ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Сравнительная характеристика генетических аберраций в глиобластомах у детей и взрослых

Сравнительная характеристика генетических аберраций в глиобластомах у детей и взрослых

Авторы:
Марина Владимировна Рыжова,
Шишкина Л.В.,
Желудкова О.Г.,
Голанов А.В.,
Сергей Кириллович Горелышев,
Пицхелаури Д.И.,
Бекяшев А.Х.,
Григорий Львович Кобяков,
Абсалямова О.В.,
Сычева Р.В.,
Коршунов А.Г.

Журнал: Вопросы нейрохирургии имени Н.Н. Бурденко. 2014;78(2):3-11.

DOI:

Прочитано: 3270 раз

Скачать PDFСкачать PDF (EN)

Резюме

Глиобластомы у детей и взрослых представляют собой гетерогенную группу опухолей, в которой можно выделить как минимум три различных подгруппы: детские глиобластомы, глиобластомы взрослых с мутацией гена IDH1 (прогностически наиболее благоприятный подтип) и глиобластомы взрослых с отсутствием мутации гена IDH1. Согласно частоте выявленных цитогенетических аберраций (амплификации онкогенов MYC/MYCN, EGFR и PDGRFA, гомозиготная делеция гена CDKN2A и делеция гена PTEN), глиобластомы у детей показывают сходство с подгруппой глиобластом взрослых с мутацией гена IDH1.

Ключевые слова

  • детские глиобластомы
  • глиобластомы взрослых с мутацией гена IDH1

Дата публикации: 30.04.2020

Глиобластома - высокозлокачественная опухоль головного мозга с преимущественно астроцитарной дифференцировкой, поражающая в основном взрослых людей с пиком заболеваемости между 45 и 75 годами [14].

В геноме глиобластом выявляются множественные нарушения: амплификации генов EGFR, PDGFRA, MDM2, CDK4 и CDK6, гомозиготная делеция гена CDKN2A и делеция гена PTEN, мутация гена ТР53 - большинство из этих аберрантных генов вовлечены в процессы регуляции клеточного цикла, пролиферации, инвазии и миграции клеток [16, 22]. В патогенезе глиобластом также участвует множество взаимодействующих между собой сигнальных путей, основными из которых являются: EGFR/RAS /NF1/PTEN/ PI3K; TP53/MDM2 /MDM4/ p14ARF и p16INK4a/ CDK4 /RB1 [18].

Глиобластомы у детей не являются столь частыми и составляют около 15% всех опухолей головного мозга [1, 3]. Вероятно, это было одной из причин, по которой долгое время глиобластомы у детей и взрослых рассматривались совместно. И действительно, гистологически ничем не отличающиеся друг от друга опухоли у детей и взрослых имеют одинаково неблагоприятный прогноз. Основное различие заключается в патогенезе этих опухолей: структура выявляемых цитогенетических аберраций, таких как амплификации онкогенов MYC, MYCN, EGFR и PDGRFA, гомозиготная делеция гена CDKN2A и делеция гена PTEN, существенно различается в глиобластомах у пациентов данных возрастных групп, что говорит о вовлечении различных молекулярных путей в развитии этих опухолей у детей и взрослых [3, 15, 17, 21].

Определенную роль в развитии глиобластом играют эпигенетические события: метилирование ДНК, посттрансляционная модификация гистонов и посттранскрипционная регуляция генной экспрессии микроРНК [6, 8].

Поворотным моментом в исследовании генома глиобластом и формировании молекулярной классификации явилось открытие мутаций генов IDH1 [20] и H3F3A [23].

Изоцитратдегидрогеназа (isocitrate dehydrogenase, IDH) - фермент, катализирующий окислительное декарбоксилирование изоцитрата, в результате реакции образуются α-кетоглуторат и СО2. Ген IDH1 расположен на длинном плече хромосомы 2q33.3 и кодирует NADP+ специфичный IDH. Точковые мутации гена IDH1 в кодоне 132, возникающие в глиобластомах, являются гетерозиготными и соматическими и характеризуются заменой пары оснований гуанина на аденин в результате замены аминокислоты аргинина в позиции 132 на гистидин (R132H) [2]. Глиобластомы с мутацией гена IDH1 имеют более благоприятные показатели общей выживаемости [7, 10].

