Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Кораблева Н.П.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Романенков Н.С.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Кремлёв Д.И.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Косулин А.В.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Некрасов А.А.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Коваленко А.П.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Мирошниченко М.С.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Арбеков П.В.

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Возможности предупреждения патологических рубцов кожи (экспериментальное исследование)

Авторы:

Кораблева Н.П., Романенков Н.С., Кремлёв Д.И., Косулин А.В., Некрасов А.А., Коваленко А.П., Мирошниченко М.С., Арбеков П.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 944 раза


Как цитировать:

Кораблева Н.П., Романенков Н.С., Кремлёв Д.И., и др. Возможности предупреждения патологических рубцов кожи (экспериментальное исследование). Пластическая хирургия и эстетическая медицина. 2025;(1):32‑38.
Korableva NP, Romanenkov NS, Kremlev DI, et al. Prevention of pathological skin scars (experimental study). Plastic Surgery and Aesthetic Medicine. 2025;(1):32‑38. (In Russ., In Engl.)
https://doi.org/10.17116/plast.hirurgia202501132

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Эстетические операции направлены на улучшение качества жизни пациентов. Послеоперационные рубцы — неизбежное следствие хирургических вмешательств. Формирование патологических (гипертрофических, келоидных) рубцов минимизирует удовлетворенность пациентов результатами операции, значительно ухудшая качество их жизни.

В настоящее время существует много способов профилактики формирования гипертрофических и келоидных рубцов, но ни один из них не оказывается универсальным. Сведения, представленные в ряде публикаций, позволяют предположить, что ботулотоксин типа A положительно влияет на заживление ран, предупреждая развитие гипертрофических и келоидных рубцов [1—3].

По мнению L.M. Kasyanju Carrero и соавт. (2018), Wang Y.-X. и соавт. (2023), одним из механизмов позитивного действия ботулотоксина типа A оказывается иммобилизация краев раны в местах хирургического вмешательства за счет блокирования высвобождения из аксонов нейромедиатора ацетилхолина, что исключает сокращение мышц. Данная гипотеза подтверждена в ряде публикаций, в которых также отмечается эффективность и безопасность применения ботулотоксина типа A для профилактики и лечения гипертрофических и келоидных рубцов [4—6].

За прошедшие 10 лет разные авторы все больше внимания уделяют оценке результатов применения ботулотоксина типа A для предупреждения патологического рубцевания [1—6]. При проведении экспериментальных исследований накоплены данные об основных патофизиологических механизмах, приводящих к формированию гипертрофических и келоидных рубцов [7, 8]. В частности, ряд специалистов отводят важную роль в формировании рубца фибробластам и миофибробластам. Травматизация покровных тканей способствует активации кератиноцитов, их миграции в раневое ложе и эпителизации. В свою очередь, дифференцировка фибробластов в миофибробласты обеспечивает контракцию раны, синтез компонентов межклеточного вещества рубца. Образование гипертрофических и келоидных рубцов связывают со снижением способности миофибробластов к апоптозу. В эксперименте in vitro ботулотоксин типа A снижал действие фактора роста соединительной ткани (CTGF) и фактора роста эндотелия сосудов (VEGF), ингибировал функцию фибробластов [7, 9]. N. Zhou и соавт. (2020), Z. Yang и соавт. (2022), L. Pan и соавт. (2022) приводят экспериментальные данные о положительных эффектах применения ботулотоксина типа A для профилактики гипертрофических и келоидных рубцов [10—12]. Однако этих сведений недостаточно, чтобы подтвердить данную гипотезу, что обусловливает необходимость проведения специального исследования.

Цель исследования — оценить результаты применения ботулотоксина типа A в эксперименте для предупреждения гипертрофических и келоидных рубцов.

Материал и методы

Для экспериментального исследования отобраны 3 кролика породы советская шиншилла в возрасте от 1,5 мес до 2 мес, не перекрещивающиеся по родословным линиям. Работа выполнялась в соответствии с Европейской конвенцией о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях [13]. Кролики содержались в виварии кафедры оперативной хирургии и топографической анатомии имени профессора Ф.И. Валькера ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России.

