Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Бакулин И.Г.

ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России

Акишина Ю.А.

ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России

Лямина С.В.

ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России

Маев И.В.

ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России

Потенциальная роль короткоцепочечных жирных кислот в развитии внекишечных проявлений болезни Крона

Авторы:

Бакулин И.Г., Акишина Ю.А., Лямина С.В., Маев И.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 259 раз


Как цитировать:

Бакулин И.Г., Акишина Ю.А., Лямина С.В., Маев И.В. Потенциальная роль короткоцепочечных жирных кислот в развитии внекишечных проявлений болезни Крона. Доказательная гастроэнтерология. 2025;14(3):44‑55.
Bakulin IG, Akishina YuA, Lyamina SV, Maev IV. Potential role of short-chain fatty acids in the development of extraintestinal manifestations of Crohn’s disease. Russian Journal of Evidence-Based Gastroenterology. 2025;14(3):44‑55. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/dokgastro20251403144

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Одной из доминирующих характеристик воспалительных заболеваний кишечника (ВЗК) является их мультисистемность, т.е. вовлечение в иммуновоспалительный процесс не только кишечника, но и органов, не относящихся к пищеварительной системе [1, 2]. Внекишечные проявления (ВКП), согласно данным Европейской организации по изучению болезни Крона (БК) и язвенного колита (ЯК) (ECCO), определяются как патологические состояния, развивающиеся за пределами желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) при ВЗК. Патогенез ВКП либо зависит от экспансии иммунных реакций, либо является независимым воспалительным событием, индуцированным ВЗК, либо предполагает наличие общей предрасположенности, определяемой факторами окружающей среды и наследственностью [3]. Публикации ряда авторов и данные Северо-Западного регистра пациентов с ВЗК свидетельствуют о том, что ВКП могут встречаться у 50—60% лиц [4—6].

На сегодняшний день с учетом отсутствия однозначного понимания механизмов развития ВКП последние принято рассматривать в аспекте мультифакториальной природы [3,7]. В связи с этим необходимо учитывать роль кишечного микробиома [3, 8, 9], включая феномен молекулярной мимикрии [10] и транслокацию микроорганизмов в системный кровоток [7], повышенную продукцию микробных факторов (липополисахаридов и других провоспалительных молекул) [1]. Возрастает понимание важности в патогенезе ВКП измененного кишечного метаболома (включая короткоцепочечные жирные кислоты (КЦЖК), желчные кислоты, аминокислоты и т.д.) [11—14], который, в свою очередь, поддерживает кишечный гомеостаз и регулирует системный иммунный ответ [14].

Изучение метаболомного профиля у пациентов с ВЗК представляет собой актуальную область исследований, что подтверждается имеющимися систематическими обзорами [15—17] и метаанализами [18, 19]. В систематическом обзоре и метаанализе X. Zhuang и соавт., включившем 12 исследований, представлена оценка концентрации КЦЖК у пациентов с БК и ЯК на основе стандартизированной разницы средних величин с 95% доверительным интервалом (ДИ). Авторы подчеркивают неоднозначность полученных данных, необходимость дальнейших исследований, а также указывают на потенциальную роль КЦЖК в терапии пациентов этой группы [18].

В будущих исследованиях результаты, полученные с помощью нецелевой метаболомики, а также точные механизмы метаболических изменений при ВЗК должны быть подтверждены и уточнены с помощью методов целевой метаболомики [20] и других омикс-технологий, таких как протеомика, геномика, транскриптомика, метагеномика и метатранскриптомика [21].

Биохимические аспекты короткоцепочечных жирных кислот

Известно, что КЦЖК представляют собой карбоновые кислоты, содержащие менее 6 атомов углерода [22]. Из них соотношение C2, C3, C4 составляет примерно 3:1:1 [23]. Пути образования КЦЖК представлены метаболическими реакциями, протекающими в организме человека, и реакциями расщепления пищевых волокон, осуществляемыми кишечной микробиотой [24] (табл. 1). Названия и формулы КЦЖК [25—30] приведены на рис. 1.

Таблица 1. Метаболические пути образования короткоцепочечных жирных кислот и участвующие в них бактерии

КЦЖК

Путь/предшественник

Бактерии

Этановая кислота

Пировиноградная кислота→ацетил-КоА

Blautia hydrogenotrophica, Clostridium spp., Streptococcus spp.

Путь Вуда—Льюнгдаля с образованием ацетил-КоА

Blautia hydrogenotrophica, Clostridium spp., Streptococcus spp.

Пропановая кислота

Сукцинат→сукцинил-КоА→метилмалонил-КоА

Bacteroides spp., Phascolarctobacterium succinatutens,

Dialister spp., Veillonella spp.

Лактат→лактилил-КоА→акрилил-КоА

Megasphaera elsdenii, Coprococcus catus

Пропандиоловый путь с образованием пропионил-КоА

Salmonella spp., Roseburia inulinivorans, Ruminococcus obeum

Бутановая кислота

Бутирил-КоА: бутират-киназный путь

Coprococcus comes, Coprococcus eutactu

Бутирил-КоА: ацетат-КоА-трансферазный путь

Anaerostipes spp. (A, L), Coprococcus catus (A), Eubacterium rectale (A), Eubacterium hallii (A, L), Faecalibacterium prausnitzii (A), Roseburia spp. (A)

Примечание. КЦЖК — короткоцепочечные жирные кислоты; КоА — коэнзим А.

Рис. 1. Названия и формулы короткоцепочечных жирных кислот.

ИЮПАК — международный союз теоретической и прикладной химии.

Транспортеры и рецепторы короткоцепочечных жирных кислот

Концентрация КЦЖК в проксимальном отделе толстой кишки составляет 131±9 ммоль/л, в то время как в дистальном отделе толстой кишки она ниже — 80±11 ммоль/л [31].Сообщается, что КЦЖК могут проникать в клетки путем пассивной диффузии [32] либо с помощью транспортных переносчиков — протон-связанного монокарбоксилат-транспортера 1 (MCT1/SLC16A1) и натрий-связанного монокарбоксилат-транспортера 1 (SMCT1/SLC5A8) [33, 34]. По данным литературы, КЦЖК способны активировать сигнальные пути через рецепторы, сопряженные с G-белком (GPR): GPR41 (рецептор свободных жирных кислот 3; FFAR3), GPR43 (рецептор свободных жирных кислот 2; FFAR2) и GPR109A (рецептор гидроксикарбоновой кислоты 2; HCAR2) [35, 36]. Большая часть КЦЖК используется эпителиальными клетками слизистой оболочки толстой кишки [37], меньшая — поступает в верхнюю брыжеечную вену, нижнюю брыжеечную вену и воротную вену путем пассивной диффузии и активного транспорта (концентрации C2, C3 и C4 составляют 262,8 мкм/л, 30,3 мкм/л и 30,1 мкм/л соответственно) [31, 38, 39]. Часть КЦЖК метаболизируется в печени, часть попадает в системный кровоток (концентрации C2, C3 и C4 составляют 172,9 мкмоль/л, 3,6 мкмоль/л и 7,5 мкмоль/л соответственно) [40, 41].