Гетерозиготные мутации гена H3F3A описаны в глиобластомах у детей, в том числе с нашим участием [23], в двух вариантах: замена лизина на метионин (K27M) и глицина на аргинин или валин (G34R/V). Обе мутации возникают в позиции, близкой к концевой N-терминали, которая подвергается важным посттрансляционным изменениям, связанным либо с подавлением (K27), либо с активацией (K36) процесса транскрипции. Мутации гена H3F3A патогномоничны для глиобластом, и по данным E. Je и соавт. [11], исследовавшим 1351 опухоль, не встречаются более ни в какой другой опухоли, включая злокачественные менингиомы, саркомы и карциномы различной локализации.

Цель настоящего исследования - проведение сравнительного анализа молекулярно-генетических особенностей глиобластом у детей и взрослых.

Материал и методы

После получения информированного согласия в исследование были включены 125 пациентов с глиобластомами: 48 - в возрасте от 2 до 18 лет (серия «Детские глиобластомы») и 77 - в возрасте от 19 до 53 лет (серия «Взрослые глиобластомы»). Всем пациентам проведено хирургическое удаление опухоли с гистологической верификацией, лучевое лечение (для пациентов старше 3 лет) и химиотерапия, согласно принятым в ФГБУ «НИИ нейрохирургии» РАМН и в ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр детской гематологии, онкологии и иммунологии» протоколам. Все 77 взрослых пациентов с глиобластомами были оперированы в ФГБУ «НИИ нейрохирургии» РАМН в период с 2002 по 2008 г. Детская серия включала больных, оперированных в ФГБУ «НИИ нейрохирургии» РАМН и в нескольких мировых центрах, любезно предоставивших замороженную ткань опухоли для генетического исследования в German Cancer Research Center in the Helmholtz Association (DKFZ Deutsches Krebsforschungszentrum in der Helmholtz-Gemeinschaft), Heidelberg, Германия, в рамках проекта «Детские глиобластомы». Сведения об этих пациентах взяты из базы данных DKFZ и находятся в открытом доступе на TCGA website https://tcga-data.nci.nih.gov.

У всех пациентов, включенных в данное исследование, во время хирургического удаления фрагменты опухолевой ткани были немедленно заморожены в жидком азоте и впоследствии хранились в жидком азоте или при –80 °С. Наличие замороженной опухолевой ткани позволило провести сравнительную геномную гибридизацию для изучения цитогенетических хромосомных аберраций, а также выполнить прямое секвенирование для определения мутаций генов IDH1, TP53 и H3F3A.

Сравнительная геномная гибридизация (проведена в условиях DKFZ)

Аrray-CGH проведена для 125 глиобластом (48 детских опухолей и 77 глиобластом взрослых), согласно протоколу, принятому в DKFZ [25].

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) и выявление мутаций генов IDH1, TP53 и H3F3A методом прямого секвенирования (проведены в условиях DKFZ)

ПЦР и секвенирование генов проведены для 125 глиобластом, как описано ранее [2, 4].

Флуоресцентная гибридизация in situ (проведена в условиях двух центров: ФГБУ «НИИ нейрохирургии» РАМН и DKFZ)

Использованы пробы к следующим онкогенам и хромосомным локусам: MYCN (2p24), PDGFRA (4q12), EGFR (7p12), CDK6 (7q21.2), MYC (8q24.12-q24.13), CDKN2A (9p21), PTEN (10q23), CDK4 (12q14.1) и IRS2 (13q34).

Иммуногистохимическое исследование (проведено в условиях ФГБУ «НИИ нейрохирургии» РАМН)

Иммуногистохимическое исследование было проведено на полуавтоматическом иммуностейнере Lab Vision Autostainer 360 ThermoScientific с антителом: Anti-Human IDH1 R132H astrocytoma and oligodendroglioma tumor cell marker mouse monoclonal antibody (Dianova clone: H09 разведение 1:20) [4, 5].

Статистический метод

Для анализа общей выживаемости был использован метод Каплана-Майера. Общая выживаемость была подсчитана от даты установления диагноза до даты смерти (цензор) от прогрессии основного заболевания (пациенты, умершие по другим причинам, не включались в исследование) или до даты сбора последних катамнестических данных.

