ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Автоматизированный подсчет ретикулоцитов: достижения, проблемы стандартизации и клиническая доступность

Автоматизированный подсчет ретикулоцитов: достижения, проблемы стандартизации и клиническая доступность

Авторы:
Хунь Инь Чжоу,
Яксин Хуанг,
Руйцзянь Чжуан,
Шуньян Сюнг,
Джиминг Чжоу,
Тяньцзи Ли,
Юнган Ху

Журнал: Лабораторная служба. 2026;15(1):41-52.

DOI: 10.17116/labs20261501141

Прочитано: 578 раз

Резюме

С появлением в 1980-х годах проточной цитометрии и специализированных флуоресцентных красителей автоматизированный подсчет ретикулоцитов фактически вытеснил традиционную микроскопию, значительно повысив точность и возможный объем выполняемых исследований. Благодаря таким величинам, как индекс незрелости ретикулоцитов (IRF) и ретикулоцитарный индекс (RPI), была обеспечена ранее недостижимая диагностическая возможность фенотипирования анемии, а также стало возможным отслеживание эритропоэза костного мозга в течение времени. Тем не менее, на приборах разных производителей сохраняется заметная гетерогенность аналитических принципов, химического состава реагентов и калибровок, что ограничивает сопоставимость результатов и единообразную интерпретацию между системами. Международный совет по стандартизации в гематологии (ICSH) разрабатывает эталонные материалы, базирующиеся на стабильных клеточных линиях или синтетических микросфероцитах, а также гармонизированные эталонные референтные интервалы для достижения совместимости между приборами. Большие финансовые затраты и строгие требования к обслуживанию высококлассных автоматизированных анализаторов по-прежнему являются серьезным препятствием клинической доступности полностью автоматизированного подсчета ретикулоцитов. Этот обзор сосредоточен на «стандартизации и клинической доступности автоматизированного подсчета ретикулоцитов», разработке основных технических принципов и характеристик инструментов, анализе достижений и проблем стандартизации, а также прогнозе перспективы применения их в мировой клинической практике.

Ключевые слова

  • автоматизированный подсчет ретикулоцитов
  • достижения
  • стандартизация
  • клиническая доступность
  • текущий статус применения
  • индекс незрелости ретикулоцитов

