Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Третьякова О.С.

Медицинская академия им. С.И. Георгиевского ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет им. В.И. Вернадского», Симферополь, Россия

Заднипряный И.В.

Медицинская академия им. С.И. Георгиевского ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет им. В.И. Вернадского», Симферополь, Россия

Биоэнергетика миокарда в условиях гипоксии: возрастные аспекты

Авторы:

Третьякова О.С., Заднипряный И.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 9701 раз


Как цитировать:

Третьякова О.С., Заднипряный И.В. Биоэнергетика миокарда в условиях гипоксии: возрастные аспекты. Оперативная хирургия и клиническая анатомия (Пироговский научный журнал). 2020;4(1):52‑62.
Tretyakova OS, Zadnipryanyi IV. Myocarde bioenergy under hypoxia: age-related aspects. Russian Journal of Operative Surgery and Clinical Anatomy. 2020;4(1):52‑62. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/operhirurg2020401152

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ана­лиз при­чин поз­дней ди­аг­нос­ти­ки со­су­дис­той ми­ело­па­тии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(9):117-123

Проблема влияния гипоксии на сердечную мышцу, адаптации миокарда к ее воздействию, а также вызываемые ею последствия не утрачивает своей актуальности и продолжает оставаться предметом исследований на протяжении многих десятилетий [1—8]. Это обусловлено тем, что многие заболевания и состояния, возникающие как в терапевтической (хроническая обструктивная болезнь легких, апноэ во сне, ишемическая болезнь сердца и др.), так и в педиатрической практике (перинатальная гипоксия, врожденные пороки сердца и т.д.), сопровождаются ограничением поступления кислорода, что, с одной стороны, может привести к развитию заболеваний, а с другой — повышает устойчивость организма к последующим воздействиям кислорододефицита [1, 3, 9—15].

Особый интерес вызывает исследование распространенных патологических состояний перинатального периода — внутриутробной гипоксии плода и асфиксии новорожденного [14—20]. Среди их последствий, проявляющихся реакцией внутренних органов, поражение сердечно-сосудистой системы занимает 2-е место после патологии почек и, по мнению зарубежных исследователей, встречается в 25%, а по данным отечественных авторов — в 40—70% случаев развития кислорододефицита [16, 21]. При этом установлено, что возникающая в результате дефицита кислорода транзиторная ишемия миокарда связана с временным уменьшением или прекращением кровообращения в отдельных участках мышцы сердца, вызывающим снижение ее функциональной активности [17, 19]. Продолжительность таких преходящих периодов острой ишемии миокарда может колебаться от 10 до 25 мин в час и зависит от тяжести перенесенной гипоксии [17].

Общепризнано, что основной причиной возникновения ишемии миокарда у новорожденных является снижение энергообразования в миокардиальной клетке вследствие перинатальной «гипоксической травмы» и относительной коронарной недостаточности, которая обусловлена несоответствием имеющегося коронарного кровотока функциональным потребностям сердца, возникающим в результате высокой гемодинамической нагрузки на миокард желудочков в период послеродовой адаптации кровообращения [16, 17]. Развитие кислородного голодания приводит к возникновению тканевой гипоксии, обусловленной нарушением механизмов утилизации кислорода в клетках сердца, которые, как известно, в силу высокой функциональной нагрузки очень чувствительны к дефициту кислорода [22, 23].

Биоэнергетика миокарда в физиологических условиях. Особенности у новорожденных

Сердечная мышца является самым кислородозависимым органом организма человека: потребление миокардом кислорода превышает средний уровень его потребления другими тканями организма человека в среднем в 25—36 раз [22]. Миокард, как плода, так и взрослого, потребляет примерно одинаковое количество кислорода в пересчете на 1 г ткани [22]. Известно, что сердце человека в состоянии покоя вырабатывает 65—104 кал/мин [24]. Такое энергообразование требует доставки 13—21 мл кислорода ежеминутно. Необходимое количество кислорода наряду с высоким коэффициентом его экстракции миокардом (до 12—15 мл О2 из 100 мл крови) доставляется благодаря интенсивному кровоснабжению сердца, что в условиях мышечного покоя составляет 75—85 мл на 100 г/мин (около 5% минутного объема крови) и при нагрузке на сердце может увеличиваться примерно в 3 раза (до 225—255 мл на 100 г/мин) [22]. Способность сердца обеспечивать кровоснабжение тканей организма адекватно их потребностям определяется уровнем миокардиального кровотока и комплексом биохимических явлений, которые начинаются с момента поступления окисляемых субстратов в клетки сердечной мышцы и заканчиваются взаимодействием ряда контрактильных протеинов, что ведет к сокращению миофибрилл [24, 25].

Сократительная функция сердца устойчиво поддерживается в течение всей жизни [22, 26]. Это происходит благодаря тесному сопряжению процесса сокращения с энергетическим обменом. Биоэнергетика миокарда в физиологических условиях определяется темпом окисления субстратов (прежде всего молочной и пировиноградной кислот) в цикле трикарбоновых кислот (Кребса), что обеспечивает выход36 моль аденозинтрифосфата (АТФ) на 1 моль глюкозы [24, 27]. Однако этот энергетический цикл в условиях дефицита кислорода нарушается, и молочная кислота не утилизируется. Еще один вариант энергообеспечения витальных функций миокарда, реализующийся в цикле Эмбдена-Мейергофа при адекватной доставке кислорода, играет лишь вспомогательную роль, т.к. в ходе окисления 1 моля глюкозы синтезируются лишь 2 молекулы АТФ [22]. Существует еще один путь —прямое окисление глюкозы (пентозный цикл Варбурга), который является высокоэкономичным и может давать достаточное количество энергии, ввиду того, что из одной молекулы глюкозы образуется около 117 молекул АТФ [22, 24].

Основными энергетическими субстратами для миокарда взрослых и детей более старшего возраста в условиях аэробного метаболизма служат преимущественно жирные кислоты (40—60%), удельный вес углеводов составляет лишь 35—45% [22]. Сердце же плода и новорожденного ребенка в качестве основного источника энергии использует глюкозу и основной продукт его метаболизма — молочную кислоту [16]. Энергетическая метаболизация миокардом жирных кислот, свойственная детям старшего возраста и взрослым, у них практическиотсутствует. Такой тип биоэнергетики обусловлен тем, что при метаболизации глюкозы эффективность преобразования энергии выше, чем жирных кислот: на 1 моль кислорода при ипользовании глюкозы синтезируется АТФ на 14% больше, чем при метаболизации жирных кислот [16, 22]. Помимо этих субстратов кардиомиоциты (КМ) могут использовать и другие метаболиты, циркулирующие в сосудистом русле (кетоновые тела, лактат, аминокислоты и т.д.), благодаря чему поддерживается устойчивый уровень деятельности сердечной мышцы в отличие от скелетных мышц, которые могут использовать только жирные кислоты или глюкозу. Примечательно, что аминокислоты покрывают лишь 5—7% всех энергозатрат КМ [22].