Роль короткоцепочечных жирных кислот в поддержании гомеостаза кишечника

Показано, что КЦЖК вызывают протективный эффект в отношении кишечного иммунного барьера, снижая уровни фактора некроза опухоли α (ФНО-α), интерферона-γ (ИФН-γ) и интерлейкина (ИЛ)-6, активируя экспрессию рецепторов, сопряженных с G-белком (GPR), ингибируя индуцированную липополисахаридами активацию ядерного фактора каппа B (NF-κB), а также способствуя образованию ИЛ-18, подавлению гистондеацетилазы (HDAC) и экспрессии провоспалительных цитокинов [42—49]. Кроме того, КЦЖК могут улучшать целостность кишечного барьера путем ингибирования сигнального пути, опосредуемого Toll-подобным рецептором 4 (TLR4) [50].

Бутановая кислота способствует поддержанию барьерной функции, оказывая воздействие на транскрипционные факторы. В частности, она стабилизирует транскрипционный индуцируемый гипоксией фактор HIF-1 [51], активирует STAT3 и SP1, тем самым модулируя экспрессию генов белков плотных контактов [52, 53]. Еще одним механизмом, участвующим в поддержании функции эпителиального барьера, является продукция антимикробных пептидов (АМП) интестинальными эпителиоцитами. На модельных животных показано, что метаболиты кишечной микробиоты (в частности, бутановая кислота) способствуют экспрессии интестинальными эпителиоцитами антимикробного лектина (RegIIIγ) и β-дефенсинов, необходимых для поддержания кишечного гомеостаза [54]. Таким образом, эффекты КЦЖК в отношении барьерной функции не ограничиваются только межэпителиальными соединениями, но также включают регуляцию взаимодействия эпителия и люминальных бактерий посредством производства АМП в качестве эффекторов первой линии защиты от патогенов [55].

В работе J.R. Marchesi и соавт. показано, что при БК и ЯК по сравнению с группой контроля снижается уровень КЦЖК в кале ввиду нарушения состава кишечной микробиоты и снижения ферментации пищевых волокон [56], что может способствовать изменению регуляции иммунного ответа и подавлению барьерной функции кишечника. Важно, что, несмотря на наличие данных, подтверждающих потенциальный положительный эффект КЦЖК в отношении воспалительных процессов и поддержания гомеостаза кишечника, взаимосвязь между указанными метаболитами и ВЗК сложна и до конца не изучена [57]. Последнее определяет необходимость дальнейших исследований для более точного понимания механизмов и в связи с этим применения таргетных подходов для профилактики возникновения ВКП.

Цель исследования – провести сравнительный анализ содержания КЦЖК у лиц с БК и ЯК в зависимости от наличия и отсутствия ВКП; оценить структуру ВКП в изучаемой когорте.

Материал и методы

Проведено проспективное когортное исследование, размер выборки которого предполагал 80 человек: 47 (58,75%) с БК и 33 (41,25%) с ЯК (рис. 2). Исследование проведено на базе отделения гастроэнтерологии клиники им. Петра Великого ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет имени И. И. Мечникова» Минздрава России в период 2024—2025 гг.

Рис. 2. Дизайн исследования.

Исследование выполнено в рамках реализации научного исследования ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России.

Проведение исследования одобрено межвузовским комитетом по этике (выписка из протокола №4 заседания от 11.04.2024).

Все пациенты подписали информированное добровольное согласие на участие в исследовании. Все данные анонимизированы. Исследование проведено в соответствии с этическими стандартами и принципами защиты персональных данных.

На I этапе исследования все пациенты (n=80) обследованы с помощью комплекса методов клинической и лабораторно-инструментальной диагностики: это сбор анамнеза (в том числе относительно наличия ВКП); физикальное обследование; выполнены общеклинические и биохимические лабораторные исследования, определение содержания фекального кальпротектина; видеоколоноскопия с мультифокальной биопсией; ультразвуковое исследование кишечника и/или гидро-магнитно-резонансная томография. Проведена оценка индексов клинической и эндоскопической активности: определены индекс активности БК — CDAI (Crohn’s Disease Activity Index), показатели простой эндоскопической шкалы болезни Крона — SES-CD (Simple Endoscopic Score for Crohn’s Disease), индекс Мейо, эндоскопическая активность по Schroeder.

На II этапе у пациентов, соответствовавших критериям включения (n=60), проводилось исследование кала на КЦЖК методом газожидкостной хроматографии. Состав параметров представлен монокарбоновыми кислотами: C2 (этановой), C3 (пропановой), C4 (бутановой), суммарным содержанием изомеров кислот C4, C5 (пентановой), C6 (гексановой). Представлены расчетные параметры КЦЖК: общее содержание всех фракций C2—C6, анаэробный индекс.

Критерии включения: БК с локализацией поражения по Монреальской классификации — L1—L3, L4 с L1—L3, CDAI ≥150, SES-CD ≥3; ЯК с локализацией поражения по Монреальской классификации — E1, E2, E3, индекс Мейо ≥3, эндоскопическая активность по Schroeder ≥1; для групп с ВКП — наличие клинически активного ВКП на момент скрининга.

Критерии невключения: возраст моложе 18 лет и старше 75 лет, кишечные инфекции (в том числе Clostridioides difficile), применение антибактериальных, противопаразитарных, противогрибковых препаратов в течение предшествующих 2 нед, неоплазии толстой и тонкой кишки, ишемический колит, дивертикулит, колэктомия, декомпенсация хронических соматических заболеваний, острые соматические заболевания, онкологические заболевания, беременность, грудное вскармливание.

Статистический анализ выполнен в программе SPSS v. 16.0. Для сравнения средних значений использовали t-тест Уэлча с расчетом 95% ДИ. Двусторонний уровень значимости — 0,05. Категориальные переменные описаны как абсолютные числа и проценты. Количественные непрерывные переменные отображаются как среднее и стандартное отклонение или медиана и межквартильный размах.

