Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Пешиков О.В.

ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России

Пешикова М.В.

ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России

Роль различных микроорганизмов в развитии патологии маточных труб (обзор литературы)

Авторы:

Пешиков О.В., Пешикова М.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2022;28(4): 39‑47

Прочитано: 1732 раза


Как цитировать:

Пешиков О.В., Пешикова М.В. Роль различных микроорганизмов в развитии патологии маточных труб (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2022;28(4):39‑47.
Peshikov OV, Peshikova MV. The role of different microorganisms in the development of fallopian tube pathology (literature review). Russian Journal of Human Reproduction. 2022;28(4):39‑47. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro20222804139

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Сущностью инфекционного процесса выступает диалектическое взаимодействие микроорганизма и макроорганизма. Возникновение, развитие и исход этого процесса определяются как набором признаков и свойств возбудителя, характеристиками местного и системного иммунитета, так и анатомо-физиологическими особенностями конкретного локуса — точки приложения воздействия патогена. Все это справедливо также в отношении инфекционно-воспалительного поражения маточных труб (МТ), последствия которого — бесплодие и эктопическая беременность — имеют большое медико-социальное значение [1, 2]. В основе развития бесплодия и эктопической беременности лежат различные механизмы повреждения МТ. Так, поражение реснитчатого эпителия, выполняющего важнейшие функции в обеспечении фертильности, такие как транспорт гамет и плодного яйца, приводит к повышению риска бесплодия и эктопической беременности [3, 4]. При наличии хронического воспаления в МТ наблюдается уменьшение соотношения мышечных и соединительнотканных элементов в пользу последних, а также снижение количества интрамуральных сосудов в стенке МТ [5]. Кроме того, вовлечение серозной оболочки МТ при воспалительных заболеваниях органов малого таза (ВЗОМТ) является одним из важнейших факторов, способствующих развитию спаечного процесса в малом тазу, формированию перегибов МТ и ее облитерации [6, 7]. Наличие воспаления в МТ может сопровождаться нарушением нормальной моторики органа, имеющей большое значение для сохранения фертильности. Интерстициальные пейсмейкерные клетки (телоциты), описанные у человека в различных органах [8, 9], в том числе обнаружены в МТ [10, 11]. Наличие в МТ воспаления, особенно хронического, сопровождается деструктивными изменениями в телоцитах, они теряют интерстициальную трехмерную структуру и контакты с соседними клетками [12]. Подобные изменения интерстициальных пейсмейкерных клеток (Cajal-like type of tubal interstitial cells) выявляются в истмических сегментах МТ при трубной эктопической беременности в виде нарушения целостности сети, образованной этими клетками, уменьшения количества их межклеточных контактов и более слабого окрашивания самих клеток при иммуногистохимическом исследовании [13].

Кроме того, в настоящее время рассматривается возможность наличия ассоциации между инфекционно-воспалительным поражением МТ и развитием опухолевой патологии. В этом отношении особое внимание приковано к фимбриальному отделу МТ. Известно, что на дистальные отделы МТ ложится значительная часть функциональной нагрузки органа — это подтверждается их более сложным морфологическим устройством и присутствием в этой зоне целого ряда биологически активных регуляторных субстанций [14, 15]. В настоящее время изучение трубно-перитонеальной переходной зоны между реснитчатым эпителием фимбриальной части МТ и мезотелием ее серозной оболочки представляет значительный научный интерес наряду с другими переходными зонами (шейки матки, прямой кишки и прочими) [16]. Анатомически МТ расположена близко к яичнику, и мюллеров эпителий в этом месте тесно соприкасается с мезотелием яичника и брюшины [17]. Предполагается, что метапластические процессы в переходном эпителии данной области могут быть ассоциированы с развитием ряда опухолей яичника [18]. Кроме того, фимбриальный отдел МТ в значительной мере подвержен действию неблагоприятных факторов, в частности инфекционных [17]. Персистирующие инфекции вызывают хроническое воспаление, стимулируют процессы ангиогенеза и иммунный ответ, что может рассматриваться как часть патогенеза опухолей яичника [19]. По данным L.M. Stewart и соавт. (2020), описавших исследование с участием 441 382 женщин, наличие ВЗОМТ связано с повышенным риском развития серозных пограничных опухолей яичников и серозной карциномы яичников низкой степени злокачественности [20]. В настоящее время ведется активный научный поиск микроорганизмов-кандидатов, которые могут играть этиопатогенетическую роль в развитии опухолей яичников. Одной из таких попыток стало исследование S. Banerjee и соавт. (2017), которое показало, что в образцах материала рака яичников обнаружены вирусы семейств Retroviridae, Hepadnaviridae, Papillomaviridae, Flaviviridae, Polyomaviridae, Herpesviridae и другие. Среди бактерий обнаружены представители Proteobacteria, Firmicutes, в меньшей степени — Bacteroidetes, Chlamydiae, Actinobacteria, Fusobacteria, Spirochaetes, Tenericutes. Тем не менее вопрос причинности в данной ситуации по-прежнему остается открытым, ведь обнаружение определенных микроорганизмов в малигнизированной ткани яичника еще не доказывает их участие в этиопатогенезе заболевания, поскольку эти же микроорганизмы могут быть обнаружены в нормальной, неизмененной ткани. Кроме того, предполагается, что микроокружение опухоли само по себе может создавать условия, благоприятные для персистенции ряда микроорганизмов [19, 21]. Все это открывает большие перспективы для дальнейшего научного поиска в области онкогинекологии.

