Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Вход
RU
+7 (495) 482-4118
+7 (495) 482-0604
+8 800 250-18-12
  • (бесплатный номер по вопросам подписки)
    пн-пт с 10 до 18
  • Издательство «Медиа Сфера»
    а/я 54, Москва, Россия, 127238
  • info@mediasphera.ru

  • © 1998-2025
+7 (495) 482-43-29
RU
Все журналы
Журнал
Год
Год
Результаты поиска: 0

Гурская В.И.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Ма И.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Паншин Д.Д.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Кондратов К.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Иванов В.П.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Головкин А.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Костарева А.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Саввина И.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Влияние севофлурана и пропофола на уровни ядерной ДНК и митохондриальной ДНК в плазме крови у детей с краниосиностозом

Авторы:

Гурская В.И., Ма И., Паншин Д.Д., Кондратов К.А., Иванов В.П., Головкин А.С., Костарева А.А., Саввина И.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Анестезиология и реаниматология. 2024;(6): 55‑62

DOI: 10.17116/anaesthesiology202406155

Прочитано: 668 раз

Купить за 300₽
Связаться с автором
Оглавление

THE EFFECT OF SEVOFLURANE AND PROPOFOL ON SERUM NUCLEAR AND MITOCHONDRIAL DNA IN PEDIATRIC PATIENTS WITH CRANIOSYNOSTOSIS
THE EFFECT OF SEVOFLURANE AND PROPOFOL ON SERUM NUCLEAR AND MITOCHONDRIAL DNA IN PEDIATRIC PATIENTS WITH CRANIOSYNOSTOSIS

Как цитировать:

Гурская В.И., Ма И., Паншин Д.Д., и др. Влияние севофлурана и пропофола на уровни ядерной ДНК и митохондриальной ДНК в плазме крови у детей с краниосиностозом. Анестезиология и реаниматология. 2024;(6):55‑62.
Gurskaia VI, Ma Y, Panshin DD, et al. The effect of sevoflurane and propofol on serum nuclear and mitochondrial DNA in pediatric patients with craniosynostosis. Russian Journal of Anesthesiology and Reanimatology. 2024;(6):55‑62. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/anaesthesiology202406155

Подписка 2025-2 (АиР)
МСФ на ЯМ
Использование инфографики авторами научных работ
Mediasphera_Net
Закрыть метаданные
Рекомендуем статьи по данной теме:
Пос­тко­вид­ный син­дром у де­тей: осо­бен­нос­ти па­то­фи­зи­оло­гии, ди­аг­нос­ти­ки и те­ра­пии. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2024;(7):94-100
ALK-по­зи­тив­ная анап­лас­ти­чес­кая круп­нок­ле­точ­ная лим­фо­ма с по­ра­же­ни­ем при­да­точ­ных па­зух но­са: два кли­ни­чес­ких наб­лю­де­ния и об­зор ли­те­ра­ту­ры. Ар­хив па­то­ло­гии. 2024;(4):42-47
Трав­ма­ти­чес­кий раз­рыв жел­чно­го пу­зы­ря при со­че­тан­ной трав­ме у ре­бен­ка 9 лет. Хи­рур­гия. Жур­нал им. Н.И. Пи­ро­го­ва. 2024;(8):96-100
Со­че­тан­ная трав­ма внеб­рю­шин­ной час­ти пря­мой киш­ки и мо­че­во­го пу­зы­ря у ре­бен­ка. Хи­рур­гия. Жур­нал им. Н.И. Пи­ро­го­ва. 2024;(8):101-107
Че­реп­но-моз­го­вая трав­ма в струк­ту­ре син­дро­ма жес­то­ко­го об­ра­ще­ния с деть­ми у мла­ден­цев и де­тей ран­не­го воз­рас­та. Син­дром тряс­ки мла­ден­ца. Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(4):5-12
Прос­пек­тив­ная оцен­ка вы­ра­жен­нос­ти хи­рур­ги­чес­ко­го стресс-от­ве­та у па­ци­ен­тов с кра­ни­оси­нос­то­за­ми: со­пос­тав­ле­ние кли­ни­чес­ких и ла­бо­ра­тор­ных дан­ных. Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(4):62-70
Сте­ноз зри­тель­ных ка­на­лов при син­дро­ме Кру­зо­на: кли­ни­чес­кий слу­чай и об­зор ли­те­ра­ту­ры. Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(4):100-106
При­ме­не­ние ми­не­рал три­ок­сид аг­ре­га­та для ле­че­ния де­тей с ос­лож­не­ни­ями трав­мы пос­то­ян­ных зу­бов. Сто­ма­то­ло­гия. 2024;(4):59-66
Воз­мож­нос­ти по­вы­ше­ния эф­фек­тив­нос­ти те­ра­пии рес­пи­ра­тор­ных ин­фек­ций вер­хних ды­ха­тель­ных пу­тей у де­тей раз­лич­ных воз­рас­тных групп. Вес­тник ото­ри­но­ла­рин­го­ло­гии. 2024;(4):42-46
Ро­бо­ти­чес­кое тран­сду­оде­наль­ное ис­се­че­ние па­ра­фа­те­ри­аль­но­го кис­тоз­но­го уд­во­ения две­над­ца­ти­перстной киш­ки у 11-лет­ней де­воч­ки. Эн­дос­ко­пи­чес­кая хи­рур­гия. 2024;(4):42-45

