ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Модели эмбриональных опухолей центральной нервной системы на основе Danio rerio

Модели эмбриональных опухолей центральной нервной системы на основе Danio rerio

Авторы:
Селина П.И.,
Лунина Н.А.

Журнал: Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2025;43(4-2):68-73.

DOI: 10.17116/molgen20254304268

Прочитано: 476 раз

Резюме

Эмбриональные злокачественные опухоли центральной нервной системы представляют серьезную угрозу для жизни детей и делают весьма актуальными поиски новых терапевтических стратегий в этой области педиатрической медицины. Особенно важна разработка новых экспериментальных подходов, в том числе модельных систем, для проведения медико-биологических исследований. В последнее время костистая пресноводная рыба Danio rerio приобрела популярность как альтернатива широко используемым моделям млекопитающих благодаря простоте разведения, быстрому внеутробному развитию и прозрачности эмбрионов. Эти особенности делают рыбок D. rerio крайне полезными для изучения возникновения, прогрессирования, метастазирования опухолей и скрининга лекарственных препаратов в живом организме, что необходимо для успешного развития персонализированной медицины. Обзор посвящен описанию трансплантационных подходов к моделированию эмбриональных опухолей центральной нервной системы на основе D. rerio. Рассмотрены как ксеногенные, так и сингенные трансплантационные модели, использование которых поможет изучению биологии эмбриональных опухолей центральной нервной системы и созданию организменных тест-систем для поиска противоопухолевых лекарств.

Ключевые слова

  • эмбриональные опухоли ЦНС
  • Danio rerio
  • ксенотрансплантация
  • сингенная трансплантация
  • модельный организм

