ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 428-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Оценка эффективности местного лечения венозных трофических язв у геронтологических пациентов

Оценка эффективности местного лечения венозных трофических язв у геронтологических пациентов

Авторы:
Кузнецов М.Р.,
Матвеев Д.В.,
Абдувосидов Х.А.,
Сергей Михайлович Чудных,
Матвеев С.Д.,
Сницарь А.В.,
Яснопольская Н.В.,
Пятых М.В.

Журнал: Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2025;(8):45-54.

DOI: 10.17116/hirurgia202508145

Прочитано: 1391 раз

Скачать PDF

Резюме

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Оценка эффективности местного лечения венозных трофических язв у геронтологических пациентов.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Проведен анализ лечения 4 групп пациентов пожилого и старческого возраста, страдавших венозными трофическими язвами. Все пациенты получали консервативную терапию. В 1-й группе (n=74) в первые 7—10 дней лечения местно применяли 0,1% полигексанид-бетаинового гель, в последующие дни липосомальный антиоксидантно-фосфолипидный комплекс «Фламена». Во 2-й группе (n=69) наравне с местной терапией проводили иммунокоррекцию «Имунофан». В 3-й группе (n=69) комбинировали местное лечение с импульсным высокоинтенсивным оптическим облучением раны. В 4-й группе (n=69) комбинировали местное лечение с иммунокоррекцией и импульсным высокоинтенсивным оптическим облучением. Для контроля эффективности лечения выполнено цитологическое исследование. Статистический анализ полученных данных проведен при помощи непараметрических метода Фридмена и Манна—Уитни.

РЕЗУЛЬТАТЫ

К 7-му дню лечения увеличивалось количество лейкоцитов, лимфоцитов и макрофагов, при этом у пациентов 2, 3 и 4-й групп отмечалась более выраженная активация воспаления (p<0,0083). К 15-му дню наблюдалось снижение числа лейкоцитов, количество макрофагов и лимфоцитов оставалось высоким, увеличивалось число фибробластов, тип цитограмм соответствовал в основном воспалительному и воспалительно-регенераторному. К 22-му дню цитограммы соответствовали регенераторно-воспалительному и регенераторному типам, характеризующиеся наименьшим числом нейтрофилов, умеренным количеством лимфоцитов и макрофагов, а также умеренным количеством фибробластов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Комплексное местное лечение венозных трофических язв с локальной иммуномодулирующей терапией и импульсным высокоинтенсивным оптическим облучением приводит к переходу хронического воспаления в острое, с запуском процессов репарации и усилению регенерации тканей.

Ключевые слова

  • трофическая язва
  • пожилой пациент
  • цитология
  • местное лечение
  • регенерация

Дата поступления: 16.04.2025

Дата принятия в печать: 21.05.2025

Дата публикации: 11.08.2025

Введение

Хроническая венозная недостаточность (ХВН) нижних конечностей широко распространена в силу гиподинамии и увеличения продолжительности жизни современного общества. Тяжелые формы данного заболевания оказывают негативное влияние на качество жизни пациентов, что соответственно выводит ХВН в ряд сложно решаемых медико-социальных проблем. Каскад предшествующих изменений на молекулярном, клеточном и тканевом уровне приводит к нарушению венозного оттока, на фоне чего происходит нарушение микроциркуляции [1, 2]. Тяжелым осложнением ХВН является образование трофических язв (ТЯ). Венозные ТЯ — самые распространенные среди язв нижних конечностей.

Морфологические признаки венозных ТЯ могут описываться как явления альтерации, экссудации и пролиферации, а также атрофии, дистрофии и регенерации соединительной ткани, что складывается в привычные признаки, которые могли бы характеризовать определенные фазы раневого процесса, и свидетельствовать о замкнутой псевдохаотичной активности хронического воспаления [3]. В дальнейшем в отсутствие специального лечения происходит бактериальная контаминация образовавшейся ТЯ и последующая ее колонизация [4—6]. Наличие хронической раны отражается на системном и местном иммунитете, что выражается повышением у пациентов с венозными ТЯ в крови содержания IgG, IgA, IgE, циркулирующих иммунных комплексов, увеличением активности и популяции клеток иммунной системы, ростом СОЭ и уровня C-реактивного белка [7—9].