Влияние на модуляцию системной воспалительной реакции, запуск механизмов нейронального повреждения и нейроапоптоза — важные аспекты действия общих анестетиков, связанные с нейротоксическим влиянием на развивающийся мозг и появлением нейрокогнитивных расстройств в дальнейшем.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Определить содержание циркулирующих нуклеиновых кислот (ядерной и митохондриальной ДНК) в периферической венозной крови детей с краниосиностозом при проведении общей анестезии с применением севофлурана и пропофола в процессе выполнения магнитно-резонансной томографии головного мозга до нейрохирургического вмешательства.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

В проспективное когортное контролируемое исследование включены 46 детей с краниосиностозом (группа с применением севофлурана, n=23; группа с применением пропофола, n=23), 20 здоровых добровольцев (10 детей и 10 взрослых) в качестве контрольной группы. Содержание в крови ядерной ДНК (яДНК) и митохондриальной ДНК (мтДНК) оценивали до начала общей анестезии и сразу после окончания процедуры, полученные данные сравнивали с показателями яДНК и мтДНК у здоровых добровольцев.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Выявлено превышение значений яДНК (p<0,001) и мтДНК (p=0,013) в плазме крови у здоровых детей по сравнению со здоровыми взрослыми добровольцами. После проведения ингаляционной анестезии севофлураном у детей с краниосиностозом уровни яДНК снижаются (p=0,043), уровни мтДНК остаются неизменными. При использовании пропофола уровни яДНК и мтДНК не изменяются.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Севофлуран и пропофол оказывают либо нейтральное, либо угнетающее действие на уровни циркулирующей ядерной и митохондриальной ДНК у детей младшего возраста с краниосиностозом до нейрохирургического вмешательства.

Ключевые слова:

дети
краниосиностоз
севофлуран
пропофол
ядерная ДНК
митохондриальная ДНК
нейрональное повреждение

Авторы:

Гурская В.И.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Ма И.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Паншин Д.Д.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Кондратов К.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Иванов В.П.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Головкин А.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Костарева А.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Саввина И.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Минздрава России

Дата поступления:

03.02.2024

Дата принятия в печать:

17.07.2024

Список литературы:

  1. Mandel P, Metais P. [Nuclear Acids In Human Blood Plasma]. Comptes Rendus des Seances de la Societe de Biologie et de Ses Filiales. 1948;142(3-4): 241-243.  https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18875018
  2. Zhang R, Wang Y, Ye K, Picard M, Gu Z. Independent impacts of aging on mitochondrial DNA quantity and quality in humans. BMC Genomics. 2017;18(1):890.  https://doi.org/10.1186/s12864-017-4287-0
  3. Григорьев Е.В., Шукевич Д.Л., Плотников Г.П., Кудрявцев А.Н., Радивилко А.С. Неудачи интенсивного лечения полиорганной недостаточности: патофизиология и потребность в персонификации (обзор литературы). Вестник интенсивной терапии имени А.И. Салтанова. 2019;2:48-57.  https://doi.org/10.21320/1818-474X-2019-2-48-57
  4. Григорьев Е.В., Салахов Р.Р., Голубенко М.В., Понасенко А.В., Шукевич Д.Л., Матвеева В.Г., Радивилко А.С., Цепокина А.В., Великанова Е.А., Корнелюк Р.А., Ивкин А.А. Митохондриальная ДНК как кандидатный DAMP при критических состояниях. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(3):134-143.  https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-3-134-143
  5. West AP, Shadel GS. Mitochondrial DNA in innate immune responses and inflammatory pathology. Nature Reviews Immunology. 2017;17(6):363-375.  https://doi.org/10.1038/nri.2017.21
  6. Sundquist K, Sundquist J, Hedelius A, Memon AA. Diagnostic potential of circulating cell-free nuclear and mitochondrial DNA for several cancer types and nonmalignant diseases: A study on suspected cancer patients. Molecular Carcinogenesis. 2020;59(12):1362-1370. https://doi.org/10.1002/mc.23261
  7. Kung CT, Hsiao SY, Tsai TC, Su CM, Chang WN, Huang CR, Wang HC, Lin WC, Chang HW, Lin YJ, Cheng BC, Su BY, Tsai NW, Lu CH. Plasma nuclear and mitochondrial DNA levels as predictors of outcome in severe sepsis patients in the emergency room. Journal of Translational Medicine. 2012;10(1):130.  https://doi.org/10.1186/1479-5876-10-130
  8. Nakahira K, Kyung SY, Rogers AJ, Gazourian L, Youn S, Massaro AF, Quintana C, Osorio JC, Wang Z, Zhao Y, Lawler LA, Christie JD, Meyer NJ, Mc Causland FR, Waikar SS, Waxman AB, Chung RT, Bueno R, Rosas IO, Fredenburgh LE, Baron RM, Christiani DC, Hunninghake GM, Choi AM. Circulating Mitochondrial DNA in Patients in the ICU as a Marker of Mortality: Derivation and Validation. PLoS Medicne. 2013;10(12):1001577. https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1001577
  9. Писарев В.М., Чумаченко А.Г., Филев А.Д., Ершова Е.С., Костюк С.В., Вейко Н.Н., Григорьев Е.К., Елисина У.В., Черпаков Р.А., Тутельян А.В. Комбинация молекулярных биомаркеров ДНК в прогнозе исхода критических состояний. Общая реаниматология. 2019; 15(3):31-47.  https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-3-31-47
  10. Yue ZY, Dong H, Wang YF, Liu Y, Song CY, Yang WC, Qian H, Lu SJ, Chang FF. Propofol prevents neuronal mtDNA deletion and cerebral damage due to ischemia/reperfusion injury in rats. Brain Research. 2015; 1594:108-114.  https://doi.org/10.1016/j.brainres.2014.10.016
  11. Саввина И.А., Костарева А.А., Федоров А.В., Рутковский Р.В., Распутина Д.А., Малхозова А.М. Роль общих анестетиков в модуляции системного воспалительного ответа в периоперационном периоде. Трансляционная медицина. 2017;4(5):28-36.  https://doi.org/10.18705/2311-4495-2017-4-5-28-36