Соотношение потребления миокардом различных субстратов зависит от интенсивности механической работы миокарда, концентрации этих веществ и содержания кислорода в артериальной крови. Механическая активность сердечной мышцы линейно связана со скоростью поглощения кислорода миокардом, что в состоянии покоя составляет ежеминутно около 30 мкл О2 на 1 г сырой ткани миокарда [28]. При повышении сократительной активности сердечной мышцы пропорционально увеличивается и потребление О2, которое может возрастать в десятки раз и достигать 300 мкл/мин на 1 г сырой ткани [29].

Скорость расхода энергии тесно связана со скоростью синтеза АТФ. Для поддержания насосной функции сердца человека в течение всей жизни организм вырабатывает ежесуточно около 36 кг АТФ [22]. Более 90% его образуется при окислительном фосфорилировании в митохондриях, при этом продукты окисления глюкозы и жирных кислот как бы сгорают в клетке, давая ей тепло и АТФ [30]. Из митохондрий АТФ поступает в цитоплазму и превращается в креатинфосфат (КФ). Его молекулы являются оптимальными для транспортировки к структурам, которые являются потребителями энергии. Здесь КФ снова превращается в АТФ. Именно АТФ и КФ представляют собой энергетические запасы КМ, которые непосредственно ими используются [24].

Согласно современным представлениям [22] энергия КМ расходуется на следющие процессы:

— сокращение в миофибриллах, где под влиянием повышенной концентрации Са2+ образуются актомиозиновые связи, обеспечивающие сокращение сердечной мышцы;

— работу кальциевого насоса в саркоплазматическом ретикулуме: эта структура способна выделять ионы кальция, активирующие миофибриллы, и поглощать их обратно против концентрационного градиента, на что нужна энергия АТФ, т.е. поддержка работы кальциевого насоса является энергозависимым процессом;

— работу мембранного натрий-калиевого насоса, транспортирующего ионы натрия наружу, а ионы калия внутрь клетки против концентрационного градиента, что также требует энергетических затрат;

— обеспечение функционирования специальных калиевых каналов (АТФ-зависимых калиевых каналов — КАТФ-каналов и Са2+-зависимых К+-каналов), которые, присоединяя молекулы АТФ, закрываются, что препятствует выходу ионов калия из этих каналов;

— обеспечение синтетических процессов.

Вся эта энергия используется в соответствии с суммарным количеством АТФазной активности, находящейся в клеточных органеллах. Миофибриллы, которые имеют наибольшую суммарную АТФазную активность, используют примерно 80% энергетических запасов, на ионный транспорт приходится еще 15% и на синтетические процессы — около 5% всей энергии, используемой КМ [22].

В энергетике сердца выделяют 3 фазы [22]:

Фаза образования энергии включает освобождение ионизированного кислорода — прежде всего из окисляемых углеводов, в минимальной степени из жирных кислот и аминокислот — в основном цикле трикарбоновых кислот и его окисление до воды при участии катализаторов транспорта электронов [23];

Фаза кумуляции и транспорта энергии связана с ее депонированием в форме энергии АТФ, образованием КФ и переносом макроэргической фосфатной связи на аденозиндифосфат (АДФ) миофибрилл;

Фаза использования энергии обусловлена трансформацией энергии, образованной при дефосфорилировании АТФ, в сокращение актомиозина и работу миофибрилл. В ходе клеточного метаболизма АТФ распадается до АДФ и аденозинмонофосфата (АМФ), которые, в свою очередь, в физиологических условиях рефосфорилируются в АТФ [22].

При этом все макроэргические фосфатные соединения находятся в попарном равновесии между собой [24]. Молекулярные механизмы, лежащие в основе сокращения, являются результатом строго детерминированного взаимодействия контрактильных мышечных белков актина и миозина, образующих соответственно тонкие и толстые нити миофибрилл, и регуляторных протеинов — тропомиозина и тропонина. В мышцах регуляторные белки связаны с актином. Акцептором кальция является кальцийсвязанный протеин — тропонин. При связывании кальция с последним конформационные изменения тропомиозина устраняют стерическую блокаду актиновых центров, и при взаимодействии актина с миозином образуются актинмиозиновые мостики, тянущая сила которых определяет сокращение мышц [24]. Фаза образования и кумуляции энергии проходит в митохондриях. Фаза утилизации (сопряжения и сокращения) реализуется в ретикулуме и миофибриллах.

Гликолитической энергопродукции принадлежит важная роль в поддержании основных процессов гомеостаза миокардиальной клетки, что обеспечивает функционирование кальциевого насоса ретикулума, транспорт макроэргов к контрактильным белкам за счет активации цитоплазматической креатинфосфокиназы, подготовку аминокислот для вовлечения в цикл трикарбоновых кислот, поддержку физиологической продолжительности потенциала действия КМ [28]. АТФ, образованному в процессе гликолиза, отводится важная роль в энергообеспечении физиологической продолжительности потенциала действия мембраны КМ [24]. Дефицит АТФ существенно повышает опасность развития фибрилляции желудочков, что получило подтверждение в условиях эксперимента. С гликолитической продукцией АТФ связан синтез КФ в цитоплазме [22, 28, 31].

Энергетический обмен гипоксически поврежденного миокарда

Существует множество определений термина «гипоксия». С позиции биоэнергетики гипоксия рассматривается как нарушение окислительных путей генерации в клетках, т.е. форма гипоэргоза [4]. Эта дефиниция была предложена С.Н. Эфуни и В.А. Шпектором для обозначения энергетической патологии клетки [32].

Доказано, что гипоксия, быстро нарушающая синтез АТФ в митохондриях и сопровождающаяся при этом снижением сократительной функции сердца, является первым по времени и основным по значению фактором развития ишемии, которая вызывает ряд глубоких нарушений в метаболизме кардиомиоцитов [24, 27].

В основе развития гипоксии лежит усиление несоответствия между снабжением кислорода клеток и тканей и резким ростом потребности в нем организма в результате интенсификации аэробного обмена на системном уровне, особенно у новорожденных [33, 34]. Для удовлетворения потребностей метаболизма в условиях недостаточного снабжения кислородом тканей развивается цепь биохимических и физиологических изменений, цель которых — обеспечить оптимальное функционирование и, по возможности, восстановление организма на исходном уровне по окончании периода кислородной недостаточности [7, 35].