В лечении хронических заболеваний вен выделяют четыре основных составляющих. В первую очередь это компрессионная терапия, флеботропная лекарственная терапия, склеротерапия и хирургическое вмешательство. При этом в лечение ХВН в стадии ТЯ к перечисленным методам добавляется местная терапия с применением различных раневых покрытий [10, 11]. Бесспорно, хирургическое лечение, являясь патогенетическим и радикальным, в большинстве случаев приводит к заживлению язв. Но не всегда возможно радикальное хирургическое вмешательство, особенно у пациентов преклонного возраста. Вследствие чего консервативная терапия, включающая в том числе местное лечение, является методом выбора у таких пациентов.

Цель исследования: оценка эффективности местного лечения венозных ТЯ у геронтологический пациентов на основании цитологического исследования раневой поверхности.

Материал и методы

Проведен анализ лечения 281 пациента пожилого и старческого возраста с ХВН, осложненной ТЯ нижних конечностей. Наиболее частой причиной к ХВН была варикозная болезнь нижних конечностей, которая выявлена у 176 (62,6%) пациентов. ПТБ как причина ХВН определена у 105 (37,4%) пациентов. Критерием невключения в исследование служили малигнизация ТЯ, наличие в настоящий момент онкологических заболеваний, сахарного диабета, стенозирующего атеросклероза артерий нижних конечностей.

Все пациенты, независимо от применяемых методов лечения, получали консервативную терапию, задачей которой являлось создание оптимальных условий для заживления язв: устранение венозного стаза в нижних конечностях; улучшение тонуса венозной стенки; улучшение микроциркуляции; устранение воспаления и стимуляция репаративных процессов в язвенном дефекте. В связи с этим проводили лечение, включающее компрессионную терапию, для чего использовали эластичные бинты средней растяжимости; внутривенную инфузию и пероральный прием препаратов, улучшающих реологические свойства крови (пентоксифиллин 400 мг); флеботропные лекарственные средства; местное лечение язв.

С учетом местного лечения мы выделили 4 группы пациентов, распределение которых было случайным, статистически достоверной разницы в клинических данных больных не выявлено (табл. 1).

Таблица 1. Распределение пациентов по группам в зависимости от метода консервативного лечения

Группа

Возраст, годы (Me [Q1; Q3]

Пол, абс. (%)

Заболевание, абс. (%)

М

Ж

ВБ

ПТБ

1-я (n=74)

75 [68; 80]

22 (29,8)

52 (70.2)

44 (59,4)

30 (40,6)

2-я (n=69)

75 [69; 81]

29 (42,02)

40 (57,98)

42 (60,87)

27 (39,13)

3-я (n=69)

75 [70; 79]

26 (37,68)

43 (62,32)

43 (62,32)

26 (37,68)

4-я (n=69)

77 [70; 82]

21 (30,43)

48 (69,57)

47 (68,11)

22 (31,89)

В 1-ю группу вошли 74 пациента, у которых применяли местную терапию, направленную на очищение (дебридмент) и репарацию язвы. Для очищения ТЯ в течение 7—10 дней применяли туалет раневой поверхности 0,1% полигексанид-бетаиновым раствором (Prontosan, B. Braun), щадящий хирургический дебридмент, с последующим нанесением на поверхность язвы 0,1% полигексанид-бетаинового геля и наложением коллагеновой губки «Метуракол». Фиксировали хлопчатобумажным бинтом с эластической компрессией бинтами средней растяжимости. После очищения ТЯ от налета фибрина для раневой репарации в последующие дни проводили туалет язвы 0,1% полигексанид-бетаиновым раствором, после чего наносили на всю раневую поверхность липосомальный антиоксидантно-фосфолипидный комплекс «Фламена» в виде геля толщиной 2—4 мм, поверх которого использовали коллагеновую губку «Метуракол». Фиксировали хлопчатобумажным бинтом с эластической компрессией бинтами средней растяжимости.