  12. Jackson WM, Gray CDB, Jiang D, Schaefer ML, Connor C, Mintz CD. Molecular mechanisms of anesthetic neurotoxicity: A review of the current literature. Journal of Neurosurgical Anesthesiology. 2016;28(4):361-372.  https://doi.org/10.1097/ANA.0000000000000348
  13. Chidambaran V, Costandi A, D’Mello A. Propofol: A Review of its Role in Pediatric Anesthesia and Sedation. CNS Drugs. 2015;29(7):543-563.  https://doi.org/10.1007/s40263-015-0259-6
  14. Uchino H, Ushijima K, Ikeda Y. Neuroanesthesia and Cerebrospinal Protection. Tokyo: Springer; 2015. https://doi.org/10.1007/978-4-431-54490-6
  15. Ni C, Li C, Dong Y, Guo X, Zhang Y, Xie Z. Anesthetic Isoflurane Induces DNA Damage through Oxidative Stress and p53 Pathway. Molecular Neurobiology. 2017;54(5):3591-605.  https://doi.org/10.1007/s12035-016-9937-8
  16. Qin Y, Ni J, Kang L, Zhong Z, Wang L, Yin S. Sevoflurane effect on cognitive function and the expression of oxidative stress response proteins in elderly patients undergoing radical surgery for lung cancer. Journal of the College of Physicians and Surgeons — Pakistan: JCPSP. 2019;29(1):12-15.  https://doi.org/10.29271/jcpsp.2019.01.12
  17. Yalcin S, Aydoğan H, Yuce HH, Kucuk A, Karahan MA, Vural M, Camuzcuoğlu A, Aksoy N. Effects of sevoflurane and desflurane on oxidative stress during general anesthesia for elective cesarean section. Wiener Klinische Wochenschrift. 2013;125(15-16):467-473.  https://doi.org/10.1007/s00508-013-0397-0
  18. Zhang Y, Zuo Y, Li B, Xie J, Ma Z, Thirupathi A, Yu P, Gao G, Shi M, Zhou C, Xu H, Chang Y, Shi Z. Propofol prevents oxidative stress and apoptosis by regulating iron homeostasis and targeting JAK/STAT3 signaling in SH-SY5Y cells. Brain Research Bulletin. 2019;153:191-201.  https://doi.org/10.1016/j.brainresbull.2019.08.018
  19. Гурская В., Иванов В., Новиков В., Дрягина Н., Саввина И. Системный воспалительный ответ у грудных детей с краниостенозом при седации пропофолом. Российский вестник детской хирургии, анестезиологии и реаниматологии. 2021;11(3):297-306.  https://doi.org/10.17816/psaic961
  20. Tsuchiya M, Asada A, Kasahara E, Sato EF, Shindo M, Inoue M. Antioxidant protection of propofol and its recycling in erythrocyte membranes. American Journal of Respiratory Critical Care Medicine. 2002;165(1):54-60.  https://doi.org/10.1164/ajrccm.165.1.2010134
  21. Culley DJ, Baxter M, Yukhananov R, Crosby G. The Memory Effects of General Anesthesia Persist for Weeks in Young and Aged Rats. Anesthesia and Analgesia. 2003;96(4):1004-1009. https://doi.org/10.1213/01.ANE.0000052712.67573.12
  22. Паншин Д.Д., Распутина Д.А., Крупко Т.А., Рутковский Р.В., Дрягина Н.В., Петров А.А., Гуляев Д.А., Кондратов К.А., Федоров А.В., Костарева А.А., Саввина И.А. Влияние нейрохирургического вмешательства и общей анестезии севофлураном в сочетании с фентанилом на содержание нуклеиновых кислот и провоспалительных цитокинов в плазме у пациентов с внутричерепными менингиомами: пилотное исследование. Анестезиология и реаниматология. 2019;(4):55-60.  https://doi.org/10.17116/anaesthesiology201904155
  23. Friedman JR, Nunnari J. Mitochondrial form and function. Nature. 2014; 505(7483):335-343.  https://doi.org/10.1038/nature12985
  24. Kaczmarek A, Vandenabeele P, Krysko DV. Necroptosis: The Release of Damage-Associated Molecular Patterns and Its Physiological Relevance. Immunity. 2013;38(2):209-223.  https://doi.org/10.1016/j.immuni.2013.02.003
