ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Характеристика генетических полиморфизмов, связанных с нейрофизиологическими процессами, и анализ распределения частоты их встречаемости в российской популяции

Характеристика генетических полиморфизмов, связанных с нейрофизиологическими процессами, и анализ распределения частоты их встречаемости в российской популяции

Авторы:
Кутелев Г.Г.,
Малышкин С.С.,
Криворучко А.Б.,
Иванов А.М.,
Черкашин Д.В.,
Трандина А.Е.,
Морозова Н.Е.,
Деревянкин Д.С.

Журнал: Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2022;122(6):122-127.

DOI: 10.17116/jnevro2022122061122

Прочитано: 2769 раз

Скачать PDF

Резюме

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

Анализ полиморфных локусов генов, продукты которых принимают непосредственное участие в молекулярных механизмах регуляции нейрофизиологических процессов.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Выборка испытуемых составляла 128 неродственных лиц мужского и женского пола, проживающих в европейской части России. В исследовании оценивали частоту встречаемости 11 однонуклеотидных замен, расположенных в генах, кодирующих рецепторы серотонина, цилиарный нейротрофический фактор, разобщающий белок 2, метилентетрагидрофолатредуктазу, метионинсинтазу, метионинсинтазу редуктазу, дипептидилкарбоксипептидазу 1, γ-коактиватор рецептора, активируемого пролифератором пероксисом, и нейротрофический фактор головного мозга. Генотипирование образцов осуществляли методом ПЦР с флюоресцентной детекцией и анализом полиморфизма длин рестрикционных фрагментов.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Распределение генотипов полиморфизмов соответствовало равновесию Харди—Вайнберга за исключением rs1801133 MTHFR (χ2=5,3088, p=0,0212) в котором наблюдалось уменьшение гетерозиготности. Данные исследования распределения минорных аллелей не имеют статистически значимых отклонений от данных европейской популяции, однако наблюдаются отклонения азиатской, африканской и латиноамеринской популяций.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Статистически значимые согласованности частот аллелей в исследуемой группе с популяциями из других регионов и проведенными в них исследованиями являются основанием для включения выбранных однонуклеотидных полиморфизмов в перечень ограниченного набора молекулярно-генетических маркеров, позволяющего дополнить систему мониторинга психического здоровья и совершенствования профессиональной подготовки лиц экстремальных профессий.

Ключевые слова

  • однонуклеотидный полиморфизм
  • полимеразная цепная реакция
  • нейрофизиологические процессы
  • молекулярно-генетические биомаркеры
  • частоты аллелей

Дата поступления: 19.01.2022

Дата принятия в печать: 15.02.2022

Дата публикации: 27.06.2022

Несмотря на распространенность исследований, направленных на выявление ассоциаций однонуклеотидных полиморфизмов последовательности ДНК (ОНП) с индивидуальной предрасположенностью к развитию многофакторных фенотипических особенностей, на сегодняшний день не существует перечня геномных биомаркеров, позволяющих прогнозировать риски развития индивидуальной реакции на воздействие экстремальных факторов труда и определяющих адаптацию к различным нейропсихическим расстройствам. Анализ генетических механизмов регуляции нейрофизиологических процессов позволяет проводить селекцию отдельных молекулярно-генетических маркеров, руководствуясь принципами значимости их ассоциации с изучаемым многофакторным признаком и функциональности для его реализации. При этом в настоящее время существует большая вариативность в оценках генетических коррелятов нейропсихических особенностей и поведенческих реакций.

В данной работе проведен анализ полиморфных локусов генов, продукты которых принимают непосредственное участие в молекулярных механизмах регуляции нейрофизиологических процессов. Один из основных нейромедиаторов — серотонин (5-гидрокситриптамин) связан с эмоциональным состоянием, половым поведением, суточными ритмами, познанием и восприятием боли. Серотониновые рецепторы 2A типа (HTR2A) являются важным звеном в патогенезе различных психических расстройств. Исследователи обнаружили, что некоторые полиморфизмы данного гена, в частности rs6311 и rs6313, связаны с увеличением риска развития шизофрении и депрессии. Аллель A полиморфизма rs7997012 оказалась ассоциирована с ответом на терапию антидепрессантами [1].