Во 2-ю группу включили 69 пациентов, которым наравне с применяемой методикой стадийного местного медикаментозного лечения локально проводили иммунокоррекцию синтетическим гексапептидом Имунофан с молекулярной массой 836 Da. Иммунокоррекцию проводили в 1, 2, 3, 4 и 7-й дни. Намечали 5 зон вокруг периметра язвы, отступя на 1 см от краев раны. В асептических условиях подкожно вводили по 0,2 мл препарата Имунофан в намеченные 5 зон вокруг язвы. Всего за одну процедуру вводили 1 мл.

В 3-ю группу включили 69 пациентов, которым наравне с применяемой методикой местного стадийного лечения использовали импульсное высокоинтенсивное оптическое облучение раны и прираневой поверхности кожи, излучением сплошного спектра в диапазоне длин волн 190—1500 нм. Биодоза составляла 2,0; расстояние от излучателя до поверхности кожи 15 см; время проведения сеанса составляло 20 с один раз в день, процедуру проводили в течение первых 10 дней. Воздействие осуществляли с помощью отечественного аппарата Биоквант (МГТУ им. Н.Э. Баумана). В качестве источника излучения используется мощная импульсная ксеноновая лампа со сплошным спектром излучения.

В 4-ю группу вошли 69 пациентов, которым комбинировали местное стадийное лечение с локальной лимфотропной иммунокоррекцией и импульсным высокоинтенсивным оптическим облучением.

Для контроля эффективности проводимого лечения нами выполнено цитологическое исследование язв с помощью метода «раневых соскобов». Фиксацию полученного материала проводили по Май—Грюнвальду (эозин метиленовый синий), после чего окрашивали раствором красителя по Романовскому (азур-эозин). При цитологическом исследовании нами проведено изучение количественного состава клеток при помощи метода морфометрии (Г.Г. Автандилов, 1990). В цитологических препаратах проведен анализ количественного состава нейтрофилов, макрофагов, лимфоцитов, фибробластов в 10 полях зрения микроскопа (объектив — 20, окуляр — 10). Кроме количественного анализа клеточного состава полученного материала выполнена качественная оценка с определением типа цитограмм.

Полученные данные были занесены в электронные таблицы Microsoft Excel. Для статистического анализа использована программа Statistica 10.0.1011 («StatSoft, Tibco», США). В нашем исследовании полученные данные имели ненормальное распределение признака, в связи с чем они представлены в формате Me [Q1; Q3], где Me — медиана, Q1 — нижний квартиль (25%), Q3 — верхний квартиль (75%). Для сравнения разницы в динамике внутри групп использован непараметрический метод Фридмена для трех и более зависимых групп. Парные сравнения групп проводили с использованием критерия Вилкоксона для зависимых групп с поправкой Бонферрони (k=0,05/3=0,017). Для сравнения разницы динамики между группами использован однофакторный дисперсионный анализ Краскела—Уоллиса. При p<0,05 различия признака в группах считали статистически значимым. Далее использован непараметрический метод Манна—Уитни с поправкой Бонферрони (k=0,05/6=0,0083).

Результаты

Цитологическое исследование поверхности язв показало, что исходно преобладали дегенерирующие нейтрофильные лейкоциты, при этом малочисленные неизмененные нейтрофилы и единичные макрофаги характеризовались низкой фагоцитарной активностью. Часто в мазках-отпечатках имелось избыточное количество фибриновых преципитатов, небольшое количество гигантских клеток инородных тел и микрофлоры, расположенной внеклеточно. Выявленная цитологическая картина указывала на дегенеративно-воспалительные явления на поверхности язв, а также длительно вялотекущий хронический воспалительный процесс.

По типу цитограмм у пациентов всех групп до начала лечения в основном преобладал дегенеративно-воспалительный характер цитологической картины (см. рисунок, а). При исследовании мазков выявлено, что до лечения клеточный состав в исследуемых группах статистически значимо не различался (табл. 2—5).

