ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Светооптические и ультраструктурные характеристики фокальных корковых дисплазий человека

Светооптические и ультраструктурные характеристики фокальных корковых дисплазий человека

Авторы:
Ситников А.Р.,
Юрий Алексеевич Григорян,
Попова О.П.,
Вербицкая Г.О.,
Мишнякова Л.П.

Журнал: Архив патологии. 2012;74(5):27-31.

DOI:

Прочитано: 2718 раз

Скачать PDF

Резюме

Фокальные корковые дисплазии (ФКД) - одна из наиболее частых причин развития фармакорезистентной эпилепсии. Представлен анализ морфологических изменений тканей фокальных корковых дисплазий, полученных в результате хирургических вмешательств у пациентов с эпилепсией. Исследовано 11 препаратов коры головного мозга с участками ФКД. Выявлен целый ряд светооптических и ультрастуктурных аномалий, затрагивающих различные отделы корковой организации, и значительная гетерогенность этих изменений. При оценке возможных механизмов эпилептогенности клеток дисплазий особое место уделено вопросу о морфологических корреляциях процессов возбуждения и торможения. Полученные данные свидетельствуют о преобладании процессов возбуждения в тканях ФКД, наряду с угнетением процессов торможения.

Ключевые слова

  • фокальная корковая дисплазия
  • эпилепсия
  • ультраструктура коры головного мозга
  • баллонные клетки

Дата публикации: 04.05.2020

Фокальные корковые дисплазии (ФКД) представляют собой врожденные аномалии строения коры головного мозга и часто сопровождаются резистентной к медикаментозному лечению эпилепсией у детей и взрослых. ФКД, являющиеся структурными аномалиями коры головного мозга, выявляются у 12—50% пациентов с фармакорезистентными симптоматическими эпилепсиями [4, 9, 12].

При анализе эпилептогенеза у пациентов с ФКД подчеркивается морфологическое и функциональное повреждение ингибиторных механизмов. Использование ГАМК-эргических маркеров (иммуногистохимическая реакция на кальций-связывающий белок парвальбумин) продемонстрировало различные повреждения, включая снижение плотности рецепторов парвальбумина и наличие гипертрофированных парвальбумин-реактивных розеточных формаций вокруг тел гигантских нейронов [10, 16—18]. M. Avoli и соавт. [2] предположили, что ткань дисплазии генерирует синхронные потенциалы, в основном провоцируемые ГАМКA-рецепторными механизмами. Также были описаны повреждения системы возбуждения нейронов, касающиеся в основном экспрессии глутаматных рецепторов [3, 7, 11, 19].

Электронная микроскопия позволила определить ультраструктурные характеристики баллонных клеток и гигантских нейронов, являющихся основным морфологическим паттерном фокальных корковых дисплазий, а также качественно и количественно оценить синапсы нейропиля [10]. Однако до настоящего времени детальные исследования ультраструктурных морфологических особенностей клеток ФКД являются редкими, а причины эпилептогенности участков дисплазии имеют предположительный характер.

Материалы и методы

Проведено светооптическое и электронно-микроскопическое исследование 11 препаратов коры головного мозга с участками ФКД, которые были резецированы у пациентов с симптоматическими фармакорезистентными эпилепсиями после проведения соответствующего нейрофизиологического исследования и нейровизуализации, подтвердивших диагноз.

Гистологическое исследование препарата резецированного участка коры после его фиксации нейтральным формалином выполняли по стандартной методике с окраской гематоксилином и эозином.

Для электронно-микроскопического исследования кусочки ткани резецированного участка коры размером 4—5 мм3 предварительно фиксировали в жидкости Карновского, а затем в 1% растворе четырехокиси осмия на 0,2 М какодилатном буфере. Обезвоживание спиртом и ацетоном, а также последующую заливку в аралдит проводили по стандартной методике. Ультратонкие срезы изучали под трансмиссионным электронным микроскопом Phillips (Нидерланды).

Результаты

При световой микроскопии архитектурные аномалии коры были выявлены у 2 пациентов. У 5 пациентов была обнаружена цитоархитектурная аномалия и у 4 — тейлоровский тип ФКД (ФКД с баллонными клетками).

Архитектурные аномалии были представлены в виде дезорганизации послойного строения коры с истончением коркового слоя II и редукцией количества нейронов в нем (рис. 1).

