Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Георгий Юрьевич Кудрявцев

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия;
ГБУЗ «Госпиталь для ветеранов войн №2» Департамента здравоохранения города Москвы, Москва, Россия

Янина Юрьевна Кудрявцева

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия

Варвара Владимировна Лабис

ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России, Москва, Россия

Алексей Петрович Призов

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия

Георгий Александрович Айрапетов

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия

Алексей Вадимович Волков

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы», Москва, Россия

Людмила Михайловна Михалева

Научно-исследовательский институт морфологии человека им. акад. А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского», Москва, Россия

Современные морфологические представления о периимплантной инфекции в травматологии и ортопедии

Авторы:

Кудрявцев Г.Ю., Кудрявцева Я.Ю., Лабис В.В., Призов А.П., Айрапетов Г.А., Волков А.В., Михалева Л.М.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2026;88(3): 85‑91

Прочитано: 117 раз


Как цитировать:

Кудрявцев Г.Ю., Кудрявцева Я.Ю., Лабис В.В., Призов А.П., Айрапетов Г.А., Волков А.В., Михалева Л.М. Современные морфологические представления о периимплантной инфекции в травматологии и ортопедии. Архив патологии. 2026;88(3):85‑91.
Kudryavtsev GYu, Kudryavtseva YaYu, Labis VV, Prizov AP, Airapetov GA, Volkov AV, Mikhaleva LM. Modern morphological concepts of periprosthetic joint infection in traumatology and orthopedics. Russian Journal of Archive of Pathology. 2026;88(3):85‑91. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20268803185

Рекомендуем статьи по данной теме:
Вли­яние ле­ту­чих ор­га­ни­чес­ких со­еди­не­ний на план­ктон­ный рост и об­ра­зо­ва­ние би­оп­ле­нок Vibrio harveyi. Мо­ле­ку­ляр­ная ге­не­ти­ка, мик­ро­би­оло­гия и ви­ру­со­ло­гия. 2025;(4):10-18

Литература / References:

  1. Hegde V, Stambough JB, Levine BR, Springer BD. Highlights of the 2022 American Joint Replacement Registry Annual Report. Arthroplast today. 2023;21:101137. https://doi.org/10.1016/j.artd.2023.101137
  2. Соломянник И.А, Загородний Н.В, Родионова С.С., Дорохин А.И., Коньшина А.В., Горбатюк Д.С. и др. Травматизм, ортопедическая заболеваемость, организация травматолого-ортопедической помощи в Российской Федерации в 2020 году. М.: ФГБУ НМИЦ ТО им. Н.Н. Приорова; 2022.
  3. Premkumar A, Kolin DA, Farley KX, et al. Projected Economic Burden of Periprosthetic Joint Infection of the Hip and Knee in the United States. J Arthroplasty. 2021;36(5):1484-1489.e3.  https://doi.org/10.1016/j.arth.2020.12.005
  4. Середа А.П., Кочиш А.А., Черный А.А., и др. Эпидемиология эндопротезирования тазобедренного и коленного суставов и перипротезной инфекции в Российской Федерации. Травматология и ортопедия России. 2021;27(3):84-93.  https://doi.org/10.21823/2311-2905-2021-27-3-84-93
  5. Винклер Т., Трампуш А., Ренц Н., Перка К., Божкова С.А. Классификация и алгоритм диагностики и лечения перипротезной инфекции тазобедренного сустава. Травматология и ортопедия России. 2016;1:33-45. 
  6. Tai DBG, Patel R, Abdel MP, Berbari EF, Tande AJ. Microbiology of hip and knee periprosthetic joint infections: a database study. Clin Microbiol Infect. 2022;28(2):255-259.  https://doi.org/10.1016/j.cmi.2021.06.006
  7. Peel TN, Cheng AC, Buising KL, Choong PFM. Microbiological Aetiology, Epidemiology, and Clinical Profile of Prosthetic Joint Infections: Are Current Antibiotic Prophylaxis Guidelines Effective? Antimicrob Agents Chemother. 2012;56(5):2386-2391. https://doi.org/10.1128/AAC.06246-11
  8. Mahmud T, Lyons MC, Naudie DD, Macdonald SJ, McCalden RW. Assessing the gold standard: a review of 253 two-stage revisions for infected TKA. Clin Orthop Relat Res. 2012;470(10):2730-2736. https://doi.org/10.1007/s11999-012-2358-8
  9. Hall-Stoodley L, Stoodley P. Evolving concepts in biofilm infections. Cell Microbiol. 2009;11(7):1034-1043. https://doi.org/10.1111/j.1462-5822.2009.01323.x
  10. Arciola CR, Campoccia D, Speziale P, Montanaro L, Costerton JW. Biofilm formation in Staphylococcus implant infections. A review of molecular mechanisms and implications for biofilm-resistant materials. Biomaterials. 2012;33(26):5967-5982. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2012.05.031
  11. Mirzaei R, Campoccia D, Ravaioli S, Arciola CR. Emerging Issues and Initial Insights into Bacterial Biofilms: From Orthopedic Infection to Metabolomics. Antibiotics. 2024;13(2):184.  https://doi.org/10.3390/antibiotics13020184
  12. Coenye T, Kjellerup B, Stoodley P, Bjarnsholt T. The future of biofilm research — Report on the ‘2019 Biofilm Bash.’ Biofilm. 2020;2:100012. https://doi.org/10.1016/j.bioflm.2019.100012
  13. Cheng AG, DeDent AC, Schneewind O, Missiakas D. A play in four acts: Staphylococcus aureus abscess formation. Trends Microbiol. 2011;19(5):225-232.  https://doi.org/10.1016/j.tim.2011.01.007
  14. Cheng AG, McAdow M, Kim HK, Bae T, Missiakas DM, Schneewind O. Contribution of Coagulases towards Staphylococcus aureus Disease and Protective Immunity. Cheung A, ed. PLoS Pathog. 2010;6(8):e1001036. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1001036
  15. Farnsworth CW, Schott EM, Jensen SE, et al. Adaptive Upregulation of Clumping Factor A (ClfA) by Staphylococcus aureus in the Obese, Type 2 Diabetic Host Mediates Increased Virulence. Freitag NE, ed. Infect Immun. 2017;85(6). https://doi.org/10.1128/IAI.01005-16
  16. Cheng AG, Kim HK, Burts ML, Krausz T, Schneewind O, Missiakas DM. Genetic requirements for Staphylococcus aureus abscess formation and persistence in host tissues. FASEB J. 2009;23(10):3393-3404. https://doi.org/10.1096/fj.09-135467
  17. Hofstee MI, Riool M, Terjajevs I, et al. Three-Dimensional In Vitro Staphylococcus aureus Abscess Communities Display Antibiotic Tolerance and Protection from Neutrophil Clearance. Freitag NE, ed. Infect Immun. 2020;88(11). https://doi.org/10.1128/IAI.00293-20
  18. Yu B, Pacureanu A, Olivier C, Cloetens P, Peyrin F. Assessment of the human bone lacuno-canalicular network at the nanoscale and impact of spatial resolution. Sci Rep. 2020;10(1):4567. https://doi.org/10.1038/s41598-020-61269-8
  19. Mi C, Zhang X, Yang C, et al. Bone disease imaging through the near-infrared-II window. Nat Commun. 2023;14(1):6287. https://doi.org/10.1038/s41467-023-42001-2
  20. Kashima TG, Inagaki Y, Grammatopoulos G, Athanasou NA. Use of chloroacetate esterase staining for the histological diagnosis of prosthetic joint infection. Virchows Arch. 2015;466(5):595-601.  https://doi.org/10.1007/s00428-015-1722-y
  21. Zmistowski B, Della Valle C, Bauer TW, et al. Diagnosis of Periprosthetic Joint Infection. J Arthroplasty. 2014;29(2):77-83.  https://doi.org/10.1016/j.arth.2013.09.040
  22. Morawietz L, Classen RA, Schröder JH, et al. Proposal for a histopathological consensus classification of the periprosthetic interface membrane. J Clin Pathol. 2006;59(6):591-597.  https://doi.org/10.1136/jcp.2005.027458
  23. Morawietz L, Gehrke T, Classen RA, et al. Proposal for the classification of the periprosthetic membrane from loosened hip and knee endoprostheses. Pathologe. 2004;25(5). https://doi.org/10.1007/s00292-004-0710-9