Соотношение пациентов по типу цитограмм до лечения (а), на 7-й (б), 15-й (в) и 22-й (г) дни лечения.

Соотношение пациентов по типу цитограмм до лечения (а), на 7-й (б), 15-й (в) и 22-й (г) дни лечения.

Таблица 2. Динамика количества нейтрофильных лейкоцитов в мазках-отпечатках

Группа

День контроля

Сравнение между группами в дни контроля**

до лечения

7-й

15-й

22-й

1-я

60 [58; 63,5]

70 [63; 76,5]

43 [37; 50,5]

21 [21; 23]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

2-я

59,5 [56; 63]

93,5 [90; 98]

40 [35; 43]

16,5 [16; 20]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

3-я

60

[58; 63]

73

[70; 75]

33,5

[32; 36]

11

[10; 12]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

4-я

58

[58; 63]

57

[55; 61]

40

[40; 48]

11

[10; 12]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,106;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

Сравнение динамики в группах*

p=0,87

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p=0,33;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p<0,0001;

Р2—4 p<0,0001;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001;

Р1—2 p=0,02;

Р1—3 p<0,0001;

Р1—4 p=0,28;

Р2—3 p=0,0005;

Р2—4 p=0,0007;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p<0,0001;

Р1—4 p<0,0001

Р2—3 p<0,0001;

Р2—4 p<0,0001;

Р3—4 p=0,21

Таблица 3. Динамика количества лимфоцитов в мазках-отпечатках

Группы

День контроля

Сравнение между группами в дни контроля**

до лечения

7-й

15-й

22-й

1-я

5 [4,5; 6]

11 [10; 11,4]

12 [11,5; 13]

12 [11; 13]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,006;

Р22—15 p<0,48,

2-я

5 [5; 6]

14 [13; 15]

18 [17; 20]

7 [6; 8]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p=0,27;

Р22—15 p=0,003

3-я

5 [5; 6]

12 [10; 13]

12,5 [12; 14]

10 [9; 11]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p=0,0013;

Р22—15 p=0,31

4-я

5 [5; 6]

15 [15; 17]

21 [19; 22]

7,5 [6; 10]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p= p<0,0001

Сравнение динамики в группах*

p=0.78

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p=0,054;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p=0,00056;

Р2—4 p=0,0002;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p=0,44;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p<0,0001;

Р2—4 p=0,00017;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p<0,0001;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p<0,0001;

Р2—4 p=0,12;

Р3—4 p=0,0005

Таблица 4. Динамика количества макрофагов в мазках-отпечатках

Группа

День контроля

Сравнение между группами в дни контроля**

до лечения

7-й

15-й

22-й

1-я

5 [4; 6]

9 [8; 10]

11 [10; 12]

10 [9; 11]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p=0,0087;

Р22—15 p=0,1

2-я

5 [4; 6]

19 [17; 20]

16 [15; 18]

8 [7; 9]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,093;

Р22—15 p<0,0001

3-я

5 [4; 6]

14 [13; 15]

14 [13; 15]

9 [8; 10]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p=0,0013;

Р22—15 p=0,31

4-я

4 [3; 6]

24 [23; 25]

19 [18; 21]

8 [7; 9]

p<0,0001;

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

Сравнение динамики в группах*

p=0,68

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p<0,0001;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p<0,0001;

Р2—4 p<0,0001;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p<0,0001;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p<0,0001;

Р2—4 p<0,0001;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001;

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p<0,0001;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p=0,015;

Р2—4 p=0,062;

Р3—4 p=0,056

Таблица 5. Динамика количества фибробластов в мазках-отпечатках

Группа

День контроля

Сравнение между группами в дни контроля**

до лечения

7-й

15-й

22-й

1-я

2 [1,5; 3]

4 [3; 5]

7 [6; 8]

3 [2; 4]

p<0,0001

Р7—0 p=0,00015;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

2-я

2 [1; 4]

6 [5; 7]

15 [13; 17]

5 [4; 6]

p<0,0001

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

3-я

2 [1; 3]