Рисунок 1. Архитектурная аномалия коры головного мозга (тип Ia). Дезорганизация послойного строения коры с истончением коркового слоя II и редукцией количества нейронов в нем. Граница между корковыми слоями III и IV нечеткая, а гранулярные клетки слоя IV распределены неравномерно. Окраска гематоксилином и эозином. ×100.
Граница между корковыми слоями III и IV была нечеткой вплоть до ее исчезновения, а гранулярные клетки слоя IV были распределены неравномерно или сгруппированы в отдельные кластеры. В обоих случаях архитектурные аномалии локализовались в лобных долях мозга. При проведении МРТ эти аномалии имели наименее четкую дифференциацию от окружающих тканей и большую протяженность по сравнению с другими типами ФКД.

Цитоархитектурные аномалии представляли собой нарушения ламинарного и столбчатого строения коры, в которой встречались гигантские дизморфичные нейроны, равномерно распространенные в верхней половине кортикальной пластинки и не сгруппированные в кластеры (рис. 2).

Рисунок 2. Цитоархитектурная аномалия коры головного мозга (тип Ib). Нарушения ламинарного и столбчатого строения коры. Гигантские дизморфичные нейроны равномерно распространены в верхней половине кортикальной пластинки и не сгруппированы в кластеры. Окраска гематоксилином и эозином. ×100.
Эти клетки имели пирамидальную форму, однако были большего размера, чем обычные пирамидальные клетки V слоя коры головного мозга. У 1 пациента цитоархитектурная аномалия локализовалась в парагиппокамповой извилине недоминантного полушария и у 2 — в средней лобной извилине недоминантного полушария. На МРТ цитоархитектурные аномалии достаточно хорошо визуализировались в режиме FLAIR и на T2-взвешенных изображениях.

ФКД тейлоровского типа (ФКДТТ), обнаруженные у 4 пациентов, характеризовались наиболее тяжелыми проявлениями дисплазии (рис. 3).

Рисунок 3. Гистологический препарат коры головного мозга в зоне ФКД тейлоровского типа (тип IIb). Незрелые нейроны и баллонные клетки. Окраска гематоксилином и эозином. ×400.
Помимо ламинарной дезорганизации строения коры отмечалась триада морфологических признаков в виде наличия гигантских дизморфичных нейронов, эктопических незрелых нейронов и баллонных клеток. Микроскопическая картина ФКДТТ разительно отличалась от представленных выше двух типов аномалий развития коры головного мозга. Молекулярный слой коры был утолщен, но беден по клеточному составу. Гигантские и дизморфичные нейроны, среди которых встречались полинуклеарные клетки, были представлены во всех слоях коры.

При электронной микроскопии препаратов, полученных интраоперационно от 4 пациентов с верифицированными при световой микроскопии фокальными корковыми дисплазиями, были выявлены значительные ультраструктурные изменения клеток в участках дисплазии.

При исследовании баллонных клеток в цитоплазме их тел отмечены ультраструктурные признаки недостаточной нейрональной функциональности. Наблюдалось резкое расширение цистерн шероховатого эндоплазматического ретикулума. В промежутках между цистернами выявлены много свободных рибосом, не собранных в полисомальные розетки, и частичная конденсация митохондриального матрикса в отдельных митохондриях. Обращали на себя внимание необычная для нейрона конденсация хроматина в ядре и появление пристеночного гетерохроматина (рис. 4).

Рисунок 4. Резко расширенные цистерны шероховатого эндоплазматического ретикулума в цитоплазме тела нейрона. В промежутках между цистернами много свободных рибосом, не собранных в полисомальные розетки. Частичная конденсация митохондриального матрикса. Необычная для нейрона конденсация хроматина в ядре и появление пристеночного гетерохроматина. Метод электронной микроскопии. ×11 500.

В наружном пирамидном слое обнаружены нейроны с неправильной формой ядра, разбухшими митохондриями и резко расширенными цистернами эндоплазматического ретикулума, что светооптически соответствовало вакуолизации цитоплазмы (рис. 5).

Рисунок 5. Обзорный снимок маленького нейрона из наружного пирамидного слоя, следующего за наружным зернистым (малые пирамиды). Большое ядрышко и эухроматизация ядра, характерные для нейрона. Неправильная форма ядра и вакуолизация цитоплазмы за счет резко расширенных цистерн эндоплазматического ретикулума и разбухания митохондрий. Метод электронной микроскопии. ×4200.

При увеличении свыше 15 000 в баллонных клетках отчетливо видны глыбки гетерохроматина вдоль кариолеммы (начальные признаки конденсации). В цитоплазме выявлены резко расширенные цистерны эндоплазматического ретикулума и разбухание митохондрий с уменьшением размера и количества крист, а также участки просветленной цитоплазмы, лишенной органелл, — признаки, формирующие светооптическую картину «светлых клеток» (рис. 6).