Дата поступления: 30.09.2025

Дата принятия в печать: 15.10.2025

Дата публикации: 08.12.2025

Литература / References
  1. Global health estimates: Leading causes of death, 2000-2021. Accessed September 1, 2025. https://www.who.int/data/gho/data/themes/mortality-and-global-health-estimates/ghe-leading-causes-of-death
  2. Siegel RL, Kratzer TB, Giaquinto AN, Sung H, Jemal A. Cancer statistics, 2025. CA Cancer J Clin. 2025;75(1):10-45. https://doi.org/10.3322/caac.21871
  3. Злокачественные новообразования в России в 2023 году (заболеваемость и смертность). Под ред. Каприна А.Д. [и др.]. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена; 2024.
  4. Price M, Ballard C, Benedetti J, Neff C, Cioffi G, Waite KA, et al. CBTRUS Statistical Report: Primary Brain and Other Central Nervous System Tumors Diagnosed in the United States in 2017-2021. Neuro Oncol. 2024;26(Supplement_6):vi1-vi85. https://doi.org/10.1093/neuonc/noae145
  5. Lu QR, Qian L, Zhou X. Developmental origins and oncogenic pathways in malignant brain tumors. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2019;8(4):e342. https://doi.org/10.1002/wdev.342
  6. Louis DN, Perry A, Wesseling P, Brat DJ, Cree IA, Figarella-Branger D, et al. The 2021 WHO Classification of Tumors of the Central Nervous System: a summary. Neuro Oncol. 2021;23(8):1231-1251. https://doi.org/10.1093/neuonc/noab106
  7. Диникина Ю.В., Белогурова М.Б. Особенности новой классификации опухолей центральной нервной системы ВОЗ 2021: взгляд клинициста. Российский журнал персонализированной медицины. 2022;2(4):77-90. https://doi.org/10.18705/2782-3806-2022-2-4-77-90
  8. d’Amati A, Bargiacchi L, Rossi S, Carai A, Bertero L, Barresi V, et al. Pediatric CNS tumors and 2021 WHO classification: what do oncologists need from pathologists? Front Mol Neurosci. 2024;17:1268038. https://doi.org/10.3389/fnmol.2024.1268038
  9. Lafay-Cousin L, Bouffet E, Strother D, Rudneva V, Hawkins C, Eberhart C, et al. Phase II Study of Nonmetastatic Desmoplastic Medulloblastoma in Children Younger Than 4 Years of Age: A Report of the Children’s Oncology Group (ACNS1221). J Clin Oncol. 2020;38(3):223-231. https://doi.org/10.1200/JCO.19.00845
  10. Dufour C, Foulon S, Geoffray A, Masliah-Planchon J, Figarella-Branger D, Bernier-Chastagner V, et al. Prognostic relevance of clinical and molecular risk factors in children with high-risk medulloblastoma treated in the phase II trial PNET HR+5. Neuro Oncol. 2021;23(7):1163-1172. https://doi.org/10.1093/neuonc/noaa301
  11. Gajjar A, Robinson GW, Smith KS, Lin T, Merchant TE, Chintagumpala M, et al. Outcomes by Clinical and Molecular Features in Children With Medulloblastoma Treated With Risk-Adapted Therapy: Results of an International Phase III Trial (SJMB03). J Clin Oncol. 2021;39(7):822-835. https://doi.org/10.1200/JCO.20.01372
  12. Gupta T, Sinha S, Chinnaswamy G, Vora T, Prasad M, Bhat V, et al. Safety and efficacy of concurrent carboplatin during full-dose craniospinal irradiation for high-risk/metastatic medulloblastoma in a resource-limited setting. Pediatr Blood Cancer. 2021;68(5):e28925. https://doi.org/10.1002/pbc.28925
  13. Leary SES, Packer RJ, Li Y, Billups CA, Smith KS, Jaju A, et al.Efficacy of Carboplatin and Isotretinoin in Children With High-risk Medulloblastoma: A Randomized Clinical Trial From the Children’s Oncology Group. JAMA Oncol. 2021;7(9):1313-1321. https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2021.2224
  14. Peyrl A, Chocholous M, Sabel M, Lassaletta A, Sterba J, Leblond P, et al. Sustained Survival Benefit in Recurrent Medulloblastoma by a Metronomic Antiangiogenic Regimen: A Nonrandomized Controlled Trial. JAMA Oncol. 2023;9(12):1688-1695. https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2023.4437
  15. Shimazaki K, Kurokawa R, Franson A, Kurokawa M, Baba A, Bou-Maroun L, et al. Neuroimaging features of FOXR2-activated CNS neuroblastoma: A case series and systematic review. J Neuroimaging. 2023;33(3):359-367. https://doi.org/10.1111/jon.13095
  16. White RM, Sessa A, Burke C, Bowman T, LeBlanc J, Ceol C, et al. Transparent adult zebrafish as a tool for in vivo transplantation analysis. Cell Stem Cell. 2008;2(2):183-9. https://doi.org/10.1016/j.stem.2007.11.002
  17. Doszyn O, Dulski T, Zmorzynska J. Diving into the zebrafish brain: exploring neuroscience frontiers with genetic tools, imaging techniques, and behavioral insights. Front Mol Neurosci. 2024;17:1358844. https://doi.org/10.3389/fnmol.2024.1358844
  18. Henke K, Farmer DT, Niu X, Kraus JM, Galloway JL, Youngstrom DW. Genetically engineered zebrafish as models of skeletal development and regeneration. Bone. 2023;167:116611. https://doi.org/10.1016/j.bone.2022.116611