Многочисленные ассоциативные исследования указывают на наличие взаимосвязи однонуклеотидных замен в гене цилиарного нейротрофического фактора (CNTF) с расстройствами аутистического спектра, умственной отсталостью, болезнями Гентингтона и Альцгеймера [2—4]. Это связано с тем, что ген CNTF оказывает плейотропное нейропротективное и нейровоспалительное действие.

В работах, посвященных изучению молекулярных основ патогенеза некоторых психических расстройств человека, оценивается роль UCP2 — гена разобщающего белка 2, который выполняет функцию митохондриального транспортера и связан с наработкой активных форм кислорода [5]. Была показана повышенная экспрессия UCP2 на периферии очагов ишемического инсульта [6]. Это указывает на взаимосвязь между митохондриальной функцией UCP2, производством активных форм кислорода и нейродегенеративными процессами [7].

Метилентетрагидрофолатредуктаза (MTHFR) — внутриклеточный фермент, который кодируется геном MTHFR и играет ключевую роль в метаболизме фолиевой кислоты, которая в свою очередь участвует в цикле метилирования и биосинтеза ДНК и РНК, пролиферации и дифференцировки нервных стволовых клеток, регуляции и экспрессии генов, синтезе нейротрасмиттеров, синтезе и восстановлении миелина [8—10]. Ее дефицит связан с риском развития многих психических и неврологических расстройств — расстройства аутистического спектра, синдрома дефицита внимания и гиперактивности, шизофрении и др. [11]. Была показана роль генетических полиморфизмов, связанных с уровнем фолатов в организме человека, в этиологии идиопатической интеллектуальной недостаточности [12, 13]. Известно около 20 мутаций гена MTHFR, нарушающих функцию фермента, при этом ряд ОНП, в том числе rs1801133 и rs18011131, рассматривается как генетические факторы предрасположенности к психическим расстройствам [14]. Также отмечена взаимосвязь полиморфных вариантов генов метионинсинтазы (MTR) и метионинсинтазы редуктазы (MTRR) с дефицитом витамина B12 и развития у пациентов рассеянного склероза и болезни Альцгеймера с поздним началом [15, 16].

В развитие ряда психоневрологических заболеваний вносят свой вклад полиморфные изменения гена ACE, кодирующего ангиотензинпревращающий фермент 2 (ACE2/АПФ2). Отмечается ассоциация полиморфизмов гена ACE с риском развития депрессивного расстройства и суицидального поведения [17]. При этом выявлена взаимосвязь вариабельных позиций нуклеотидной последовательности ACE с риском развития нейродегенеративных расстройств, таких как болезнь Альцгеймера [18].

Потребность нейронов в энергии задействует митохондрии клеток, и дисфункция митохондриального энергетического метаболизма приводит к снижению выработки АТФ, нарушению буферизации кальция и генерации активных форм кислорода. Такие нарушения приводят к нейродегенеративным изменениям и развитию болезни Гентингтона, биполярного и депрессивного расстройств, шизофрении [19—22].

Нейротрофический фактор головного мозга (BDNF) играет важную роль в регуляции процессов нейрогенеза, формирования клеток определенной медиаторной специфичности, модификации нейронных сетей с образованием новых синапсов и перестройки синаптической передачи. В ряде исследований однонуклеотидные замены в гене BDNF, включая наиболее изученную rs6265, в разных популяциях были ассоциированы с аутизмом, депрессивным расстройством, болезнью Альцгеймера и др. [23].