Рисунок 6. Фрагмент нейрона. Появление глыбок гетерохроматина вдоль кариолеммы (начальные признаки конденсации). В цитоплазме расширенные цистерны эндоплазматического ретикулума и разбухание митохондрий с уменьшением размера и количества крист, вверху электронограммы левее от центра — участок просветленной цитоплазмы, лишенной органелл (светооптическая картина «светлых клеток»). Отмечается небольшое количество полисом. Аппарат Гольджи обычной структуры. Метод электронной микроскопии. ×16 500.

Вторым типом обнаруженных изменений на ультраструктурном уровне были нейроны с признаками повышенного и нарушенного белкового синтеза.

В таких нейронах обращали на себя внимание гигантский размер клетки и эксцентрично расположенное ядро. Ядерно-цитоплазматическое соотношение было изменено резко в пользу цитоплазмы, а размер подобных нейронов достигал 50 мкм. Цитоплазма нейронов была насыщена множеством органелл: мелких митохондрий и лизосом, мелких фрагментов эндоплазматического ретикулума, по всей цитоплазме разбросаны диктиосомы очень развитого и сильно фрагментированного аппарата Гольджи (рис. 7).

Рисунок 7. Обзорная электронограмма нейрона. Гигантский размер клетки и эксцентрично расположенное ядро. Ядерно-цитоплазматическое соотношение резко сдвинуто в пользу цитоплазмы. Размер нейрона достигает 50 мкм. На срез толщиной 20 нм с учетом гигантизма клетки попал лишь сектор ядра, лежащий вне ядрышка, поэтому ядрышко отсутствует на конкретном срезе. Цитоплазма насыщена множеством органелл: мелкие митохондрии, мелкие лизосомы, мелкие фрагменты ретикулума, по всей цитоплазме разбросаны диктиосомы очень развитого и сильно фрагментированного аппарата Гольджи. Метод электронной микроскопии. ×2250.

При увеличении свыше 25 000 в нейронах выявлены изменения митохондрий в виде бульбозных расширений с частичной потерей крист. Цитоплазма изобиловала элементами цитоскелета, представленными нейрофиламентами, срезанными в различных направлениях. По морфологии такие нейроны очень сильно напоминали ранние постнатальные светлые олигодендроциты (незрелые). Интересно, что нейротрубочки в цитоплазме таких нейронов практически отсутствовали.

Белковый состав микрофиламентов в данном случае неизвестен, однако мы предполагаем, что это и есть продукт патологического синтеза (рис. 8).

Рисунок 8. Фрагмент цитоплазмы тела нейрона. Изменения митохондрий в виде бульбозных расширений с частичной потерей крист. Цитоплазма насыщена элементами цитоскелета (нейрофиламенты), срезанными в различных направлениях. Нейротрубочки практически отсутствуют. Метод электронной микроскопии. ×26 500.

Ультраструктурные изменения обнаружены не только в ядрах и цитоплазме нейронов, но и при изучении нейропиля. Нами выявлено нарушение миелинизации нервных волокон, которое заключалось в расщеплении слоев миелина с образованием «петель» и «пузырей». Аксолемма местами была сильно отслоена от внутреннего слоя миелиновой обертки. Характерно, что на этом фоне олигодендроциты (по крайней мере, обычного вида) в исследованном слое коры не выявлены. Также обращало на себя внимание резкое снижение количества синапсов.

Обсуждение

Обнаруженные нами ультраструктурные изменения в клетках корковых дисплазий и в нейропиле свидетельствуют о нескольких возможных путях эпилептогенности данных аномалий.

Несколько нейрофизиологических исследований продемонстрировали, что иктальные разряды могут быть генерированы в различных слоях ткани корковых дисплазий, предполагая нарушение баланса между механизмами возбуждения и торможения в этих клетках [2, 13—15].

Об этом же свидетельствуют находки при электронной микроскопии, касающиеся плотности возбуждающих и ингибиторных синапсов в нейропиле, где большинство синапсов локализуется [8]. Основные повреждения заключаются в нарушении количества и плотности симметричных и асимметричных синапсов, которые не коррелируют со степенью потери нейронов в некоторых участках корковых дисплазий.

Следует отметить, что указанные изменения негомогенны в различных участках ткани дисплазии и неодинаковы у разных пациентов; это позволяет предположить, что они затрагивают различные отделы корковой организации.