В условиях ишемии прекращение доставки кислорода к миокарду мобилизует свободный (около 0,07 мл О2 на 100 г ткани) и остаточный кислород сердечной мышцы, главным образом связанный с миоглобином, содержание которого — около 0,5 г на 100 г ткани [23]. В физиологических условиях функция миоглобина как акцептора кислорода, заключается в обеспечении непрерывности поступления кислорода в митохондрии при резком снижении коронарного кровотока в период систолы. Однако это не решает проблему, так как этого количества кислорода достаточно для энергообеспечения лишь 6—7 сердечных сокращений [22]. При гипоксии происходит быстрое истощение резерва кислорода, связанного с гемоглобином и миоглобином, снижается уровень субстратов окисления в тканях, падает активность ферментов. Вследствие этого в митохондриях нарушаются процессы окислительного фосфорилирования, а также транспорт АТФ из митохондрий к местам его использования [23, 24]. Это приводит к снижению концентрации АТФ и КФ и накоплению продуктов метаболизма макроэргов. При этом скорость снижения концентрации КФ существенно больше, чем АТФ, что обусловлено быстрым расходом его на образование АТФ и нарушением транспорта из митохондрий [22, 23]. Характерно, что темп потерь КФ опережает скорость деградации АТФ. Представляет интерес, что в условиях ишемии сердечной мышцы отмечается повышение количества КФ в зоне, граничащей с участком ишемии, носящее компенсаторный характер [36].

Несмотря на усиление гликолитической энергопродукции, острая ишемия резко тормозит темп синтеза макроэргов, что ведет к нарушению энергообеспечения функций и гомеостаза ишемизированных КМ [22]. Одновременно с нарушением синтеза АТФ в митохондриях и накоплением восстановленных форм компонентов дыхательной цепи в ишемизированной ткани происходит мобилизация аварийных компенсаторных механизмов энергообеспечения, в частности, гликолитической продукции макроэргов [37].

При длительной и тяжелой гипоксии происходит переход метаболизма на анаэробный путь с увеличением утилизации различных субстратов и прекращение синтетических процессов, о чем свидетельствует интенсификация процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) [38—40]. Ранний переход от окислительного метаболизма к анаэробной продукции энергии обеспечивается активацией фосфорилазы и повышением транспорта глюкозы в ишемизированных клетках миокарда.

Однако усиление анаэробного гликолиза, которое можно рассматривать как компенсаторную реакцию, направленную на восполнение энергозатрат в условиях гипоксии, является неэффективным механизмом, поскольку это дает очень малый выход энергии: из одной молекулы глюкозы образуются только две молекулы АТФ [24].

Известно, что в начальной стадии ишемии наблюдается универсальная первичная реакция митохондрий — эффект «мягкого разобщения» [22]. В случае уменьшения напряжения кислорода в сердечной мышце ниже 3—5 мм рт.ст. тормозится не только окисление субстратов цикла трикарбоновых кислот, но и связанное с ним фосфорилирование, причем его скорость резко падает. При длительной ишемии снижается способность митохондрий КМ использовать NAD·H-зависимые субстраты [22, 41]. Накопление NAD·Н, лактата и протонов приводит к ингибированию ферментов гликолиза и нарушению энергообеспечения процессов поддержания гомеостаза в ишемизированных КМ. К концу 60-й минуты ишемии гликолиз тормозится полностью, содержание адениновых нуклеотидов при этом падает на 69%, а АТФ — на 94% [22]. В свою очередь транспорт и использование АТФ, который производится в цикле Эмбдена-Мейергофа вследствие торможения активности цитоплазматических изоформ КФ, блокирует падение рН менее 6,6 [23].

Снижение содержания окисленной формы никотинамидных коферментов является «ахиллесовой пятой» при гипоксии, потому что, выполняя функцию переносчиков водорода, NAD, NADP и их восстановленные формы участвуют в процессах клеточного дыхания, которые при дефиците кислорода нарушаются в первую очередь [22, 42—45]. Изменение соотношения окисленных и восстановленных их форм, в свою очередь, может служить одной из причин нарушений окислительно-восстановительных процессов в цикле трикарбоновых кислот и сопряженного с ним окислительного фосфорилирования, окисления жирных кислот и других путей обмена веществ, участвующих в адаптации организма к гипоксии [24]. Кроме того что АТФ служит непосредственным источником энергии для большинства клеточных метаболических процессов, он также регулирует активность многих ферментов. Достаточная внутриклеточная концентрация АТФ — необходимое условие для обеспечения клеточной функции и выживания, однако для метаболической регуляции не менее важно соотношение АТФ и других адениновых нуклеотидов («адениновый заряд энергии» или «потенциал фосфорилирования») [2].

При гипоксии снижается энергетический заряд, поскольку фосфорилирование АДФ в АТФ нарушено [46—49]. Это ведет к увеличению концентрации АМФ, который образуется из АДФ при участии аденилаткиназы. Другое следствие — снижение общего пула адениновых нуклеотидов вследствие стимуляции катаболизма нуклеотидов. Это происходит посредством участия АМФ-дезаминазы — фермента, активирующегося при снижении энергетического заряда. Продуктами этого нарушенного пути являются инозинмонофосфат (ИМФ), инозин, гипоксантин, ксантин и мочевая кислота. Альтернативным вариантом катаболизма АМФ является первичное дефосфорилирование аденозина в инозин. Значение этого пути заключается в том, что аденозин является сильнодействующим вазодилататором и, как было установлено, играет роль в защитной реакции миокарда на гипоксию [2, 50, 51]. Адениновые нуклеотиды и ИМФ остаются внутри клетки, тогда как пуриновые нуклеозиды (аденозин, инозин) и производные (гипоксантин, ксантин, мочевая кислота) выходят в экстрацелюлярное пространство [35]. Небольшое количество АМФ дефосфорилируется в аденозин, далее из миоцита поступает в эндотелиальную клетку, где необратимо метаболизируется до гипоксантина, который затем под действием ксантиндегидрогеназы превращается в мочевую кислоту и выводится почками [4].

В отличие от адениннуклеотидов аденозин может выходить из клетки и в обычных условиях. Его молекула как бы осуществляет обратную связь, с помощью которой клетка сама регулирует свое кровоснабжение. Если содержание АТФ уменьшается, то аденозин образуется в избыточном количестве и, диффундируя к артериолам, увеличивает капиллярный кровоток, вследствие чего КМ получает достаточное количество кислорода [41, 47]. В условиях ишемии эта молекула выступает как природный ингибитор адренорецепторов КМ, клетки становятся невосприимчивыми к симпатической стимуляции, что, несомненно, сохраняет их энергию, в результате чего увеличивается жизнеспособность клеток в неблагоприятных условиях [52].