Результаты

Выявлены ВКП в 53,19% (n=25) и 51,52% (n=17) случаев, из них клинически активные ВКП — в 34,04% (n=16) и 42,42% (n=14) случаев у пациентов с БК и ЯК соответственно.

В исследуемой когорте пациентов структура как клинически активных ВКП, так и ВКП, имевших место в анамнезе, представлена на рис. 3.

Рис. 3. Структура внекишечных проявлений у пациентов с язвенным колитом и болезнью Крона.

Отмечено, что ВКП, связанные с активностью ВЗК, встречались наиболее часто в обеих группах: 64,7% (n=11) и 76% (n=19) при ЯК и БК соответственно, они представлены периферической артропатией (47% и 60% случаев при ЯК и БК соответственно), поражением кожи в виде гангренозной пиодермии (4% случаев при БК) и васкулита (5,88% и 8% случаев при ЯК и БК соответственно), поражением слизистых оболочек в виде афтозного стоматита (11,76% и 20% случаев при ЯК и БК соответственно).

Не связанные с активностью ВЗК ВКП, так называемые сопутствующие аутоиммунные заболевания, встречались при ЯК и БК в 29,4% (n=5) и 28% (n=7) случаев соответственно и представлены анкилозирующим спондилитом (5,88 и 8% случаев соответственно), поражением кожи в виде атопического дерматита (17,7% и 4% соответственно) и псориаза (5,88% и 8% соответственно), поражением костного аппарата в виде остеопороза (8% при БК).

Обусловленные длительным воспалительным процессом и метаболическими нарушениями ВКП встречались реже как при ЯК, так и при БК: 29,4% (n=5) и 20% (n=5) случаев соответственно. Последние представлены холелитиазом (5,88% и 4% случаев) и стеатозом печени (23,5% и 12% случаев) при ЯК и БК соответственно.

Одновременно несколько ВКП встречались в 32% (n=8) при БК, из них в 8% (n=2) случаев имели место 3 ВКП, в 24% (n=6) — 2 ВКП. При ЯК одновременно 2 ВКП встречались в 23,5% (n=4) случаев (см. рис. 3).

Общая характеристика пациентов, соответствовавших критериям включения (в том числе с клинически активными ВКП), представлена в табл. 2, 3.

Таблица 2. Характеристика пациентов с болезнью Крона

Параметр

Группа

БК+ВКП (n=16)

БК–ВКП (n=15)

Женщины, n (%)

10 (62,5)

5 (33,33)

Мужчины, n (%)

6(37,5)

10 (66,67)

Возраст, лет; (M±SD)

43,75±10,64

35,13±17,07

Локализация поражения по Монреальской классификации, n (%)

L1

2 (12,5)

1 (6,67)

L2

8 (50)

6 (40)

L3

3 (18,75)

5 (33,33)

L4+L1

0 (0)

2 (13,33)

L4+L2

2 (12,5)

1 (6,67)

L4+L3

1 (6,25)

0 (0)

Характер течения, n (%)

острое

0 (0)

1 (6,67)

хроническое рецидивирующее

13 (81,25)

14 (93,33)

хроническое непрерывное

3 (18,75)

0 (0)

Фенотип заболевания по Монреальской классификации, n (%)

B1

8 (50)

12 (80)

B2

4 (25)

2 (13,33)

B3

4 (25)

1 (6,67)

P

0 (0)

0 (0)

Лабораторные показатели

C-реактивный белок, мг/л

2,87 (1,2; 6,3)

5 (0,84; 11,9)

фекальный кальпротектин, мкг/г

171,55 (66,80; 496,50)

433,40 (174,05; 808,45)

Клиническая активность, n (%)

CDAI 150—220 баллов (минимальная)

8 (50)

8 (53,33)

CDAI 220—450 баллов (умеренная)

7 (43,75)

5 (33,33)

CDAI >450 баллов (высокая)

1 (6,25)

2 (13,33)

Эндоскопическая активность, n (%)

SES-CD 3—6 баллов (минимальная)

5 (31,25)

7 (46,67)

SES-CD 7—15 баллов (умеренная)

9 (56,25)

5 (33,33)

SES-CD >15 баллов (высокая)

2 (12,5)

3 (20)

Примечание. Данные представлены в виде среднего и стандартного отклонения: M±SD, медианы и межквартильного размаха: Me (IQR), абсолютных и относительных значений: n (%). БК+ВКП — болезнь Крона с клинически активными внекишечными проявлениями; БК–ВКП — болезнь Крона без внекишечных проявлений; CDAI (Crohn’s Disease Activity Index) — индекс активности болезни Крона; SES-CD (Simple Endoscopic Score for Crohn’s Disease) — простая эндоскопическая шкала болезни Крона.

Таблица 3. Характеристика пациентов с язвенным колитом

Параметр

Группа

ЯК+ВКП (n=14)

ЯК–ВКП (n=15)

Женщины, n (%)

9 (64,29)

3 (20)

Мужчины, n (%)

5 (35,71)

12 (80)

Возраст, годы

47,07±15,06

39,67±12,03

Локализация поражения по Монреальской классификации, n (%)

E1

0 (0)

1 (6,67)

E2

8 (57,14)

8 (53,33)

E3

6 (42,86)

6 (50)

Характер течения, n (%)

острое

0 (0)

0 (0)

хроническое рецидивирующее

12 (85,71)

10 (66,67)

хроническое непрерывное

2 (14,29)

5 (33,33)

Лабораторные показатели

C-реактивный белок, мг/л

4 (1,5; 7,0)

3,5 (1,1; 8,0)

фекальный кальпротектин, мкг/г

427,20 (200,50; 1800,00)

286,38 (105,10; 1800,00)

Тяжесть атаки согласно индексу Мейо, n (%)

3—5 баллов (легкая атака)

6 (42,86)

7 (46,67)

6—9 баллов (среднетяжелая атака)

5 (35,71)

7 (46,67)

10—12 баллов (тяжелая атака)

3 (21,43)

1 (6,67)

Эндоскопическая активность по Schroeder, n (%)

1 (минимальная)

5 (35,71)

4 (26,67)

2 (умеренная)

7 (50)

10 (66,67)

3 (выраженная)

2 (14,29)

1 (6,67)

Примечание. Данные представлены в виде среднего и стандартного отклонения: M±SD, медианы и межквартильного размаха: Me (IQR), абсолютных и относительных значений: n (%). ЯК+ВКП — язвенный колит с клинически активными внекишечными проявлениями; ЯК–ВКП — язвенный колит без внекишечных проявлений.