Таким образом, МТ представляют собой уникальный орган, который, с одной стороны, хорошо защищен от внешних воздействий ввиду своего анатомического расположения высоко в малом тазу, с другой стороны, является достаточно уязвимым. Описание роли микроорганизмов в повреждении МТ и рассмотрение механизмов этого повреждения с современных позиций является целью данного литературного обзора. Для получения информации из научных публикаций использованы базы данных PubMed, MEDLINE, национальный цифровой ресурс «РУКОНТ», научная электронная библиотека eLIBRARY.RU. С применением ключевых слов на русском и английском языках («маточная труба», «хламидийная инфекция», «гонококковая инфекция», «генитальный герпес», «цитомегаловирусная инфекция» и т.д.) осуществлен поиск и выбрана подборка статей, отвечающих тематике настоящего обзора, с наиболее исчерпывающими и актуальными данными.

Хламидии

Chlamydia trachomatis — грамотрицательная облигатная внутриклеточная бактерия с характерным для хламидий уникальным жизненным циклом, включающим чередующиеся внутри- и внеклеточные формы [22, 23]. При определении способности микроорганизмов к распространению в верхние отделы полового тракта C. trachomatis оказалась лидером, опередив гонококки и представителей семейства Mycoplasmataceae [24]. Элементарные тельца хламидий адсорбируются на поверхности чувствительных клеток с последующим эндоцитозом. Впоследствии элементарное тельце может погибнуть под действием лизосомальных ферментов или сохраняет свою жизнеспособность. Приблизительно через 4—6 ч после инфицирования элементарные тельца вступают в цикл развития [22]. Описано наличие локального прямого цитотоксического действия хламидий, выражающегося в потере микроворсинок и разрушении межклеточных контактов при прикреплении элементарных телец к клеткам слизистой оболочки МТ в эксперименте. Через 24 ч после заражения определяется разрушение эпителиальных клеток с высвобождением элементарных телец хламидий [25]. S. Jerchel и соавт. (2012) в МТ, полученных от пациенток после гистерэктомии, при инфицировании ex vivo сероваром D C. trachomatis через сутки наблюдали похожие изменения в виде набухания и лизиса клеток эпителия с присутствием элементарных и ретикулярных телец хламидий [26]. Ряд авторов экспериментально установили, что наибольшему повреждению подвергаются реснитчатые клетки [27, 28]. Немаловажная роль в повреждении МТ принадлежит иммунологическим механизмам. Еще D.L. Patton и соавт. (1983), изучая проявления острого хламидийного сальпингита, полученного в эксперименте на обезьянах, обратили внимание на то, что дегенеративные изменения клеток эпителия МТ происходили в условиях тесного сближения с лимфоцитами [27]. При лизисе пораженных эпителиальных клеток происходит высвобождение интерлейкина (ИЛ)-1 — исходного провоспалительного цитокина при данной инфекции, который опосредует секрецию ИЛ-8, что может обеспечивать миграцию нейтрофилов и формирование клеточного инфильтрата, а также способствует продукции цитокинов соседними интактными клетками [22, 28]. ИЛ-10, обладающий противовоспалительным действием, в эксперименте ex vivo уменьшает повреждение тканей, индуцированное C. trachomatis [28]. Хламидийная инфекция МТ способствует выработке фактора некроза опухоли (ФНО)-α, который может стимулировать продукцию других цитокинов и влиять на развитие иммуноопосредованного повреждения МТ [29]. Интерферон (ИФН)-γ оказывает дозозависимое влияние на течение хламидийной инфекции: в опытах in vitro при отсутствии ИФН-γ хламидии формируют типичные элементарные и ретикулярные тельца, а при воздействии пониженных концентраций хламидии, испытывающие стрессорное воздействие, формируют атипичные, персистирующие формы, которые сохраняют жизнеспособность, но не образуют элементарных телец [23, 30]. Важная роль в поражении МТ также принадлежит белку теплового шока хламидий с молекулярной массой 60 кДа (HSP60). Он является высококонсервативным белком, имеющим общие антигенные эпитопы как у прокариот, так и у эукариот [22, 23, 31], что обусловливает возможность перекрестной иммунологической реактивности и может привести к аутоиммунизации [22, 32]. Лимфоциты, выделенные от женщин с наличием сальпингита в анамнезе, могут демонстрировать пролиферативный ответ на HSP60 и ряд синтетических пептидов, соответствующих консервативным эпитопам хламидийного и человеческого HSP60 [33]. Хламидии при персистирующей инфекции в эксперименте экспрессируют белок HSP60 и выделяют его во внеклеточное пространство [23, 30]. Высвобождение этого белка при персистирующей хламидийной инфекции может приводить к воспалительному повреждению МТ вплоть до рубцовых изменений и окклюзии МТ [23, 34]. Инфекция C. trachomatis может служить причиной нарушения репродуктивного потенциала женщины. Хламидийная инфекция является статистически значимым фактором трубного бесплодия, риск которого возрастает в 4 раза [35]. N. Begum и соавт. (2017) приводят описание органов малого таза, в том числе МТ, у женщин с бесплодием и сохранной функцией яичников, имеющих IgG к C. trachomatis. При лапароскопическом исследовании обнаружены признаки воспаления в МТ, присутствие гидросальпинксов в одной или в обеих МТ, в ряде случаев — нарушение проходимости МТ [36]. Установлено статистически значимое более частое выявление C. trachomatis в МТ методом полимеразной цепной реакции у пациенток с эктопической беременностью (27,4%; p=0,001) по сравнению с пациентками контрольной группы [1]. M. Vivoda и соавт. (2014) показали, что при эктопической беременности IgG к хламидийному белку HSP60 определяются статистически значимо чаще (37,5%; p=0,028) [37], как отмечено ранее, HSP60 играет важную роль в персистенции хламидий. Исследование S.F. Ahmad и соавт. (2018) посвящено поиску механизмов возникновения эктопической беременности при хламидийной инфекции, в ходе которого обнаружено усиление экспрессии интегрина β-1 в МТ под воздействием C. trachomatis, что повышает вероятность прикрепления плодного яйца в МТ [38]. Изучается влияние хламидий на перистальтику МТ, обеспечивающую продвижение женских гамет и плодного яйца. R.E. Dixon и соавт. (2010) на мышиной модели хламидийной инфекции МТ с Chlamydia muridarum показали, что развитие инфекционного процесса способствует потере спонтанной активности специализированных клеток — oviduct interstitial cells of Cajal — и повреждению сформированной ими сети. Самые ранние подобные изменения начинались в ампулярном отделе МТ, позже вовлекались остальные отделы. При разрешении инфекционного процесса активность клеток, генерирующих импульсы, восстанавливалась. Авторы объясняют эти нарушения воздействием оксида азота (NO) вследствие активации индуцибельной NO-синтазы в макрофагах в условиях хламидийной инфекции [39]. В настоящее время активно идет поиск наличия или отсутствия ассоциации хламидийной инфекции с онкогинекологической патологией. В работе S. Jonsson и соавт. (2020) не найдена статистически значимая взаимосвязь между обнаружением серологических маркеров инфекции C. trachomatis и последующим развитием серозной карциномы яичников высокой степени злокачественности [40]. A. Idahl и соавт. (2020), напротив, установили ассоциацию между выявлением антител к белку теплового шока C. trachomatis HSP60-1 и более высоким риском развития как эпителиального рака яичников в целом, так и серозных карцином. Выявление антител к белку хламидий Pgp3, в свою очередь, связано с более высоким риском развития муцинозной карциномы [41]. M. Laban и соавт. (2019) установили, что ДНК C. trachomatis обнаружена в 84% образцов тканей пациенток с серозной карциномой МТ высокой степени злокачественности [42]. Тем не менее для установления роли хламидийной инфекции в отношении риска развития злокачественных опухолей МТ и яичников требуются дальнейшие расширенные исследования.