5 [4; 6]

10 [8; 12]

5 [4; 6]

p<0,0001

Р7—0 p<0,0001;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

4-я

2 [2; 3]

2 [2; 4]

17 [16; 18]

5 [4; 6]

p<0,0001

Р7—0 p=0,54;

Р15—7 p<0,0001;

Р22—15 p<0,0001

Сравнение динамики в группах*

p=0.95

p<0,0001

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p=0,0034;

Р1—4 p=0,0135;

Р2—3 p=0,041;

Р2—4 p<0,0001;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p=0,0012;

Р1—4 p<0,0001;

Р2—3 p<0,0001;

Р2—4 p=0,00049;

Р3—4 p<0,0001

p<0,0001

Р1—2 p<0,0001;

Р1—3 p=0,00018;

Р1—4 p=0,00012;

Р2—3 p=0,79;

Р2—4 p=0,58;

Р3—4 p=0,58

К 7-му дню отмечается достоверный рост количества нейтрофилов на поверхности язв у пациентов 1, 2 и 3-й групп (p<0,0001), что указывает на переход раны из хронической в острую (см. табл. 2). При этом в группе пациентов, у которых в сочетании с местной терапией применялось иммуномодулирующее лечение, наблюдалось статистически значимое увеличение количества нейтрофилов по сравнению с другими группами (p<0,0001). В этот срок отмечено значительное уменьшение числа дегенерируемых форм нейтрофилов и увеличение неизмененных клеток с повышенной фагоцитарной активностью. К 15-му и 22-му дням лейкоцитарная реакция статистически значимо снижалась во всех группах больных (p<0,0001) по сравнению с предыдущими днями контроля.

К 22-м суткам лечения в зоне ТЯ наблюдалось минимальное содержание нейтрофильных лейкоцитов, при этом среди них не было дегенерирующих форм, что подтверждает уменьшение воспалительного процесса в тканях вокруг ТЯ, в то же время выявленные нейтрофилы были зрелыми, с повышенной фагоцитарной активностью.

В процессе лечения количественное содержание лимфоцитов на поверхности ТЯ, как на 7-е, так и на 15-е сутки, значительно увеличивалось, достигая в этот период у всех пациентов максимума, что указывает на активацию воспалительного процесса и переход раны в острую стадию. При этом у больных 2-й и 4-й групп в указанный период отмечено более выраженное увеличение числа лимфоцитов на поверхности ТЯ по сравнению с таковым у больных 1-й и 3-й групп (см. табл. 3). Количественное содержание лимфоцитов к 22-му дню лечения достоверно снизилось по сравнению с предыдущим днем контроля у пациентов 2-й (p<0,003) и 4-й (p<0,0001) групп. При этом в указанный срок число лимфоцитов у пациентов этих групп было достоверно ниже, чем у пациентов 1-й (p<0,0001) и 3-й (p=0,0005) групп, что указывает на снижение воспалительной реакции на фоне иммуномодулирующей терапии.

К 7-м суткам лечения в зоне ТЯ у пациентов всех групп наблюдался значительный рост (p<0,0001) числа макрофагов (см. табл. 4). В этот период на фоне лимфолейкоцитарной реакции отмечались макрофагальная реакция и, соответственно, фагоцитарная активность макрофагов. Все это свидетельствовало об обострении воспаления в ране. На 7-й день лечения наблюдался достоверный рост числа макрофагов у пациентов 1-й группы по сравнению с исходным днем контроля до 9 [8—10] клеток (p<0,0001). У пациентов 2-й группы количество макрофагов в зоне ТЯ к 7-му дню достоверно увеличилось по сравнению с исходными данными (p<0,0001) и показателями 1-й и 3-групп (p<0,0001). В 3-й группе пациентов количество макрофагов увеличилось (p<0,0001 по сравнению с исходными данными и показателями 1-й группы (p<0,0001). В 4-й группе больных численность макрофагов на 7-е сутки была максимальной по сравнению с остальными группами (p<0,001 по отношению к исходным данным 1, 2 и 3-й групп).