Из обследуемых пациентов с клинически активными ВКП при БК и ЯК в обеих группах преобладали женщины: 62,5% (n=10) и 64,29% (n=9) соответственно. Средний возраст составил 43,75±10,64 года и 47,07±15,06 года соответственно.

При БК с наличием клинически активных ВКП у 50% (n=8) пациентов локализация поражения и фенотип заболевания по Монреальской классификации соответствовали L1 и В1. При ЯК с наличием клинически активных ВКП у большинства пациентов (57,14%, n=8) имел место левосторонний колит, у остальных — тотальное поражение толстой кишки (42,86%, n=6), что соответствует E2 и E3 по Монреальской классификации.

У пациентов с БК и наличием ВКП преобладала минимальная и умеренная клиническая активность по CDAI — 50% (n=8) и 43,75% (n=7) соответственно. У большинства пациентов (56,25%, n=9) выявлена умеренная, у каждого третьего пациента (31,25%, n=5) — минимальная эндоскопическая активность по SES-CD. У пациентов группы ЯК с наличием ВКП отмечена преимущественно легкая и среднетяжелая атака согласно индексу Мейо — 42,86% (n=6) и 35,71% (n=5).

Характеристика и сравнительное содержание КЦЖК у пациентов с БК и ЯК представлены в табл. 4, 5. Статистически значимые различия получены в группах пациентов с БК в зависимости от наличия и отсутствия ВКП (см. табл. 4): среднее содержание C4 (бутановой кислоты) составило 0,62 (95% ДИ 0,45; 0,79) и 1,41 (95% ДИ 0,87; 1,95) соответственно (p=0,008); среднее значение суммарного содержания C2—C6 (этановой, пропановой, бутановой, пентановой, гексановой кислот) составило 4,04 (95% ДИ 2,97; 5,11) и 6,67 (95% ДИ 4,73; 8,61) соответственно (p=0,019). В группах пациентов с ЯК в зависимости от наличия и отсутствия ВКП (см. табл. 5) не получены статистически значимые различия ни по одному из исследуемых параметров.

Таблица 4. Характеристика и сравнение содержания короткоцепочечных жирных кислот у пациентов с болезнью Крона в зависимости от наличия и отсутствия внекишечных проявлений

Параметр

Группа

p

БК+ВКП (n=16)

БК–ВКП (n=15)

C2, мг/г

2,39 (1,84; 2,94)

3,39 (2,41; 4,37)

0,070

C3, мг/г

0,90 (0,61; 1,19)

1,33 (0,79; 1,87)

0,147

C4, мг/г

0,62 (0,45; 0,79)

1,41 (0,87; 1,95)

0,008

SisoCn, мг/г

0,41 (0,27; 0,55)

0,40 (0,28; 0,52)

0,907

SisoCn+Cn, мг/г

4,04 (2,97; 5,11)

6,67 (4,73; 8,61)

0,019

Анаэробный индекс, ед.

–0,66 (–0,81; –0,51)

–0,74 (–0,90; –0,58)

0,449

Примечание. Данные представлены в виде среднего значения и 95% ДИ. КЦЖК — короткоцепочечные жирные кислоты; БК+ВКП — болезнь Крона с клинически активными внекишечными проявлениями; БК–ВКП — болезнь Крона без внекишечных проявлений; SisoCn — суммарное содержание изоформ C4—C6; SisoCn+Cn — суммарное содержание C2—C6.

Таблица 5. Характеристика и сравнение содержания короткоцепочечных жирных кислот у пациентов с язвенным колитом в зависимости от наличия и отсутствия внекишечных проявлений

Параметр

Группа

p

ЯК+ВКП (n=14)

ЯК–ВКП (n=15)

C2, мг/г

2,42 (1,62; 3,22)

2,14 (1,53; 2,75)

0,553

C3, мг/г

0,86 (0,45; 1,27)

0,88 (0,53; 1,23)

0,937

C4, мг/г

0,91 (0,53; 1,29)

0,95 (0,49; 1,41)

0,887

SisoCn, мг/г

0,40 (0,20; 0,60)

0,35 (0,21; 0,49)

0,667

SisoCn+Cn, мг/г

4,67 (2,99; 6,35)

4,07 (2,51; 5,63)

0,578

Анаэробный индекс, ед.

–0,56 (–0,83; –0,29)

–0,76 (–0,91; –0,61)

0,182

Примечание. Данные представлены в виде среднего значения и 95% ДИ. ЯК+ВКП — язвенный колит с клинически активными внекишечными проявлениями; ЯК–ВКП — язвенный колит без внекишечных проявлений; SisoCn — сумммарное содержание изоформ C4—C6; SisoCn+Cn — суммарное содержание C2—C6.

Обсуждение

Как упомянуто выше, изменения кишечного микробиома и, как следствие, метаболомного профиля могут рассматриваться в качестве механизмов развития ВКП при ВЗК. При этом повреждения интестинального барьера в условиях ВЗК могут усугублять имеющиеся изменения, приводя к транслокации микробиоты и экспансии иммунного ответа в другие органы и системы.

Кишечный эпителиальный барьер является первой линией защиты иммунной системы кишечника и состоит из эпителиоцитов слизистой оболочки и слоя слизи [58]. Слой слизи представляет собой двухфазную структуру, состоящую из муцина. При этом рыхлый внешний слой обеспечивает среду обитания для кишечных комменсальных бактерий, а плотный внутренний слой предотвращает нисходящую инвазию последних [59]. Основной продукт ферментации бактериями пищевых волокон в кишечнике — КЦЖК — играет важную роль в поддержании барьерной функции кишечника, в том числе при ВЗК.

Изменения интестинального барьера различны у пациентов с БК и ЯК. Так, в исследовании S. Zeissig и соавт. показано, что при БК в отличие от ЯК не обнаружены очаговые поражения кишечного эпителиального барьера [60]. Авторы сделали вывод об отсутствии различий в соотношении апоптоза эпителиоцитов у пациентов с минимальной и умеренной активностью БК и ЯК. Предполагается, что более существенные функциональные последствия характерны для ЯК ввиду различий реституции эпителиального барьера. В работе A.U. Dignass и соавт. отмечено более быстрое восстановление эпителия при БК в условиях синтезируемых реституционных цитокинов: TGF-α, эпидермального фактора роста (EGF), ИЛ-1 β и IFN-γ [61]. Напротив, результаты исследования F.Heller и соавт. показали замедленную реституцию эпителиоцитов, опосредуемую эффекторным цитокином ИЛ-13, что обусловливает очаговые эпителиальные поражения при ЯК, но не при БК [62]. Кроме того, результаты исследования S. Zeissig и соавт. показали более высокую экспрессию клаудина 2 при ЯК по сравнению с БК, что составляет молекулярную основу разрушения плотных контактов указанным порообразующим белком [60]. Результаты, приведенные A.H. Gitter и соавт., показали, что в повышение ионной проницаемости толстой кишки при ЯК вносят вклад как генерализованные изменения плотных контактов, так и нарушенный эпителиальный барьер вследствие множественного эпителиального апоптоза ввиду наличия эрозий/язв [63].