Цель исследования — оценка частоты встречаемости 11 однонуклеотидных замен, расположенных в генах, кодирующих рецепторы серотонина (HTR2A), CNTF, UCP2, MTHFR, MTR, MTRR, дипептидилкарбоксипептидазу 1 (ACE), γ-коактиватор рецептора, активируемого пролифератором пероксисом (PPARGC1A), и BDNF в случайной выборке, и сравнение распределения минорных аллелей с данными популяционных исследований.

Материал и методы

В работе были протестированы 128 неродственных испытуемых мужского и женского пола, в возрасте от 18 до 54 лет, представляющих популяцию русских, проживающих на территории Северо-Западного, Южного и Северо-Кавказского федеральных округов.

Для проведения анализа использовали свежую цельную кровь, взятую из кубитальной вены испытуемых в объеме 10 мл в вакуумные пробирки, содержащие 0,5М раствор этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА). Образцы были подвергнуты процедуре селективного лизиса эритроцитов с помощью раствора гемолитика («ЦНИИЭ Роспотребнадзора», Россия). Выделение геномной ДНК из взвеси лейкоцитов проводили методом высаливания и концентрирования на спинн-колонках набором реагентов ExtractDNA Blood («Евроген», Россия), согласно инструкциям производителя. Качественный и количественный анализ полученных образцов ДНК проводили спектрофотометрическим методом на приборе NanoPhotometer NP80 («Implen», Германия).

Генотипирование образцов осуществляли методом Real-time полимеразной цепной реакции (ПЦР) в соответствии с протоколом фирмы-изготовителя коммерческих наборов реагентов («Синтол» и «Литех», Россия) на детектирующих амплификаторах ДТ-Лайт («ДНК-технологии», Россия) и CFX96 Touch («Bio-Rad», США).

Исследование вариабельного участка гена BDNF rs6265 (Val66Met) было проведено с помощью метода ПЦР с анализом полиморфизма длин рестрикционных фрагментов.

Выбор прямого и обратного праймеров проводили вручную, используя комбинацию данных из источников литературы и специализированных web-приложений. Синтез праймеров был выполнен ООО «Евроген» (Россия). Температуру отжига для пары праймеров подбирали опытным путем, учитывая расчетную. Для ферментативного гидролиза полиморфного участка G>A rs6265 использовали эндонуклеазу рестрикции PspCI («СибЭнзим», Россия). После обработки данной рестриктазой ПЦР-продукта, содержащего полиморфный локус G/G, фрагмент ДНК общей длиной 316 п.н. разделится на два — 217 и 99 п.н. В случае обнаружения генотипа G/A в смеси будут присутствовать три фрагмента длиной 316, 217 и 99 п.н. В случае присутствия в исследуемом образце генотипа A/A длина фрагмента 326 п.н. останется неизменной.

Полученные в результате амплификации с последующей очисткой двухцепочечной ДНК из реакционной смеси и ферментативным гидролизом фрагменты анализировались методом микрочипового электрофореза с использованием системы MultiNA («Shimadzu», Япония).

Отклонения от равновесия Харди—Вайнберга проверяли с помощью критерия согласия χ2. Различия в частотах аллелей и генотипов исследуемых полиморфизмов между нашими испытуемыми и популяционными выборками анализировали с использованием z-критерия Фишера (уровень значимости 95%).

Все субъекты дали информированное согласие на участие в исследовании. Все методы были выполнены в соответствии с Хельсинкской декларацией, опубликованной Национальным институтом здравоохранения [24].

Исследование одобрено на заседании независимого этического комитета при Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова 18 февраля 2020 г. (протокол №232).

Результаты и обсуждение

Аллельные и генотипические частоты rs7997012 (HTR2A), rs6313 (HTR2A), rs1800169 (CNTF), rs660339 (UCP2), rs18011131 (MTHFR), rs1801133 (MTHFR), rs1805087 (MTR), rs1801394 (MTRR), rs4646994 (ACE), rs8192678 (PPARGC1A), rs6265 (BDNF) испытуемых представлены в табл. 1.