Результаты

Диагноз «Глиобластома WHO Grade IV» был поставлен на основании критериев, принятых в текущей классификации ВОЗ опухолей ЦНС [14].

При микроскопическом анализе биопсийного материала глиобластом у детей и взрослых была выявлена идентичная гистологическая картина злокачественной астроцитомы с наличием выраженной ядерной атипии, клеточного полиморфизма, высокой митотической активности, тромбозов сосудов, микроваскулярной пролиферации и некрозов с псевдопалисадными структурами.

Цитогенетические аберрации в глиобластомах

Исследование цитогенетических аберраций методом сравнительной геномной гибридизации показало, что большинство опухолей и у детей, и у взрослых имеют множественные нарушения в геноме. В нашей серии мы наблюдали только у 3 детей глиобластомы без каких-либо цитогенетических аберраций; среди глиобластом у взрослых случаев со сбалансированным профилем без наличия добавок и/или делеций хромосом не было.

Среди амплификаций (увеличение количества копий гена) наиболее часто встречались следующие: амплификации генов MYCN, EGFR, CDK4 и PDFRA. Следует отметить, что амплификация гена MYCN наблюдалась в 12% опухолей у детей и в 4% - у взрослых; амплификация гена EGFR соответственно - в 12 и 29%; амплификация гена CDK4 - в 6 и 18%; амплификация гена PDFRA - в 10 и 5%; амплификация гена MYC - в 6 и 2%; амплификация гена CDK6 - в 6 и 7%; амплификация гена MDM2 - в 2 и 6%; амплификация гена MDM4 - в 2 и 8%.

Таким образом, в детской серии преобладали амплификации генов MYC/MYCN и PDGFRA, в то время как глиобластомы у взрослых чаще демонстрировали амплификации генов EGFR и CDK4.

Гомозиготная делеция гена CDKN2A и потеря хромосомы 10q наблюдались в обеих возрастных сериях приблизительно в равных пропорциях: гомозиготную делецию гена CDKN2A имели 17% глиобластом у детей и 29% - у взрослых, а потеря хромосомы 10q была выявлена соответственно в 54 и 60% глиобластом.

Основные цитогенетические аберрации в глиобластомах, выявленные методом сравнительной геномной гибридизации и подтвержденные флуоресцентной гибридизацией in situ, показаны на рис. 1-8.

Рисунок 1. Цитогенетический профиль глиобластомы, имеющей множественные амплификации генов MDM4 (локус 1q32.1), EGFR (локус 7р11.12) и MYC (локус 8q24.13).
Рисунок 2. Амплификация (увеличение количества копий) гена EGFR (локус 7р11.12) в глиобластоме. Красные сигналы - EGFR (локус 7р11.12), зеленые сигналы - центромера 7-й хромосомы CEP 7 (локус 7p11.1-q11.1).
Рисунок 3. Цитогенетический профиль глиобластомы с амплификацией гена MYCN (локус 2p24.3) и потерей 10q.
Рисунок 4. Моносомия хромосомы 10q в глиобластоме. Красные сигналы - PTEN (локус 10q23), зеленые сигналы - центромера 10-й хромосомы CEP 10 (локус 10p11.1-q11.1).
Рисунок 5. Цитогенетический профиль глиобластомы с амплификацией гена PDGFRA (локус 4q12).
Рисунок 6. Амплификация (увеличение количества копий) гена PDGFRA (локус 4q12) в глиобластоме. Красные сигналы - LNX (локус 4q12), зеленые сигналы - SCFD2 (локус 4q12), голубые сигналы - PDGFRA (локус 4q12).
Рисунок 7. Цитогенетический профиль глиобластомы с амплификацией гена CDK4 (локус 12q14.1) и гомозиготной делецией CDKN2A (локус 9p21).
Рисунок 8. Гомозиготная делеция CDKN2A (p16) (локус 9p21) в сочетании с моносомией 9-й хромосомы в глиобластоме. Красные (единичные) сигналы - CDKN2A (локус 9p21), зеленые сигналы - центромера 9-й хромосомы CEP 9 (локус 9p11-q11).

Анализ мутаций генов IDH1, TP53 и H3F3A

Методом прямого секвенирования генов была выявлена мутация гена IDH1 (R132H) в 29 (38%) глиобластомах у взрослых и в 4 (8%) - у детей (рис. 9, 10); мутация гена ТР53 - соответственно в 33 (43%) и 24 (50%); мутация гена Н3F3A - в 17 (35%) и в 1 (1%).

