Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Альпуче Р.

Университет Олбани — Государственный Университет Нью-Йорка

Пиголкин Ю.И.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Захаров С.Н.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Леднев И.К.

Университет Олбани — Государственный Университет Нью-Йорка

Использование колебательной спектроскопии в сочетании с машинным обучением для задач судебной медицины

Авторы:

Альпуче Р., Пиголкин Ю.И., Захаров С.Н., Леднев И.К.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1079 раз


Как цитировать:

Альпуче Р., Пиголкин Ю.И., Захаров С.Н., Леднев И.К. Использование колебательной спектроскопии в сочетании с машинным обучением для задач судебной медицины. Судебно-медицинская экспертиза. 2024;67(4):69‑72.
Alpuche R, Pigolkin YuI, Zakharov SN, Lednev IK. Vibrational spectroscopy use for forensic purposes combined with machine learning. Forensic Medical Expertise. 2024;67(4):69‑72. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/sudmed20246704169

Рекомендуем статьи по данной теме:
Воз­мож­нос­ти ис­кусствен­но­го ин­тел­лек­та при рас­се­ян­ном скле­ро­зе. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(5):14-21

Введение

Колебательная спектроскопия — аналитический метод, который оценивает параметры взаимодействия света с разными веществами (поглощение, отражение или рассеяние) и выявляет характерные частоты колебаний молекул. Существуют два основных метода колебательной спектроскопии: инфракрасная (ИК) спектроскопия поглощения и спектроскопия комбинационного рассеяния (рамановская спектроскопия).

ИК-спектроскопия основана на определении показателей поглощения света и малоприменима для оценки объектов биологического происхождения, поскольку ИК-поглощение подвержено интерференции со стороны воды, содержащейся в образцах [1].

По мнению Манна и Викерса, «рамановская спектроскопия идеально подходит для того, чтобы стать эталонным методом спектрометрии следующего поколения» (цит. по [2]). Помимо космических исследований [3] имеется множество других применений этой методики, включая медицинскую диагностику [4] и криминалистические расследования [5, 6].

В наши дни широко используется спектрометр TruNarc — портативный рамановский прибор, который может идентифицировать более 530 веществ за один подтверждающий тест [7, 8]. При спектроскопии комбинационного рассеяния (рамановская спектрометрия) регистрируются разности энергий падающих и рассеянных фотонов, равные энергии молекулярных колебаний.

За прошедшие годы колебательная спектроскопия была внедрена в разные области криминалистики, включая исследование биологических образцов, деталей огнестрельного оружия, следов и других образцов, взятых с мест происшествия [5—9]. На результаты рамановской спектроскопии не влияет присутствие воды, что делает ее идеальной для исследования биологических объектов.

Цель настоящего обзора — изучение возможностей метода колебательной спектроскопии при анализе следов биологической жидкости в судебно-медицинской практике.

Рамановская спектрометрия как универсальный метод идентификации выделений организма

Следы выделений, обнаруженные на месте происшествия на трупе, являются основным источником ДНК, которая может принадлежать как погибшему, так и иным лицам, представляющим интерес для следствия. В настоящее время большинство биохимических тестов, используемых судебными медиками и криминалистами, специфичны для выделений организма, но разрушительны для образцов. Это является существенным недостатком в тех случаях, когда количества следов, полученных с мест происшествия, не так много. По этой причине рамановская спектрометрия обладает большим потенциалом в судебно-медицинской практике для анализа образцов биологического происхождения [10]. Для идентификации спермы, вагинальных выделений и слюны нами был разработан универсальный метод, который объединяет спектроскопию комбинационного рассеяния с моделированием на основе дискриминантного анализа с использованием векторной машины (SVMDA) [11]. В дальнейшем наша методика была опробована на иных выделениях организма, в частности, на моче [12].

Метод показал высокую степень чувствительности. Для идентификации образцов требуется очень небольшое количество высушенных следов. Результаты исследования C. Muro и соавт. [13] выявили, что существует возможность безошибочного определения спектров, полученных от отдельных эритроцитов. Объем крови, который содержится в одном эритроците, составляет порядка 250 мкм3, что, по меньшей мере, в 1000 раз больше, чем количество ДНК, требуемое для судебно-генетического исследования (50 пг).