  24. Krenn V, Morawietz L, Perino G, et al. Revised histopathological consensus classification of joint implant related pathology. Pathol — Res Pract. 2014;210(12):779-786.  https://doi.org/10.1016/j.prp.2014.09.017
  25. Krenn V, Thomas P, Thomsen M, et al. Histopathological particle algorithm. Particle identification in the synovia and the SLIM. Rheumatology. 2014;73(7):639-649.  https://doi.org/10.1007/s00393-013-1315-6
  26. Morawietz L, Tiddens O, Mueller M, et al. Twenty‐three neutrophil granulocytes in 10 high‐power fields is the best histopathological threshold to differentiate between aseptic and septic endoprosthesis loosening. Histopathology. 2009;54(7):847-853.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2559.2009.03313.x
  27. Kretzer JP, Jakubowitz E, Reinders J, et al. Wear analysis of unicondylar mobile bearing and fixed bearing knee systems: A knee simulator study. Acta Biomater. 2011;7(2):710-715.  https://doi.org/10.1016/j.actbio.2010.09.031
  28. Trampuz A, Piper KE, Jacobson MJ, et al. Sonication of Removed Hip and Knee Prostheses for Diagnosis of Infection. N Engl J Med. 2007;357(7):654-663.  https://doi.org/10.1056/NEJMoa061588
  29. Labis V, Bazikyan E, Sizova S, et al. Emission and Migration of Nanoscale Particles during Osseointegration and Disintegration of Dental Implants in the Clinic and Experiment and the Influence on Cytokine Production. Int J Mol Sci. 2023;24(11):9678. https://doi.org/10.3390/ijms24119678
  30. Romanò CL, Khawashki H Al, Benzakour T, et al. The W.A.I.O.T. Definition of High-Grade and Low-Grade Peri-Prosthetic Joint Infection. J Clin Med. 2019;8(5):650.  https://doi.org/10.3390/jcm8050650
  31. Bori G, Soriano A, García S, Mallofré C, Riba J, Mensa J. Usefulness of Histological Analysis for Predicting the Presence of Microorganisms at the Time of Reimplantation After Hip Resection Arthroplasty for the Treatment of Infection. J Bone Jt Surg. 2007;89(6):1232-1237. https://doi.org/10.2106/JBJS.F.00741
  32. Pandey R, Drakoulakis E, Athanasou NA. An assessment of the histological criteria used to diagnose infection in hip revision arthroplasty tissues. J Clin Pathol. 1999;52(2):118-123.  https://doi.org/10.1136/jcp.52.2.118
  33. Feldman DS, Lonner JH, Desai P, Zuckerman JD. The role of intraoperative frozen sections in revision total joint arthroplasty. J Bone Jt Surg. 1995;77(12):1807-1813. https://doi.org/10.2106/00004623-199512000-00003
  34. Banit DM, Kaufer H, Hartford JM. Intraoperative Frozen Section Analysis in Revision Total Joint Arthroplasty. Clin Orthop Relat Res. 2002;401:230-238.  https://doi.org/10.1097/00003086-200208000-00026
  35. Goodman SB, Gallo J. Periprosthetic Osteolysis: Mechanisms, Prevention and Treatment. J Clin Med. 2019;8(12). https://doi.org/10.3390/jcm8122091
  36. Baxter RM, MacDonald DW, Kurtz SM, Steinbeck MJ. Characteristics of highly cross‐linked polyethylene wear debris in vivo. J Biomed Mater Res Part B Appl Biomater. 2013;101B(3):467-475.  https://doi.org/10.1002/jbm.b.32902
  37. Bertrand J, Delfosse D, Mai V, Awiszus F, Harnisch K, Lohmann CH. Ceramic prosthesis surfaces induce an inflammatory cell response and fibrotic tissue changes. Bone Joint J. 2018;100-B(7): 882-890.  https://doi.org/10.1302/0301-620X.100B7.BJJ-2017-1590.R2
  38. Horst SA, Hoerr V, Beineke A, et al. A Novel Mouse Model of Staphylococcus aureus Chronic Osteomyelitis That Closely Mimics the Human Infection. Am J Pathol. 2012;181(4):1206-1214. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2012.07.005
  39. Wright JA, Nair SP. Interaction of staphylococci with bone. Int J Med Microbiol. 2010;300(2-3):193-204.  https://doi.org/10.1016/j.ijmm.2009.10.003
  40. Zhu L, Kang H, Guo C an, et al. Rifampin suppresses osteoclastogenesis and titanium particle-induced osteolysis via modulating RANKL signaling pathways. Biochem Biophys Res Commun. 2017;484(1):64-70.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2017.01.071
  41. Croes M, Kruyt M, Boot W, et al. The role of bacterial stimuli in inflammation-driven bone formation. Eur Cells Mater. 2019;37: 402-419.  https://doi.org/10.22203/eCM.v037a24
  42. Li D, Gromov K, Søballe K, et al. Quantitative mouse model of implant‐associated osteomyelitis and the kinetics of microbial growth, osteolysis, and humoral immunity. J Orthop Res. 2008;26(1):96-105.  https://doi.org/10.1002/jor.20452
  43. Kawashima-Ohya Y, Satakeda H, Kuruta Y, et al. Effects of Parathyroid Hormone (PTH) and PTH-Related Peptide on Expressions of Matrix Metalloproteinase-2, -3, and -9 in Growth Plate Chondrocyte Cultures. Endocrinology. 1998;139(4):2120-2127. https://doi.org/10.1210/endo.139.4.5941
  44. Röcken C, Stix B, Brömme D, Ansorge S, Roessner A, Bühling F. A Putative Role for Cathepsin K in Degradation of AA and AL Amyloidosis. Am J Pathol. 2001;158(3):1029-1038. https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)64050-3
  45. Alippe Y, Mbalaviele G. Omnipresence of inflammasome activities in inflammatory bone diseases. Semin Immunopathol. 2019;41(5): 607-618.  https://doi.org/10.1007/s00281-019-00753-4

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.