Хирургические вмешательства проводили под общей анестезией с искусственной вентиляцией легких. По линиям предварительно нанесенной разметки в области каждой из ушных раковин было иссечено по 5 участков кожи эллипсовидной формы длиной 1,5 см и шириной 0,5 см. Раны ушиты обвивным швом нитью Prolene 5-0 (Ethicon, США). Сверху для предупреждения инфицирования нанесен медицинский клей БФ-6 (ООО «Тульская фармацевтическая фабрика», Россия) (рис. 1).

Рис. 1. Этапы операции.

а — измерение длины предполагаемой раны; б — иссечение кожи по линии предварительной разметки; в — ушитая рана.

Раны зажили первичным натяжением, швы сняты на 7-е сутки. Таким образом, в исследовании проанализированы данные о 30 раневых дефектах кожи ушных раковин кроликов (15 дефектов — экспериментальная группа, 15 дефектов — контрольная группа).

Учитывая, что ботулотоксин типа A не оказывает системного влияния на организм в терапевтических дозах, левое ухо кроликов рассматривали в качестве экспериментального, а правое — в качестве контрольного [14, 15]. На 7-е сутки после операции в область рубцов в экспериментальной группе вводили ботулинический токсин типа A (АО «НПО «Микроген», Россия) из расчета 2 единицы ботулинического токсина типа A в стандартном разведении (100 единиц на 2 мл NaCl 0,9%) в один рубец. На 14-е, 28-е и 42-е сутки из каждого рубца в области ушных раковин в контрольной и экспериментальной группах осуществляли взятие панч-биопсии (3 мм). Полученный материал для морфологического исследования был фиксирован в 10% забуференном растворе формалина (ООО «БиоВитрум», Россия).

Подсчет фибробластов и миофибробластов проведен при гистологическом исследовании. Микропрепараты изготовлены следующим образом. Биоматериал дегидрирован на тканевом процессоре Leica ASP 300 (Leica Microsystems GmbH, Германия), ткани уплотнены с применением станции для заливки парафинов Leica EG1160 (Leica Microsystems GmbH, Германия), парафиновые блоки секционированы на микротоме Leica SM 2000R (Leica Microsystems GmbH, Германия). Срезы окрашены гематоксилином и эозином посредством автоматической системы окраски гистологических препаратов Leica ST 1050 (Leica Microsystems GmbH, Германия). Микроскопическое исследование проведено на оптическом бинокулярном микроскопе Leica DM1000 (Leica Microsystems GmbH, Германия) с увеличением ×400 с подсчетом количества фибробластов, миофибробластов в экспериментальной и контрольной группах (рис. 2). Полученные данные обобщены и систематизированы.

Рис. 2. Гистологические препараты.

а, б — ×400. Черным цветом маркированы фибробласты, красным — миофибробласты.

Статистическая обработка полученных данных осуществлена посредством программы Microsoft Excel 2019 (Microsoft, США) и программного пакета Statistica 12 (StatSoft, США). Для сравнения количества фибробластов, миофибробластов в экспериментальной и контрольной группах применяли критерий Манна—Уитни. Различия считали статистически значимыми при p<0,005.

Результаты

В ходе выполнения работы оценивали вид рубцов в каждой из анализируемых временных контрольных точек: через 14 дней, 28 дней и 42 дня после введения ботулотоксина типа A. При визуальной оценке рубцов в контрольной группе в 4 из 15 случаев констатированы гипертрофические рубцы, в экспериментальной группе гипертрофических рубцов выявлено не было (рис. 3).

Рис. 3. Вид рубцов.

а — гипертрофические рубцы в контрольной группе; б — нормотрофические рубцы в экспериментальной группе.

При проведении морфологического исследования с подсчетом количества фибробластов в биоптатах, полученных в запланированные сроки, определены медианные значения анализируемого параметра. Установлено, что в экспериментальной группе через 42 дня после инъекции ботулотоксина типа A фибробластов было меньше, чем в контрольной группе (p=0,01). В остальных контрольных точках статистически значимые различия отсутствовали (табл. 1).