Гонококки

Neisseria gonorrhoeae — неподвижный грамотрицательный диплококк бобовидной формы, не образующий спор. Данный возбудитель обладает тонкими длинными пилями, которые обусловливают способность прикрепляться к эпителию, в частности к эпителиальной выстилке МТ [43]. Гонококки прикрепляются и инвазируют почти исключительно клетки эпителия МТ без ресничек — секреторные клетки, размножаются внутри этих клеток, после чего могут проникать в подлежащие ткани. Тем не менее повреждению подвергаются преимущественно реснитчатые клетки. В первую очередь происходит их слущивание [4, 44]. Патогенное действие гонококков на реснитчатые клетки обеспечивается продукцией гонококкового эндотоксина — липополисахарида, который присутствует внутри гонококков в виде липоолигосахарида, а также высвобождением растворимых фрагментов пептидогликана [4, 45]. Показано, что воздействие гонококков и их эндотоксина in vitro снижает двигательную активность ресничек вплоть до полного ее прекращения (цилиостатический эффект) еще до ультраструктурных изменений клеток [3, 46]. После воздействия гонококкового липополисахарида через 1—2 ч он выявляется в цитоплазме реснитчатых и секреторных клеток в виде везикулоподобных структур, затем через 12 ч происходит слущивание реснитчатых клеток [3, 47]. В присутствии мономерных фрагментов пептидогликана N. gonorrhoeae тоже наблюдается слущивание реснитчатых клеток, что продемонстрировано на органной культуре МТ человека [48]. Фрагменты пептидогликана и эндотоксин гонококков распознаются иммунной системой макроорганизма как патоген-ассоциированные микробные паттерны и индуцируют иммунный ответ [4]. В эксперименте на эксплантах МТ в присутствии N. gonorrhoeae показано увеличение продукции провоспалительных цитокинов ИЛ-1α, ИЛ-1β, ФНО-α. Воздействие рекомбинантного ФНО-α, оказывающего дозозависимый повреждающий эффект на слизистую оболочку эксплантов МТ, воспроизводит типичные для гонококковой инфекции изменения эпителия МТ [49, 50]. Кроме того, инфекция N. gonorrhoeae способна индуцировать апоптоз в эпителии МТ через ФНО-α-зависимый механизм, что может усиливать клеточное и тканевое повреждение при гонококковом сальпингите [51]. N. gonorrhoeae могут влиять на структурную целостность эпителиального покрова за счет влияния на E-кадгерин и β-катенин в адгезионных межклеточных контактах, что продемонстрировано в экспериментальной инфекции на культуре эпителиальных клеток [4, 52]. Гонококковая инфекция может влиять на состояние внеклеточного матрикса, например, за счет изменения продукции матриксных металлопротеиназ. Согласно N.E. Juica и соавт. (2017), в условиях гонококковой инфекции in vitro наблюдается повышение экспрессии матриксной металлопротеиназы 8-го типа, что может способствовать повреждению МТ [53]. ВЗОМТ с участием N. gonorrhoeae может стать причиной рубцовых изменений, нарушения проходимости МТ и последующего риска развития бесплодия и эктопической беременности [54]. Описаны изменения придатков матки при гонококковой инфекции в виде гидро- и пиосальпинксов. В инфекционно-воспалительный процесс с участием N. gonorrhoeae может вовлекаться и тесно примыкающий к МТ яичник, входными воротами при этом чаще служат фолликул или желтое тело. При прогрессировании гнойно-воспалительного процесса экссудат, содержащий большое количество фибрина, способствует формированию спаек между МТ, яичником и соседними органами [43]. Изучение механизмов нарушений фертильности, вызванных гонококками, продолжается, вместе с тем доказано, что свой вклад вносит поражение реснитчатого эпителия МТ, участвующего в продвижении гамет и оплодотворенных яйцеклеток [3].