Ложноположительные и ложноотрицательные результаты при проведении рамановской спектрометрии

Метод, разработанный C. Muro и соавт., был опробован на образцах крови, взятых у здоровых доноров. Тем не менее существуют заболевания, которые могут повлиять на характеристики крови человека и вызвать ложноотрицательный результат в перспективе [14].

Были изучены 3 заболевания (целиакия, серповидно-клеточная анемия и сахарный диабет 2-го типа) для определения возможности получения ложноотрицательных результатов в рамках модели при анализе крови. При анализе спектра комбинационного рассеяния все образцы были идентифицированы как кровь, при этом указанные заболевания не влияли на процесс идентификации образцов.

Имеются ошибки, связанные с оценкой ложноположительных результатов. R. Rosenblatt и соавт. [15] отобрали 24 субстрата, которые дают либо ложноположительный результат при проведении современных полевых криминалистических тестов, либо напоминают кровь во влажном или сухом состоянии. Полученные спектры были сопоставлены с имевшимися моделями биологических жидкостей. Ни один из образцов не был идентифицирован как кровь или иная биологическая жидкость.

По аналогичному алгоритму T. Casey и соавт. [16] изучили 27 субстанций, которые дают ложноположительный результат при полевых тестах на сперму или напоминают сперму во влажном или сухом состоянии. Все изученные образцы не были классифицированы как сперма или иные биологические жидкости организма.

Известны ситуации, когда обвиняемые в преступлениях сексуального характера страдают бесплодием, при котором содержание сперматозоидов в семенной жидкости может быть либо незначительным, либо нулевым. В связи с этим в 2019 г. было проведено исследование, в котором сравнивали нормальную сперму, изолированные сперматозоиды, изолированную семенную жидкость и образцы спермы при азооспермии. Установлено, что большую часть спектров спермы составляют профили семенной жидкости, а следы, содержащие изолированные сперматозоиды и азооспермическую сперму, идентифицируются без ошибок [17].

Подложки, на которые наносятся образцы, также могут повлиять на результаты анализа. Некоторые из них обладают эффектом флюоресценции и способны создавать помехи при получении спектров. Показано, что рамановская спектрометрия может исправно функционировать в условиях субстратных помех, безошибочно идентифицируя образцы спермы [18, 19].

Исследование смесей биологических жидкостей

На местах происшествия редко встречаются чистые образцы, аналогичные тем, которые используют для анализа в исследовательских лабораториях. По этой причине A. Sikirzhytskaya и соавт. [20] разработали метод идентификации смешанных образцов, начав с комбинации спермы и вагинальной жидкости. Для точной идентификации спермы и вагинальной жидкости в этих смешанных образцах была использована модель SVMDA.

Другая распространенная субстанция, часто обнаруживаемая во время следственных мероприятий, проводимых относительно фактов сексуального насилия, — это смесь спермы и крови. Проведено исследование с применением рамановской спектроскопии в ближней инфракрасной области (БИК) с использованием модели классификации SVMDA, которое позволило идентифицировать и сперму, и кровь в крайне низком процентном соотношении [21].

Видовая идентификация крови

С помощью метода анализа главных компонент (PCA) в сочетании с рамановской спектроскопией K. Virkler и I.K. Lednev [22] в 2009 г. смогли эффективно разделить и идентифицировать 3 вида следов крови: человека, кошки и собаки.

В 2018 г. K. Doty и I.K. Lednev [23] для работы использовали образцы крови хорьков, шимпанзе и макак, биохимический состав которых схож с человеческим. Авторы пришли к выводу, что рамановский спектр крови сильно зависит от различий в структуре гемоглобина, что позволяет различать ее видовую принадлежность [23].

Определение региональной принадлежности крови

В 2014 г. A. Sikirzhytskaya и соавт. [24] применили рамановскую спектроскопию с использованием моделей PLSDA и SVMDA для выявления менструальной или периферической крови. Не было отмечено ни одного случая ошибочной идентификации менструальной крови как вагинальной жидкости или наоборот. Отдельное исследование было проведено в 2021 г., где моделирование PLSDA было сопряжено с ИК-Фурье-спектроскопией ATR для эффективной дифференциации менструальных пятен крови [25].

Определение давности образования следов крови

K. Doty и соавт. [26] исследовали тенденции изменений рамановского спектра следов крови в течение 1 нед. Все образцы были правильно идентифицированы как следы крови, а модель частичной регрессии по методу наименьших квадратов (PLSR) позволила определить их давность.