Дата поступления: 23.01.2026

Дата принятия в печать: 28.02.2026

Дата публикации: 08.04.2026

Литература / References
  1. World Health Organization, Health Laboratory Technology and Blood Safety Unit, International Committee for Standardization in Haematology Expert Panel in Cytometry. ICSH guidelines for reticulocyte counting by microscopy on supravitally stained preparations. Geneva: World Health Organization; 1992. Available from: https://iris.who.int/handle/10665/61756.
  2. Bain, BJ, Bates, I, Laffan, MA. Dacie and Lewis practical haematology E-book: Dacie and Lewis practical haematology E-book. London: Elsevier Health Sciences; 2016.
  3. Means, RTJr. Rodgers, GM, Glader, B, Arber, DA, Appelbaum, FR, Dispenzieri, A, Fehniger, TA, editors, et al.. Wintrobe’s clinical hematology, 15th ed. Philadelphia, PA: Lippincott Williams & Wilkins, A Wolters Kluwer Business; 2024.
  4. Sung, HH, Seok, DI, Jung, YH, Kim, DJ, Lee, SJ. Experience of reticulocytes measurement at 720 nm using spectrophotometer. Korean J Clin Lab Sci 2017;49:382-9. https://doi.org/10.15324/kjcls.2017.49.4.382.
  5. Tanke, HJ, Rothbarth, PH, Vossen, JM, Koper, GJ, Ploem, JS. Flow cytometry of reticulocytes applied to clinical hematology. Blood 1983;61:1091-7. https://doi.org/10.1182/blood.V61.6.1091.1091
  6. Davis, BH, Bigelow, N, Ball, ED, Mills, L, Cornwell, GGIII. Utility of flow cytometric reticulocyte quantification as a predictor of engraftment in autologous bone marrow transplantation. Am J Hematol 1989;32:81-7. https://doi.org/10.1002/ajh.2830320202
  7. Van Hove, L, Goossens, W, Van Duppen, V, Verwilghen, RL. Reticulocyte count using thiazole orange. A flow cytometry method. Clin Lab Haematol 1990;12:287-99. https://doi.org/10.1111/j.1365-2257.1990.tb00039.x.
  8. Piva, E, Brugnara, C, Chiandetti, L, Plebani, M. Automated reticulocyte counting: state of the art and clinical applications in the evaluation of erythropoiesis. Clin Chem Lab Med 2010;48:1369-80. https://doi.org/10.1515/CCLM.2010.292.
  9. Piva, E, Brugnara, C, Spolaore, F, Plebani, M. Clinical utility of reticulocyte parameters. Clin Lab Med 2015;35:133-63. https://doi.org/10.1016/j.cll.2014.10.006.
  10. Obstfeld, AE, Davis, BH, Han, J-Y, Urrechaga, E. Report of the International Council for Standardization in Haematology working group for standardization of reticulocyte parameters. Int J Lab Hematol 2024;46:266-74. https://doi.org/10.1111/ijlh.14209
  11. Lim, YK, Chi, HY, Lee, MK, Kim, HR. Necessity of reticulocyte calibration for more accurate and precise results. Ann Lab Med 2018;38:375-7. https://doi.org/10.3343/alm.2018.38.4.375.
  12. Fleming, KA, Horton, S, Wilson, ML, Atun, R, DeStigter, K, Flanigan, J, et al.. The Lancet Commission on diagnostics: transforming access to diagnostics. Lancet 2021;398:1997-2050. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(21)00673-5.
  13. Sharma, S, Zapatero-Rodríguez, J, Estrela, P, O’Kennedy, R. Point-of-care diagnostics in low-resource settings: present status and future role of microfluidics. Biosensors 2015;5:577-601. https://doi.org/10.3390/bios5030577.
  14. Mei, Y, Liu, Y, Ji, P. Understanding terminal erythropoiesis: an update on chromatin condensation, enucleation, and reticulocyte maturation. Blood Rev 2021;46:100740. https://doi.org/10.1016/j.blre.2020.100740.
  15. Ovchynnikova, E, Aglialoro, F, von Lindern, M, van den Akker, E. The shape shifting story of reticulocyte maturation. Front Physiol 2018;9:829. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.00829.
  16. Tang, P, Wang, HQ. Regulation of erythropoiesis: emerging concepts and therapeutic implications. Hematology 2023;28:14. https://doi.org/10.1080/16078454.2023.2250645.
  17. Aphaiwiwat, H, Ketloy, C, Thepnarin, T, Watanaboonyongcharoen, P, Prompetchara, E. Reference intervals and comparative analysis of reticulocyte counts using the Mindray BC-6200, flow cytometry, and manual microscopy. Int J Lab Hematol 2025;47:429-36. https://doi.org/10.1111/ijlh.14438.
  18. Thomas, DW, Hinchliffe, RF, Briggs, C, Macdougall, IC, Littlewood, T, Cavill, I, et al.. Guideline for the laboratory diagnosis of functional iron deficiency. Br J Haematol 2013;161:639-48. https://doi.org/10.1111/bjh.12311.
  19. Auerbach, M, Staffa, SJ, Brugnara, C. Using reticulocyte hemoglobin equivalent as a marker for iron deficiency and responsiveness to iron therapy. Mayo Clin Proc 2021;96:1510-9. https://doi.org/10.1016/j.mayocp.2020.10.061.