В проведенном нами исследовании в группах пациентов с ЯК не обнаружены статистически значимые различия в содержании КЦЖК в зависимости от наличия или отсутствия ВКП. Мы предполагаем, что полученные результаты могут объяснять более выраженные изменения кишечного барьера при ЯК, что также показано в приведенных работах. Как следствие, для данной когорты пациентов характерно более активное выведение КЦЖК из просвета толстой кишки, что обусловливает отсутствие полноценного влияния данных метаболитов на интестинальный барьер.

В настоящее время нет публикаций, отражающих количественное и качественное содержание КЦЖК у пациентов при ВЗК в зависимости от наличия ВКП. Однако представлены работы, показавшие изменение указанных выше метаболитов при аутовоспалительных заболеваниях, которые могут рассматриваться как ВКП при ВЗК. Так, в работе J.U. Scher и соавт. у пациентов с псориатическим артритом и псориазом обнаружено снижение содержание гексановой (C6) и энантовой (C7) кислот [11]. Авторы отмечают, что профиль кишечной микробиоты при псориатическом артрите был аналогичен ранее описанному при ВЗК: относительное снижение содержания видов Coprococcus и Ruminococcus — представителей, вырабатывающих КЦЖК и обеспечивающих поддержание гомеостаза кишечника.

Результаты исследования Y.K. Nakamura и соавт. показали, что при экспериментальном аутоиммунном увеите пероральный прием КЦЖК может ослаблять тяжесть увеита и быть связан с ингибированием индукции эффекторных T-клеток и/или усилением кишечного гомеостаза [64]. В работе впервые продемонстрирована миграция лейкоцитов между ЖКТ и глазом в рамках имеющегося увеита, а также показано снижение миграции эффекторных T-клеток между кишечником и селезенкой в условиях аутоиммунной модели увеита за счет предполагаемого действия КЦЖК. Демонстрация того, что иммунокомпетентные клетки мигрируют из кишечника в глаз, дает понимание связи между патологией кишечника и увеитом, что может рассматриваться в рамках ВКП ВЗК.

Как сказано ранее, в исследуемой нами когорте пациентов средние значения масляной кислоты и суммарного содержания КЦЖК (C2—C6, включая их изомеры) оказались статистически значимо выше у пациентов с БК и отсутствием ВКП. Полученные данные могут свидетельствовать о протективном эффекте КЦЖК в отношении компонентов кишечного барьера и, как следствие, в снижении кишечной проницаемости и восстановлении интестинального барьера, снижении транслокации кишечной микробиоты и экспансии иммунного ответа в органы, клетки которых имеют схожие эпитопы с таковыми в слизистой оболочке кишечника.

Корректность результатов исследования доказывается достаточной выборкой пациентов (n=60) с клинико-эндоскопически активным ВЗК; при этом пациенты соответствующих групп имели клинически активные ВКП. Таким образом, исходные характеристики сравниваемых групп были сопоставимы между собой.

Полученные данные следует рассматривать в свете некоторых ограничений. Одно из них — негомогенность исследуемого биоматериала. Кроме того, абсорбция КЦЖК может зависеть от моторики кишечника. Важно учитывать, что на полученные результаты влияют различия в количественном и качественном составе кишечного микробиома, а также индивидуальные различия в отношении потребляемых пищевых волокон.

Заключение

Результаты исследования позволяют предположить, что расчетный показатель суммарного содержания КЦЖК (C2—C6) и содержание бутановой кислоты (C4) могут представлять собой диагностические инструменты для выявления ВКП при БК и, как следствие, обеспечить своевременный подход к профилактике последних. Предполагаемые значения установлены в интервале от 2,97 до 5,11 мг/г и от 0,45 до 0,79 мг/г для суммарного содержания КЦЖК (C2—C6) и бутановой кислоты (C4) соответственно.

Таким образом, в представленной популяции пациентов прецизионная диагностика метаболомного профиля позволяет осуществить раннюю диагностику ВКП и, как следствие, применить таргетный подход к терапии.

В связи с изложенными ограничениями проведенного нами исследования появляется необходимость в оценке концентрации КЦЖК в системном кровотоке, а также в изучении кишечного микробиома и сопоставлении результатов с содержанием КЦЖК в кале.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Бакулин И.Г., Акишина Ю.А., Лямина С.В., Маев И.В.

Сбор и обработка материала — Бакулин И.Г., Акишина Ю.А.

Статистический анализ данных — Бакулин И.Г., Акишина Ю.А.

Написание текста — Бакулин И.Г., Акишина Ю.А.

Редактирование — Бакулин И.Г., Акишина Ю.А., Лямина С.В., Маев И.В.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Authors contribution:

Study design and concept — Bakulin I.G.,

Akishina Yu.A., Lyamina S.V., Maev I.V.

Data collection and processing — Bakulin I.G., Akishina Yu.A.

Statistical analysis — Bakulin I.G.,

Akishina Yu.A.

Text writing — Bakulin I.G., Akishina Yu.A.

Editing — Bakulin I.G., Akishina Yu.A. , Lyamina S.V., Maev I.V.