Таблица 1. Медианные значения количества фибробластов в группах исследования

Сроки наблюдения, сутки

Медиана количества фибробластов в группах

Значение p*

экспериментальная группа

контрольная группа

14-е

9,0

10,0

0,340087

28-е

11,5

12,50

0,349615

42-е

13,0

15,0

0,016835

Примечание. * — различия значимы (p<0,05).

При анализе данных о количестве миофибробластов, содержащихся в рубцовой ткани экспериментальных животных, полученной через 14 дней, 28 дней и 42 дня после выполнения инъекции ботулотоксина типа A, выявлено, что полученные значения в экспериментальной группе в 2 раза ниже, чем в контрольной группе (p=0,000003) (табл. 2).

Таблица 2. Медианные значения количества миофибробластов в группах исследования

Срок наблюдения, сутки

Медиана количества миофибробластов в группах

Значение p*

экспериментальная группа

контрольная группа

14-е

7,0

14,0

0,000003

28-е

9,0

18,0

0,000003

42-е

11,0

22,0

0,000003

Примечание. * — различия значимы (p<0,05).

В эксперименте продемонстрировано, что гипертрофические рубцы в контрольной группе сформировались в 4 случаях из 15. Выявлены значимые различия в морфологии рубцовой ткани. В частности, в рубцах в контрольной группе на 42-й день после операции количество фибробластов оказалось выше, чем в экспериментальной группе. Что касается миофибробластов в экспериментальной группе, то их количество на всех сроках наблюдения было ниже, чем в контрольной группе.

Обсуждение

Гипертрофические и келоидные рубцы кожи — это распространенное патологическое состояние, обусловленное избыточным разрастанием дермального коллагена. Однако патогенетические механизмы их формирования в настоящее время представляются неоднозначными. Пациенты с гипертрофическими и келоидными рубцами помимо эстетической неудовлетворенности внешним видом часто сталкиваются с такими симптомами, как боль и зуд. Необходимо констатировать, что многочисленные методы лечения пациентов с рубцами кожи, в том числе хирургическое иссечение, инъекции глюкокортикостероидов и лучевая терапия, лазерная и прессотерапия, не всегда обеспечивают надежный удовлетворительный результат. В связи с этим необходим поиск новых методов лечения пациентов. Введение ботулотоксина типа A в гипертрофический или келоидный рубец в настоящее время представляется перспективным методом, однако детального понимания механизмов воздействия ботулотоксина типа A на рубцовую ткань пока нет.

E. Çalıskan и соавт. (2016) в экспериментальном исследовании на модели уха кролика сравнили влияние на гипертрофический рубец триамцинолона ацетонида, 5-фторурацила и ботулотоксина типа A относительно контрольной группы. Применение 5-фторурацила обусловило статистически значимое снижение количества фибробластов в рубцах. Разтличий коллагенового индекса в анализируемых группах не выявлено [16]. D.-Q. Liu и соавт. (2018) при сравнении эффективности влияния на гипертрофические рубцы уха кролика ботулотоксина типа A и триамцинолона ацетонида обнаружили, что индекс гипертрофии с учетом соотношения высоты рубца в сопоставлении с неизмененной кожей в случаях применения ботулотоксина типа A оказывается ниже, чем при использовании триамцинолона ацетонида и в контрольной группе [17].

Z. Youjin и соавт. (2019) сравнили результаты введения в рубцы ушных раковин кроликов ботулотоксина типа A и триамцинолона ацетонида с таковыми в контрольной группе и продемонстрировали, что гипертрофические рубцы в экспериментальных группах оказались значительно тоньше, чем в контрольной группе [18].

Одним из определяющих факторов, влияющих на формирование патологического рубца, является натяжение краев раны. Известно, что ботулотоксин блокирует высвобождение ацетилхолина в нервно-мышечных соединениях и, как следствие, снижает способность мышц к сокращению. Z. Xiao и G. Qu (2012) сообщают, что при введении ботулотоксина в рубец в области уха кролика (отметим, что под кожей ушной раковины кролика находятся тончайшие мышечные волокна) натяжение тканей в непосредственной близости от формирующегося рубца уменьшается, фибробласты постепенно изменяют свое функциональное состояние, в результате чего замедляется их пролиферация, снижается синтез белков внеклеточного матрикса, в том числе коллагена [19]. L. Pan и соавт. (2022) приводит данные, что фибробласты под действием ботулотоксина типа A выделяют меньше некоторых биологически активных веществ, что препятствует их избыточной пролиферации, обеспечивая уменьшение синтеза белков внеклеточного матрикса [12].