В период с 15-го до 22-го дня лечения, несмотря на уменьшение воспалительного процесса, в цитограммах ТЯ во всех группах отмечено сохранение большого количества макрофагов по сравнению с исходными данными. При этом наблюдалось постепенное уменьшение числа макрофагов по сравнению с таковым в 7-й день контроля. К 22-му дню лечения макрофагальная реакция в зоне ТЯ заметно уменьшалась. При этом у больных 2, 3 и 4-й групп количество макрофагов на поверхности язв было достоверно меньше, чем в 1-й группе, что указывало на незавершенную макрофагальную реакции в зоне язв у пациентов 1-й группы (см. табл. 4).

При оценке динамики числа фибробластов на поверхности ТЯ на каждом этапе лечения мы наблюдали достоверное увеличение (p≤0,0017) количественного содержания профибробластов и молодых фибробластов у больных во всех 4 группах.

К 7-м суткам в цитограммах у пациентов 1, 2 и 3-й групп отмечалось достоверное (p<0,00015) увеличение количества фибробластов на поверхности ТЯ по сравнению с исходными показателями (см. табл. 5). К 15-му дню лечения число фибробластов в зоне ТЯ было максимальным по сравнению с предыдущими этапами контроля. Исследование показало, что у больных 1-й группы количество фибробластов в этот период статистически значимо увеличилось (p<0,0001). У пациентов 2-й группы число фибробластов достоверно увеличилось по сравнению с предыдущим днем контроля (p<0,0001), и было статистически значимо больше, чем у пациентов 1-й и 3-й групп (p<0,0001). В 3-й группе число фибробластов к 16-му дню увеличилось (p<0,0001 по сравнению с исходным и p<0,0012 у пациентов 1-й группы). Количество фибробластов на поверхности ТЯ у пациентов 3-й группы было максимальным и достоверно больше, чем у пациентов других групп (p≤0,00049). К 22-му дню лечения количество фибробластов статистически значимо уменьшилось (p<0,0001) по сравнению с контролем 15-го дня. В этот срок у больных 2, 3 и 4-й групп число фибробластов в зоне ТЯ было статистически больше (p≤0,00018), чем у больных 1-й группы.

Исследование показало, что на фоне количественных изменений клеточного состава цитограмм в динамике изменялась и качественная характеристика исследуемого материала. Так, к 7-му дню лечения в связи с увеличением числа лейкоцитов, лимфоцитов, макрофагов и появлением клеток соединительной ткани во 2, 3 и 4-й группах число пациентов с дегенеративно-воспалительным типом цитограмм уменьшалось по сравнению с предыдущим днем контроля, более чем у 1/3 пациентов наблюдали воспалительно-регенеративный или регенеративных тип цитограмм (см. рисунок, б). К 15-му дню во всех группах отмечалось уменьшение числа пациентов с дегенеративно-воспалительным типом цитограмм. В данный период у большинства пациентов 2, 3 и 4-й групп на фоне очищения поверхности ран цитологический фон характеризовался как воспалительно-регенеративный и регенеративный (см. рисунок, в).

К 22-му дню лечения на фоне практически полного очищения раневой поверхности у большинства пациентов, которым проводились дополнительно иммунокоррекция и импульсное высокоинтенсивное облучение, тип цитограмм соответствовал регенеративному (см. рисунок, г).

Обсуждение

В связи с растущей устойчивостью микроорганизмов к антибактериальной терапии в последнее время общепринятые способы лечения хронических ран не всегда приводят к желаемому положительному результату [12—14]. В хирургии ран остро стоит вопрос о необходимости усовершенствования методов лечения, в том числе местного, поиска дополнения подходов [15].

В современной хирургической практике используется много методов контроля эффективности результатов лечения раз разной этиологии. В современной научной литературе редко встречаются результаты исследований на основании одного из простых и доступных способов контроля эффективности местной терапии ран, к которому относится цитологическое исследование отделяемого из раневой поверхности. Цитологическое исследование может дать возможность проследить характеристику в динамике процессов, которые происходят в ране [16].