Вирусы

В настоящее время активно изучается взаимосвязь присутствия вирусов в МТ и развития акушерско-гинекологической патологии. В качестве претендентов исследователями рассматривается ряд вирусов: вирус простого герпеса 2-го типа (ВПГ-2), цитомегаловирус (ЦМВ), вирус папилломы человека (ВПЧ). С одной стороны, МТ, сравнительно высоко расположенные в полости малого таза, в обычных условиях достаточно хорошо защищены от ВПГ-2 [55]. С другой стороны, имеются данные о том, что генитальный герпес у женщин может иметь различные проявления, включая герпетический сальпингит, даже при отсутствии в анамнезе характерных герпетических высыпаний на половых органах [56]. В литературе представлено описание клинического случая герпетического сальпингита. При этом у пациентки, перенесшей ранее гистерэктомию, фимбриальный конец МТ обнаружен во влагалище. Подобное нарушение топографо-анатомических взаимоотношений способствовало реализации инфекционного процесса с участием ВПГ-2 и МТ [55]. Согласно исследованию L.M. Clarke и соавт. (1997), ВПГ не выявлен в образцах операционного материала (МТ, яичники), полученного от женщин с ВЗОМТ, однако в 5 из 22 таких образцов обнаружен ЦМВ, при этом в операционном материале женщин без ВЗОМТ ЦМВ не выделен. Разница оказалась статистически значимой, что позволило авторам сделать вывод о предположительной патогенетической роли данного вируса [57]. E. Paradowska и соавт. (2019) обнаружили присутствие ДНК ЦМВ в 70% образцов тканей эпителиального рака яичников, а присутствие ДНК ВПЧ — в 74% таких образцов, что оказалось статистически значимо выше, чем при наличии доброкачественных новообразований (p≤0,01). ЦМВ или ВПЧ при этом в ряде случаев выявлены и в МТ. Инфекция, вызванная ВПЧ 16-го типа, определена в 70% случаев эпителиального рака яичника. Почти у 60% пациентов с эпителиальным раком яичников в образцах тканей выявлено наличие обоих вирусов. Авторы пришли к выводу о том, что эти вирусы могут служить потенциальными факторами риска развития эпителиального рака яичника [58]. На сегодняшний день продолжается исследование влияния вирусного поражения МТ на репродуктивную функцию женщины. В работе S.A. Batwa и соавт. (2016) ЦМВ удавалось выявить методом полимеразной цепной реакции в образцах МТ при эктопической беременности (21,4%) чаще, чем в контрольных образцах (5,9%). В 66,6% случаев у пациенток с наличием эктопической беременности и выявленным ЦМВ в МТ имело место повышение экспрессии эндотелиальной и индуцибельной NO-синтаз. На основании полученных результатов авторы сделали вывод, что наличие ЦМВ-инфекции в МТ, повышая уровень экспрессии соответствующих ферментов в эпителии, может привести к риску развития эктопической беременности [59]. В работе A.M. Ashshi (2016) частота обнаружения ЦМВ в МТ пациенток с эктопической беременностью также выше, чем в группе контроля (22,9% по сравнению с 8,2%; p=0,01). Усиление экспрессии ИЛ-6, его рецептора, а также gp-130 и STAT3, участвующих в передаче сигнала клетке, наблюдалось при наличии ЦМВ-инфекции в МТ, эктопической беременности и сочетании этих двух состояний. Авторы предположили, что присутствие ЦМВ-инфекции в МТ может способствовать имплантации плодного яйца за счет увеличения экспрессии ИЛ-6, его рецептора и соответствующих молекул, участвующих в передаче сигнала [60]. В большинстве всех этих работ авторы отметили необходимость проведения дальнейших расширенных исследований, а также поиска дополнительных патогенетических механизмов развития патологии репродуктивной системы при вирусном поражении МТ.

Другие возбудители

Принято считать МТ в норме стерильными. В противовес существующей концепции высказаны предположения о том, что даже при отсутствии инфекционного процесса и воспаления МТ могут содержать резидентную микрофлору [61]. Для микробиома верхних отделов генитального тракта оказались характерны более высокое видовое разнообразие и более низкая биомасса по сравнению с микробиомом влагалища. В целом для репродуктивной системы женщин типично заселение аэробами и факультативными анаэробами, а для ее верхних отделов оказались характерными бактерии, которые, кроме того, дают рост в слабощелочной среде [62]. В работе E.S. Pelzer и соавт. (2018) в МТ обнаружены бактерии родов Staphylococcus spp., Enterococcus spp., Lactobacillus spp., Pseudomonas spp., Burkholderia spp., Propionibacterium spp., Prevotella spp. Кроме того, выявлен ряд различий между микробными сообществами правой и левой МТ, а также между анатомическими отделами МТ. Тем не менее микробиом МТ у здоровых женщин еще только предстоит изучить [61]. Значительным ограничением в изучении микробиома МТ у полностью здоровых женщин служит то, что взятие исследуемого материала обычно происходит во время проведения оперативных вмешательств [62].

Рассмотрение этиологической роли различных представителей микрофлоры, в том числе условно-патогенных, в литературе представлено достаточно широко, в частности в рамках описания клинических случаев. Escherichia coli, Bacteroides spp., Streptococcus spp. относятся к самым частым возбудителям, выявляемым в операционном материале при тубоовариальном абсцессе (ТОА) [63]. K. Goodwin и соавт. (2013) привели описание клинического случая ТОА у 13-летней девочки, не живущей половой жизнью. Из исследуемого материала выделена E. coli, авторы предположили транслокацию возбудителя из пищеварительного тракта [64]. Описан случай развития ТОА у 13-летней пациентки вне связи с инфекциями, передающимися половым путем. Микробиологическое исследование выявило присутствие Streptococcus viridans и Peptostreptococcus, которые могут входить в состав микрофлоры влагалища [65]. Не следует забывать о топографическом расположении придатков матки и возможности развития ТОА как осложнения аппендицита, болезни Крона и дивертикулита [66]. Описан случай выделения Pseudomonas aeruginosa из ТОА у 35-летней женщины с внутриматочным контрацептивом [67]. В литературе имеются сообщения о стафилококковой этиологии ТОА. Например, представлен случай развития хронического ТОА, вызванного Staphylococcus aureus, у женщины 40 лет, в анамнезе которой были операция кесарева сечения и двусторонняя перевязка МТ за 10 лет до этого [68]. Говоря об участии гноеродной микрофлоры, можно вспомнить, что золотистый стафилококк и синегнойная палочка способны формировать биопленки, в которых биополимерный матрикс служит защитой от воздействия иммунных факторов и антимикробных препаратов для бактерий [69, 70]. Это может иметь большое значение для выбора тактики лечения.