Позже эта регрессионная модель была расширена для оценки времени, прошедшего с момента наложения следов крови, до 2 лет [27—28]. A. Barber и соавт. [29] изучали давность образования следов крови в условиях сильной жары.

Фенотипическое профилирование

Помимо определения происхождения биологического следа и его значимости большое значение имеет профиль подозреваемого, включая пол, расу и возраст.

Если смотреть невооруженным глазом, то рамановские спектры мужских и женских следов крови выглядят одинаково, однако с помощью искусственной нейронной сети можно определить пол испытуемых [30].

Определение пола методом ИК-Фурье-спектроскопии ATR с моделированием возможно при использовании образцов мочи [31] и слюны человека [32].

Еще одной важной характеристикой, необходимой для идентификации личности, является раса. В литературе приведено исследование спектров комбинационного рассеяния спермы, целью которого было определение различий в зависимости от расы донора, а именно белых и чернокожих мужчин [33]. Показано, что различия между спектрами не видны невооруженным глазом, но при применении моделирования SVMDA спектры были точно определены как образцы спермы европеоидов или чернокожих [33].

С помощью рамановской спектроскопии были проведены исследования расовой принадлежности донора по пятну крови [34]. Модель SVMDA смогла правильно классифицировать высушенные следы крови как принадлежащие либо белому, либо чернокожему донору.

Позднее E. Mistek и соавт. [35] использовали ИК-Фурье-ATR-анализ в паре с моделью классификации PLSDA для предсказания пола и расы доноров крови. Это исследование стало еще одним подтверждением большого потенциала колебательной спектроскопии для определения пола и расы донора на основе анализа следов крови.

Установление возраста является важным этапом при проведении судебно-медицинской идентификации личности [36]. Дифференцирование возрастных групп возможно при использовании ИК-Фурье-спектроскопии ATR [37].

Обнаружение посторонних предметов, в частности, окурков, на месте происшествия может указать, например, на присутствие курящих во время правонарушения и позволит провести анализ ДНК, но вопрос о том, имеет ли он отношение к делу, может быть поставлен под сомнение. В связи с этим E. Al-Hetlani и соавт. [38] изучили возможность дифференциации курящих и некурящих людей с помощью спектроскопии комбинационного рассеяния света на основе следов слюны. В этом исследовании рамановскую спектроскопию использовали в сочетании со статистической моделью искусственной нейронной сети, позволяющей точно предсказать, от кого исходит сухое пятно слюны — от курильщика или некурящего.