В нашем исследовании проведено изучение цитологической картины в динамике на фоне местного лечения. Цитологическое исследование показало, что в первой фазе раневого процесса при местном использовании 0,1% геля полигексанид-бетаина активируется воспаление в ране, которое характеризуется увеличением количества лейкоцитов, лимфоцитов и макрофагов к 7-му дню лечения. При этом у пациентов, у которых местное лечение дополнялось локальной иммуномодулирующей терапией, воздействием на рану импульсным высокоинтенсивным оптическим облучением, а также комплексным сочетанием иммуномодулирующей терапии и импульсного облучения раны, на 7-й день лечения отмечалась более выраженная активация воспалительного процесса. Это характеризовалось значительным увеличением в цитограммах числа нейтрофильных лейкоцитов, лимфоцитов и макрофагов.

В процессе лечения к 15-му дню наблюдался переход раневого процесса во вторую фазу, фазу грануляции (или пролиферации), число лейкоцитов значительно уменьшалось по сравнению с предыдущими днями контроля, на этом фоне количество макрофагов и лимфоцитов оставалось высоким, значительно увеличивалось число фибробластов, тип цитограмм у больных соответствовал в основном воспалительному и воспалительно-регенераторному.

К 22-му дню цитограммы больных всех групп соответствовали регенераторно-воспалительному и регенераторному типам, которые характеризовались наименьшим числом нейтрофильных гранулоцитов, умеренным количеством лимфоцитов и макрофагов, а также умеренным количеством фибробластов.

Заключение

Местное лечение венозных трофических язв с использованием 0,1% геля полигексанид-бетаина в комплексе с локальной иммуномодулирующей терапией и импульсным высокоинтенсивным оптическим облучением приводит к переходу хронического воспаления в острое с запуском процессов репарации. При этом последующее применение липосомально-антиоксидантного комплекса в сочетании с локальной иммуномодулирующей терапией и импульсным высокоинтенсивным оптическим облучением способствует усилению регенерации тканей.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Кузнецов М.Р., Матвеев Д.В., Чудных С.М.

Сбор и обработка материала — Матвеев С.Д., Сницарь А.В., Яснопольская Н.В., Пятых М.В., Абдувосидов Х.А.

Написание текста — Абдувосидов Х.А.