Рисунок 9. Электрофореграмма исследования мутации гена IDH1 методом прямого секвенирования - отсутствие мутации гена IDH1. Здесь и на рис. 10-14: продукт прямого секвенирования генов выявляется путем капиллярного электрофореза в геле. Для этого нуклеотиды метятся четырьмя различными флуорохромными красителями: аденин - зеленым цветом, гуанин - черным цветом, цитозин - синим цветом и тимин - красным цветом. При возникновении мутации происходит замена одной аминокислоты на другую, что приводит к замене пар оснований.
Рисунок 10. Электрофореграмма исследования мутации гена IDH1 методом прямого секвенирования. Мутация возникает в результате замены аминокислоты аргинина на гистидин и характеризуется заменой пары оснований гуанина на аденин (показано стрелкой ⇓).
Выявлены два варианта мутации гена Н3F3A-K27M(рис. 11, 12) и G34R/V(рис. 13, 14).
Рисунок 11. Электрофореграмма исследования мутации гена H3F3A K27M (отсутствие мутации).
Рисунок 12. Электрофореграмма исследования мутации гена H3F3A K27M методом прямого секвенирования. Мутация возникает в результате замены аминокислоты лизина на метионин (К27М) и характеризуется заменой пары оснований аденина на тимин (показано стрелкой ⇓).
Рисунок 13. Электрофореграмма исследования мутации гена H3F3A G34R (отсутствие мутации).
Рисунок 14. Электрофореграмма исследования мутации гена H3F3A G34R методом прямого секвенирования. Мутация возникает в результате замены аминокислоты глицина на аргинин (G34R) или глицина на валин (G34V) и характеризуется заменой пары оснований гуанина на аденин (показано стрелкой ⇓).
Мутации К27M были идентифицированы в 11 (23%) наблюдениях у детей и в 1 (1%) случае у взрослых, мутации G34R/V - у 6 (12%) детей.

Иммуногистохимическое выявление мутантного протеина IDH1

Данный метод исследования использовался для выявления мутантного протеина IDH1 R132H паралелльно с секвенированием генов. Выраженная цитоплазматическая экспрессия IDH1 (рис. 15) выявлена в 29 (38%) глиобластомах у взрослых и в 4 (8%) у детей - идентично случаям с мутацией гена IDH1, выявленной методом прямого секвенирования.

Рисунок 15. Положительная экспрессия IDH1 в глиобластоме с мутацией гена IDH1. Иммуногистохимическое исследование с антителом Anti-Human IDH1 R132H Dianova.
В 48 глиобластомах у взрослых и 44 глиобластомах у детей цитоплазматической экспрессии IDH1 не наблюдалось. Таким образом, данные прямого секвенирования генов и иммуногистохимического исследования по выявлению мутантного протеина IDH1 совпали в 100% случаев.

Подгруппы глиобластом

Исследованная серия глиобластом была разделена на три подгруппы в соответствии с возрастом больного, наличием или отсутствием мутации генов IDH1 и H3F3A, которые расцениваются как ключевые в патогенезе глиобластом. Выявленные хромосомные аберрации и мутации генов распределились по данным трем подгруппам следующим образом (рис. 16).

Рисунок 16. Частота встречаемости аберраций в подгруппе глиобластом у детей и двух подгруппах глиобластом у взрослых в зависимости от наличия или отсутствия мутации IDH1.

Амплификации генов MYC/MYCN выявлялись в подгруппе глиобластом у детей и взрослых с мутацией IDH1 приблизительно в равных значениях: 19 и 17% соответственно, в то время как в подгруппе глиобластом у взрослых больных с отсутствием мутации гена IDH1 амплификации генов MYC/MYCN составили лишь 4%.

Амплификация гена EGFR являлась отличительной особенностью глиобластом у взрослых с отсутствием мутации гена IDH1, в данной подгруппе эта цитогенетическая аберрация наблюдалась в 42% случаев, в то время как в детской серии глиобластомы показывали амплификацию гена EGFR в 12% наблюдений, а в серии взрослых больных глиобластомы с мутацией гена IDH1 встречались лишь в 6%.