N. Zhou и соавт. (2020) приводят сведения, что к 30-м суткам эксперимента высота рубцов в группе инъекций ботулотоксина типа A оказалась в 1,9 раза ниже, чем в контрольной группе. Также выявлена положительная корреляция между плотностью микрососудов и экспрессией VEGF. Этот факт с учетом трехкратного снижения уровня VEGF в рубцах после введения ботулотоксина типа A позволяет полагать, что одной из причин позитивного воздействия ботулотоксина типа A на формирующуюся рубцовую ткань оказывается снижение интенсивности ангиогенеза [10].

Ряд исследователей задаются вопросом о молекулярных механизмах воздействия ботулотоксина типа A на рубец. В частности, X. Zhibo и Z. Miaobo (2008) in vitro установили, что ботулотоксин типа A способствует апоптозу и ингибирует пролиферацию фибробластов, полученных из гипертрофических рубцов. Также ботулотоксин типа A способен ингибировать экспрессию трансформирующего фактора роста (TGF)-β1 в фибробластах гипертрофических рубцов [20, 21]. M. Shah и соавт. (1994) отмечают, что избыточная продукция TGF-β1, обнаруженная в келоидных рубцах, обусловливает увеличение продолжительности фазы пролиферации и кратное повышение синтеза коллагена фибробластами [22]. В эксперименте на крысах доказано, что при введении ботулотоксина типа A к 14 дням после операции в формирующихся рубцах в 2 раза снижается количество воспалительных клеток (нейтрофилов, лимфоцитов). А к 4 нед после хирургического вмешательства инъекции ботулотоксина типа A обусловливают снижение уровня фибробластов и экспрессии TGF-β1 соответственно на 37,7% и 55% по сравнению с контрольной группой [23].

Во многих исследованиях in vitro уделяется особое внимание оценке влияния ботулотоксина типа A на фибробласты и формирование внеклеточного матрикса. Однако не все авторы анализировали влияние ботулотоксина типа A на миофибробласты на модели животных. Модель уха кролика хорошо отражает стадии формирования рубца. Развитие гипертрофии рубца в этих случаях происходит схоже с формированием рубца у человека. Кроме того, кролики обладают хорошим иммунитетом, что важно при заживлении ран.

При проведении данного исследования продемонстрировано влияние ботулотоксина типа A на пролиферацию фибробластов и миофибробластов в рубцах. Сведения, полученные при выполнении работы, позволяют полагать, что в группе применения ботулотоксина типа A наблюдалось отчетливое снижение количества фибробластов и миофибробластов по сравнению с контрольной группой, что частично объясняет, почему ботулотоксин типа A улучшает итоговый вид рубца и подавляет рост гипертрофических и келоидных рубцов.

В данной статье представлены результаты исследования, направленного на выяснение причин позитивного влияния ботулотоксина типа A на формирование рубцов кожи в эксперименте. Тем не менее это исследование не отвечает на все вопросы. В частности, в дальнейшем целесообразно оценить молекулярные механизмы действия ботулотоксина типа A на ингибирование пролиферации фибробластов и миофибробластов. Оценка способности фибробластов к секреции коллагена in vitro, а также генетическое исследование экспрессии матричной рибонуклеиновой кислоты (мРНК) коллагеновых волокон смогли бы прояснить некоторые молекулярные механизмы действия ботулотоксина типа A.

Заключение

При проведении исследования установлено, что инъекции ботулотоксина типа A через 7 дней после операции позволяют уменьшить вероятность формирования гипертрофических рубцов кожи. Одной из точек воздействия ботулотоксина типа A, вероятно, оказывается влияние на количество миофибробластов, содержащихся в рубцовой ткани в стадиях пролиферации и ремоделирования внеклеточного матрикса.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Кораблева Н.П., Романенков Н.С., Кремлёв Д.И.