Таблица 1. Распределение аллелей и генотипов полиморфизмов в исследуемой выборке

Ген/полиморфизм

Аллель/генотип

He, абсолютное значение (доля)

Ho, абсолютное значение (доля)

p

χ2

HTR2A rs7997012 A>G

AA

25 (0,278)

24 (0,267)

0,6807

0,1694

AG

43 (0,478)

45 (0,499)

GG

22 (0,244)

21 (0,234)

HTR2A rs6313 C>T

CC

43 (0,478)

43 (0,478)

0,8870

0,0202

CT

38 (0,422)

38 (0,422)

TT

9 (0,100)

9 (0,100)

CNTF rs1800169 G>A

GG

60 (0,667)

59 (0,658)

0,5873

0,2946

GA

26 (0,289)

28 (0,306)

AA

4 (0,044)

3 (0,036)

UCP2 rs660339 C>T

CC

19 (0,211)

21 (0,228)

0,5141

0,4257

CT

48 (0,533)

45 (0,499)

TT

23 (0,256)

24 (0,273)

MTHFR rs18011131 A>C

AA

39 (0,433)

39 (0,437)

0,8743

0,0250

AC

41 (0,456)

40 (0,448)

CC

10 (0,111)

11 (0,115)

MTHFR rs1801133 C>T

CC

52 (0,578)

48 (0,530)

0,0212

5,3088

CT

27 (0,300)

35 (0,396)

TT

11 (0,122)

7 (0,074)

MTR rs1805087 A>G

AA

52 (0,578)

51 (0,571)

0,7225

0,1261

AG

32 (0,355)

34 (0,369)

GG

6 (0,067)

5 (0,060)

MTRR rs1801394 A>G

AA

16 (0,178)

16 (0,183)

0,8398

0,0409

AG

45 (0,500)

44 (0,490)

GG

29 (0,322)

30 (0,327)

ACE rs4646994 InsDel

InsIns

30 (0,333)

28 (0,315)

0,4763

0,5072

InsDel

41 (0,456)

45 (0,492)

DelDel

19 (0,211)

17 (0,193)

PPARGC1A rs8192678 G>A

GG

43 (0,478)

40 (0,444)

0,1547

2,0250

GA

34 (0,378)

40 (0,444)

AA

13 (0,144)

10 (0,112)

BDNF rs6265 G>A

GG

28 (0,737)

28 (0,732)

0,7893

0,0714

GA

9 (0,237)

9 (0,248)

AA

1 (0,026)

1 (0,21)

Распределение генотипов полиморфизмов rs7997012 и rs6313 HTR2A, rs1800169 CNTF, rs660339 UCP2, rs18011131 MTHFR, rs1805087 MTR, rs1801394 MTRR, rs4646994 ACE, rs8192678 PPARGC1A, rs6265 BDNF соответствовало равновесию Харди—Вайнберга (p>0,05), за исключением rs1801133 MTHFR, в котором наблюдалось уменьшение гетерозиготности (p<0,05), что указывает на необходимость увеличения размера выборки. Доля минорных аллелей исследованных SNP варьировала от 0,145 до 0,572.

Частоты минорных аллелей исследуемых полиморфизмов группы испытуемых сравнили с ранее проведенными исследованиями в европейской, азиатской, африканской и латиноамериканской популяциях (табл. 2) [25].