По завершению гипоксии отношение концентрации нуклеотидов — быстро, а размеры их пулов — более медленно, возобновляются. На этой стадии аденозин и гипоксантин могут быть утилизированы для синтеза нуклеотидов («спасительный путь») при меньших энергетических затратах, чем синтез пуринов de novo [24].

Как известно, при активации гликолиза вследствие накопления недоокисленных продуктов образуется лактат и повышается концентрация ионов водорода [51, 53—55]. В аэробных условиях продукты метаболизма обычно используются в митохондриях, однако при выключении функции этих клеточных органелл в условиях ишемии недоокисленные продукты накапливаются. Таким образом, происходит смещение реакции среды КМ в кислую сторону, что приводит к развитию внутриклеточного ацидоза [56—59].

По данным литературы, снижение рН на 0,5—1,7 после 30-минутной ишемии вызывает падение механической функции сердца на 30—100% [22]. Доказано, что жесткий ацидоз (рН менее 6,6) является инициирующим фактором клеточной альтерации. В миокарде повышается концентрация свободного кальция, а наличие неорганического фосфата способствует его перемещению к митохондриям [24], активирует освобождение «миокардиальных» катехоламинов, повышает активность фосфолипаз, активирует кислые лизосомальные протеазы, индуцирует развитие так называемого пероксидного стресса (накопление Н2О2, стимуляция перекисного окисления липидов). Это еще более увеличивает энергетическую недостаточность сердечной мышцы, что приводит к необратимым изменениям в ишемизированном миокарде [42, 60—62].

Как известно, ацидоз подавляет АТФазную активность миозина [56]. Он вызывает нарушениезахвата Са2+ саркоплазматическим ретикулумом [22]. Повышение концентрации протонов ухудшает взаимодействие Са2+ с тропонином и процесс его депонирования в саркоплазматическом ретикулуме [59]. Одновременно внутриклеточный ацидоз сопровождается деградацией миозина за счет диссоциации его легких цепей и диффузии их в кровь [22]. Увеличение концентрации Са2+ в сократительных белках приводит к тому, что отсоединение «головок» миозина от центров актина становится невозможным, нарушается процесс диастолического расслабления, развивается контрактура, характерная для гипоксии [33]. Ухудшению сократимости миокарда способствует и накопление фосфатов в клетке, образующегося в результате неконтролируемого распада АТФ до АДФ И АМФ. Накопление фосфатов наряду с ацидозом снижает чувствительность миофибрилл к ионам кальция.

Поскольку кислород является акцептором электронов на конечном этапе электроннотранспортной цепи, снижение содержания кислорода в митохондриях ниже «критического давления кислорода» (1—2 мм рт.ст.) приводит к замедлению скорости всего процесса. В результате этого начинает накапливаться АДФ, поскольку он больше не превращается в АТФ. НАДФ перестает реокисляться, и отношение НАД/НАДФ в митохондриях начинает снижаться [2].

Существовавшее ранее представление о митохондриях как о специализированных органеллах, контролирующих исключительно энергетический обмен, в настоящее время дополнено сведениями о них как об органеллах, содержащих факторы, определяющие судьбу клетки [8, 63, 64]. Доказано, что митохондрии ответственны за функционирование и регулирование большого числа сигнальных путей, которые обеспечивают не только митохондриальный биогенез и пролиферацию клеток, но и, наоборот, запрограммированную гибель клетки посредством ограничения окислительно-восстановительных реакций [8].

В настоящее время достаточно изученным из митохондриальных факторов, регулирующих метаболическую и функциональную активность клетки, является митохондриальный АТФ-зависимый калиевый канал (КАТФ-канал; ATP-sensitiveK+ channels). Установлено, что воздействие хронической гипоксии приводит к активации митохондриальных КАТФ-каналов в миокарде [65], которые вне гипоксии при наличии достаточного количества молекул АТФ закрыты. Если же количество молекул АТФ уменьшается, то калиевые каналы открываются и ионы калия выходят во внеклеточную среду. При этом, как известно, потери ионов калия приводят к тому, что КМ утрачивает способность к возбуждению.

Доказано, что умеренная хроническая гипоксия приводит к увеличению синтеза белка SUR2Aт (регуляторная субъединица КАТФ-канала) и возрастанию плотности этих каналов на мембранах кардиомиоцитов по механизму, который не зависит от HIF-1α (hypoxia inducible factor 1 alpha) [66, 67]. Последний, как известно, представляет собой субъединицу гетеродимерного белка HIF-1, причем, в отличие от его β-субъединицы, экспрессируемой постоянно, α-субъединица регулируется уровнем кислорода [68—70]. В состоянии кислорододефицита белковая молекула HIF-1α не гидроксилируется, остается стабильной, происходит их накопление. В последующем эти субъединицы (HIF-1α, HIF-1β) объединяются, и образовавшийся в результате этого транскрипционный белок HIF-1 в ядре клетки связывается с особыми последовательностями ДНК в генах, экспрессия которых индуцируется гипоксией [67, 68, 71].

Активация КАТФ-каналов в условиях хронической гипоксии приводит к увеличению устойчивости пор, регулирующих проницаемость митохондрий — МРТ-пор (mitochondrial transition pore). Открытие этих пор провоцирует набухание митохондрий, приводит к разобщению окислительного фосфорилирования и выходу из митохондрий цитохрома С и белка AIF (apoptosis-inducing factor) [72]. Именно эти вещества катализируют превращение неактивной прокаспазы-9 в активную каспазу-9; последняя, в свою очередь, активирует превращение прокаспазы-3 в каспазу-3, что в конечном итоге приводит к апоптозу [73].

МРТ-пора, ответственная за проницаемость митохондрий, модулируется еще одним К+-каналом: Са2+-зависимым К+-каналом митохондрий (BKCa Big-conductance Ca2+-activated K+ channel) [74—77]. Установлено, что открытие этих каналов сопровождается увеличением продукции O2-*.

Как известно, цитохромы дыхательной цепи митохондрий — это кислород-чувствительные ферменты и основные источники активных форм кислорода (АФК) в клетке [78, 79]. При развитии ишемии увеличение продукции АФК компонентами электронно-транспортной цепи возрастает лавинообразно [79, 80]. Примечательно, что наибольшее содержание АФК регистрируется в миокарде при длительной (более 30 мин) ишемии, характеризующейся очень низким уровнем кислорода в ткани миокарда [54, 79]. Предполагается, что гипоксия сопровождается увеличением количества восстановленных форм переносчиков дыхательной цепи (НАД, коэнзим Q и др.), подвергающиеся аутоокислению с образованием АФК даже при низких концентрациях кислорода [54].

