истощение клеток CD4+ приводит к увеличению резорбции эмбриона и увеличению выброса провоспалительных цитокинов. Функция маточной артерии, которая необходима для обеспечения питательными веществами плаценты и плода, показала дисрегулируемую гемодинамику после истощения клеток CD4+. В пользу этого свидетельствовали повышенные показатели резистентности маточных артерий и усиленное превращение bET-1 (большой эндотелин-1) в активный и мощный сосудосуживающий агент ET-1 (эндотелин-1). Эти данные демонстрируют важную роль клеток CD4+ в модуляции функции маточной артерии во время беременности [32—34].

В поддержку иммунной теории ХрПН A. Berbets и соавт. [35] в 2021 г. были исследованы уровни провоспалительных цитокинов (фактор некроза опухоли-α (ФНО-α, IL-1-β, IL-6), противовоспалительных цитокинов (IL-4, IL-10) и мелатонина в группе пациенток с задержкой роста плода. Уровни провоспалительных цитокинов в обследуемой группе были достоверно выше, чем в контрольной группе: уровень TNF-α — 10,05±1,35 и 5,60±1,50 пг/мл соответственно (p<0,05); IL-1β — 14,67±2,13 и 3,96±0,92 пг/мл соответственно (p<0,001); IL-6 — 6,91±0,99 и 2,69±0,99 пг/мл соответственно (p<0,05). То же самое относится и к противовоспалительным цитокинам: уровень IL-4 в обследуемой группе был равен 5,97±0,50 пг/мл, в контрольной группе — 3,74±0,62 пг/мл (p<0,05); IL-10 — 11,40±1,50 и 4,70±3,20 пг/мл соответственно (p<0,001). Повышение в сыворотке крови концентрации таких противовоспалительных цитокинов, как IL-4 и IL-10, авторы объясняют активацией компенсаторных механизмов, которые снижают риск преждевременных родов.

В отношении мелатонина обнаружено, что его концентрация значительно снижается, если беременность осложняется задержкой роста плода (в обследуемой группе его концентрация составляла 126,87±14,87 пг/мл, в контрольной группе — 231,25±21,56 пг/мл; p<0,001) [35, 36]. Роль мелатонина во время беременности заключается в том, что он и его метаболиты предотвращают процессы перекисного окисления липидов и апоптоз клеток. Важно отметить, что мелатонин вырабатывается в плаценте, а рецепторы мелатонина 1A и 1B содержатся в ворсинчатых трофобластических клетках человека. Мелатониновые рецепторы 1A и 1B значительно в меньшей степени экспрессируются в плацентарной ткани в случае, если беременность осложняется плацентарной недостаточностью, проявляющейся синдромом ограничения внутриутробного роста плода. Кроме того, отмечается снижение концентрации мелатонина и в пупочной крови у плодов с задержкой роста [37—40].