Сбор и обработка материала — Косулин А.В., Кремлёв Д.И., Мирошниченко М.С., Арбеков П.В.

Статистическая обработка данных — Коваленко А.П., Романенков Н.С.

Написание текста — Кремлёв Д.И., Некрасов А.А.

Редактирование — Кораблева Н.П., Романенков Н.С.

Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Participation of authors:

Concept and design of the study — Korableva N.P., Romanenkov N.S., Kremlev D.I.

Data collection and processing — Kosulin A.V., Kremlev D.I., Miroshnichenko M.S., Arbekov P.V.

Statistical processing of the data — Kovalenko A.P., Romanenkov N.S.

Text writing — Kremlev D.I., Nekrasov A.A.

Editing — Korableva N.P., Romanenkov N.S.

Funding. The study had no sponsorship.

Список литературы:

  1. Li Y-H, Yang J, Liu J-Q, Xie S-T, Zhang Y-J, Zhang W, Zhang J-L, Zheng Z, Hu D-H. A Randomized, Placebo-Controlled, Double-Blind, Prospective Clinical Trial of Botulinum Toxin Type A in Prevention of Hypertrophic Scar Development in Median Sternotomy Wound. Aesthetic Plast Surg. 2018 Oct;42(5):1364-1369. Epub 2018 July 17. PMID: 30019241. https://doi.org/10.1007/s00266-018-1187-x
  2. Tawfik AA, Ali RA. Evaluation of botulinum toxin type A for treating post burn hypertrophic scars and keloid in children: An intra-patient randomized controlled study. J Cosmet Dermatol. 2023;22(4):1256-1260. https://doi.org/10.1111/jocd.15634
  3. Chen Z, Chen Z, Pang R, Wei Z, Zhang H, Liu W, Li G. The effect of botulinum toxin injection dose on the appearance of surgical scar. Sci Rep. 2021;11(1):13670. https://doi.org/10.1038/s41598-021-93203-x
  4. Kasyanju Carrero LM, Ma W-W, Liu H-F, Yin X-F, Zhou B-R. Botulinum toxin type A for the treatment and prevention of hypertrophic scars and keloids: Updated review. J Cosmet Dermatol. 2019;18(1):10-15. Epub 2018 Dec 12. PMID: 30548742. https://doi.org/10.1111/jocd.12828
  5. Wang Y-X, Wang Y, Zhang Q, Zhang R-D. Current Research of Botulinum Toxin Type A in Prevention and Treatment on Pathological Scars. Dermatol Surg. 2023;49(5S):S34-S40.  https://doi.org/10.1097/DSS.0000000000003770
  6. Huang Y-L, Wallace CG, Hsiao Y-C, Lee M-C, Huang J-J, Chang FC-S, Chen ZC, Hu S, Chen J-P. Botulinum Toxin to Improve Lower Blepharoplasty Scar: A Double-Blinded, Randomized, Vehicle-Controlled Clinical Trial. Aesthet Surg J. 2021 Aug 13;41(9):1003-1010. PMID: 34128526. https://doi.org/10.1093/asj/sjab024
  7. Fu Z, Huang H, Huang J. Efficacy and safety of botulinum toxin type A for postoperative scar prevention and wound healing improvement: A systematic review and meta-analysis. J Cosmet Dermatol. 2022;21(1):176-190.  https://doi.org/10.1111/jocd.14617
  8. Gauglitz GG, Korting HC, Pavicic T, Ruzicka T, Jeschke MG. Hypertrophic scarring and keloids: pathomechanisms and current and emerging treatment strategies. Mol Med. 2011;17(1-2):113-125.  https://doi.org/10.2119/molmed.2009.00153
  9. Hinz B. The role of myofibroblasts in wound healing. Curr Res Transl Med. 2016;64(4):171-177.  https://doi.org/10.1016/j.retram.2016.09.003
  10. Zhou N, Li D, Luo Y, Li J, Wang Y. Effects of Botulinum Toxin Type A on Microvessels in Hypertrophic Scar Models on Rabbit Ears. Biomed Res Int. 2020;2020:2170750. https://doi.org/10.1155/2020/2170750