Амплификация гена CDK4 была выявлена преимущественно в глиобластомах у взрослых, независимо от наличия или отсутствия мутации гена IDH1.

Гомозиготная делеция гена CDKN2A и потеря хромосомы 10q наблюдались во всех трех подгруппах глиобластом, с незначительным превалированием в подгруппе опухолей у взрослых.

Мутация гена ТР53 наблюдалась в подгруппе глиобластом у взрослых с мутацией гена IDH1 и в подгруппе глиобластом у детей.

Далее мы оценили общую выживаемость больных с глиобластомами в трех вышеуказанных подгруппах (рис. 17).

Рисунок 17. Общая выживаемость детей с глиобластомами и взрослых больных с глиобластомами с наличием (mut IDH1) и отсутствием (wt IDH1) мутации IDH1.

Анализ общей выживаемости достоверно показал, что глиобластомы у взрослых больных с мутацией гена IDH1 являются наиболее прогностически благоприятной подгруппой, 5-летняя общая выживаемость больных в данной подгруппе составила приблизительно 80%. Достоверной разницы между показателями общей выживаемости у детей с глиобластомами и у взрослых пациентов с отсутствием мутации гена IDH1 не выявлено. Пятилетняя общая выживаемость в данных подгруппах составила приблизительно 8 и 0% соответственно.

Молекулярная классификация глиобластом

Исходя из результатов, полученных нами при цитогенетическом, мутационном и метиляционном [24] анализе, а также оценке показателей общей выживаемости при глиобластомах у детей и взрослых, мы разработали молекулярную классификацию глиобластом (рис. 18), выделив три основные подгруппы.

Рисунок 18. Молекулярная классификация глиобластом, в основе которой лежат основные молекулярно-генетические аберрации в различных возрастных группах.
Первую подгруппу составили глиобластомы у детей с мутацией гена H3F3A, выявленной в 40% опухолей, и мутацией гена ТР53, обнаруженной в 50% случаев, и гипометилированным генотипом. Наличие мутации гена IDH1 было отличительной особенностью следующей подгруппы глиобластом, которые возникали у взрослых больных и, помимо мутации гена IDH1, характеризовались идентифицированной в 80% случаев мутацией гена ТР53 и гиперметилированным генотипом. Третья подгруппа глиобластом у взрослых характеризовалась отсутствием мутации гена IDH1, множественными цитогенетическими аберрациями (самой часто встречающейся цитогенетической поломкой была выявленная в 40% случаев амплификация гена EGFR) и нормометилированным генотипом.

Обсуждение

В настоящей работе мы исследовали молекулярные особенности смешанной серии глиобластом у детей и взрослых; анализ молекулярной структуры глиобластом в двух возрастных группах позволил нам разработать молекулярную классификацию глиобластом, выделив три основные подгруппы: детские глиобластомы, глиобластомы у взрослых с мутацией гена IDH1 и глиобластомы у взрослых без мутации гена IDH1.

Основными особенностями глиобластом в детском возрасте являлись: мутация гена H3F3A - в 40% опухолей, мутация гена ТР53 - в 50% случаев и гипометилированный генотип. Впервые описанная в 2012 г. [23] мутация гена H3F3A, который кодирует гистон Н3.3, относится к эпигенетическим событиям и связана с процессом посттрансляционной модификации гистонов.

У эукариотических клеток основной структурой ядра является хроматин - комплекс ДНК и гистоновых белков. Гистоны модифицируются посттрансляционно, в этом случае может повреждаться их взаимодействие с ДНК и протеинами ядра. Модификации гистонов составляют так называемый «гистоновый код», который и определяет статус структуры хроматина, а также регулирует виртуально все процессы, действующие или зависящие от ДНК, включая репликацию и репарацию, регуляцию экспрессии генов и сохранность центромер и теломер [23]. Модификации гистонов обычно затрагивают область N-терминали и включают метилирование, ацетилирование и фосфорилирование [6].

Мутация гена ТР53 четко коррелировала с мутацией гена IDH1 и в подгруппе глиобластом у взрослых больных не старше 55 лет, в данной подгруппе мутация гена ТР53 была выявлена в 80% случаев. Подгруппа глиобластом у взрослых с мутацией гена IDH1 имела гиперметилированный генотип и являлась прогностически наиболее благоприятной по сравнению с двумя другими подгруппами глиобластом, 5-летняя общая выживаемость составила в ней 80%.