Роль витамина D в патогенезе плацентарной недостаточности

Витамин D — жирорастворимый витамин, имеющий множество функций, которые важны для роста и развития плода, включая регуляцию дифференцировки клеток и апоптоза, развитие иммунной системы и развитие центральной нервной системы. Его роль в улучшении здоровья матери и снижении риска нарушений развития у плода является важной областью исследований в течение последних нескольких лет. Витамин D, благодаря своим иммуномодулирующим, противовоспалительным, регулирующим гомеостаз кальция функциям оказывает значительное влияние на состояние здоровья матери и плода. Таким образом, концентрация этого жирорастворимого витамина в крови во время беременности имеет решающее значение для здоровья матери, роста скелета плода и оптимальных исходов беременности. Существует несколько эпидемиологических исследований, которые предполагают связь между дефицитом витамина D и задержкой роста плода. Китайские ученые провели исследование взаимосвязи витамина D и ХрПН, которая проявлялась задержкой роста плода. Беременных мышей кормили пищей, бедной витамином D, для создания модели дефицитного состояния этого витамина. Контрольная группа мышей получала профилактические дозы витамина D. Как и ожидалось, масса тела и крестцово-теменной размер были уменьшены у новорожденных мышей, получавших диету с низким содержанием витамина D. Дальнейший анализ показал, что плацентарная пролиферация была ингибирована, а масса плаценты была снижена у мышей, получавших диетическое питание. Активность некоторых факторов роста и насосов для переноса питательных веществ были снижены в плаценте мышей, которые получали витамин D в низкой концентрации. Эти результаты доказывают то, что гестационный дефицит витамина D вызывает плацентарную недостаточность [41—44]. Дальнейшие исследования в этой области продемонстрировали, что задержка роста плода у беременных крыс в группе дефицита витамина D была значительной, структура и функция плаценты были нарушены. К тому же наблюдалась явная воспалительная реакция в плаценте, которая сопровождалась значительным повышением уровня транскрипционного коактиватора YAP-фосфорилирования. In vitro дефицит витамина D значительно ингибировал мигрирующие и инвазивные способности клеток трофобласта, сопровождаясь снижением емкости эпителиально-мезенхимального перехода и увеличением процессов апоптоза [45].

Заключение

В основе ХрПН лежит множество различных звеньев патогенеза, которые можно разделить на корригируемые (дефицит витамина D) и некорригируемые (отложение фибриноида, ДСТ, атероз спиральных артерий, действие иммунных клеток). Все эти факторы приводят к таким акушерским осложнениям, как хроническая гипоксия, задержка роста плода или преэклампсия. Проблемы отложения фибриноида и ДСТ в настоящее время мало исследованы и требуют более детального изучения их роли в патогенезе ХрПН.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — В.А. Мудров

Сбор и обработка материала — А.Г. Сидоркина

Написание текста — А.Г. Сидоркина

Редактирование — В.А. Мудров

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Participation of the authors:

Concept and design of the study — V.A. Mudrov

Data collection and processing — A.G. Sidorkina

Text writing — A.G. Sidorkina

Editing — V.A. Mudrov

Authors declare lack of the conflicts of interests.

Литература / References:

  1. Zur RL, Kingdom JC, Parks WT, Hobson SR. The placental basis of fetal growth restriction. Obstet Gynecol Clin North Am. 2020;47:1:81-98.  https://doi.org/10.1016/j.ogc.2019.10.008
  2. Madala D, Maktabi MA, Sabbagh R, Erfani H, Moon A, Van den Veyver IB. Lower fetal fraction in clinical cell-free DNA screening results is associated with increased risk of hypertensive disorders of pregnancy. Prenatal Diagn. 2022;42:10:1253-1261. https://doi.org/10.1002/pd.6221
  3. King VJ, Bennet L, Stone PR, Clark A, Gunn AJ, Dhillon SK. Fetal growth restriction and stillbirth: biomarkers for identifying at risk fetuses. Front Physiol. 2022:13:959750. https://doi.org/10.3389/fphys.2022.959750
  4. Gęca T, Stupak A, Nawrot R, Goździcka-Józefiak A, Kwaśniewska A, Kwaśniewski W. Placental proteome in late — onset of fetal growth restriction. Mol Med Rep. 2022;26:6:356.  https://doi.org/10.3892/mmr.2022.12872
  5. Клинические рекомендации (протокол лечения) Министерства здравоохранения Российской Федерации от 2022 г. «Недостаточный рост плода, требующий предоставления медицинской помощи матери (задержка роста плода)». https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/722_1?ysclid=lpb1lllw6121535558
  6. Miller SL, Huppi PS, Mallard C. The consequences of fetal growth restriction on brain structure and neurodevelopmental outcome. J Physiol. 2016;594:4:807-823.  https://doi.org/10.1113/jp271402
  7. Heland S, Fields N, Ellery SJ, Fahey M, Palmer KR. The role of nutrients in human neurodevelopment and their potential to prevent neurodevelopmental adversity. Front Nutr. 2022;9:992120. https://doi.org/10.3389/fnut.2022.992120
  8. Andescavage N, Bullen T, Liggett M, Barnett SD, Kapse A, Kapse K, Ahmadzia H, Vezina G, Quistorff J, Lopez C, duPlessis A, Limperopoulos C. Impaired in vivo feto-placental development is associated with neonatal neurobehavioral outcomes. Pediatr Res. 2023;93:5:1276-1284. https://doi.org/10.1038/s41390-022-02340-0
  9. Aplin JD, Myers JE, Timms K, Westwood M. Tracking placental development in health and disease. Nat Rev Endocrinol. 2020;16:9:479-494.  https://doi.org/10.1038/s41574-020-0372-6
  10. Hayder H, Shan Y, Chen Y, O’Brien JA, Peng C. Role of microRNAs in trophoblast invasion and spiral artery remodeling: implications for preeclampsia. Front Cell Dev Biol. 2022;10:995462. https://doi.org/10.3389/fcell.2022.995462
  11. Франк Г.А., Ковальский Г.Б., Зайратьянц О.В., Кактурский Л.В., Милованов А.П., Мальков П.Г., Ожиганова И.Н. Правила проведения патологоанатомических исследований плаценты. Клинические рекомендации. Москва. 2017;74. 
  12. Pinar H, Goldenberg RL, Koch MA, Heim-Hall J, Hawkins HK, Shehata B, Abramowsky C, Parker CB, Dudley DJ, Silver RM, Stoll B, Carpenter M, Saade G, Moore J, Conway D, Varner MW, Hogue CJR, Coustan DR, Sbrana E, Thorsten V, Willinger M, Reddy UM. Placental findings in singleton stillbirths. Obstet Gynecol. 2014;123:2:325-336.  https://doi.org/10.1093/tropej/fmy006
  13. Zhang P. CD42b immunostaining as a marker for placental fibrinoid in normal pregnancy and complications. Fetal Pediatr Pathol. 2021;40:5:387-394.  https://doi.org/10.1101/860973
  14. Moser G, Guettler J, Forstner D, Gauster M. Maternal platelets — friend or foe of the human placenta? Int J Mol Sci. 2019;20:22:5639. https://doi.org/10.3390/ijms20225639
  15. Guettler J, Forstner D, Gauster M. Maternal platelets at the first trimester maternal-placental interface — small players with great impact on placenta development. Placenta. 2022;125:61-67.  https://doi.org/10.1016/j.placenta.2021.12.009
  16. Gauster M, Moser G, Wernitznig S, Kupper N, Huppertz B. Early human trophoblast development: from morphology to function. Cell Mol Life Sci. 2022;79:6:345.  https://doi.org/10.1007/s00018-022-04377-0