Литература / References:

  1. Маев И.В., Бакулин И.Г., Скалинская М.И., Сказываева Е.В. Воспалительные заболевания кишечника: трансформация представлений. Терапевтический архив. 2023;95(12):1064-1074. https://doi.org/10.26442/00403660.2023.12.202507
  2. Никитин А.В., Волынец Г.В., Скворцова Т.А., Капранова М.С. Внекишечные проявления воспалительных заболеваний кишечника. Доказательная гастроэнтерология. 2023; 12(1):93-98.  https://doi.org/10.17116/dokgastro20231201193
  3. Hedin CRH, Vavricka SR, Stagg AJ, Schoepfer A, Raine T, Puig L, Pleyer U, Navarini A, van der Meulen-de Jong AE, Maul J, Katsanos K, Kagramanova A, Greuter T, González-Lama Y, van Gaalen F, Ellul P, Burisch J, Bettenworth D, Becker MD, Bamias G, Rieder F. The Pathogenesis of Extraintestinal Manifestations: Implications for IBD Research, Diagnosis, and Therapy. Journal of Crohn’s and Colitis. 2019;13(5):541-554.  https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjy191
  4. Бакулин И.Г., Скалинская М.И., Сказываева Е.В. Северо-Западный регистр пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника: достижения и уроки. Колопроктология. 2022;21(1):37-49.  https://doi.org/10.33878/2073-7556-2022-21-1-37-49
  5. Walldorf J, Twarz M, Schober C, Michl P, Hammer T. High frequency of secondary, but not primary ocular manifestations of inflammatory bowel disease in patients treated at a tertiary care center. European Journal of Gastroenterology and Hepatology. 2018;30(12):1502-1506. https://doi.org/10.1097/MEG.0000000000001248
  6. Karmiris K, Avgerinos A, Tavernaraki A, Zeglinas C, Karatzas P, Koukouratos T, Oikonomou KA, Kostas A, Zampeli E, Papadopoulos V, Theodoropoulou A, Viazis N, Polymeros D, Michopoulos S, Bamias G, Kapsoritakis A, Karamanolis DG, Mantzaris GJ, Tzathas C, Koutroubakis IE. Prevalence and characteristics of extra-intestinal manifestations in a large cohort of Greek patients with inflammatory bowel disease. Journal of Crohn’s and Colitis. 2016;10(4):429-436.  https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjv232
  7. Gordon H, Burisch J, Ellul P, Karmiris K, Katsanos K, Allocca M, Bamias G, Barreiro-de Acosta M, Braithwaite T, Greuter T, Harwood C, Juillerat P, Lobaton T., Müller-Ladner U, Noor N, Pellino G, Savarino E, Schramm C, Soriano A, Michael Stein J, Uzzan M, van Rheenen PF, Vavricka SR, Vecchi M, Zuily S, Kucharzik T. ECCO Guidelines on Extraintestinal Manifestations in Inflammatory Bowel Disease. Journal of Crohn’s and Colitis. 2024;18(1):1-37.  https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjad108
  8. Vavricka SR, Schoepfer A, Scharl M, Lakatos PL, Navarini A, Rogler G. Extraintestinal Manifestations of Inflammatory Bowel Disease. Inflammatory Bowel Diseases. 2015;21(8):1982-1992. https://doi.org/10.1097/MIB.0000000000000392
  9. Shen Y-H, Zhu H, Zhou L, Zheng Y-Q, Zhang Z, Xie Y, Liu Z-Q, Peng C-Y, Wang L, Zhao C, Zhang X-Q. In inflammatory bowel disease and extraintestinal manifestations: What role does microbiome play? Engineered Regeneration. 2023;4(4):337-348.  https://doi.org/10.1016/j.engreg.2023.04.005
  10. Whitfield C, Clarke BR. Lipopolysaccharides (Endotoxins). Encyclopedia of Microbiology. Fourth Edition. 2019:791-802.  https://doi.org/10.1016/B978-0-12-801238-3.07799-0
  11. Scher JU, Ubeda C, Artacho A, Attur M, Isaac S, Reddy SM, Marmon S, Neimann A, Brusca S, Patel T, Manasson J, Pamer EG, Littman DR, Abramson SB. Decreased bacterial diversity characterizes the altered gut microbiota in patients with psoriatic arthritis, resembling dysbiosis in inflammatory bowel disease. Arthritis and Rheumatology. 2015;67(1):128-139.  https://doi.org/10.1002/art.38892
  12. Crost EH, Tailford LE, Monestier M, Swarbreck D, Henrissat B, Crossman LC, Juge N. The mucin-degradation strategy of Ruminococcus gnavus: The importance of intramolecular trans-sialidases. Gut Microbes. 2016;7(4):302-312.  https://doi.org/10.1080/19490976.2016.1186334
  13. Swann JR, Want EJ, Geier FM, Spagou K, Wilson ID, Sidaway JE, Nicholson JK, Holmes E. Systemic gut microbial modulation of bile acid metabolism in host tissue compartments. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2011;108(Suppl 1):4523-4530. https://doi.org/10.1073/pnas.1006734107
  14. Wang J, Zhu N, Su X, Gao Y, Yang R. Gut-Microbiota-Derived Metabolites Maintain Gut and Systemic Immune Homeostasis. Cells. 2023;12(5):793.  https://doi.org/10.3390/cells12050793
  15. Gallagher K, Catesson A, Griffin JL, Holmes E, Williams HRT. Metabolomic Analysis in Inflammatory Bowel Disease: A Systematic Review. Journal of Crohn’s and Colitis. 2021;15(5):813-826.  https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjaa227
  16. Jagt JZ, Verburgt CM, de Vries R, de Boer NKH, Benninga MA, de Jonge WJ, van Limbergen JE, de Meij TGJ. Faecal Metabolomics in Paediatric Inflammatory Bowel Disease: A Systematic Review. Journal of Crohn’s and Colitis. 2022;16(11):1777-1790. https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjac079
  17. Wang C, Gu Y, Chu Q, Wang X, Ding Y, Qin X, Liu T, Wang S, Liu X, Wang B, Cao H. Gut microbiota and metabolites as predictors of biologics response in inflammatory bowel disease: A comprehensive systematic review. Microbiological Research. 2024; 282:127660. https://doi.org/10.1016/j.micres.2024.127660
  18. Zhuang X, Li T, Li M, Huang S, Qiu Y, Feng R, Zhang S, Chen M, Xiong L, Zeng Z. Systematic Review and Meta-analysis: Short-Chain Fatty Acid Characterization in Patients With Inflammatory Bowel Disease. Inflammatory Bowel Diseases. 2019;25(11): 1751-1763. https://doi.org/10.1093/ibd/izz188
  19. Wang S, van Schooten FJ, Jin H, Jonkers D, Godschalk R. The Involvement of Intestinal Tryptophan Metabolism in Inflammatory Bowel Disease Identified by a Meta-Analysis of the Transcriptome and a Systematic Review of the Metabolome. Nutrients. 2023;15(13):2886. https://doi.org/10.3390/nu15132886