  19. Tamburello M, Abate A, Sigala S. Cancer cell xenografts in zebrafish embryos as an experimental tool in drug screening for adrenocortical carcinoma. Minerva Endocrinol (Torino). 2025;50(2):182-193. https://doi.org/10.23736/S2724-6507.24.04270-2
  20. Dash SN, Patnaik L. Flight for fish in drug discovery: a review of zebrafish-based screening of molecules. Biol Lett. 2023;19(8):20220541. https://doi.org/10.1098/rsbl.2022.0541
  21. Costa B, Estrada MF, Barroso MT, Fior R. Zebrafish Patient-Derived Avatars from Digestive Cancers for Anti-cancer Therapy Screening. Curr Protoc. 2022;2(4):e415. https://doi.org/10.1002/cpz1.415
  22. Moore JC, Tang Q, Yordán NT, Moore FE, Garcia EG, Lobbardi R, et al. Single-cell imaging of normal and malignant cell engraftment into optically clear prkdc-null SCID zebrafish. J Exp Med. 2016;213(12):2575-2589. https://doi.org/10.1084/jem.20160378
  23. Mizgirev I, Revskoy S. Generation of clonal zebrafish lines and transplantable hepatic tumors. Nat Protoc. 2010;5:383-394. https://doi.org/10.1038/nprot.2010.8
  24. Zhang Y, Wiest DL. Using the Zebrafish Model to Study T Cell Development. Methods Mol Biol. 2016;1323:273-92. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-2809-5_22
  25. Page DM, Wittamer V, Bertrand JY, Lewis KL, Pratt DN, Delgado N, et al. An evolutionarily conserved program of B-cell development and activation in zebrafish. Blood. 2013;122(8):e1-11. https://doi.org/10.1182/blood-2012-12-471029
  26. Gatzweiler C, Ridinger J, Ayhan S, Najafi S, Peterziel H, Witt O, Oehme I. Evaluation of Antitumor and On-Target Activity of HDAC Inhibitors with the Zebrafish Embryo Xenograft Model. Methods Mol Biol. 2023;2589:75-85. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-2788-4_5
  27. Seiboldt T, Zeiser C, Nguyen D, Celikyürekli S, Herter S, Najafi S, et al. Synergy of retinoic acid and BH3 mimetics in MYC(N)-driven embryonal nervous system tumours. Br J Cancer. 2024;131(4):763-777. https://doi.org/10.1038/s41416-024-02740-5
  28. Tsea I, Olsen TK, Polychronopoulos PA, Tümmler C, Sykes DB, Baryawno N, Dyberg C. DHODH Inhibition Suppresses MYC and Inhibits the Growth of Medulloblastoma in a Novel In Vivo Zebrafish Model. Cancers (Basel). 2024;16(24):4162. https://doi.org/10.3390/cancers16244162
  29. van Bree N. Oppelt AS, Lindström S, Zhou L, Boutin L, Coyle B, et al. Development of an orthotopic medulloblastoma zebrafish model for rapid drug testing. Neuro Oncol. 2025;27(3):779-794. https://doi.org/10.1093/neuonc/noae210
  30. Sturtzel C, Grissenberger S, Bozatzi P, Scheuringer E, Wenninger-Weinzierl A, Zajec Z, et al. Refined high-content imaging-based phenotypic drug screening in zebrafish xenografts. NPJ Precis Oncol. 2023; 7(1):44. https://doi.org/10.1038/s41698-023-00386-9
  31. Casey MJ, Modzelewska K, Anderson D, Goodman J, Boer EF, Jimenez L, et al. Transplantation of Zebrafish Pediatric Brain Tumors into Immune-competent Hosts for Long-term Study of Tumor Cell Behavior and Drug Response. J Vis Exp. 2017;(123):55712. https://doi.org/10.3791/55712
  32. Zeng A, Ye T, Cao D, Huang X, Yang Y, Chen X, et al. Identify a Blood-Brain Barrier Penetrating Drug-TNB using Zebrafish Orthotopic Glioblastoma Xenograft Model. Sci Rep. 2017;7(1):14372. https://doi.org/10.1038/s41598-017-14766-2
  33. Welker AM, Jaros BD, Puduvalli VK, Imitola J, Kaur B, Beattie CE. Standardized orthotopic xenografts in zebrafish reveal glioma cell-line-specific characteristics and tumor cell heterogeneity. Dis Model Mech. 2016;9(2):199-210. https://doi.org/10.1242/dmm.022921
  34. Finotto L, Cole B, Giese W, Baumann E, Claeys A, Vanmechelen M, et al. Single-cell profiling and zebrafish avatars reveal LGALS1 as immunomodulating target in glioblastoma. EMBO Mol Med. 2023;15(11):e18144. https://doi.org/10.15252/emmm.202318144
  35. Pudelko L, Edwards S, Balan M, Nyqvist D, Al-Saadi J, Dittmer J, et al. An orthotopic glioblastoma animal model suitable for high-throughput screenings. Neuro Oncol. 2018;20(11):1475-1484. https://doi.org/10.1093/neuonc/noy071
  36. Kimmel CB, Warga RM, Schilling TF. Origin and organization of the zebrafish fate map. Development. 1990;108(4):581-94. https://doi.org/10.1242/dev.108.4.581
  37. Pinheiro D, Heisenberg CP. Zebrafish gastrulation: Putting fate in motion. Curr Top Dev Biol. 2020;136:343-375. https://doi.org/10.1016/bs.ctdb.2019.10.009
  38. Cabezas-Sainz P, Guerra-Varela J, Carreira MJ, Mariscal J, Roel M, Rubiolo JA, et al. Improving zebrafish embryo xenotransplantation conditions by increasing incubation temperature and establishing a proliferation index with ZFtool. BMC Cancer. 2018;18(1):3. https://doi.org/10.1186/s12885-017-3919-8
  39. Santos-Villadangos M, Sellés-Egea A, Robles V, Valcarce DG. Temperature and photoperiod stress in zebrafish larvae: impacts on development, gene regulation and PGC migration. Fish Physiol Biochem. 2025;51(5):156. https://doi.org/10.1007/s10695-025-01568-x