  17. Руководство по перинатологии. Под ред. Иванова Д.О. СПб.: Информнавигатор; 2019;936. 
  18. Chen J, Khalil RA. Matrix metalloproteinases in normal pregnancy and preeclampsia. Prog Mol Biol Transl Sci. 2017;148:87-165.  https://doi.org/10.1016/bs.pmbts.2017.04.001
  19. Bahabayi A, Yang N, Xu T, Xue Y, Ma L, Gu X, Wang Y, Jia K. Expression of matrix metalloproteinase-2, -7, -9 in serum during pregnancy in patients with preeclampsia: a prospective study. Int J Environ Res Public Health. 2022;19:21:14500. https://doi.org/10.3390/ijerph192114500
  20. Dubova EA, Klimantsev IV, Pavlov KA, Kulikova GV, Kan NE, Shchyogolev AI, Sukhikh GT. The expression of matrix metalloproteinases in placental tissue depends on the severity of undifferentiated connective tissue dysplasia. Bull Exp Biol Med. 2013;156:1:110-113.  https://doi.org/10.1007/s10517-013-2291-1
  21. Ozler S, Oztas E, Guler BG, Pehlivan S, Kadioglu N, Ergin M, Uygur D, Danisman N. Role of ADAMTS5 in unexplained fetal growth restriction. Fetal Pediatr Pathol. 2016;35:4:220-230.  https://doi.org/10.3109/15513815.2016.1173146
  22. Bao J, Zou Y, Liu Y, Yuan L, Garfield RE, Liu H. Nicotine protects fetus against LPS-induced fetal growth restriction through ameliorating placental inflammation and vascular development in late pregnancy in rats. Biosci Rep. 2019;39:7:BSR20190386. https://doi.org/10.1042/bsr20190386
  23. Ortega MA, Romero B, Asúnsolo Á, Martínez-Vivero C, Sainz F, Bravo C, De León-Luis J, Álvarez-Mon M, Buján J, García-Honduvilla N. Pregnancy-associated venous insufficiency course with placental and systemic oxidative stress. J Cell Mol Med. 2020;24:7:4157-4170. https://doi.org/10.1111/jcmm.15077
  24. Sánchez-Trujillo L, García-Montero C, Fraile-Martinez O, Guijarro LG, Bravo C, De Leon-Luis JA, Saez JV, Bujan J, Alvarez-Mon M, García-Honduvilla N, Saez MA, Ortega MA. Considering the effects and maternofoetal implications of vascular disorders and the umbilical cord. Medicina (Kaunas). 2022;58:12:1754. https://doi.org/10.3390/medicina58121754
  25. Gaschler MM, Stockwell BR. Lipid peroxidation in cell death. Biochem Biophys Res Commun. 2017;482:3:419-425.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2016.10.086
  26. Staff AC, Fjeldstad HE, Fosheim IK, Moe K, Turowski G, Johnsen GM, Alnaes-Katjavivi P, Sugulle M. Failure of physiological transformation and spiral artery atherosis: their roles in preeclampsia. Am J Obstet Gynecol. 2022;226:2S:S895-S906. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2020.09.026
  27. Labarrere CA, DiCarlo HL, Bammerlin E, Hardin JW, Kim YM, Chaemsaithong P, Haas DM, Kassab GS, Romero R. Failure of physiologic transformation of spiral arteries, endothelial and trophoblast cell activation, and acute atherosis in the basal plate of the placenta. Am J Obstet Gynecol. 2017;216:3:287.e1-287.e16.  https://doi.org/10.1016/j.ajog.2016.12.029
  28. Fosheim IK, Johnsen GM, Alnaes-Katjavivi P, Turowski G, Sugulle M, Staff AC. Decidua basalis and acute atherosis: expression of atherosclerotic foam cell associated proteins. Placenta. 2021;107:1-7.  https://doi.org/10.1016/j.placenta.2021.03.001
  29. Pitz Jacobsen D, Fjeldstad HE, Johnsen GM, Fosheim IK, Moe K, Alnæs-Katjavivi P, Dechend R, Sugulle M, Staff AC. Acute atherosis lesions at the fetal-maternal border: current knowledge and implications for maternal cardiovascular health. Front Immunol. 2021;12:791606. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.791606
  30. Robertson SA, Care AS, Moldenhauer LM. Regulatory T cells in embryo implantation and the immune response to pregnancy. J Clin Invest. 2018;128:10:4224-4235. https://doi.org/10.1172/jci122182