Таблица 2. Сравнение частоты встречаемости минорных аллелей в исследуемой выборке с распределением в разных расах

Ген/полиморфизм

Минорный аллель

Частота встречаемости

настоящее исследование

европейцы

азиаты

африканцы

латиноамериканцы

HTR2A rs7997012

G

0,483

0,573

0,755*

0,928*

0,756*

HTR2A rs6313

T

0,311

0,420

0,551*

0,385

0,424

CNTF rs1800169

A

0,189

0,145

0,132

0,055*

0,115

UCP2 rs660339

T

0,522

0,403

0,445

0,445

0,437

MTHFR rs18011131

C

0,339

0,313

0,247

0,169*

0,219

MTHFR rs1801133

T

0,272

0,349

0,338

0,121*

0,290

MTR rs1805087

G

0,244

0,189

0,120*

0,266

0,199

MTRR rs1801394

G

0,572

0,543

0,269*

0,291*

0,384*

ACE rs4646994

Del

0,439

0,542

0,352

0,585*

0,465

PPARGC1A rs8192678

A

0,333

0,343

0,437

0,104*

0,256

BDNF rs6265

A

0,145

0,194

0,445*

0,043*

0,148

Примечание. * — статистически значимые различия для популяционной выборки.

Полученные данные исследованных полиморфизмов гена, кодирующего рецепторы серотонина, находятся в пределах вариации минорных аллелей, опубликованных и представленных в базах данных для европеоидной популяции, в частности у полиморфизма rs6313 распределение мутантного аллеля совпадает с африканской и латиноамериканской популяциями. У полиморфизма rs1800169 (CNTF) частота вариации минорного аллеля коррелирует с данными европейской, азиатской и латиноамериканской популяций, что наблюдается и в исследуемых полиморфизмах rs1801131 и rs1801133 гена, кодирующего MTHFR, rs14646994 гена дипептидилкарбоксипептидазы 1 (ACE), а также rs8192678 гена белка PPARGC1A. Проведенный анализ исследуемого генетического маркера гена, кодирующего UCP2, не показал существенных отличий с приведенными популяциями. Между тем достоверное отклонение распределения минорного аллеля исследуемой группы существенно отличается при сравнении только азиатской популяции полиморфизма гена MTR. При анализе полиморфизма rs1801394 гена, кодирующего MTRR, достоверных отклонений не наблюдалось только при сравнении с европейской популяцией. У полиморфизма rs6265 (BDNF) частота встречаемости минорного аллеля коррелирует с распределением в европейской и латиноамериканской популяциях.

На основании полученных данных следует предположить, что у носителей минорных аллелей исследованных полиморфизмов повышается риск нарушения синтеза нейромедиаторов, уменьшение активности дофамин β-гидроксилазы, синтеза серотонина и увеличение активности холинацетилтрансферазы, снижение активности кодируемых ферментов, обеспечивающих превращение гомоцистеина в метионин [26, 27]. На фоне таких изменений увеличивается риск развития когнитивных расстройств, протектирование суицидального поведения, нестабильности в адаптации к психоэмоциональным расстройствам, скачки в изменении настроения, а также парадоксальных реакций на стресс [28—30].