Заключение

Рамановский метод спектроскопии обладает большим потенциалом и может использоваться при анализе следов биологической жидкости в судебно-медицинской практике. Он позволяет диагностировать давность образования следов крови и фенотипический профиль донора, включая пол, расу и возраст. Отмечено, что некоторые следы биологического происхождения могут быть установлены даже после воздействия на них экстремальных факторов. Дальнейшая разработка и улучшение указанных методик может значительно повысить качество экспертных исследований вещественных доказательств.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Пиголкин Ю.И., Золотенкова Г.В. Внедрение современных достижений нейрогистологии в судебно-медицинскую практику. Тихоокеанский медицинский журнал. 2016;2(64):49-54.  https://doi.org/10.17238/pmj1609-1175.2016.2.49-54
  2. Lewis IR, Edwards H. Handbook of Raman spectroscopy: from the research laboratory to the process line. USA: CRC press; 2001. https://doi.org/10.1002/jrs.1117
  3. Hernandez D. SHERLOC for Scientists. Assessed January 29, 2024. https://mars.nasa.gov/mars2020/spacecraft/instruments/sherloc/for-scientists/#:~:text=The%20laser%20is%20integrated%20to,Martian%20surface%20and%20near%20subsurface
  4. Ralbovsky NM, Lednev IK. Towards development of a novel universal medical diagnostic method: Raman spectroscopy and machine learning. Chemical Society Reviews. 2020;49(20):7428-7453. https://doi.org/10.1039/d0cs01019g
  5. Weber A, Hoplight B, Ogilvie R, Muro C, Khandasammy SR, Pérez-Almodóvar L, Sears S, Lednev IK. Innovative vibrational spectroscopy research for forensic application. Analytical Chemistry. 2023;95:167-205.  https://doi.org/10.1021/acs.analchem.2c05094
  6. Doty KC, Lednev IK. Raman spectroscopy for forensic purposes: recent applications for serology and gunshot residue analysis. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 2018;103:215-222  https://doi.org/10.1016/j.trac.2017.12.003
  7. Khandasammy SR, Fikiet MA, Mistek E, Ahmed Y, Halámková L, Bueno J, Lednev IK. Bloodstains, paintings, and drugs: Raman spectroscopy applications in forensic science. Forensic Chemistry. 2018;8:111-133.  https://doi.org/10.1016/j.forc.2018.02.002
  8. Официальная страница продукта: TruNarcTM Handheld Narcotics Analyzer. Ссылка активна на 15.01.24.  https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/TRUNARC
  9. Muro CK, Doty KC, Bueno J, Halamkova L, Lednev IK. Vibrational spectroscopy: recent developments to revolutionize forensic science. Analytical chemistry. 2015;87:306-327.  https://doi.org/10.1021/ac504068a
  10. Virkler K, Lednev IK. Analysis of body fluids for forensic purposes: from laboratory testing to non-destructive rapid confirmatory identification at a crime scene. Forensic science international. 2009;188:1-17.  https://doi.org/10.1016/j.forsciint.2009.02.013
  11. Muro CK, Doty KC, de Souza Fernandes L, Lednev IK. Forensic body fluid identification and differentiation by Raman spectroscopy. Forensic Chemistry. 2016;1:31-38.  https://doi.org/10.1016/j.forc.2016.06.003
  12. Vyas B, Halamkova L, Lednev IK. A universal test for the forensic identification of all main body fluids including urine. Forensic Chemistry. 2020;20:100247. https://doi.org/10.1016/j.forc.2020.100247
  13. Muro CK, Lednev IK. Identification of individual red blood cells by Raman microspectroscopy for forensic purposes: in search of a limit of detection. Analytical and bioanalytical chemistry. 2017;409:287-293.  https://doi.org/10.1007/s00216-016-0002-2
  14. Nichols N, Lednev I. Raman Spectroscopy for Forensic Identification of Body Fluid Traces: Method Validation for Potential False Negatives Caused by Blood-Affecting Diseases. American Journal of Analytical Chemistry. 2022;13(1):1-8.  https://doi.org/10.4236/ajac.2022.131001
  15. Rosenblatt R, Halámková L, Doty KC, de Oliveira Jr EA, Lednev IK. Raman spectroscopy for forensic bloodstain identification: method validation vs. environmental interferences. Forensic Chemistry. 2019;16:100175. https://doi.org/10.1016/j.forc.2019.100175
  16. Casey T, Mistek E, Halámková L, Lednev IK. Raman spectroscopy for forensic semen identification: Method validation vs. environmental interferences. Vibrational Spectroscopy. 2020;109:103065. https://doi.org/10.1016/j.vibspec.2020.103065
  17. Fikiet MA, Lednev IK. Raman spectroscopic method for semen identification: Azoospermia. Talanta. 2019;194:385-389.  https://doi.org/10.1016/j.talanta.2018.10.034
  18. McLaughlin G, Fikiet MA, Ando M, Hamaguchi H, Lednev IK. Universal detection of body fluid traces in situ with Raman hyperspectroscopy for forensic purposes: Evaluation of a new detection algorithm (HAMAND) using semen samples. Journal of Raman Spectroscopy. 2019;50:1147-1153. https://doi.org/10.1002/jrs.5621