Что касается мутации гена IDH1 в детской серии глиобластом, то нам удалось выявить ее у 4 детей в возрасте от 11 до 17 лет, в отличие от данных M. Antonelli и соавт. [1], которые не обнаружили ни одного случая мутации гена IDH1 в серии из 22 детских глиобластом. В нашем исследовании во всех 4 случаях мутация гена IDH1 в опухолях у детей сочеталась с мутацией гена ТР53.

Характерными особенностями глиобластом у взрослых больных с отсутствием мутации гена IDH1 являлись: высокая частота встречаемости цитогенетических аберраций, в особенности амплификации гена EGFR, обнаруженной в данной подгруппе в 40% случаев, невысокий по сравнению с двумя другими подгруппами процент выявленной мутации гена ТР53 (около 20%) и нормометилированный генотип.

При сравнении молекулярно-генетических особенностей в трех вышеуказанных подгруппах выявлено, что для формирования глиобластомы в подгруппе детских глиобластом и подгруппе опухолей у взрослых с мутацией гена IDH1 необходима комбинация из двух мутаций генов H3F3A и TP53 (для глиобластом у детей) и сочетание мутаций генов IDH1 и TP53 (для глиобластом у взрослых). Как известно, мутация гена ТР53 играет ключевую роль в развитии вторичных глиобластом [14, 18], также мутация гена ТР53 обнаруживается и в первичных глиобластомах, где не превышает 30% [18]. Мутации гена IDH1 являются более ранним событием в патогенезе глиобластом, чем мутации гена ТР53 [19].

Вероятно, глиобластомы у детей и взрослых больных с мутацией гена IDH1 относятся к вторичным опухолям и происходят из предшествующих глиом низкой степени злокачественности, в то время как глиобластомы у взрослых с отсутствием мутации гена IDH1 являются первичными быстроразвивающимися de novo глиобластомами с катастрофически неблагоприятным прогнозом.

В нашем исследовании было показано, что при глиобластомах у взрослых людей не старше 55 лет (так называемые «глиобластомы у людей молодого возраста») с мутацией гена IDH1 имеют место более благоприятные показатели общей выживаемости. О «долгожителях» среди больных с глиобластомами известно давно - причем возраст моложе 50 лет считался основным прогностически благоприятным фактором. A. Korshunov и соавт. [13] еще в 2005 г. выделили глиобластому у молодых в отдельную подгруппу с отличительными молекулярными особенностями. Последовавшее в 2008 г. открытие D. Parsons и соавт. [20] в глиобластомах у больных этой возрастной группы гетерозиготной точковой мутации гена IDH1 посредством использования технологии Next-Generation Sequencing и базы данных, включающей 23,219 транскриптов от 20,661 гена, явилось поворотным моментом в исследовании генетических поломок в глиомах. Открытие мутации гена IDH1 позволило по-новому объяснить предложенную A. Korshunov и соавт. [12] в 2006 г. молекулярную классификацию глиобластом, выделяющую две прогностически различные подгруппы глиобластом, а выявленный гиперметилированный генотип глиобластом у взрослых с мутацией гена IDH1 [24] позволяет понять, почему опухоли данной подгруппы в отличие от глиобластом у детей и взрослых с отсутствием мутации гена IDH1 чувствительны к лучевой терапии и химиотерапии алкилирующими агентами, в том числе Темозоломидом.

Для определения мутации гена IDH1 и выявления прогностически наиболее благоприятного подтипа глиобластом в рутинной практике любого патологоанатомического отделения возможно использование простого в применении иммуногистохимического исследования, результаты которого в 100% случаев совпадают с прямым секвенированием генов и анализом с использованием Illumina 450k метиляционного аррея. Выявление мутации гена IDH1 (или мутантного протеина IDH1, если речь идет о рекомендуемом нами иммуногистохимическом исследовании) в глиобластомах у взрослых представляется особенно важным не только из-за чувствительности опухоли к химио- и лучевой терапии, но и по причине возможной таргетной терапии ингибиторами AGI-5198 и AGI-6780, действующими на R132H IDH1 и R140Q IDH2 соответственно [9].