  20. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Methods for reticulocyte counting (automated blood cell counters, flow cytometry, and supravital dyes); approved guideline – second edition. CLSI document H44-A2. Wayne, PA: CLSI; 2004.
  21. Carter, JM, McSweeney, PA, Wakem, PJ, Nemet, AM. Counting reticulocytes by flow cytometry: use of thiazole orange. Clin Lab Haematol 1989;11:267-71. https://doi.org/10.1111/j.1365-2257.1989.tb00218.x.
  22. Rowan, R, Van Assendelft, O, Bull, B, Coulter, W, Fujimoto, K. International Council for Standardization in Haematology Expert Panel on Cytometry. Proposed reference method for reticulocyte counting based on the determination of the reticulocyte to red cell ratio. Clin Lab Haematol 1998;20:77-9. https://doi.org/10.1046/j.1365-2257.1998.00104.x.
  23. Jiang, H, Wang, J, Wang, K, Gu, J, Chen, J, Wang, Z. Interferents of automated reticulocyte analysis integrated with relevant clinical cases. Clin Lab 2019;65:1251-9. https://doi.org/10.7754/Clin.Lab.2019.181245.
  24. Uppal, V, Naseem, S, Bihana, I, Sachdeva, MUS, Varma, N. Reticulocyte count and its parameters: comparison of automated analyzers, flow cytometry, and manual method. J Hematopathol 2020;13:89-96. https://doi.org/10.1007/s12308-020-00395-8.
  25. Buttarello, M, Rauli, A, Mezzapelle, G. Reticulocyte count and extended reticulocyte parameters by Mindray BC-6800: reference intervals and comparison with Sysmex XE-5000. Int J Lab Hematol 2017;39:596-603. https://doi.org/10.1111/ijlh.12705.
  26. Schapkaitz, E, Baiden, A, Raburabu, S. Performance evaluation of the new automated Atellica Hema 580 hematology analyzer. Int J Lab Hematol 2024;46:63-71. https://doi.org/10.1111/ijlh.14170.
  27. Fujimaki, K, Hummel, K, Magonde, I, Dammert, K, Hamaguchi, Y, Mintzas, K, et al.. Performance evaluation of the new Sysmex XR-Series haematology analyser. Pract Lab Med 2024;39:e00370. https://doi.org/10.1016/j.plabm.2024.e00370.
  28. Coussee, A, Robbrecht, J, Maelegheer, K, Vandewal, W, Florin, L. Evaluating the performance of the new Sysmex XR-Series haematology analyser: a comparative study with the Sysmex XN-Series. Lab Med 2025;2:5. https://doi.org/10.3390/labmed2010005.
  29. Lin, Z, Lin, Q, Yu, P, Chen, Z, Lin, H, Zhu, B, et al.. Performance evaluation of routine blood and C-reactive protein analysis using Mindray BC-7500 CRP auto hematology analyzer. Ann Transl Med 2022;10:588. https://doi.org/10.21037/atm-22-1642.
  30. Yahagi, K, Arai, T, Katagiri, H, Yatabe, Y, Yokota, H, Nagai, Y, et al.. Performance evaluation of a novel reticulocyte identification method that uses metachromatic nucleic acid staining based on a crossover analysis of emission DNA/RNA light (RNP Determination™) in hematology analyzer Celltac G. Int J Lab Hematol 2022;44:1050-9. https://doi.org/10.1111/ijlh.13947.
  31. Bhagwat, GG, Admane, P, Lath, A, Das, P, Mallick, S, Patel, PM. Evaluation of optical platelet counts in HORIBA Yumizen H2500 and platelet counts by digital morphology platform in cases of thrombocytopenia with platelet interference flag: finding solutions with automation in high volume laboratory. Indian J Hematol Blood Transfus 2024;7. https://doi.org/10.1007/s12288-024-01889-6.
  32. Patel, M, Hoshino, H, Chandras, R, Qu, K, Mukhtar, Z, Lakos, G. Alinity hq reference ranges for reticulocytes and related parameters. Clin Chim Acta 2019;493:S423. https://doi.org/10.1016/J.CCA.2019.03.900.
  33. Bruegel, M, George, TI, Feng, B, Allen, TR, Bracco, D, Zahniser, DJ, et al.. Multicenter evaluation of the cobas m 511 integrated hematology analyzer. Int J Lab Hematol 2018;40:672-82. https://doi.org/10.1111/ijlh.12903.
  34. Kratz, A, Lee, SH, Zini, G, Riedl, JA, Hur, M, Machin, S. Digital morphology analyzers in hematology: ICSH review and recommendations. Int J Lab Hematol 2019;41:437-47. https://doi.org/10.1111/ijlh.13042.
  35. Franchi, R, Giraldi, M, Bertazzolo, W, Bartolini, F, Di Maria, FM, Paltrinieri, S. Pre-analytical and analytical variability of reticulocyte counts in dogs. Vet Rec 2023;192:e2733. https://doi.org/10.1002/vetr.2733.
  36. Makhro, A, Huisjes, R, Verhagen, LP, Mañú-Pereira Mdel, M, Llaudet-Planas, E, Petkova-Kirova, P, et al.. Red cell properties after different modes of blood transportation. Front Physiol 2016;7:288. https://doi.org/10.3389/fphys.2016.00288.