В дополнение следует отметить, что некоторые из этих изменений могут обусловливать эпилептогенность ФКД, а другие не влиять на механизмы развития патологической эпилептогенной активности.

Так, в некоторых участках встречаются зоны интенсивного глиоза, содержащие незначительное количество нейронов с практически отсутствующими синапсами, которые, вероятнее всего, не могут играть значительной роли в эпилептогенезе. Напротив, в других зонах дисплазии можно обнаружить большое количество аномальных клеток со значительной плотностью синапсов в нейропиле, что свидетельствует о вероятной эпилептогенности этих участков коры. Особенно важным является повышение плотности асимметричных синапсов, являющихся возбуждающими структурами, и снижение плотности симметричных (тормозных) синапсов [1].

На нарушение функции ГАМКA-рецепторов опосредованного торможения указывают также снижение ингибиторного постсинаптического потенциала и компенсаторное снижение обратного захвата ГАМК, что проявляется значительным повышением постоянной времени затухания вызванных и спонтанных ингибиторных постсинаптических потенциалов и снижением эффекта ингибитора транспорта ГАМК, гидрохлорида 1-[2([(дифенилметилен)имино]окси)этилl]-1,2,5,6-тетрагидро-3-перидинкарбоксиловой кислоты на кинетику этих потенциалов. Иммуногистохимическое исследование обнаруживает значительное рассеивание ГАМК-эргических вставочных нейронов в ткани дисплазии и значительное снижение плотности белков-транспортеров ГАМК. Вместе эти механизмы, снижающие синаптическую ингибирующую роль ГАМК, также могут играть роль в эпилептогенезе корковых дисплазий [5].

Обнаруженные нами в тканях ФКД клетки с признаками повышенного синтеза аномального белка, возможно, являются структурами, которые в результате нарушения ингибиторных механизмов становятся субстратом для развития эпилепсии. Учитывая, что баллонные клетки не образуют видимых синапсов, что было продемонстрировано некоторыми исследователями [6], и на ультраструктурном уровне имеют признаки недостаточной функциональности в виде большого числа свободных рибосом, появления пристеночного гетерохроматина, частичной конденсации митохондриального матрикса, резкого расширения цистерн эндоплазматического ретикулума, вероятнее всего, эти клетки не принимают непосредственного участия в механизме развития эпилепсии.

Выявленные структурные изменения миелиновых оболочек также могут свидетельствовать о гипервозбуждении нейронов в зоне дисплазии по аналогии с изменениями аксонов, выявляемых при микроскопии препаратов, полученных от пациентов с «гиперфункциональными» синдромами черепных нервов, таких как тригеминальная невралгия или гемифациальный спазм.

Заключение

Полученные нами данные свидетельствуют о преобладании процессов возбуждения в тканях ФКД наряду с угнетением процессов торможения, морфологически проявляющихся в виде появления нейронов с признаками повышенного и аномального синтеза белка и типичных нарушений миелинизации аксонов. Баллонные клетки, вероятнее всего, не принимают непосредственного участия в эпилептогенезе и не являются клетками глиальной природы, исходя из их морфологических характеристик.

slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Механизмы и морфопатофизиологические уровни эпилептогенеза.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):5-12

Итоги научно-практической конференции с международным участием «Неврология XXI века: актуальные вопросы, достижения и инновации». 26—27 марта 2026 года, Санкт-Петербург.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(7):133-137

Родоразрешение женщин с эпилепсией: аспекты анестезиологии.Российский вестник акушера-гинеколога. 2026;26(3):23-30

Синдром обструктивного апноэ сна при эпилепсии: роль коморбидности и возможности единого фармакологического подхода к лечению.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2026;126(5-2):29-33

Предиктивная эпилептология: формирование новой парадигмы управления эпилептическими приступами.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(5):14-20

Особенности поражения головного мозга у больных туберозным склерозом из Республики Башкортостан.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(3):81-86

Комплексная лабораторная оценка нарушений энергетического обмена при эпилепсии у детей: диагностическая значимость соотношений лактат/пируват и 3-гидроксибутират/ацетоацетат.Лабораторная служба. 2026;15(1):29-33

Исследование когнитивных эффектов перампанела с помощью теста EpiTrack Детский у детей школьного возраста с эпилепсией.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2025;125(12):178-187

Височные приступы иммунной и структурной этиологии.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2025;125(11):117-122

Эпилептические приступы при болезни Альцгеймера.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2025;125(11):36-43

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026