  25. Gaál Kovalčíková A, Janovičová Ľ, Hodosy J, Bábíčková J, Vavrincová-Yaghi D, Vavrinec P, Boor P, Podracká Ľ, Šebeková K, Celec P, Tóthová Ľ. Extracellular DNA concentrations in various aetiologies of acute kidney injury. Scientific Reports. 2022;12(1):16812. https://doi.org/10.1038/s41598-022-21248-7
  26. Sin ST, Deng J, Ji L, Yukawa M, Chan RW, Volpi S, Vaglio A, Fenaroli P, Bocca P, Cheng SH, Wong DK, Lui KO, Jiang P, Chan KCA, Chiu RW, Lo YMD. Effects of nucleases on cell-free extrachromosomal circular DNA. JCI Insight. 2022;7(8):e156070. https://doi.org/10.1172/jci.insight.156070
  27. Skoglund C, Appelgren D, Johansson I, Casas R, Ludvigsson J. Increase of Neutrophil Extracellular Traps, Mitochondrial DNA and Nuclear DNA in Newly Diagnosed Type 1 Diabetes Children but Not in High-Risk Children. Frontiers in Immunology. 2021;12:628564. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.628564
  28. Pinti M, Cevenini E, Nasi M, De Biasi S, Salvioli S, Monti D, Benatti S, Gibellini L, Cotichini R, Stazi MA, Trenti T, Franceschi C, Cossarizza A. Circulating mitochondrial DNA increases with age and is a familiar trait: Implications for “inflamm-aging”. European Journal of Immunology. 2014;44(5):1552-1562. https://doi.org/10.1002/eji.201343921
  29. Swarup V, Rajeswari MR. Circulating (cell-free) nucleic acids — A promising, non-invasive tool for early detection of several human diseases. FEBS Letters. 2007;581(5):795-799.  https://doi.org/10.1016/j.febslet.2007.01.051
  30. Rocha TLA, Dias-Junior CA, Possomato-Vieira JS, Gonçalves-Rizzi VH, Nogueira FR, De Souza KM, Braz LG, Braz MG. Sevoflurane Induces DNA Damage whereas Isoflurane Leads to Higher Antioxidative Status in Anesthetized Rats. BioMed Research International. 2015;2015:264971. https://doi.org/10.1155/2015/264971
  31. Souza KM, Braz LG, Nogueira FR, Souza MB, Bincoleto LF, Aun AG, Corrente JE, Carvalho LR, Braz JRC, Braz MG. Occupational exposure to anesthetics leads to genomic instability, cytotoxicity and proliferative changes. Mutation Research. 2016;(791-792):42-48.  https://doi.org/10.1016/j.mrfmmm.2016.09.002
  32. Cukurova Z, Cetingok H, Ozturk S, Gedikbasi A, Hergunsel O, Ozturk D, Don B, Cefle K, Palanduz S, Ertem DH. DNA damage effects of inhalation anesthetics in human bronchoalveolar cells. Medicine. 2019;98(32):e16518. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000016518

Закрыть метаданные

Связаться с автором
Email
Сообщение
Издательство "Медиа Сфера" не оказывает услуги по лечению, не дает рекомендации по обращению в медицинские учреждения и к конкретным специалистам, по назначению лекарственных средств и БАДов.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Обратная связь
Если у вас возникли вопросы, жалобы или предложения, — воспользуйтесь формой обратной связи.
Email
Сообщение
Издательство "Медиа Сфера" не оказывает услуги по лечению, не дает рекомендации по обращению в медицинские учреждения и к конкретным специалистам, по назначению лекарственных средств и БАДов.
Подать заявку

Вы можете стать автором одного из наших журналов, отправьте заявку и мы рассмотрим ее в течении дня.

Имя
Телефон
E-mail
Сообщение
Вход
Регистрация
E-mail
Пароль
Забыли пароль?

Войдите на сайт, используя вашу учетную запись в одном из сервисов

Восстановление пароля
E-mail
Войти
Зарегистрироваться

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.