Заключение

Таким образом, в настоящее время активно продолжается детальное исследование роли микроорганизмов в развитии патологии маточных труб, а также изучение связи между их инфекционным поражением и возникновением заболеваний женской половой системы в целом. Развитие репродуктивных нарушений происходит вследствие прямого и/или опосредованного поражения реснитчатого эпителия; нарушения нормальной моторики маточной трубы из-за индуцированного инфекцией повреждения интерстициальных пейсмейкерных клеток, воздействия оксида азота и т.д., формирования рубцовых изменений маточных труб, их окклюзии и развития спаечного процесса в малом тазу. Как показали исследования последних лет, поиск патогенетических механизмов инфекционно-воспалительного поражения маточных труб и его осложнений остается актуальным. Перспективным является изучение вирусного поражения маточных труб, особенно в контексте канцерогенеза. Не менее важным и актуальным представляется продолжение изучения качественных и количественных характеристик микробиома фаллопиевых труб, а также возможного влияния различных микроорганизмов, населяющих маточные трубы, на развитие патологии репродуктивной системы.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Пешиков О.В., Пешикова М.В.

Сбор и обработка материала — Пешиков О.В., Пешикова М.В.

Написание текста — Пешиков О.В., Пешикова М.В.

Редактирование — Пешиков О.В., Пешикова М.В.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Ashshi AM, Batwa SA, Kutbi SY, Malibary FA, Batwa M, Refaat B. Prevalence of 7 sexually transmitted organisms by multiplex real-time PCR in fallopian tube specimens collected from Saudi women with and without ectopic pregnancy. BMC Infectious Diseases. 2015;15:569.  https://doi.org/10.1186/s12879-015-1313-1
  2. Vander Borght M, Wyns C. Fertility and infertility: definition and epidemiology. Clinical Biochemistry. 2018;62:2-10.  https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2018.03.012
  3. Lyons RA, Saridogan E, Djahanbakhch O. The reproductive significance of human fallopian tube cilia. Human Reproduction Update. 2006;12(4):363-372.  https://doi.org/10.1093/humupd/dml012
  4. Lenz JD, Dillard JP. Pathogenesis of Neisseria gonorrhoeae and the host defense in ascending infections of human fallopian tube. Frontiers of Immunology. 2018;9:2710. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.02710
  5. Коновалова М.В., Корабельникова И.А., Воробцова И.Н., Шовина Д.Э., Швындина А.А., Соколова М.Е., Коновалов Л.В. Особенности изменения морфологической структуры маточных труб на фоне хронического воспаления. Вестник Новгородского государственного университета. 2019;113(1):44-46.  https://doi.org/10.34680/2076-8052.2019.1(113).44-46
  6. Hou HY, Chen YQ, Chen X, Hu CX, Yang ZH, Chen J, Kong XL. Related factors associated with pelvic adhesion and its influence on fallopian tube recanalization in infertile patients. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2012;47(11):823-828. 
  7. Аникин С.С., Лившиц И.В., Рыбалка А.Н. Этиопатогенез трубной беременности и ее влияние на репродуктивное здоровье женщин. Крымский журнал экспериментальной и клинической медицины. 2012;7-8(3-4):4-9. 
  8. Низяева Н.В., Марей М.В., Сухих Г.Т., Щеголев А.И. Интерстициальные пейсмейкерные клетки. Вестник Российской академии медицинских наук. 2014;69(7-8):17-24.  https://doi.org/10.15690/vramn.v69i7-8.1105
  9. Popescu LM, Faussone-Pellegrini MS. Telocytes — a case of serendipity: the winding way from interstitial cells of Cajal (ICC), via interstitial Cajal-like cells (ICLC) to telocytes. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 2010;14(4):729-740.  https://doi.org/10.1111/j.1582-4934.2010.01059.x
  10. Popescu LM, Ciontea SM, Cretoiu D, Hinescu ME, Radu E, Ionescu N, Ceausu M, Gherghiceanu M, Braga RI, Vasilescu F, Zagrean L, Ardeleanu C. Novel type of interstitial cell (Cajal-like) in human fallopian tube. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 2005;9(2):479-523.  https://doi.org/10.1111/j.1582-4934.2005.tb00376.x
  11. Varga I, Urban L, Kajanová M, Polák Š. Functional histology and possible clinical significance of recently discovered telocytes inside the female reproductive system. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2016;294(2):417-422.  https://doi.org/10.1007/s00404-016-4106-x
  12. Кузнецов Р.Э., Скрипченко Д.В., Паклина О.В., Чекмарева И.А. Ультраструктурные изменения телоцитов маточных труб при воспалении. Московская медицина. 2019;34(6):59. 
  13. Yang XJ, Xu JY, Shen ZJ, Zhao J. Immunohistochemical alterations of Cajal-like type of tubal interstitial cells in women with endometriosis and tubal ectopic pregnancy. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2013;288(6):1295-1300. https://doi.org/10.1007/s00404-013-2878-9
  14. Пешиков О.В. О строении маточной трубы. Морфология. 2019;155(1):73-77. 
  15. Харченко Э.И., Адамян Л.В., Брагина Е.Е., Мурватов К.Д., Жорданиа К.И. Оценка дистального отдела маточных труб у женщин репродуктивного возраста с доброкачественными опухолями и опухолевидными образованиями яичников с позиций электронной микроскопии. Онкогинекология. 2014;2:43-54. 