Редактирование — Кузнецов М.Р., Матвеев Д.В., Чудных С.М.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References
  1. Богачев В.Ю. Золотухин И.А., Кузнецов В.Ю. Хронические заболевания вен нижних конечностей: современный взгляд на патогенез, лечение и профилактику. Флебология. 2008;2(1):43-50.
  2. Головина В.И., Ефремова О.И., Золотухин И.А. Лечение и вторичная профилактика венозных тромбоэмболических осложнений у «хрупких» пациентов в реальной практике. Флебология. 2021;15(2):95-102. https://doi.org/10.17116/flebo20211502195
  3. Швальб П.Г., Грязнов С.В., Швальб А.П. Некоторые вопросы патогенеза трофических язв венозного происхождения. Ангиология и сосудистая хирургия. 2005;11(1):61-65.
  4. Богданец Л.И. Как можно предупредить образование и рецидив трофических язв у больных с варикозной болезнью. Стационарозамещающие технологии. Амбулаторная хирургия. 2015;(1-2):20-25.
  5. Глухов А.А., Аралова М.В. Трофические язвы: современное состояние проблемы. Воронеж: Научная книга, 2019.
  6. Cwajda-Białasik J, Mościcka P, Jawień A, Szewczyk MT. Microbiological Status of Venous Leg Ulcers and Its Predictors: A Single-Center Cross-Sectional Study. Int J Environ Res Public Health. 2021;18(24):12965. https://doi.org/10.3390/ijerph182412965
  7. Алехин Д.И., Михайлова О.А., Сумная Д.Б., Додонов Н.П., Балтрушевич О.А. Отдаленные результаты применения препаратов простагландина Е1 и иммунотерапии в лечении трофических язв различного генеза. Ангиология и сосудистая хирургия. 2010;16(1);35-41.
  8. Богданец Л.И., Смирнова Е.С., Васильев И.М. Повышение эффективности лечения трофических язв венозного генеза. Стационарозамещающие технологии. Амбулаторная хирургия. 2014;1-2:16-21.
  9. Васильев И.М., Муранова А.В., Смирнова Е.С., Богданец Л.И., Синопальников В.И. Аспекты патогенеза венозных трофических язв и пути коррекции иммунологических нарушений. Клиническая медицина. 2016;94(11):820-826. https://doi.org/10.18821/0023-2149-2016-94-11-820-826
  10. Аралова М.В. Лечение трофических язв нижних конечностей гидроактивными раневыми покрытиями. Вестник новых медицинских технологий. 2013;20(2):25-28.
  11. Глухов А.А., Аралова М.В. Клиническая эффективность различных способов дебридмента трофических язв венозной этиологии. Новости хирургии. 2017;25(3):257-266. https://doi.org/10.18484/2305-0047.2017.3.257
  12. Котив Б.Н., Баринов О.В., Суборова Т.Н., Рудь А.А., Мельникова Ю.В., Иванов Ф.В., Скворцов Ю.Р. Выделение bacillus cereus при раневой инфекции. Международный научно-исследовательский журнал. 2023;135(9). https://doi.org/10.23670/IRJ.2023.135.84
  13. Kothari A, Kherdekar R, Mago V, et al. Age of Antibiotic Resistance in MDR/XDR Clinical Pathogen of Pseudomonas aeruginosa. Pharmaceuticals. 2023;16(9):1230. https://doi.org/10.3390/ph16091230
  14. Табалдыев А.Т. Современные методы лечения гнойных ран и их эффективность. Бюллетень науки и практики. 2022;8(12):311-319. https://doi.org/10.33619/2414-2948/85/36
  15. Чепурная Ю.Л., Мелконян Г.Г., Гульмурадова Н.Т., Сорокин А.А. Улучшение результатов лечения пациентов с гнойными заболеваниями пальцев и кисти при использовании лазерного излучения и фотодинамической терапии. Лазерная медицина. 2021;25(2):28-40. https://doi.org/10.37895/2071-8004-2021-25-2-28-40
  16. Menchisheva Y, Mirzakulova U. Yui R. Use of platelet-rich plasma to facilitate wound healing. Int Wound J. 2019;16(2):343-353. https://doi.org/10.1111/iwj.13034
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Особенности структурной организации ротовой жидкости у пациентов с хроническим пародонтитом.Российская стоматология. 2026;19(2):33-39

Дисгормоногенетический зоб у пациента с врожденным гипотиреозом: клинические, морфологические и генетические особенности.Архив патологии. 2026;88(3):59-65

Экспериментальное изучение регенераторных процессов в пародонте в ответ на применение фотодинамической терапии в комбинации с различными фотосенсибилизаторами.Российская стоматология. 2026;19(1):36-42

Фаготерапия гнойных ран: сравнительный клинико-цитоморфологический и микробиологический анализ эффективности.Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2026;(3):106-122

Синкинезии лицевой и глазодвигательной мускулатуры.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(2):13-22

Оптимизация эндоскопического лечебно-диагностического алгоритма при новообразованиях поджелудочной железы в скоропомощном стационаре.Доказательная гастроэнтерология. 2026;15(1):30-36

Иглистые мыши (Acomys) — новая перспективная модель для изучения механизмов регенеративных процессов в сердце и разработки регенеративных технологий.Кардиологический вестник. 2025;20(4):10-17

Опыт применения электро-, радиохирургического воздействия и NO-терапии в комбинированном лечении декубитальных язв у коморбидных пациентов многопрофильных стационаров, включая отделения реанимации и интенсивной терапии.Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2025;(11):86-93

Лечение сахарного диабета 1 типа.Профилактическая медицина. 2025;28(8):131-137

Новые возможности профессионального ухода за кожей после аппаратных процедур в эстетической косметологии.Клиническая дерматология и венерология. 2025;24(3):376-380

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026