Заключение

Полученные результаты позволяют судить о распределении минорных аллелей исследованных полиморфизмов в нашей выборке. Статистически значимые согласованности частот аллелей в исследуемой группе с популяциями из других регионов и проведенными в них исследованиями являются основанием для включения выбранных ОНП в перечень ограниченного набора молекулярно-генетических маркеров, позволяющего дополнить систему мониторинга психического здоровья и совершенствования профессиональной подготовки лиц экстремальных профессий. Данные по частотам встречаемости аллелей генов-кандидатов могут быть использованы для проведения дальнейших исследований.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References
  1. Spies M, Nasser A, Ozenne B, et al. Common HTR2A variants and 5‐HTTLPR are not associated with human in vivo serotonin 2A receptor levels. Hum. Brain Mapp. 2020;16(XLI):1-11. https://doi.org/10.1002/hbm.25138
  2. Brondino N, Rocchetti M, Fusar-Poli L, et al. Increased CNTF levels in adults with autism spectrum disorders. World J Biol Psychiatry. 2019;20(IX):742-746. https://doi.org/10.1080/15622975.2018.1481999
  3. Ramaswamy S, Kordower JH. Gene therapy for Huntington’s disease. Neurobiol Dis. 2012;48(II):243-254. https://doi.org/10.1016/j.nbd.2011.12.030
  4. Kazim SF, Iqbal K. Neurotrophic factor small-molecule mimetics mediated neuroregeneration and synaptic repair: emerging therapeutic modality for Alzheimer’s disease. Mol Neurodegener. 2016;11(I):50. https://doi.org/10.1186/s13024-016-0119-y
  5. Heise V, Zsoldos E, Suri S, et al. Uncoupling protein 2 haplotype does not affect human brain structure and function in a sample of community-dwelling older adults. PLoS One. 2017;12(VIII):63-68. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0181392
  6. Donadelli M, Dando I, Fiorini C, et al. UCP2, a mitochondrial protein regulated at multiple levels. Cell Mol Life Sci. 2014;71(VII):1171-1190. https://doi.org/10.1007/s00018-013-1407-0
  7. Cardoso S, Correia S, Carvalho C, et al. Perspectives on mitochondrial uncoupling proteins-mediated neuroprotection. J Bioenerg Biomembr. 2015;47(II):119-131. https://doi.org/10.1007/s10863-014-9580-x
  8. Wan L, Li Y, Zhang Z, et al. Methylenetetrahydrofolate reductase and psychiatric diseases. Transl Psychiatry. 2018;8(I):242. https://doi.org/10.1038/s41398-018-0276-6
  9. Zhang Z, Yu L, Li S, et al. Association Study of Polymorphisms in Genes Relevant to Vitamin B12 and Folate Metabolism with Childhood Autism Spectrum Disorder in a Han Chinese Population. Med Sci Monit. 2018;19:370-376. https://doi.org/10.12659/msm.905567
  10. Saha T, Chatterjee M, Verma D, et al. Genetic variants of the folate metabolic system and mild hyperhomocysteinemia may affect ADHD associated behavioral problems. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 2018;84(I):1-10. https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2018.01.016
  11. Roffman JL, Brohawn DG, Nitenson AZ, et al. Genetic variation throughout the folate metabolic pathway influences negative symptom severity in schizophrenia. Schizophr Bull. 2013;39(II):330-338. https://doi.org/10.1093/schbul/sbr150
  12. Froese DS, Huemer T, Suormala P, et al. Mutation update and review of severe methylenetetrahydrofolate reductase deficiency. Hum Mutat. 2016;37(V):427-438. https://doi.org/10.1002/humu.22970
  13. Dutta S, Shaw J, Chatterjee A, et al. Importance of gene variants and co-factors of folate metabolic pathway in the etiology of idiopathic intellectual disability. Nutr Neurosci. 2011;14(V):202-209. https://doi.org/10.1179/1476830511Y.0000000016
  14. Liew SC, Gupta ED. Methylenetetrahydrofolate reductase (MTHFR) C677T polymorphism: epidemiology, metabolism and the associated diseases. Eur J Med Genet. 2015;58:1-10. https://doi.org/10.1016/j.ejmg.2014.10.004
  15. Dardiotis E, Arseniou S, Sokratous M, et al. Vitamin B12, folate, and homocysteine levels and multiple sclerosis: A meta-analysis. Mult Scler Relat Disord. 2017;17:190-197. https://doi.org/10.1016/j.msard.2017.08.004