  16. Асатурова А.В., Ежова Л.С., Файзуллина Н.М., Адамян Л.В., Хабас Г.Н. Трубно-перитонеальная переходная зона: морфологические и иммуногистохимические особенности, роль в патогенезе серозных карцином тазовой области. Клиническая и экспериментальная морфология. 2016;17(1):11-17. 
  17. Жорданиа К.И. Серозный рак яичников или серозный рак маточной трубы? Онкогинекология. 2012;3:4-9. 
  18. Kurman RJ, Shih le-M. The origin and pathogenesis of epithelial ovarian cancer: A proposed unifying theory. The American Journal of Surgical Pathology. 2010;34(3):433-443.  https://doi.org/10.1097/pas.0b013e3181cf3d79
  19. Pathak S, Wilczyński JR, Paradowska E. Factors in oncogenesis: viral infections in ovarian cancer. Cancers. 2020;12(3):E561. https://doi.org/10.3390/cancers12030561
  20. Stewart LM, Stewart CJR, Spilsbury K, Cohen PA, Jordan S. Association between pelvic inflammatory disease, infertility, ectopic pregnancy and the development of ovarian serous borderline tumor, mucinous borderline tumor and low-grade serous carcinoma. Gynecologic Oncology. 2020;156(3):611-615.  https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2020.01.027
  21. Banerjee S, Tian T, Wei Z, Shih N, Feldman MD, Alwine JC, Coukos G, Robertson ES. The ovarian cancer oncobiome. Oncotarget. 2017;22(8):36225-36245. https://doi.org/10.18632/oncotarget.16717
  22. Асхаков М.С., Чеботарев В.В. Современный взгляд на течение, диагностику и лечение хламидийной инфекции. Вестник молодого ученого. 2018;22(3):26-32. 
  23. Witkin SS, Minis E, Athanasiou A, Leizer J, Linhares IM. Chlamydia trachomatis: the persistent pathogen. Clinical and Vaccine Immunology. 2017;24(10):00203-17.  https://doi.org/10.1128/CVI.00203-17
  24. Taylor-Robinson D, Jensen JS, Svenstrup H, Stacey CM. Difficulties experienced in defining the microbial cause of pelvic inflammatory disease. International Journal of STD & AIDS. 2012;23(1):18-24.  https://doi.org/10.1258/ijsa.2011.011066
  25. Cooper MD, Rapp J, Jeffery-Wiseman C, Barnes RC, Stephens DS. Chlamydia trachomatis infection of human fallopian tube organ cultures. Journal of General Microbiology. 1990;136(6):1109-1115. https://doi.org/10.1099/00221287-136-6-1109
  26. Jerchel S, Knebel G, König P, Bohlmann MK, Rupp J. A human fallopian tube model for investigation of C. trachomatis infections. Journal of Visualized Experiments. 2012;66:4036. https://doi.org/10.3791/4036
  27. Patton DL, Halbert SA, Kuo CC, Wang SP, Holmes KK. Host response to primary Chlamydia trachomatis infection of the fallopian tube in pig-tailed monkeys. Fertility and Sterility. 1983;40(6):829-840. 
  28. Hvid M, Baczynska A, Deleuran B, Fedder J, Knudsen HJ, Christiansen G, Birkelund S. Interleukin-1 is the initiator of fallopian tube destruction during Chlamydia trachomatis infection. Cellular Microbiology. 2007;12(9):2795-2803. https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2007.00996.x
  29. Ault KA, Tawfik OW, Smith-King MM, Gunter J, Terranova PF. Tumor necrosis factor-alpha response to infection with Chlamydia trachomatis in human fallopian tube organ culture. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 1996;175(5):1242-1245. https://doi.org/10.1016/s0002-9378(96)70035-2
  30. Beatty WL, Byrne GI, Morrison RP. Morphologic and antigenic characterization of interferon gamma-mediated persistent Chlamydia trachomatis infection in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1993;90(9):3998-4002. https://doi.org/10.1073/pnas.90.9.3998
  31. Karlin S, Brocchieri L. Heat shock protein 60 sequence comparisons: duplications, lateral transfer, and mitochondrial evolution. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2000;97(21):11348-11353. https://doi.org/10.1073/pnas.97.21.11348
  32. Yi Y, Zhong G, Brunham RC. Continuous B-cell epitopes in Chlamydia trachomatis heat shock protein 60. Infection and Immunity. 1993;61(3):1117-1120. https://doi.org/10.1128/IAI.61.3.1117-1120.1993
  33. Witkin SS, Jeremias J, Toth M, Ledger WJ. Proliferative response to conserved epitopes of the Chlamydia trachomatis and human 60-kilodalton heat-shock proteins by lymphocytes from women with salpingitis. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 1994;171(2):455-460.  https://doi.org/10.1016/0002-9378(94)90282-8
  34. Linhares IM, Witkin SS. Immunopathogenic consequences of Chlamydia trachomatis 60 kDa heat shock protein expression in the female reproductive tract. Cell Stress and Chaperones. 2010;15(5):467-473.  https://doi.org/10.1007/s12192-010-0171-4
  35. Хендербоом Б.М., Ван Бентем Б.Х.Б., Ван Берген Дж.Е.А.М., Дюкерс-Муйерерс Н.Х.Т.М., Гетц Х.М., Хобе К.Дж.П.А., Хогевонинг А.А., Ланд Дж.А., Ван Дер Санде М.А.Б., Морре С.А., Ван Ден Брук И.В.Ф. Связь между инфекцией, вызванной Chlamydia trachomatis, и воспалительными заболеваниями органов малого таза, внематочной беременностью и трубным бесплодием в группе жительниц Голландии, ранее обследовавшихся на наличие хламидий в скрининговом исследовании, направленном на диагностику хламидиоза. Акушерство и гинекология. Новости. Мнения. Обучение. 2019;7(4(26):8-19.  https://doi.org/10.1136/sextrans-2018-053778