  37. Miller, WG, Keller, T, Budd, J, Johansen, JV, Panteghini, M, Greenberg, N, et al. Recommendations for setting a criterion for assessing commutability of secondary calibrator certified reference materials. Clin Chem 2023;69:966-75. https://doi.org/10.1093/clinchem/hvad104.
  38. Hoenemann, C, Ostendorf, N, Zarbock, A, Doll, D, Hagemann, O, Zimmermann, M, et al.. Reticulocyte and erythrocyte hemoglobin parameters for iron deficiency and anemia diagnostics in patient blood management: a narrative review. J Clin Med 2021;10:4250. https://doi.org/10.3390/jcm10184250.
  39. Chung, Y, Lee, K, Han, M, Kim, JS, Park, J. Comparison of erythrocyte and reticulocyte indices for evaluation of iron deficiency by two automated hematologic analyzers. Clin Lab 2022;68. https://doi.org/10.7754/Clin.Lab.2021.210544.
  40. Hevessy, Z, Toth, G, Antal-Szalmas, P, Tokes-Fuzesi, M, Kappelmayer, J, Karai, B, et al.. Algorithm of differential diagnosis of anemia involving laboratory medicine specialists to advance diagnostic excellence. Clin Chem Lab Med 2024;62:410-20. https://doi.org/10.1515/cclm-2023-0807.
  41. Bracho, FJ, Osorio, IA. Evaluation of the reticulocyte production index in the pediatric population. Am J Clin Pathol 2020;154:70-7. https://doi.org/10.1093/ajcp/aqaa020
  42. Riley, RS, Ben-Ezra, JM, Goel, R, Tidwell, A. Reticulocytes and reticulocyte enumeration. J Clin Lab Anal 2001;15:267-94. https://doi.org/10.1002/jcla.1039.
  43. Sun, S, Wang, G, Zhang, B, Wang, F, Wu, W. Utility of faster R-CNN in methodological comparison and evaluation of reticulocytes. Front Physiol 2024;15. https://doi.org/10.3389/fphys.2024.1395943.
  44. Briggs, C, Culp, N, Davis, B, d’Onofrio, G, Zini, G. International Council for Standardization in Haematology WG. ICSH guidelines for the evaluation of blood cell analysers including those used for differential leucocyte and reticulocyte counting. Int J Lab Hematol 2014;36:613-27. https://doi.org/10.1111/ijlh.12201.
  45. Buttarello, M, Bulian, P, Farina, G, Temporin, V, Toffolo, L, Trabuio, E, et al.. Flow cytometric reticulocyte counting parallel evaluation of five fully automated analyzers: an NCCLS-ICSH approach. Am J Clin Pathol 2001;115:100-11. https://doi.org/10.1309/m26b-1ynq-vnu8-m1ce.
  46. Bruegel, M, Nagel, D, Funk, M, Fuhrmann, P, Zander, J, Teupser, D. Comparison of five automated hematology analyzers in a university hospital setting: Abbott Cell-Dyn Sapphire, Beckman Coulter DxH 800, Siemens Advia 2120i, Sysmex XE-5000, and Sysmex XN-2000. Clin Chem Lab Med 2015;53:1057-71. https://doi.org/10.1515/cclm-2014-0945.
  47. Davis, BH, Bigelow, NC. Reticulocyte analysis and reticulocyte maturity index. In: Darzynkiewicz, Z, Robinson, JP, Crissman, HA, editors. Methods in cell biology. San Diego: Academic Press; 1994, vol 42:263-74
  48. Equey, T, Sletten, C, Dehnes, Y, D’Onofrio, G, Brugnara, C, Baume, N, et al.. Standardization of reticulocyte counts in the athlete biological passport: a practical update. Int J Lab Hematol 2022;44:112-7. https://doi.org/10.1111/ijlh.13732.
  49. Melo, D, Ferreira, F, Teles, MJ, Porto, G, Coimbra, S, Rocha, S, et al.. Reticulocyte antioxidant enzymes mRNA levels versus reticulocyte maturity indices in hereditary spherocytosis, β-thalassemia and sickle cell disease. Int J Mol Sci 2024;25:2159. https://doi.org/10.3390/ijms25042159.
  50. Kulkeaw, K. Progress and challenges in the use of fluorescence-based flow cytometric assays for anti-malarial drug susceptibility tests. Malar J 2021;20:57. https://doi.org/10.1186/s12936-021-03591-8.
  51. Gulati, G, Uppal, G, Gong, J. Unreliable automated complete blood count results: causes, recognition, and resolution. Ann Lab Med 2022;42:515-30. https://doi.org/10.3343/alm.2022.42.5.515.
  52. Piane, L, Théron, ML, Aumann, M, Trumel, C. Spurious reticulocyte profiles in a dog with babesiosis. Vet Clin Pathol 2016;45:594-7. https://doi.org/10.1111/vcp.12395.
  53. Lai, SK, Yow, CM, Benzie, IF. Interference of Hb-H disease in automated reticulocyte counting. Clin Lab Haematol 1999;21:261-4. https://doi.org/10.1046/j.1365-2257.1999.00238.x.
  54. Hinchliffe, RF. Errors in automated reticulocyte counts due to Heinz bodies. J Clin Pathol 1993;46:878-9. https://doi.org/10.1136/jcp.46.9.878.
  55. Godon, A, Genevieve, F, Marteau-Tessier, A, Zandecki, M. Automated hematology analysers and spurious counts part 3. Haemoglobin, red blood cells, cell count and indices, reticulocytes. Ann Biol Clin 2012;70:155-68. https://doi.org/10.1684/abc.2012.0685.