  20. Вахитов Т.Я., Кононова С.В., Демьянова Е.В., Моругина А.С., Утсаль В.А., Скалинская М.И., Бакулин И.Г., Хавкин А.И., Ситкин С.И. Метаболомный профиль сыворотки крови у пациентов с язвенным колитом: патофизиологическая роль, диагностическое и тера певтическое значение. Вопросы детской диетологии. 2023;21(5):5-15.  https://doi.org/10.20953/1727-5784-2023-5-5-15
  21. Wang J, Sun Q, Gao Y, Xiang H, Zhang C, Ding P, Wu T, Ji G. Metabolomics window into the diagnosis and treatment of inflammatory bowel disease in recent 5 years. International Immunopharmacology. 2022;113(Pt B):109472. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2022.109472
  22. Silva YP, Bernardi A, Frozza RL. The Role of Short-Chain Fatty Acids from Gut Microbiota in Gut-Brain Communication. Frontiers in Endocrinology. 2020;11:25.  https://doi.org/10.3389/fendo.2020.00025
  23. Fernandes J, Su W, Rahat-Rozenbloom S, Wolever TM, Comelli EM. Adiposity, gut microbiota and faecal short chain fatty acids are linked in adult humans. Nutrition and Diabetes. 2014;4(6):e121. https://doi.org/10.1038/nutd.2014.23
  24. Facchin S, Bertin L, Bonazzi E, Lorenzon G, De Barba C, Barberio B, Zingone F, Maniero D, Scarpa M, Ruffolo C, Angriman I, Savarino EV. Short-Chain Fatty Acids and Human Health: from Metabolic Pathways to Current Therapeutic Implications. Life. 2024;14(5):559.  https://doi.org/10.3390/life14050559
  25. National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 175, Acetate. PubChem. 2025. Accessed May 18, 2025. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Acetate
  26. National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 104745, Propionate ion. PubChem. 2025. Accessed May 18, 2025. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Propionate-ion
  27. National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 5222465, Sodium Butyrate. PubChem. 2025. Accessed May 18, 2025. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Sodium-Butyrate
  28. National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 7991, Valeric acid. PubChem. 2025. Accessed May 18, 2025. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Valeric-acid
  29. National Center for Biotechnology Information. PubChem Compound Summary for CID 4398339, Hexanoate. PubChem. 2025. Accessed May 18, 2025. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Hexanoate
  30. International Union of Pure and Applied Chemistry. Compendium of Chemical Terminology (Gold Book). Accessed May 18, 2025. https://goldbook.iupac.org/terms
  31. Cummings JH, Pomare EW, Branch WJ, Naylor CP, Macfarlane GT. Short chain fatty acids in human large intestine, portal, hepatic and venous blood. Gut. 1987;28(10):1221-1227. https://doi.org/10.1136/gut.28.10.1221
  32. Rechkemmer G, von Engelhardt W. Concentration- and pH-dependence of short-chain fatty acid absorption in the proximal and distal colon of guinea pig (Cavia porcellus). Comparative Biochemistry and Physiology. Part A: Comparative Physiology. 1988;91(4):659-663.  https://doi.org/10.1016/0300-9629(88)90944-9
  33. Ritzhaupt A, Wood IS, Ellis A, Hosie KB, Shirazi-Beechey SP. Identification and characterization of a monocarboxylate transporter (MCT1) in pig and human colon: its potential to transport l -lactate as well as butyrate. The Journal of Physiology. 1998; 513(Pt 3):719-732.  https://doi.org/10.1111/j.1469-7793.1998.719ba.x
  34. Miyauchi S, Gopal E, Fei YJ, Ganapathy V. Functional identification of SLC5A8, a tumor suppressor down-regulated in colon cancer, as a Na+-coupled transporter for short-chain fatty acids. The Journal of Biological Chemistry. 2004;279:13293-13296. https://doi.org/10.1074/jbc.C400059200
  35. Ganapathy V, Thangaraju M, Prasad PD, Martin PM, Singh N. Transporters and receptors for short-chain fatty acids as the molecular link between colonic bacteria and the host. Current Opinion in Pharmacology. 2013;13(6):869-874.  https://doi.org/10.1016/j.coph.2013.08.006
  36. Sivaprakasam S, Bhutia YD, Yang S, Ganapathy V. Short-Chain Fatty Acid Transporters: Role in Colonic Homeostasis. Comprehensive Physiology. 2017;8(1):299-314.  https://doi.org/10.1002/cphy.c170014
  37. Binder HJ, Mehta P. Short-chain fatty acids stimulate active sodium and chloride absorption in vitro in the rat distal colon. Gastroenterology. 1989;96(4):989-996.  https://doi.org/10.1016/0016-5085(89)91614-4
  38. Murase M, Kimura Y, Nagata Y. Determination of portal short-chain fatty acids in rats fed various dietary fibers by capillary gas chromatography. Journal of Chromatography. B: Biomedical Applications. 1995;664(2):415-420.  https://doi.org/10.1016/0378-4347(94)00491-m
  39. Bloemen JG, Venema K, van de Poll MC, Olde Damink SW, Buurman WA, Dejong CH. Short chain fatty acids exchange across the gut and liver in humans measured at surgery. Clinical Nutrition. 2009;28(6):657-661.  https://doi.org/10.1016/j.clnu.2009.05.011
  40. Canfora EE, Jocken JW, Blaak EE. Short-chain fatty acids in control of body weight and insulin sensitivity. Nature Reviews Endocrinology. 2015;11(10):577-591.  https://doi.org/10.1038/nrendo.2015.128
  41. Kim M, Qie Y, Park J, Kim CH. Gut microbial metabolites fuel host antibody responses. Cell Host and Microbe. 2016;20(2):202-214.  https://doi.org/10.1016/j.chom.2016.07.001
  42. Wang CC, Wu H, Lin FH, Gong R, Xie F, Peng Y, Feng J, Hu CH. Sodium butyrate enhances intestinal integrity, inhibits mast cell activation, inflammatory mediator production and JNK signaling pathway in weaned pigs. Innate Immunity. 2018;24:40-46.  https://doi.org/10.1177/1753425917741970
  43. Kim CH. Microbiota or short-chain fatty acids: which regulates diabetes? Cellular and Molecular Immunology. 2018;15:88-91.  https://doi.org/10.1038/cmi.2017.57
  44. D’Souza WN, Douangpanya J, Mu S, Jaeckel P, Zhang M, Maxwell JR, Rottman JB, Labitzke K, Willee A, Beckmann H, Wang Y, Li Y, Schwandner R, Johnston JA, Towne JE, Hsu H. Differing roles for short chain fatty acids and GPR43 agonism in the regulation of intestinal barrier function and immune responses. PLoS One. 2017;12(7):e0180190. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0180190