  36. Begum N, Anwary SA, Alfazzaman M, Mahzabin Z, Deeba F, Mostafa MA, Akhter M, Rahman MM. Correlation between seropositivity of Chlamydia trachomatis and tubal and/or pelvic pathology detected by diagnostic laparoscopy in subfertile women. Mymensingh Medical Journal: MMJ. 2017;26(4):840-845. 
  37. Vivoda M, Arsić B, Garalejić E, Cirković I, Djukić S. Examination of possible role of the chlamydial stress proteins in pathogenesis of ectopic pregnancy. Srpski Arhiv za Celokupno Lekarstvo. 2014;142(1-2):54-58.  https://doi.org/10.2298/sarh1402054v
  38. Ahmad SF, Brown JK, Campbell LL, Koscielniak M, Oliver C, Wheelhouse N, Entrican G, McFee S, Wills GS, McClure MO, Horner PJ, Gaikoumelou S, Lee KF, Critchley HOD, Duncan WC, Horne AW. Pelvic chlamydial infection predisposes to ectopic pregnancy by upregulating integrin β1 to promote embryo-tubal attachment. EBioMedicine. 2018;29:159-165.  https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2018.02.020
  39. Dixon RE, Ramsey KH, Schripsema JH, Sanders KM, Ward SM. Time-dependent disruption of oviduct pacemaker cells by chlamydia infection in mice. Biology of Reproduction. 2010;83(2):244-253.  https://doi.org/10.1095/biolreprod.110.083808
  40. Jonsson S, Lundin E, Elgh F, Ottander U, Idahl A. Chlamydia trachomatis and anti-MUC1 serology and subsequent risk of high-grade serous ovarian cancer: A population-based case-control study in Northern Sweden. Translational Oncology. 2020;13(1):86-91.  https://doi.org/10.1016/j.tranon.2019.09.007
  41. Idahl A, Le Cornet C, González Maldonado S, Waterboer T, Bender N, Tjønneland A, Hansen L, Boutron-Ruault MC, Fournier A, Kvaskoff M, Boeing H, Trichopoulou A, Valanou E, Peppa E, Palli D, Agnoli C, Mattiello A, Tumino R, Sacerdote C, Onland-Moret NC, Gram IT, Weiderpass E, Quirós JR, Duell EJ, Sánchez MJ, Chirlaque MD, Barricarte A, Gil L, Brändstedt J, Riesbeck K, Lundin E, Khaw KT, Perez-Cornago A, Gunter MJ, Dossus L, Kaaks R, Fortner RT. Serologic markers of Chlamydia trachomatis and other sexually transmitted infections and subsequent ovarian cancer risk: results from the EPIC cohort. International Journal of Cancer. 2020;147(8):2042-2052. https://doi.org/10.1002/ijc.32999
  42. Laban M, Ibrahim EA, Hassanin AS, Nasreldin MA, Mansour A, Khalaf WM, Eldin AMB, Hussain SH, Elsafty MS, Hasanien AS. Chlamydia trachomatis infection in primary fallopian tube and high-grade serous ovarian cancers: A pilot study. International Journal of Women’s Health. 2019;11:199-205.  https://doi.org/10.2147/IJWH.S188938
  43. Асхаков М.С., Чеботарев В.В. Современный взгляд на течение, диагностику и лечение гонококковой инфекции. Вестник молодого ученого. 2017;17(3):50-55. 
  44. McGee ZA, Johnson AP, Taylor-Robinson D. Pathogenic mechanisms of Neisseria gonorrhoeae: observations on damage to human fallopian tubes in organ culture by gonococci of colony type 1 or type 4. The Journal of Infectious Diseases. 1981;143(3):413-422.  https://doi.org/10.1093/infdis/143.3.413
  45. Sinha RK, Rosenthal RS. Release of soluble peptidoglycan from growing gonococci: demonstration of anhydro-muramyl-containing fragments. Infection and Immunity. 1980;29(3):914-925.  https://doi.org/10.1128/iai.29.3.914-925.1980
  46. Mårdh PA, Baldetorp B, Håkansson CH, Fritz H, Weström L. Studies of ciliated epithelia of the human genital tract. 3: Mucociliary wave activity in organ cultures of human Fallopian tubes challenged with Neisseria gonorrhoeae and gonococcal endotoxin. British Journal of Venereal Diseases. 1979;55(4):256-264.  https://doi.org/10.1136/sti.55.4.256
  47. Cooper MD, McGraw PA, Melly MA. Localization of gonococcal lipopolysaccharide and its relationship to toxic damage in human fallopian tube mucosa. Infection and Immunity. 1986;51(2):425-430.  https://doi.org/10.1128/iai.51.2.425-430.1986
  48. Melly MA, McGee ZA, Rosenthal RS. Ability of monomeric peptidoglycan fragments from Neisseria gonorrhoeae to damage human fallopian-tube mucosa. The Journal of Infectious Diseases. 1984;149(3):378-386.  https://doi.org/10.1093/infdis/149.3.378
  49. Maisey K, Nardocci G, Imarai M, Cardenas H, Rios M, Croxatto HB, Heckels JE, Christodoulides M, Velasquez LA. Expression of proinflammatory cytokines and receptors by human fallopian tubes in organ culture following challenge with Neisseria gonorrhoeae. Infection and Immunity. 2003;71(1):527-532.  https://doi.org/10.1128/iai.71.1.527-532.2003
  50. McGee ZA, Clemens CM, Jensen RL, Klein JJ, Barley LR, Gorby GL. Local induction of tumor necrosis factor as a molecular mechanism of mucosal damage by gonococci. Microbial Pathogenesis. 1992;12(5):333-341.  https://doi.org/10.1016/0882-4010(92)90096-7
  51. Reyes PA, Vargas MF, García KP, Rubilar PS, Navarrete PA, Fuentes PM, Ríos MA, Orihuela PA, Vargas RH, Rubio VH, Heckels J, Christodoulides M, Cárdenas H, Velasquez LA. Apoptosis related genes expressed in cultured fallopian tube epithelial cells infected in vitro with Neisseria gonorrhoeae. Biological Research. 2007;40(3):319.  https://doi.org/10.4067/S0716-97602007000400006