Трудно недооценить роль АФК в развитии ишемии миокарда [78—81]. Установлено, что АФК выступают важным фактором ишемического повреждения миокарда [82—85] и аритмогенеза [86, 87].

Немаловажную роль в предотвращении нарушений микроциркуляции, развивающихся при ишемии, отводится состоятельности регулирующей системы «NO-синтаза (NOS) — оксид азота» [88—92]. Помимо вазомоторных эффектов радикала оксида азота (NO*) в настоящее время открыто множество его внутриклеточных функций. Установлено, что NO* может конкурентно ингибировать цитохромоксидазу, тем самым участвуя в регуляции выработки супероксидного радикала и перекиси водорода [55]. Оксид азота способен активировать митохондриальные АТФ-чувствительные К+-каналы, предупреждать образование MPT-пор и регулировать митохондриальный биогенез [93]. Оксид азота активирует растворимую гуанилатциклазу, что ведет к выработке цГМФ с последующей активацией протеинкиназы С и ее регуляторного каскада [90].

Метаболические расстройства, развивающиеся при ишемии, можно охарактеризовать как накопление ионов водорода и фосфата, а также увеличенный выход аденозина и ионов калия из клетки [89, 94—101]. Эти метаболические последствия ишемии фактически направлены на защиту клеточного метаболизма, ресурсов клеток от быстрого использования. По сути при глубокой ишемии клетки впадают в состояние гибернации, основная цель которой — обеспечить жизнеспособность клеток в ожидании возможного восстановления кровотока. По даннымS. Rahimtoola, давшего название этому феномену в 1984 г. [102]: «Гибернация миокарда — это тонкий механизм регуляции, адаптирующий функциональную активность миокарда к конкретным условиям кровоснабжения, т.е. это защитная реакция страдающего сердца». Быстрая реперфузия, т.е. восстановление кровотока к исходному уровню в таком гибернированном сердце, устраняет этот метаболический защитный механизм и способна возродить сократительную функцию миокарда [83]. По образному выражению L. Opie [29]: «Участки пораженного миокарда находятся как бы в уснувшем состоянии, но способны проснуться после восстановления кровотока». При этом степень и качество его восстановления зависят прежде всего от продолжительности ишемического периода. Восстановление энергетического метаболизма после кратковременной ишемии (не более 5 мин) происходит полностью. Более того, КМ приобретают повышенную резистентность к следующему ишемическому воздействию [3, 100, 101]. Однако, если кровоток восстанавливается после периода длительной ишемии, то сократительная функция сердца может возобновиться и в условиях неполного энергетического ресурса клетки. Для такого состояния в литературе используется термин «оглушенный» или реперфузионный миокард [99, 101, 102]. Основной проблемой этого состояния является продолжение повреждения внутриклеточных структур, которое в значительной степени обусловлено действием свободных радикалов кислорода, образующихся в большом количестве при реперфузии поврежденного участка, которая возвращает кислород в ишемизированные клетки [3, 85].

Причиной длительного снижения контрактильности миокарда принято считать реперфузионное повреждение [3, 101]. Миокард в стадии реперфузии, даже после кратковременной, обратимой ишемии выявляет длительное угнетение контрактильной функции, что является следствием ультраструктурных, метаболических, сосудистых, электрофизиологических и других нарушений [3, 84].

Исходя из этого следует различать понятие «спящий»/ «гибернирующий» (hibernating myocardium) и «оглушенный»/ «реперфузионный» (miocardial stunning) миокард. «Спящий» миокард возникает при хронической ишемии, «оглушенный» — в ходе реперфузии, после непостоянной ишемии (см. таблицу).

Основные дифференциально-диагностические отличия функционального состояния миокарда при гибернации и «оглушенности»


При «спящем» миокарде кровоток хронически снижен, при «оглушенном» — нормальный или почти нормальный [14]. Это наиболее важные различия. Функция левого желудочка в обоих случаях снижена. При «спящем» миокарде сохраняется соответствие между изменением его функции и нарушением кровотока, при «оглушенном» этого соответствия нет: функция левого желудочка и сократимость нарушены, развивается ишемическая дисфункция, в то же время кровоток отстается нормальным или почти нормальным [63, 99]. При «оглушенном» миокарде наблюдается спонтанное постепенное восстановление функции сердечной мышцы. Глубокое угнетение его функции при «спящем» миокарде продолжается неопределенно долго, и если коронарный кровоток не улучшается, то происходит прогрессирование изменений вплоть до некроза сердечной мышцы. Функция левого желудочка восстанавливается только при нормализации кровотока [14].