  11. Yang Z, Lv Y, Yang Z, Cao L, Cao D. Concentration-Dependent Inhibition of Hypertrophic Scar Formation by Botulinum Toxin Type A in a Rabbit Ear Model. Aesthetic Plast Surg. 2022;46(6):3072-3079. https://doi.org/10.1007/s00266-022-03008-0
  12. Pan L, Qin H, Li C, Yang L, Li M, Kong J, Zhang G, Zhang L. Safety and efficacy of botulinum toxin type A in preventing and treating scars in animal models: A systematic review and meta-analysis. Int Wound J. 2022;19(4):774-781.  https://doi.org/10.1111/iwj.13673
  13. Rozemond H. Laboratory animal protection: the European Convention and the Dutch Act. Vet Q. 1986;8(4):346-349.  https://doi.org/10.1080/01652176.1986.9694067
  14. Gadhia K, Walmsley AD. Facial aesthetics: is botulinum toxin treatment effective and safe? A systematic review of randomised controlled trials. Br Dent J. 2009 Sept 12;207(5):E9; discussion 216-217. PMID: 19749689. https://doi.org/10.1038/sj.bdj.2009.813
  15. Tang-Liu DD-S, Aoki KR, Dolly JO, de Paiva A, Houchen TL, Chasseaud LF, Webber C. Intramuscular injection of 125I-botulinum neurotoxin-complex versus 125I-botulinum-free neurotoxin: time course of tissue distribution. Toxicon. 2003 Oct;42(5):461-469. PMID: 14529727. https://doi.org/10.1016/s0041-0101(03)00196-x
  16. Çalıskan E, Gamsızkan M, Açıkgöz G, Durmuş M, Toklu S, Doğrul A, Kurt A, Tunca M. Intralesional treatments for hypertrophic scars: comparison among corticosteroid, 5-fluorouracil and botulinum toxin in rabbit ear hypertrophic scar model. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2016;20(8):1603-1608.
  17. Liu D-Q, Li X-J, Weng X-J. Effect of BTXA on Inhibiting Hypertrophic Scar Formation in a Rabbit Ear Model. Aesthetic Plast Surg. 2017 June; 41(3):721-728. Epub 2017 Feb 08. PMID: 28180922. https://doi.org/10.1007/s00266-017-0803-5
  18. Youjin Z, Xiaoguang Y, Xiaojing Y, Dongmei F, Yuanhui W. Inhibitory effect of botulinum toxin type A on hypertrophic scar formation in rabbit ears. Genom Appl Biol. 2019;38(10):4785‐4789.
  19. Xiao Z, Qu G. Effects of botulinum toxin type A on collagen deposition in hypertrophic scars. Molecules. 2012 Feb 21;17(2):2169-2177. PMID: 22354193; PMCID: PMC6268678. https://doi.org/10.3390/molecules17022169
  20. Zhibo X, Miaobo Z. Botulinum toxin type A affects cell cycle distribution of fibroblasts derived from hypertrophic scar. Journal of Plastic, Reconstructive & Aesthetic Surgery: JPRAS. 2008 Sept;61(9):1128-1129. Epub 2008 June 13. PMID: 18555763. https://doi.org/10.1016/j.bjps.2008.05.003
  21. Zhibo X, Miaobo Z. Potential therapeutical effects of botulinum toxin type A in keloid management. Med Hypotheses. 2008;71(4):623.  https://doi.org/10.1016/j.mehy.2008.04.018
  22. Shah M, Foreman DM, Ferguson MW. Neutralising antibody to TGF-beta 1,2 reduces cutaneous scarring in adult rodents. J Cell Sci. 1994 May; 107(Pt 5):1137-1157. PMID: 7929624. https://doi.org/10.1242/jcs.107.5.1137
  23. Lee B-J, Jeong J-H, Wang S-G, Lee J-C, Goh E-K, Kim H-W. Effect of botulinum toxin type a on a rat surgical wound model. Clin Exp Otorhinolaryngol. 2009 Mar;2(1):20-27. Epub 2009 Mar 26. PMID: 19434287; PMCID: PMC2671832. https://doi.org/10.3342/ceo.2009.2.1.20

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.