  56. Raja-Sabudin, RZ, Othman, A, Ahmed-Mohamed, KA, Ithnin, A, Alauddin, H, Alias, H, et al.. Immature reticulocyte fraction is an early predictor of bone marrow recovery post chemotherapy in patients with acute leukemia. Saudi Med J 2014;35:346-9.
  57. Luczyński, W, Ratomski, K, Wysocka, J, Krawczuk-Rybak, M, Jankiewicz, P. Immature reticulocyte fraction (IRF)–an universal marker of hemopoiesis in children with cancer? Adv Med Sci 2006;51:188-90.
  58. Brugnara, C, Zurakowski, D, DiCanzio, J, Boyd, T, Platt, O. Reticulocyte hemoglobin content to diagnose iron deficiency in children. JAMA 1999;281:2225-30. https://doi.org/10.1001/jama.281.23.2225.
  59. Thomas, C, Thomas, L. Anemia of chronic disease: pathophysiology and laboratory diagnosis. Lab Hematol 2005;11:14-23. https://doi.org/10.1532/LH96.04049.
  60. Gaweda, AE. Markers of iron status in chronic kidney disease. Hemodial Int 2017;21:S21-7. https://doi.org/10.1111/hdi.12556.
  61. Mantadakis, E, Panagopoulou, P, Kontekaki, E, Bezirgiannidou, Z, Martinis, G. Iron deficiency and blood donation: links, risks and management. J Blood Med 2022;13:775-86. https://doi.org/10.2147/JBM.S375945.
  62. Urrechaga, IE, Hoffmann, JJML, Izquierdo-Álvarez, S, Escanero, JF. Reticulocyte hemoglobin content (MCHr) in the detection of iron deficiency. J Trace Elem Med Biol 2017;43:29-32. https://doi.org/10.1016/j.jtemb.2016.11.001.
  63. Perrone, S, Dell’Orto, V, Beretta, V, De Bernardo, G, Giordano, M, Petrolini, C, et al.. Predictive role of reticulocyte fluorescence for late red blood cell transfusion in very low birth weight infants. Arch Med Res 2024;55:103066. https://doi.org/10.1016/j.arcmed.2024.103066.
  64. Adane, T, Asrie, F, Getaneh, Z. Clinical utility of immature reticulocyte fraction. J Clin Chem Lab Med 2013;4:p172.
  65. Parodi, E, Giraudo, M, Davitto, M, Ansaldi, G, Mondino, A, Garbarini, L, et al.. Reticulocyte parameters: markers of early response to oral treatment in children with severe iron-deficiency anemia. J Pediatr Hematol Oncol 2012;34:e249-52. https://doi.org/10.1097/MPH.0b013e31825131d4.
  66. Viana, K, Filho, O, Dusse, L, Sathler-Avelar, R, Avelar, D, Carvalho, B, et al.. Reticulocyte count: comparison among methods. J Bras Patol Med Lab 2014;50. https://doi.org/10.5935/1676-2444.20140037.
  67. Carter, JY. External quality assessment in resource-limited countries. Biochem Med 2017;27:97-109. https://doi.org/10.11613/BM.2017.013.
  68. Ervasti, M, Matinlauri, I, Punnonen, K. Quantitative flow cytometric analysis of transferrin receptor expression on reticulocytes. Clin Chim Acta 2007;383:153-7. https://doi.org/10.1016/j.cca.2007.04.012.
  69. Rusch, JA, van der Westhuizen, DJ, Gill, RS, Louw, VJ. Diagnosing iron deficiency: controversies and novel metrics. Best Pract Res Clin Anaesthesiol 2023;37:451-67. https://doi.org/10.1016/j.bpa.2023.11.001.
  70. Daves, M, Roccaforte, V, Lombardi, F, Panella, R, Pastori, S, Spreafico, M, et al.. Modern hematology analyzers: beyond the simple blood cells count (with focus on the red blood cells). J Lab Precis Med 2024;9:4. https://doi.org/10.21037/jlpm-23-32.
  71. Bejder, J, Aachmann-Andersen, NJ, Bonne, TC, Olsen, NV, Nordsborg, NB. Detection of erythropoietin misuse by the athlete biological passport combined with reticulocyte percentage. Drug Test Anal 2016;8:1049-55. https://doi.org/10.1002/dta.1932.
  72. Astolfi, T, Crettaz von Roten, F, Kayser, B, Saugy, M, Faiss, R. The influence of training load on hematological athlete biological passport variables in elite cyclists. Front Sports Act Living 2021;3:618285. https://doi.org/10.3389/fspor.2021.618285.
  73. Saputra, DCE, Sunat, K, Ratnaningsih, T. A new artificial intelligence approach using extreme learning machine as the potentially effective model to predict and analyze the diagnosis of anemia. Healthcare 2023;11:697. https://doi.org/10.3390/healthcare11050697.
  74. Nashwan, AJ, Alkhawaldeh, IM, Shaheen, N, Albalkhi, I, Serag, I, Sarhan, K, et al.. Using artificial intelligence to improve body iron quantification: a scoping review. Blood Rev 2023;62:101133. https://doi.org/10.1016/j.blre.2023.101133.
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Стандартизация процесса подготовки к плановой госпитализации в поликлиниках Московской области с применением бережливых технологий.Медицинские технологии. Оценка и выбор. 2026;48(2):95-103