Таким образом, ишемия приводит к выраженным нарушениям процессов энергообразования и повреждению клеточных структур миокарда, особенно после возобновления поставки кислорода, т.е. реперфузии. Переключение на анаэробные метаболические пути приводит к тому, что запасы АТФ снижаются, т.к. последний превращается в АДФ и АМФ с ограниченной возможностью рефосфорилирования. При более тяжелом или более длительном дефиците кислорода поддержание достаточных уровней богатых энергией фосфатных соединений, особенно АТФ, становится невозможным. Большая часть энергозависимых процессов замедляется или прекращается. Это ведет к более глубоким нарушениям клеточной функции, неспособности поддерживать ионное равновесие и, в конечном итоге, к гибели клетки.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  • Лукьянова Л.Д. Современные проблемы адаптации к гипоксии. Сигнальные механизмы и их роль в системной регуляции. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2011;1:3-19.
  • Райвио К.О., Антонов А.Г., Сафонова Т.Я. Биохимические параметры гипоксии плода и новорожденного. Гипоксия плода и новорожденного. М.: Медицина. 1984.
  • Хаткевич А.Н., Дворянцев С.Н., Капелько В.И., Рууге Э.К. Защитный эффект ишемической предпосылки (прекондиционирования): влияние длительности ишемии. Кардиология. 1998;5:4-8.
  • Новиков В.С. Гипоксия: адаптация, патогенез, клиника. СПб.: ЭЛБИ; 2000.
  • Заднипряный И.В., Третьякова О.С., Сатаева Т.П. Особенности развития митохондриальной дисфункции при гипоксических состояниях. International scientific review. 2016;12(2).
  • Зарубина И.В. Современные представления о патогенезе гипоксии и ее фармакологической коррекции. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2011;9(3):31-48.
  • Лукьянова Л.Л. Современные проблемы гипоксии. Вестник РАМН. 2002;9:3-12.
  • Нарыжная Н. В., Лишманов Ю.Б., Колар Ф., Маслов Л.Н., Жанг И., Портниченко А.Г. Внутриклеточные механизмы кардиопротекции при адаптации к гипоксии. Триггеры и киназные каскады. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2011;97(9):923-938.
  • Калюжин В.В., Тепляков А.Т., Беспалова И.Д., Калюжина Е.В. К вопросу об ишемической дисфункции миокарда. Бюллетень сибирской медицины. 2014;(6).
  • Baker JE, Holman P, Kalyanaraman B, Griffith OW, Pritchard KA, jr. Adaptation to chronic hypoxia confers tolerance to subsequent myocardial ischemia by increased nitric oxide production. Ann NY Acad Sci. 1999;874: 236-253.
  • Zadnipryany IV, Tretiakova OS, Sataieva TP, Zukow W. Experimental review of cobalt induced cardiomyopathy. Russian Open Medical Journal. 2017;6(1):103-107.
  • Немков А.С., Яковлев Д.А., Борисов А.И., Белый С.А. Гибернация и станнинг — особые формы существования миокарда при ишемической болезни сердца Часть I. Гибернация. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2011;10(2)(38):5-12.
  • Немков А.С., Яковлев Д.А., Борисов А.И., Белый С.А. Гибернация и станнинг — особые формы существования миокарда при ишемической болезни сердца Часть II. Станнинг. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2011;10(3)(39):4-9.
  • Третьякова О.С., Заднипряный И.В. Перинатальная гипоксия и феномен «оглушенного» миокарда новорожденных. Современная педиатрия. 2007;17(4):177-180.
  • Бережанская С.Б., Лукьянова Е.А. Уровень биогенных аминов в крови детей с перинатальным гипоксически-ишемическим и травматическим поражением ЦНС. Педиатрия. 2002;1:23-26.
  • Прахов А.В., Гапоненко В.А., Игнашина Е.Г. Болезни сердца плода и новорожденного ребенка. Н. Новгород: Изд. 2001.
  • Прахов А.В. Коррекция транзиторной постгипоксической ишемии миокарда у новорожденных. Педиатрия. 1998;(5):38-42.
  • Заднипряный И.В., Третьякова О.С., Сатаева Т.П. Триггерные факторы апоптоза кардиомиоцитов у новорожденных. МиД. 2014;(2).
  • Третьякова О.С. Энергетический обмен в гипоксически поврежденном миокарде новорожденных. Украинский медицинский журнал. 2003;(5):107-116.
  • Tretyakova O.S., Zadnipryanyi I.V. Clinical and morphological aspects of hypoxic damage of conductive system of newborn’s heart. Tavricheskiy Mediko-Biologicheskiy Vestnik. 2007;10(3):96-99.
  • Vinogradova I.V., Ivanov D.O. Transient myocardial ischemia in newborn. Arterial’naya Gipertenziya (Arterial Hypertension). 2013;19(4):343-347. https://doi.org/10.18705/1607-419X-2013-19-4-343-347
  • Галенко-Ярошевский П.А., Гацура В.В. Экспериментальные аспекты оптимизации фармакотерапии острой ишемии миокарда. М.: Медицина; 2000.
  • Gatsura V.V., Leonidov N.B. Substrates and enzymes of energy metabolism as inotropic agents. J Mol Cell Cardiol. 1998;30(5):173.
  • Ленинджер А. АТФ-цикл и биоэнергетика клетки. Основы биохимии. М.: Мир; 1985.
  • Ишемия миокарда: от понимания механизмов к адекватному лечению (кр. стол). Кардиология. 2000;9:106-119.
  • Poole-Wilson P. Mechanism of cell death in heart muscle after hypoxia or ischemia. In: Miocardial ischemia and protection. New York; 1983.
  • Frohlich E.D. Vascular effects of the Krebs intermediate metabolites. Am J Physiol. 1985;208(1):149-153.
  • Opie L. Myocardial energy metabolism. Adv Cardiol (Basel). 1974;12:70-83.
  • Opie L. Cardiac metabolism in ischemic heart disease. Arch MaCoeur Vaiss. 1999;92(12):1755-1760.
  • Opie L. Role of carnitine in fatty acid metabolism of normal and ischemic myocardium. Am Heart J. 1979;3:375-388.
  • Jennings R.B., Hawkins H.K. Ultrastructural changes of acute miocardial ischemia. Degradative Process in heart and Sceletal Mascle. Amsterdam: Elsevier; 1980.
  • Петровский Б.В., Ефуни С.Н. Основы гипербарической оксигенации. М.; 1976.
  • Меерсон Ф.З., Пшенникова М.Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. М.: Медицина; 1988.
  • Третьякова О.С., Заднiпряний І.В. Вторинна мiтохондрiальна недостатнiсть кардiомiоцитiв як маркер енергетичної неспроможностi мiокардаза умов перинатальної гiпоксiї. Перинатология и педиатрия. 2002;4:15-17.
  • Полтавченко Г.М., Евсеев В.В., Аксенова Н.В. Участие адениновых нуклеотидов и производных аденозина в механизмах адаптации к гипоксии. Фармакологическая коррекция гипоксических состояний. М.; 1988.
  • Cmoller J., Thielsen B., Schaible T.F., Reiss I., Kohl M. Value of myocardial hypoxia markers (creatine kinase and its MB-fraction (troponin-T, QT-intervals) and serum creatinine for the retrospective diagnosis of perinatal asphyxia. Biol Neonate.1998;73(6):367-374.