  52. Rodríguez-Tirado C, Maisey K, Rodríguez FE, Reyes-Cerpa S, Reyes-López FE, Imarai M. Neisseria gonorrhoeae induced disruption of cell junction complexes in epithelial cells of the human genital tract. Microbes and Infection. 2012;14(3):290-300.  https://doi.org/10.1016/j.micinf.2011.11.002
  53. Juica NE, Rodas PI, Solar P, Borda P, Vargas R, Muñoz C, Paredes R, Christodoulides M, Velasquez LA. Neisseria gonorrhoeae challenge increases matrix metalloproteinase-8 expression in fallopian tube explants. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2017;7:399.  https://doi.org/10.3389/fcimb.2017.00399
  54. Edwards JL, Apicella MA. The molecular mechanisms used by Neisseria gonorrhoeae to initiate infection differ between men and women. Clinical Microbiology Reviews. 2004;17(4):965-981.  https://doi.org/10.1128/CMR.17.4.965-981.2004
  55. Lefrancq T, Orain I, Michalak S, Hourseau M, Fetissof F. Herpetic salpingitis and fallopian tube prolapse. Histopathology. 1999;34(6):548-550.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2559.1999.00644.x
  56. Арестова И.М., Киселева Н.И. Современные возможности сочетанной химиотерапии и иммунокоррекции урогенитального герпеса в гинекологии и акушерстве. Медицинские новости. 2013;9:21-27. 
  57. Clarke LM, Duerr A, Yeung KH, Brockman S, Barbosa C, Macasaet M. Recovery of cytomegalovirus and herpes simplex virus from upper and lower genital tract specimens obtained from women with pelvic inflammatory disease. The Journal of Infectious Diseases. 1997;176(1):286-288.  https://doi.org/10.1086/517268
  58. Paradowska E, Jabłońska A, Studzińska M, Wilczyński M, Wilczyński JR. Detection and genotyping of CMV and HPV in tumors and fallopian tubes from epithelial ovarian cancer patients. Scientific Reports. 2019;9(1):19935. https://doi.org/10.1038/s41598-019-56448-1
  59. Batwa SA, Ashshi AM, Kamfar FF, Ahmad J, Idris S, Khojah A, Al-Qadi NM, Refaat B. Prevalence of cytomegalovirus, and its effect on the expression of inducible and endothelial nitric oxide synthases in fallopian tubes collected from women with and without ectopic pregnancy. European Journal of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. 2016;35(1):103-110.  https://doi.org/10.1007/s10096-015-2514-7
  60. Ashshi AM. Aberrant expression of interleukin-6 and its receptor in fallopian tubes bearing an ectopic pregnancy with and without tubal cytomegalovirus infection. Virusdisease. 2016;27(4):340-350.  https://doi.org/10.1007/s13337-016-0342-8
  61. Pelzer ES, Willner D, Buttini M, Hafner LM, Theodoropoulos C, Huygens F. The fallopian tube microbiome: implications for reproductive health. Oncotarget. 2018;9(30):21541-21551. https://doi.org/10.18632/oncotarget.25059
  62. Chen C, Song X, Wei W, Zhong H, Dai J, Lan Z, Li F, Yu X, Feng Q, Wang Z, Xie H, Chen X, Zeng C, Wen B, Zeng L, Du H, Tang H, Xu C, Xia Y, Xia H, Yang H, Wang J, Wang J, Madsen L, Brix S, Kristiansen K, Xu X, Li J, Wu R, Jia H. The microbiota continuum along the female reproductive tract and its relation to uterine-related diseases. Nature Communications. 2017;8(1):875.  https://doi.org/10.1038/s41467-017-00901-0
  63. Khoury JE, Stikkelbroeck MM, Goodman A, Rubin RH, Cosimi AB, Fishman JA. Postmenopausal tubo-ovarian abscess due to Pseudomonas aeruginosa in a renal transplant patient: A case report and review of the literature. Transplantation. 2001;72(7):1241-1244. https://doi.org/10.1097/00007890-200110150-00010
  64. Goodwin K, Fleming N, Dumont T. Tubo-ovarian abscess in virginal adolescent females: A case report and review of the literature. Journal of Pediatric and Adolescent Gynecology. 2013;26(4):e99-102.  https://doi.org/10.1016/j.jpag.2013.02.004
  65. Cheong LHA, Emil SGS. Non-sexually transmitted tubo-ovarian abscess in an adolescent. Journal of Pediatric Surgery Case Reports. 2013;10(1):378-380.  https://doi.org/10.1016/j.epsc.2013.10.005
  66. Feuerstein JL, O’Gorman J, Jakus J. Sepsis secondary to Bacteroides fragilis tubo-ovarian abscess requiring hysterectomy and bilateral salpingo-oophorectomy. BMJ Case Reports. 2018;2018:bcr2017222460. https://doi.org/10.1136/bcr-2017-222460
  67. King JA, Olsen TG, Lim R, Nycum LR. Pseudomonas aeruginosa-infected IUD associated with pelvic inflammatory disease. A case report. The Journal of Reproductive Medicine. 2002;47(12):1035-1037.
  68. Meirow D, Moses A, Maayan S, Schenker JG. Chronic tuboovarian abscess due to Staphylococcus aureus: A case report and literature review. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology. 1989;33(3):275-279.  https://doi.org/10.1016/0028-2243(89)90142-1
  69. Чеботарь И.В. Механизмы антибиопленочного иммунитета. Вестник Российской академии медицинских наук. 2012;67(12):22-29. 
  70. Шлепотина Н.М., Пешикова М.В., Колесников О.Л., Шишкова Ю.С. Современные представления о механизмах взаимодействия биопленки и факторов клеточного иммунитета. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020;97(1):83-90.  https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-1-83-90

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.