Прерывистая нормобарическая гипокситерапия в лечении сердечно-сосудистых заболеваний: современные возможности и перспективы.Профилактическая медицина. 2026;29(5):27-31

Единый подход к организации образовательных программ для пациентов с бронхиальной астмой и хронической обструктивной болезнью легких: стандартизация содержания и методов проведения.Профилактическая медицина. 2026;29(5):20-26

Контроль качества иммуногистохимических исследований в России в 2025 г.: достижения и перспективы.Архив патологии. 2026;88(2):59-66

Методические рекомендации по клинической электроэнцефалографии. Разработка и согласование в российском профессиональном сообществе.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2026;126(2-2):5-11

Классификация цифровых медицинских продуктов и сервисов.Медицинские технологии. Оценка и выбор. 2026;48(1):11-25

Стабилометрия как инструмент оценки постурального баланса: современные подходы, методы и вопросы стандартизации. (Обзор литературы).Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. 2025;102(4):56-64

Рекомендации по правильному использованию номенклатуры биохимических индексов костного состояния: мнение Объединенной рабочей группы Международного фонда по борьбе с остеопорозом (IOF) и Комитета Международной федерации по клинической химии и лабораторной медицине (IFCC) по метаболизму костной ткани.Лабораторная служба. 2025;14(2):40-46

Контроль качества иммуногистохимических исследований: вынужденная повинность или насущная необходимость?Архив патологии. 2025;87(2):43-52

Сравнение результатов светового и автоматизированного микроскопического исследования осадка мочи, полученных с использованием вакуумных контейнеров с коническим и с круглым дном.Лабораторная служба. 2024;13(3):37-41

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29

  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12

  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru

  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026