  • Andrieu-Abadie N., Jaffrezou J-P., Hatem S. L-carnitine prevents doxorubocin-induced apoptosis of cardiac myocytes: role of inhibition of an acid sphingomyelinase-derived ceramide generation. J Mol Cell Cardiol. 1999;(6):A71-A71.
  • Шамсиев Ф.С., Мухамедова Х.Т., Сердешнова И.А., Хасанова Г.С Клинико-патогенетическое обоснование применения солкосерила у новорожденных с перинатальной гипоксией. Российский педиатрический журнал. 2001;4:53-56.
  • Гунько И.Н. Роль процессов свободнорадикального окисления в развитии эндотелиальной дисфункции и гемореологических нарушений у больных с острым коронарным синдромом. Український медичний часопис. 2002;31(5):138-141.
  • Третьякова О.С., Казак С.С., Заднiпряний I.В. Корекцiя дисметаболiзму гiпоксично ушкодженого мiокарда новонароджених. Современная педиатрия. 2006;11(2):177-180.
  • Толейкис А.И., Вавржинкова Х.А., Гуттерова Н.И. Роль карнитина в знергетическом обмене митохондрий и миокардиальной клетки при ишемии и постишемической реперфузии. Вопросы медицинской химии. 1986;32(6):106-110.
  • Скулачев В.П. Трансформация энергии в биомембранах. М.: Наука; 1972.
  • Borchi E., Parri M., Papucci L., Becatti M., Nassi N, Nassi P., Nediani C. Role of NADPH oxidase in H9c2 cardiac muscle cells exposed to simulated ischemia-reperfusion. J Cell Mol Med. 2009;13(8B):2724-2735.
  • Gatsura V.V., Sernov L.N. Influence of glycolysis activators and Krebs cycle internediates on early postocclusive arrhythmias. J Mol Cell Cardiol. 1989;21(4):82.
  • Lambert A., Brand M.D. Inhibitors of the quinone-binding site allow rapid superoxide production from mitochondrial NADH: ubiquinone oxidoreductase (complex I). J Bul Chem. 2004;279(39):414-420.
  • Borger D.R., Gavrilescu L.C., Bucur M.C., Ivan M., DeCaprio J.A. AMP-activated protein kinase is essential for survival in chronic hypoxia. Biochem Biophys Res Commun. 2008;370(2):230-234.
  • De Wolf D., Rondia G., Verhaaren H., Matthys D. Adenosine triphosphate treatment for supraventricular tachycardia in infants. Eur J Pediatr. 1994;9:668-671.
  • Yuan G., Nanduri J., Khan S., Semenza G.L., Prabhakar N.R. InductionpfHIF-1a expression by intermittent hypoxia: involvement of NADPH oxidase, Ca2+ signaling, prolyl hydroxylases and mTOR. J Cell Physiol. 2008;217:674-685.
  • Wong A.K., Howie J., Petrie J.R., Lang C.C. AMP-activated protein kinase pathway: a potential therapeutic target in cardiometabolic disease. Clin Sci (Lond.). 2009;8(116) 607-620.
  • Шабанов П.Д., Зарубина И.В., Новиков В.Е., Цыган В.Н. Метаболические корректоры гипоксии. СПб.; 2010.
  • Bartelds B, Knoester I, Beaufort Krol GC, Smid GB, Tokens J. Myocardial lactate metabolism in fetal and newborn lambs. Circulation. 1999;14:1892-1897.
  • Samaja M., Allibardi S., Margonato V. Effects of trimetazidine on rat heart post ischemic recovery. Mol Cell Cardiol. 1998;30(5):9.
  • Kruger K., Hallberg B., Blennow M., Kublickas M., Westgren M. Predictive value of fetal scalp blood lactate concentration and pH as markers of neurologic disability. Am J Obstet Gynecol. 1999;181(5):1072-1078.
  • Guzy R.D., Schumacker P.T. Oxygen sensing by mitochondria at complex III: the paradox of increased reactive oxygen species during hypoxia. Exp Physiol. 2006;91:807-819.
  • Poderoso J.J., Carreras M.C., Lisdero C., Riobo N., Schopfer F., Boveris A. Nitric oxide inhibits electron transfer and increases superoxide radical production in rat heart mitochondria and submitochondrial particles. Arch Biochem Biophys. 1996;328:85-92.
  • Low J.A., Victory R., Derrick E.J. Predictive value of electronic fetal monitoring for intrapartum fetal asphyxia with metabolic acidosis. Obstet Gynecol. 1999;93(2):285-291.
  • Schlotter C.M. Pre-pathologic cardiotocographic pattern in second stage of labor. Analysis of the incidence of acidosis and recommendations for fetal blood gas analysis. Zentralbl Gynakol. 1997;119(3):117-122.
  • Надеев А.Д., Гончаров Н.В. Активные формы кислорода в клетках сердечно-сосудистой системы. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2014;(4).
  • Nakanishi T., Seguchi M., Rsuchiya T., Yasukouchi S., Takao A. Effect of acidosis on intracellular pH and calcium conctntration in the newborn and adult rabbit myocardium. Circ Res. 1990;1:111-123.
  • Толоткова С.А., Козырев О.А., Молотков А.О., Хохлова Ю.А. Основные ишемические синдромы: современное состояние проблемы. Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2017;2.
  • Заднипряный И.В., Третьякова О.С., Сатаева Т.П. Морфологический субстрат вторичной митохондриальной дисфункции при транзиторной ишемии миокарда у крысят. Таврический медико-биологический вестник. 2013;16(3-1):174-178.
  • Ягудин Т.А., Шабанова А.Т., Лиу Хонг-Ю. Новые аспекты в механизмах ишемического и реперфузионного повреждения миокарда. Креативная хирургия и онкология. 2018;(3).
  • Галагудза М.М., Сонин Д.Л., Александров И.В. Гибернация миокарда: молекулярные механизмы, клиническая значимость и методы диагностики. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2019;18(3):9-15. https://doi.org/10.24884/1682-6655-2019-18-3-9-15
  • Зоров Д.Б., Исаев Н.К., Плотников Е.Ю., Силачев Д.Н. Перспективы митохондриальной медицины. Биохимия. 2013;78(9):1251-1264.
  • Cameron JS, Baghdady R. Role of ATP sensitive potassium channels in long term adaptation to metabolic stress. Cardiovasc Res. 1994;28:788-796.
  • Newcomb E.W., Lukyanov Y., Schnee T. Noscapine inhibits hypoxia-mediated HIF-1alpha expression and angiogenesis in vitro: a novel function for an old drug. Int J Oncol. 2006;28(5):1121-1131.
  • Crawford R.M., Jovanovic S., Budas G.R., Davies A.M., Lad H., Wenger R.H., Robertson K.A., Roy D.J., Ranki H.J., Jovanovic A. Chronic mild hypoxia protects heart-derived H9c2 cells against acute hypoxia/reoxygenation by regulating expression of the SUR2A subunit of the ATP-sensitive K+ channel. J Biol Chem. 2003;278(33):31 444-31 455.
  • Zhang Z., Yan J., Chang Y. Hypoxia Inducible Factor-1 as a target for neurodegenerative diseases. Cur Med Chem. 2011;18(28):4335-4343.
  • Zhu H.F., Dong J.W., Zhu W-Zh., Ding H.L., Zhou Zh.N. ATP-dependent potassium channels involved in the cardiac protection induced by intermittent hypoxia against ischemia/reperfusion injury. Life Sci. 2003;73(10):1275-1287.