  40. de Souza AM, da Silva Junior FC, Dantas ÉD, Galvão-Pereira MC, de Medeiros SRB, Luchiari AC. Temperature effects on development and lifelong behavior in zebrafish. Sci Total Environ. 2025;973:179172. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2025.179172
  41. Cabezas-Sáinz P, Pensado-López A, Sáinz BJr, Sánchez L. Modeling Cancer Using Zebrafish Xenografts: Drawbacks for Mimicking the Human Microenvironment. Cells. 2020;9(9):1978. https://doi.org/10.3390/cells9091978
  42. Kimmel CB, Ballard WW, Kimmel SR, Ullmann B, Schilling TF. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 1995;203(3):253-310. https://doi.org/10.1002/aja.1002030302
  43. Raby L, Völkel P, Le Bourhis X, Angrand PO. Genetic Engineering of Zebrafish in Cancer Research. Cancers (Basel). 2020;12(8):2168. https://doi.org/10.3390/cancers12082168
  44. Tasnim M, Wahlquist P, Hill JT. Zebrafish: unraveling genetic complexity through duplicated genes. Dev Genes Evol. 2024;234(2):99-116. https://doi.org/10.1007/s00427-024-00720-6
  45. Rouf MA, Wen L, Mahendra Y, Wang J, Zhang K, Liang S, et al. The recent advances and future perspectives of genetic compensation studies in the zebrafish model. Genes Dis. 2022;10(2):468-479. https://doi.org/10.1016/j.gendis.2021.12.003
  46. Schiavone M, Rampazzo E, Casari A, Battilana G, Persano L, Moro E, et al. Zebrafish reporter lines reveal in vivo signaling pathway activities involved in pancreatic cancer. Dis Model Mech. 2014;7(7):883-94. https://doi.org/10.1242/dmm.014969
  47. Casey MJ, Chan PP, Li Q, Zu JF, Jette CA, Kohler M, et al. A simple and scalable zebrafish model of Sonic hedgehog medulloblastoma. Cell Rep. 2024;43(8):114559. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2024.114559
  48. Modzelewska K, Boer EF, Mosbruger TL, Picard D, Anderson D, Miles RR, et al. MEK Inhibitors Reverse Growth of Embryonal Brain Tumors Derived from Oligoneural Precursor Cells. Cell Rep. 2016;17(5):1255-1264. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2016.09.081
  49. Solin SL, Shive HR, Woolard KD, Essner JJ, McGrail M. Rapid tumor induction in zebrafish by TALEN-mediated somatic inactivation of the retinoblastoma1 tumor suppressor rb1. Sci Rep. 2015;5:13745. https://doi.org/10.1038/srep13745
  50. Schultz LE, Haltom JA, Almeida MP, Wierson WA, Solin SL, Weiss TJ, et al. Epigenetic regulators Rbbp4 and Hdac1 are overexpressed in a zebrafish model of RB1 embryonal brain tumor, and are required for neural progenitor survival and proliferation. Dis Model Mech. 2018;11(6):dmm034124. https://doi.org/10.1242/dmm.034124
  51. Shim J, Choi JH, Park MH, Kim H, Kim JH, Kim SY, et al. Development of zebrafish medulloblastoma-like PNET model by TALEN-mediated somatic gene inactivation. Oncotarget. 2017;8(33):55280-55297. https://doi.org/10.18632/oncotarget.19424
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Острое отравление метадоном и α-пирролидиновалерофеноном тяжелой степени, осложненное остановкой кровообращения.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):110-119

Влияние социальных сетей на формирование дисморфофобий и риск развития расстройств пищевого поведения у студентов.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):104-109

Здоровые молодые взрослые с семейной отягощенностью по алкогольной зависимости: суицидальные мысли, тревога и «поиск новизны».Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):96-103

Кетогенная диета в лечении фармакорезистентной эпилепсии у детей: оценка клинической эффективности, потребления ресурсов здравоохранения и прямых медицинских затрат.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):86-95

Клинико-функциональные особенности болезни Паркинсона при хронической болезни почек.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):79-85

Факторы, ассоциированные с прогрессированием умеренных когнитивных нарушений у пациентов с фибрилляцией предсердий.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):71-78

Распространенность рассеянного склероза в Республике Дагестан.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):66-70

Современный взгляд на немедикаментозную коррекцию когнитивных нарушений.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):59-65

Двигательные дисфункции как промежуточный фенотип шизофрении: систематизированный обзор.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):51-58

Молекулярные и системные механизмы когнитивных нарушений, ассоциированных с коронавирусной инфекцией.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):40-50

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29

  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12

  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru

  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026