  19. Kistenev YV, Borisov AV, Samarinova AA, Colón-Rodríguez S, Lednev IK. A novel Raman spectroscopic method for detecting traces of blood on an interfering substrate. Scientific Reports. 2023;13:5384. https://doi.org/10.1038/s41598-023-31918-9
  20. Sikirzhytskaya A, Sikirzhytski V, Pérez-Almodóvar L, Lednev IK. Raman spectroscopy for the identification of body fluid traces: Semen and vaginal fluid mixture. Forensic Chemistry. 2023;32:100468. https://doi.org/10.1016/j.forc.2023.100468
  21. Sikirzhytski V, Lednev I, Sikirzhytskaya A. Raman spectroscopy coupled with advanced chemometrics for forensic analysis of semen and blood mixtures. Spectroscopy. 2013:28(12). https://doi.org/10.1016/j.forc.2023.100468
  22. Virkler K, Lednev IK. Blood species identification for forensic purposes using Raman spectroscopy combined with advanced statistical analysis. Analytical chemistry. 2009;81:7773-7777  https://doi.org/10.1021/ac901350a
  23. Doty KC, Lednev IK. Differentiation of human blood from animal blood using Raman spectroscopy: A survey of forensically relevant species. Forensic science international. 2018;282:204-210.  https://doi.org/10.1016/j.forsciint.2017.11.033
  24. Sikirzhytskaya A, Sikirzhytski V, Lednev IK. Raman spectroscopy coupled with advanced statistics for differentiating menstrual and peripheral blood. Journal of biophotonics. 2014;7:59-67.  https://doi.org/10.1002/jbio.201200191
  25. Mistek-Morabito E, Lednev IK. Discrimination of menstrual and peripheral blood traces using attenuated total reflection Fourier transform-infrared (ATR FT-IR) spectroscopy and chemometrics for forensic purposes. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2021;413:2513-2522. https://doi.org/10.1007/s00216-021-03206-w
  26. Doty KC, McLaughlin G, Lednev IK. A Raman spectroscopic clock for bloodstain age determination: the first week after deposition. Analytical and bioanalytical chemistry. 2016;408:3993-4001. https://doi.org/10.1007/s00216-016-9486-z
  27. Doty KC, Muro CK, Lednev IK. Predicting the time of the crime: Bloodstain aging estimation for up to two years. Forensic Chemistry. 2017;5:1-7.  https://doi.org/10.1016/j.forc.2017.05.002
  28. Weber AR, Lednev IK. Crime clock—Analytical studies for approximating time since deposition of bloodstains. Forensic Chemistry. 2020;19:100248. https://doi.org/10.1016/j.forc.2020.100248
  29. Barber AP, Weber AR, Lednev IK. Raman spectroscopy to determine the time since deposition of heated bloodstains. Forensic Chemistry. 2024;37:100549. https://doi.org/10.1016/j.forc.2024.100549
  30. Sikirzhytskaya A, Sikirzhytski V, Lednev IK. Determining gender by Raman spectroscopy of a bloodstain. Analytical chemistry. 2017;89:1486-1492. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.6b02986
  31. Takamura A, Halamkova L, Ozawa T, Lednev IK. Phenotype profiling for forensic purposes: determining donor sex based on Fourier transform infrared spectroscopy of urine traces. Analytical chemistry. 2019;91:6288-6295. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.9b01058
  32. Muro CK, de Souza Fernandes L, Lednev IK. Sex determination based on Raman spectroscopy of saliva traces for forensic purposes. Analytical chemistry. 2016;88:12489-12493. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.6b03988
  33. Muro CK, Lednev IK. Race differentiation based on Raman spectroscopy of semen traces for forensic purposes. Analytical chemistry. 2017;89:4344-4348. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.7b00106
  34. Mistek E, Halámková L, Doty KC, Muro CK, Lednev IK. Race differentiation by Raman spectroscopy of a bloodstain for forensic purposes. Analytical chemistry. 2016;88:7453-7456. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.6b01173
  35. Mistek E, Halámková L, Lednev IK. Phenotype profiling for forensic purposes: Nondestructive potentially on scene attenuated total reflection Fourier transform-infrared (ATR FT-IR) spectroscopy of bloodstains. Forensic Chemistry. 2019;16:100176. https://doi.org/10.1016/j.forc.2019.100176
  36. Doty KC, Lednev IK. Differentiating donor age groups based on Raman spectroscopy of bloodstains for forensic purposes. ACS central science. 2018;4:862-867.  https://doi.org/10.1021/acscentsci.8b00198
  37. Giuliano S, Mistek-Morabito E, Lednev IK. Forensic phenotype profiling based on the attenuated total reflection fourier transform-infrared spectroscopy of blood: Chronological age of the donor. ACS omega. 2020;5:27026-27031. https://doi.org/10.1021/acsomega.0c01914
  38. Al‐Hetlani E, Halámková L, Amin MO, Lednev IK. Differentiating smokers and nonsmokers based on Raman spectroscopy of oral fluid and advanced statistics for forensic applications. Journal of biophotonics. 2020;13:e201960123. https://doi.org/10.1002/jbio.201960123

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.