  • Semenza G.L. Regulation of oxygen homeostasis by hypoxia-inducible factor 1. Physiology (Bethesda). 2009;24:97-106.
  • Новиков В.Е., Левченкова О.С. Гипоксией индуцированный фактор (HIF-1α) как мишень фармакологического воздействия. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2013;2:8-16.
  • Kroemer G., Galluzzi L., Brenner C. Mitochondrial membrane permeabilization in cell death. Physiol Rev. 2007;87(1):99-163.
  • Oskarsson H., Coppey L., Weiss R., Li W.G. Antioxidants attenuate myocyte apoptosis in the remote non-infarcted myocardium following large myocardial infarction. Cardiovasc Res. 2000;45(3):679-687.
  • Xu W, Liu Y, Wang S, McDonald T, Van Eyk JE, Sidor A, P’ Rourke B. Cytoprotective role of Ca2+-activated K+ channels in the cardiac inner mitochondrial membrane. Science. 2002;298:1029-1033.
  • Crompton M, Ellinger H, Coati A. Inhibition by cyclosporine A of a Ca2+-dependent pore in heart mitochondria activated by inorganic phosphate and oxidative stress. Biochem J. 1988;255(1):357-360.
  • Пожилова Е.В., Новиков В.Е., Левченкова О.С. Регуляторная роль митохондриальной поры и возможности ее фармакологической модуляции. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2014;(3).
  • Левченкова О.С., Новиков В.Е., Пожилова Е.В. Митохондриальная пора как мишень фармакологического воздействия. Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2014;(4).
  • Stewart S., Lesnefsky E.J., Chen Q. Reversible blockade of electron transport with amobarbital at the onset of reperfusion attenuates cardiac injury. Transl Res. 2009;153(5):224-231.
  • Vanden Hoek T.L., Li C., Shao Z., Schumacker P.T., Becker L.B. Significant levels of oxidants are generated by isolated cardiomyocytes during ischemia prior to reperfusion. J Mol Cell Cardiol. 1997;29(9):2581-2583.
  • Новиков В.Е., Левченкова О.С., Пожилова Е.В. Роль активных форм кислорода в физиологии и патологии клетки и их фармакологическая регуляция. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2014;(4).
  • Сазонтова Т.Г., Анчишкина Н.А., Жукова А.Г., Бедарева И.В., Пылаева Е.А., Кривенцова Н.А., Полянская А.А., Юрасов А.Р., Архипенко Ю.В. Роль активных форм кислорода и редокс-сигнализации при адаптации к изменению содержания кислорода. Физиологический журнал. 2009;54(2):18-32.
  • Levraut J., Iwase H., Shao Z.H., VandenHoek T.L., Schumacker P.T. Cell death during ischemic relationship to mitochondrial depolarization and ROS generation. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2000;284(2):H549-H558.
  • Верещагин И.Е., Тарасов Р.С., Верещагин Е.И., Ганюков В.И. Методы кардиопротекции при инфаркте миокарда. Современное состояние вопроса. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2016;(4).
  • Kersten J., Pagel P., Chilian W., Warltier D. Multifactorial basis for coronary collateralization: a complex adaptive response to ischemia. Cardiovasc Res. 1999;43(1):44-57.
  • Sabatino G., Ramenghi L.A., Verrotti A., Gerboni S., Chiarelli F. Persistently low cardiac output predicts high mortality in newborns with cardiogenic shock. Panminerva Med. 1998;40(1):28-32.
  • Нарыжная Н.В., Некар Я., Маслов Л.Н., Лишманов Ю.Б., Колар Ф., Ласукова Т.В. Роль сарколеммальных и митохондриальных КАТФ-каналов в реализации кардиопротекторного и антиаритмического эффектов разных режимов гипобарической адаптации. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2009;95(8):837-849.
  • Yang L, Korge P, Weiss JN, Qu Z. Mitochondrial oscillations and waves in cardiac myocytes: insights from computational models. Biophys J. 2010;98(8):1428-1438.
  • Зотова И.В., Затейщиков Д.А., Сидоренко Б.А. Синтез оксида азота и развитие атеросклероза. Кардиология. 2002;4:58-57.
  • Корж А.Н., Евлахова А.И. Нарушение функционального состояния эндотелия при ишемической болезни сердца: пути фармакологической коррекции. Украинский кардиологический журнал. 1999;2:11-14.
  • Hare JM. Nitric oxide and excitation-contraction coupling. J Mol Cell. Cardiol. 2003;35:719-729.
  • Barnucz E, Veres G, Hegedűs P. Prolylhydroxylase inhibition preserves endothelial cell function in a rat model of vascular ischemia reperfusion injury. J Pharmacol Exp Ther. 2013;345(1):25-31.
  • Новиков В.Е., Левченкова О.С., Пожилова Е.В. Митохондриальная синтаза оксида азота и ее роль в механизмах адаптации клетки к гипоксии. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2016;(2).
  • Nisoli E., Clementi E., Paolucci C., Cozzi V., Tonello C., Sciorati C., Bracale R., Valerio A., Francolini M., Moncada S., Carruba M.O. Mitochondrial biogenesis in mammals: the role of endogenous nitric oxide. Science. 2003;299:896-899.
  • Sato T., Saito T., Saegusa N., Nakaya H. Mitochondrial Ca2+-activated K+ channels in cardiac myocytes: a mechanism of the cardioprotective effect and modulation by protein kinase A. Circulation. 2005;111:198-203.
  • Sato T., Arita M., Kiyosue T. Differential mechanism of block of palmitoyllysophosphatidylcholine and palmitoylcarnitine on inward rectifier K channels of guinea pig ventricular myocytes. Cardiovasc Drug Ther. 1993;7:575-584.
  • Jennings R.B., Reimer K.A. Lethal myocardial ischemic injury. Am J Pathol. 1982;122:219-231.
  • Портниченко В.И., Носарь В.И., Портниченко А.Г. Фазовые изменения энергетического метаболизма. Фізіол. журн. 2012;58(4):3-20.
  • Van der Vusse G., Van Bilsen M., Glatz J. Cardiac fatty acid uptake and transport in health and disease. Cardiovasc Res. 2000;45(2):279-293.
  • Berry G.J., Masek M. The pathology of hibernating myocardium. Nucl Med Commun. 2002;23(4):303-309.
  • Heidbreder M., Naumann A., Tempel K., Dominiak P., Dendorfer A. Remote vs. ischaemic preconditioning: the differential role of mitogen-activated protein kinase pathways. Cardio Vasc Res. 2008;78(1):108-115.
  • Genade S., Moolman J.A., Marais E., Lochner A. Ishaemic preconditioning (PC): are the opioids involved? J Mol Cell Cardiol. 1999;31(6):95.
  • Shahbudin H., Rahimtoola M.B. Concept and evaluation of hibernating myocardium. J Ann Rev Med. 1999;50:75-86.
  • Подтверждение e-mail

    На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

    Подтверждение e-mail

    Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.