  16. Coppede F, Tannorella P, Pezzini I, et al. Folate, homocysteine, vitamin B12, and polymorphisms of genes participating in one-carbon metabolism in late-onset Alzheimer’s disease patients and healthy controls. Antioxid Redox Signal. 2012;17(II):195-204. https://doi.org/10.1089/ars.2011.4368
  17. Mandelli L, Serretti A. Gene environment interaction studies in depression and suicidal behavior: An update. Neurosci Biobehav Rev. 2013;37(X):2375-2397. https://doi.org/10.1016/j.neubiorev.2013.07.011
  18. Lucatelli JF, Barros AC, Silva VK, et al. Genetic influences on Alzheimer’s disease: evidence of interactions between the genes APOE, APOC1 and ACE in a sample population from the South of Brazil. Neurochem Res. 2011;36(VIII):1533-1539. https://doi.org/10.1007/s11064-011-0481-7
  19. Johri A, Chandra A. PGC-1α, mitochondrial dysfunction, and Huntington’s disease. Free Radic Biol Med. 2013;62:37-46. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2013.04.016
  20. Geoffroy PA, Etain B, Lajnef M. Circadian genes and lithium response in bipolar disorders: associations with PPARGC1A (PGC-1α) and RORA. Genes Brain Behav. 2016;15(VII):660-668. https://doi.org/10.1111/gbb.12306
  21. Wang CC, Lung FW. The role of PGC-1 and Apoε4 in insomnia. Psychiatr Genet. 2012;22(2):82-87. https://doi.org/10.1097/YPG.0b013e32834dc438
  22. Wang J, Song HR, Guo MN, et al. PGC-1α regulate critical period plasticity via gene environment interaction in the developmental trajectory to schizophrenia. Biochem Biophys Res Commun. 2020;525(4):989-996. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2020.03.030
  23. Кокаева З.Г., Кочеткова Т.О., Афончикова Е.В. и др. Исследование полиморфизма гена нейротрофического фактора головного мозга (BDNF) у жителей Москвы. Генетика. 2013;49(XII):1432-1435. https://doi.org/10.7868/S0016675813120047
  24. World Medical Association Declaration of Helsinki Ethical Principles for Medical Research Involving Human Subjects World Medical Association. JAMA. 2013;20:2191-2194.
  25. National Library of Medicine, National Center for Biotechnology Information (NCBI). https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/?term=rs
  26. Nishiyama J, Tochigi M, Itoh S, et al. No association between the CNTF null mutation and schizophrenia or personality. Psychiatric Genetics. 2006;16(V):217-219. https://doi.org/10.1097/01.ypg.0000242189.05656.9d
  27. Wan L, Li Y, Zhang Z, et al. Methylenetetrahydrofolate reductase and psychiatric diseases. Transl Psychiatry. 2018;8(I):1-12. https://doi.org/10.1038/s41398-018-0276-6
  28. Lavedan C, Volpi S, Polymeropoulos MH. Effect of a ciliary neurotrophic factor polymorphism on schizophrenia symptom improvement in an iloperidone clinical trial. Pharmacogenomics. 2008;9(III):289-301. https://doi.org/10.2217/14622416.9.3.289
  29. Antypa N, Calati R, Souery D. Variation in the HTR1A and HTR2A genes and social adjustment in depressed patients. J Affect Disord. 2013;150(II):649-652. https://doi.org/10.1016/j.jad.2013.02.036
  30. Jian YL, Ming YJ, Zhou MK, et al. Influence of 5-HTR2A genetic polymorphisms on the efficacy of antidepressants in the treatment of major depressive disorder: A meta-analysis. Journal of Affective Disorders. 2014;168:430-438. https://doi.org/10.1016/j.jad.2014.06.012
slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Эпидемиология и методы диагностики микробных кератитов.Вестник офтальмологии. 2026;142(3):70-78

Диагностический потенциал малых некодирующих РНК в материале пайпель-биопсии при эндометриозе.Проблемы репродукции. 2026;32(1):92-102

Биоинформатический подбор полиморфных маркеров для изучения функций гена VAV3.Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2025;43(4-2):91-96

Связь полиморфизма гена BAIAP2L1 с риском развития генитального эндометриоза в сочетании с миомой матки и гиперплазией эндометрия.Российский вестник акушера-гинеколога. 2025;25(6):5-11

Разработка первого российского LAMP-набора для диагностики кори.Лабораторная служба. 2024;13(4):28-35

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026