  31. Benkhalifa M, Joao F, Duval C, Montjean D, Bouricha M, Cabry R, Bélanger MC, Bahri H, Miron P, Benkhalifa M. Endometrium immunomodulation to prevent recurrent implantation failure in assisted reproductive technology. Int J Mol Sci. 2022;23:21:12787. https://doi.org/10.3390/ijms232112787
  32. Care AS, Bourque SL, Morton JS, Hjartarson EP, Robertson SA, Davidge ST. Reduction in regulatory T-cells in early pregnancy causes uterine artery dysfunction in mice. Hypertension. 2018;72:1:177-187.  https://doi.org/10.1161/hypertensionaha.118.10858
  33. Hebeda CB, Savioli AC, Scharf P, de Paula-Silva M, Gil CD, Farsky SHP, Sandri S. Neutrophil depletion in the pre-implantation phase impairs pregnancy index, placenta and fetus development. Front Immunol. 2022;13:969336. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.969336
  34. Saito S. Reconsideration of the role of regulatory T-cells during pregnancy: differential characteristics of regulatory T-cells between the maternal-fetal interface and peripheral sites and between early and late pregnancy. Med Princ Pract. 2022;31:5:403-414.  https://doi.org/10.1159/000527336
  35. Berbets A, Koval H, Barbe A, Albota O, Yuzko O. Melatonin decreases and cytokines increase in women with placental insufficiency. J Matern Fetal Neonatal Med. 2021;34:3:373-378.  https://doi.org/10.1080/14767058.2019.1608432
  36. Ivanov DO, Evsyukova II, Mironova ES, Polyakova VO, Kvetnoy IM, Nasyrov RA. Maternal melatonin deficiency leads to endocrine pathologies in children in early ontogenesis. Int J Mol Sci. 2021;22:4:2058. https://doi.org/10.3390/ijms22042058
  37. Berbets AM, Davydenko IS, Barbe AM, Konkov DH, Albota OM, Yuzko OM. Melatonin 1A and 1B receptors’ expression decreases in the placenta of women with fetal growth restriction. Reprod Scie. 2021;28:1:197-206.  https://doi.org/10.1007/s43032-020-00285-5
  38. Minich DM, Henning M, Darley C, Fahoum M, Schuler CB, Frame J. Is melatonin the «Next Vitamin D»?: A review of emerging science, clinical uses, safety, and dietary supplements. Nutrients. 2022;14:19:3934. https://doi.org/10.3390/nu14193934
  39. Berbets AM, Barbe AM, Andriiets OA, Andriiets AV, Yuzko OM. Melatonin levels decrease in the umbilical cord in case of intrauterine growth restriction. J Med Life. 2020;13:4:548-553.  https://doi.org/10.25122/jml-2020-0128
  40. Verteramo R, Pierdomenico M, Greco P, Milano C. The role of melatonin in pregnancy and the health benefits for the newborn. Biomedicines. 2022;10:12:3252. https://doi.org/10.3390/biomedicines10123252
  41. Zhang H, Wang S, Tuo L, Zhai Q, Cui J, Chen D, Xu D. Relationship between maternal vitamin D levels and adverse outcomes. Nutrients. 2022;14:20:4230. https://doi.org/10.3390/nu14204230
  42. Arshad R, Sameen A, Murtaza MA, Sharif HR, Iahtisham-Ul-Haq, Dawood S, Ahmed Z, Nemat A, Manzoor MF. Impact of vitamin D on maternal and fetal health: A review. Food Sci Nutr. 2022;10:10:3230-3240. https://doi.org/10.1002/fsn3.2948
  43. Chen YH, Liu ZB, Ma L, Zhang ZC, Fu L, Yu Z, Chen W, Song YP, Wang P, Wang H, Xu De X. Gestational vitamin D deficiency causes placental insufficiency and fetal intrauterine growth restriction partially through inducing placental inflammation. J Steroid Biochem Mol Biol. 2020:105733. https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2020.105733
  44. Phillips EA, Hendricks N, Bucher M, Maloyan A. Vitamin D supplementation improves mitochondrial function and reduces inflammation in placentae of obese women. Front Endocrinol (Lausanne). 2022;13:893848. https://doi.org/10.3389/fendo.2022.893848
  45. Wang J, Qiu F, Zhao Y, Gu S, Wang J, Zhang H. Exploration of fetal growth restriction induced by vitamin D deficiency in rats via Hippo-YAP signaling pathway. Placenta. 2022;128:91-99.  https://doi.org/10.1016/j.placenta.2022.08.062

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.