  45. Thangaraju M, Cresci GA, Liu K, Ananth S, Gnanaprakasam JP, Browning DD, Mellinger JD, Smith SB, Digby GJ, Lambert NA, Prasad PD, Ganapathy V. GPR109A is a G-protein-coupled receptor for the bacterial fermentation product butyrate and functions as a tumor suppressor in colon. Cancer Research. 2009;69(7): 2826-2832. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-08-4466
  46. Li M, van Esch B, Wagenaar GTM, Garssen J, Folkerts G, Henricks PAJ. Pro- and anti-inflammatory effects of short chain fatty acids on immune and endothelial cells. European Journal of Pharmacology. 2018;831:52-59.  https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2018.05.003
  47. Rooks MG, Garrett WS. Gut microbiota, metabolites and host immunity. Nature Reviews Immunology. 2016;16:341-352.  https://doi.org/10.1038/nri.2016.42
  48. Wen ZS, Lu JJ, Zou XT. Effects of sodium butyrate on the intestinal morphology and dna-binding activity of intestinal nuclear factor-kappa b in weanling pigs. Journal of Animal and Veterinary Advances. 2012;11:814-821.  https://doi.org/10.3923/javaa.2012.814.821
  49. Hayashi A, Sato T, Kamada N, Mikami Y, Matsuoka K, Hisamatsu T. A single strain of Clostridium butyricum induces intestinal IL-10-producing macrophages to suppress acute experimental colitis in mice. Cell Host and Microbe. 2013;13:711-722.  https://doi.org/10.1016/j.chom.2013.05.013
  50. Wu JL, Zou JY, Hu ED, Chen DZ, Chen L, Lu FB. Sodium butyrate ameliorates S100/FCA-induced autoimmune hepatitis through regulation of intestinal tight junction and toll-like receptor 4 signaling pathway. Immunology Letters. 2017;190:169-176.  https://doi.org/10.1016/j.imlet.2017.08.005
  51. Kelly CJ, Zheng L, Campbell EL, Saeedi B, Scholz CC, Bayless AJ, Wilson KE, Glover LE, Kominsky DJ, Magnuson A, Weir TL, Ehrentraut SF, Pickel C, Kuhn KA, Lanis JM, Nguyen V, Taylor CT, Colgan SP. Crosstalk between Microbiota-Derived Short-Chain Fatty Acids and Intestinal Epithelial HIF Augments Tissue Barrier Function. Cell Host and Microbe. 2015;17(5):662-671.  https://doi.org/10.1016/j.chom.2015.03.005
  52. Zheng L, Kelly CJ, Battista KD, Schaefer R, Lanis JM, Alexeev EE, Onyiah JC, Kominsky DJ, Colgan SP. Microbial-derived butyrate promotes epithelial barrier function through IL-10 receptor-dependent repression of claudin-2. The Journal of Immunology. 2017;199(8):2976-2984. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1700105
  53. Wang HB, Wang PY, Wang X, Wan YL, Liu YC. Butyrate enhances intestinal epithelial barrier function via up-regulation of tight junction protein claudin-1 transcription. Digestive Diseases and Sciences. 2012;57:3126-3135. https://doi.org/10.1007/s10620-012-2259-4
  54. Zhao Y, Chen F, Wu W, Sun M, Bilotta AJ, Yao S, Kominsky DJ, Colgan SP. GPR43 mediates microbiota metabolite SCFA regulation of antimicrobial peptide expression in intestinal epithelial cells via activation of mTOR and STAT3. Mucosal Immunology. 2018;11(3):752-762.  https://doi.org/10.1038/mi.2017.118
  55. Shin Y, Han S, Kwon J, Ju S, Choi TG, Kang I, Kim SS. Roles of Short-Chain Fatty Acids in Inflammatory Bowel Disease. Nutrients. 2023;15(20):4466. https://doi.org/10.3390/nu15204466
  56. Marchesi JR, Holmes E, Khan F, Kochhar S, Scanlan P, Shanahan F, Wilson ID, Wang Y. Rapid and noninvasive metabonomic characterization of inflammatory bowel disease. Journal of Proteome Research. 2007;6(2):546-551.  https://doi.org/10.1021/pr060470d
  57. Parada Venegas D, De la Fuente MK, Landskron G, González M., Quera R, Dijkstra G, Harmsen HJM, Faber KN, Hermoso MA. Short Chain Fatty Acids (SCFAs)-Mediated Gut Epithelial and Immune Regulation and Its Relevance for Inflammatory Bowel Diseases. Frontiers in Immunology. 2019;10:277.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00277
  58. Camilleri M. Leaky gut: mechanisms, measurement and clinical implications in humans. Gut. 2019;68:1516-1526. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2019-318427
  59. Fakhoury HMA, Kvietys PR, AlKattan W, Anouti FA, Elahi MA, Karras SN, Grant WB. Vitamin D and intestinal homeostasis: barrier, microbiota, and immune modulation. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 2020;200:105663. https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2020.105663
  60. Zeissig S, Bürgel N, Günzel D, Richter J, Mankertz J, Wahnschaffe U, Kroesen AJ, Zeitz M, Fromm M, Schulzke JD. Changes in expression and distribution of claudin 2, 5 and 8 lead to discontinuous tight junctions and barrier dysfunction in active Crohn’s disease. Gut. 2007;56(1):61-72.  https://doi.org/10.1136/gut.2006.094375
  61. Dignass AU, Podolsky DK. Cytokine modulation of intestinal epithelial cell restitution: central role of transforming growth factor beta. Gastroenterology. 1993;105(5):1323-1332. https://doi.org/10.1016/0016-5085(93)90136-z
  62. Heller F, Florian P, Bojarski C, Richter J, Christ M, Hillenbrand B, Mankertz J, Gitter AH, Bürgel N, Fromm M, Zeitz M, Fuss I, Strober W, Schulzke JD. Interleukin-13 is the key effector Th2 cytokine in ulcerative colitis that affects epithelial tight junctions, apoptosis, and cell restitution. Gastroenterology. 2005;129(2):550-564.  https://doi.org/10.1016/j.gastro.2005.05.002
  63. Gitter AH, Wullstein F, Fromm M, Schulzke JD. Epithelial barrier defects in ulcerative colitis: characterization and quantification by electrophysiological imaging. Gastroenterology. 2001;121(6): 1320-1328. https://doi.org/10.1053/gast.2001.29694
  64. Nakamura YK, Janowitz C, Metea C, Asquith M, Karstens L, Rosenbaum JT, Lin P. Short chain fatty acids ameliorate immune-mediated uveitis partially by altering migration of lymphocytes from the intestine. Scientific Reports. 2017;7:11745. https://doi.org/10.1038/s41598-017-12163-3

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.