Как показано в настоящей работе, глиобластомы у детей представляют собой достаточно привлекательную для дальнейшего исследования гетерогенную группу; среди детей с глиобластомами, несмотря на низкие показатели 5-летней общей выживаемости, встречаются отдельные «долгожители». В будущем мы планируем провести анализ мутации гена Н3F3A методом прямого секвенирования на большей группе детских глиобластом, сравнить возможные выявленные мутации K27M и G34R/V с локализацией опухоли и определить прогностическое значение каждого типа мутации.

Выводы

Глиобластомы у детей и взрослых при всей схожести гистологической картины, с некоторыми различиями по частоте выявленных цитогенетических аберраций (в детской серии преобладали амплификации генов MYC, MYCN и PDGFRA, в то время как глиобластомы у взрослых чаще демонстрировали амплификации генов EGFR и CDK4, гомозиготную делецию гена CDKN2A и делецию хромосомы 10q) представляют собой гетерогенную группу опухолей, в которой на основе анализа мутационного статуса можно выделить как минимум три различные подгруппы: глиобластомы у детей, глиобластомы у взрослых с мутацией гена IDH1 (прогностически наиболее благоприятный подтип) и глиобластомы у взрослых с отсутствием мутации гена IDH1.

Благодарность

Авторы сердечно благодарят сотрудницу отделения патологической анатомии ФГБУ «НИИ нейрохирургии» РАМН И.В. Шибаеву за оказанную помощь в обработке клинических данных и Prof. Dr. Stefan M. Pfister (Division of Pediatric Neurooncology, German Cancer Research Center (DKFZ), Heidelberg, Germany) за приглашение участвовать в проекте «Pediatric Glioblastomas» и любезно предоставленную возможность исследовать генетические особенности глиобластом у взрослых на базе DKFZ. Также авторы выражают признательность благотворительному фонду помощи детям с онкогематологическими и иными тяжелыми заболеваниями «Подари Жизнь» за содействие в проведении данного исследования, а также за неоценимую помощь и поддержку, которую фонд оказывает детям с опухолями головного мозга и их семьям.

Комментарий

Исследование генетических повреждений в глиобластомах очень важно, так как в конечном итоге может привести к выяснению гистогенеза опухолей, опухолевой прогрессии и в результате к разработке более эффективных методов лечения. Все это делает представленную работу крайне актуальной. Особую актуальность работе придает сравнительная характеристика генетических аберраций глиобластом у детей и взрослых, потому что под одним названием объединены, по всей вероятности, генетически различные опухоли. К сожалению, в работе не указаны возрастные группы обследованных детей. По моему мнению, необходимо указать значение изменений регуляторных генов в развитии опухоли и ее клинической и гистологической характеристике. Исследование выполнено на хорошем методическом уровне. Очень интересны данные по полному совпадению иммуногистохимического и генетического исследований. Хорошо представлено обсуждение полученных результатов и даже предлагается молекулярная классификация глиобластом (я бы не рискнул это делать, так как классификация не основывается только на одном методе исследования, особенно при гетерогенности полученных результатов и относительно небольшом материале).

А.Г. Талалаев (Москва)

slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Острое отравление метадоном и α-пирролидиновалерофеноном тяжелой степени, осложненное остановкой кровообращения.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):110-119

Влияние социальных сетей на формирование дисморфофобий и риск развития расстройств пищевого поведения у студентов.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):104-109

Здоровые молодые взрослые с семейной отягощенностью по алкогольной зависимости: суицидальные мысли, тревога и «поиск новизны».Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):96-103

Кетогенная диета в лечении фармакорезистентной эпилепсии у детей: оценка клинической эффективности, потребления ресурсов здравоохранения и прямых медицинских затрат.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):86-95

Клинико-функциональные особенности болезни Паркинсона при хронической болезни почек.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):79-85

Факторы, ассоциированные с прогрессированием умеренных когнитивных нарушений у пациентов с фибрилляцией предсердий.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):71-78

Распространенность рассеянного склероза в Республике Дагестан.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):66-70

Современный взгляд на немедикаментозную коррекцию когнитивных нарушений.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):59-65

Двигательные дисфункции как промежуточный фенотип шизофрении: систематизированный обзор.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):51-58

Молекулярные и системные механизмы когнитивных нарушений, ассоциированных с коронавирусной инфекцией.Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2026;126(8):40-50

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026