Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Резникова Л.В.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Дегтяревская Т.Ю.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Кучминская М.Б.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Самбурова Н.В.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Асламазова А.Э.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Глазные проявления и генетические аспекты синдрома Элерса—Данлоса

Авторы:

Резникова Л.В., Дегтяревская Т.Ю., Кучминская М.Б., Самбурова Н.В., Асламазова А.Э.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2025;141(3): 54‑62

Прочитано: 1477 раз


Как цитировать:

Резникова Л.В., Дегтяревская Т.Ю., Кучминская М.Б., Самбурова Н.В., Асламазова А.Э. Глазные проявления и генетические аспекты синдрома Элерса—Данлоса. Вестник офтальмологии. 2025;141(3):54‑62.
Reznikova LV, Degtyarevskaya TYu, Kuchminskaya MB, Samburova NV, Aslamazova AE. Ocular manifestations and genetic aspects of Ehlers—Danlos syndrome. Russian Annals of Ophthalmology. 2025;141(3):54‑62. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma202514103154

Рекомендуем статьи по данной теме:

Синдром Элерса—Данлоса (EDS) представляет собой гетерогенную группу наследственных заболеваний соединительной ткани, характеризующихся аномальным синтезом коллагена, поражающих кожу, связки, суставы, кровеносные сосуды и другие органы [1]. Данный синдром был назван в честь датского и французского дерматологов Э. Элерса и А. Данлоса, которые в 1898 и 1908 годах соответственно описали пациентов, у которых были зафиксированы изменения кожи в сочетании с гипермобильностью суставов [2]. Но впервые EDS был описан еще в 1892 г. российским врачом-дерматологом Н.А. Черногубовым, который объяснил развитие данной патологии генерализованным дефектом эмбриологического формирования волокон соединительной ткани [3]. Наиболее характерными клиническими проявлениями EDS являются гипермобильность суставов, гиперэластичность и хрупкость кожи с аномальным заживлением ран [4, 5]. На основании клинических данных и с учетом выявления молекулярно-генетических механизмов развития заболевания были сформулированы различные варианты систематизации.

Первая классификация, включающая 5 основных типов, была введена в 1970 г. П. Бейтоном [6], за ней последовали Берлинская классификация с 11 типами [7] и Вильфраншская классификация 1997 г., в которую были включены 6 типов EDS [8].

В 2017 г. Международным консорциумом была опубликована новая модификация классификации с 13 различными вариантами и набором клинических, молекулярных и биохимических маркеров для постановки диагноза [9]. В ее номенклатуре типам синдрома Элерса—Данлоса уже не присваивались римские порядковые номера. Данная классификация была обновлена в 2020 г. в связи с описанием дополнительного типа EDS (Classical-like type 2 или clEDS2), вызываемого биаллельными вариантами гена AEBP1 [5]. Так, из 14 подтипов только 13 ассоциированы с различными генетическими дефектами.

Сложность диагностики подтипов EDS заключается в неспецифичности клинических симптомов, поэтому возникает необходимость молекулярно-генетического тестирования для идентификации конкретного гена, кодирующего коллаген, или взаимодействующих с ним белков. Особенно это важно для пациентов с клинической картиной, которая не полностью подходит под описание какого-либо из существующих подтипов EDS.

Для постановки предварительного диагноза EDS (в комбинации с характерными признаками других органов и систем) используются следующие офтальмологические критерии в зависимости от типа синдрома [5, 9] (см. таблицу).

Офтальмологические критерии типов синдрома Элерса—Данлоса

Тип синдрома Элерса—Данлоса (EDS)

Офтальмологические критерии

Brittle Cornea Syndrome (Синдром хрупкой роговицы)

Большие критерии:

— тонкая роговица с разрывом или без него;

— ранний прогрессирующий кератоконус;

— ранний прогрессирующий кератоглобус;

— голубые склеры

Малые критерии:

— энуклеация или рубцевание роговицы в результате предшествующего разрыва;

— прогрессирующая потеря глубины стромы роговицы, особенно в центральной части роговицы;

— миопия высокой степени с нормальной или умеренно увеличенной — аксиальной длиной;

— отслойка сетчатки

Kyphoscoliotic EDS (kEDS)

Малые критерии:

— голубые склеры;

— рефракционные нарушения (миопия, гиперметропия)

Генно-специфические малые критерии:

Для PLOD1

— хрупкость/разрыв склеры и глаза;

— микрокорнеа

Musculocontractural EDS (mcEDS)

Малые критерии:

— косоглазие;

— рефракционные ошибки (близорукость, астигматизм);

— глаукома/повышенное внутриглазное давление

Spondylodysplastic EDS (spEDS)

Генно-специфические малые критерии:

— для B4GALT7 — тяжелая гиперметропия (без указания степени);

— для B4GALT7 — помутнение роговицы;

— для SLC39A13 — выпуклые глаза с голубоватыми склерами

Dermatosparaxis EDS (dEDS)

Малые критерии:

— рефракционные ошибки (близорукость, астигматизм);

— косоглазие

Vascular EDS (vEDS)

Малые критерии:

— кератоконус

Classical EDS (cEDS)

Малые критерии:

— эпикантус

Таким образом, глазные проявления являются отличительной особенностью синдрома хрупкой роговицы, кифосколиотического, мышечноконтрактурного, спондилодиспластического, дермато-спараксисного, сосудистого и классического типов EDS. Другие типы EDS, не перечисленные в таблице, также могут иметь незначительные изменения со стороны глаз, за исключением миопатического и пародонтального типов, при которых пока не было описано никаких офтальмологических проявлений [10].

Синдром хрупкой роговицы

Синдром хрупкой роговицы (BCS) — это редкое аутосомно-рецессивное заболевание соединительной ткани, характеризующееся тяжелым истончением роговицы. Первоначально BCS рассматривался как фенотипический вариант кифосколиотического типа синдрома Элерса—Данлоса, но в связи с выявлением различной молекулярной основы и клинической реклассификацией этих расстройств BCS был выделен как отдельный тип EDS [9]. Распространенность BCS составляет менее 1 из 1 000 000 [11].

Генетически было подтверждено, что биаллельные варианты в двух генах ZNF469 и PRDM5 отвечают за BCS [11]. Мутации в гене ZNF469 (16q24.2) являются причиной синдрома хрупкой роговицы типа 1 (BCS1), а синдром хрупкой роговицы типа 2 (BCS2) вызывается мутациями в гене PRDM5 (4q25-q26) [12]. Оба кодируемых белка, ZNF469 и PRDM5, являются транскрипционными факторами, которые регулируют компоненты внеклеточного матрикса, в частности биосинтез коллагена [13]. Мутация гена ZNF469 приводит к снижению экспрессии коллагена I (COL-I) и его структурным изменениям, что приводит к дисфункции стромы роговицы и, как следствие, к снижению ее биомеханической силы [14]. Таким образом, ZNF469 отвечает за нормальное развитие переднего сегмента роговицы и является носителем высоконаследуемого количественного признака толщины роговицы. PRDM5 отвечает за формирование и поддержание внеклеточного матрикса соединительной ткани и также определяет толщину роговицы [11, 12]. Гомозиготные мутации в генах ZNF469 или PRDM5 часто приводят к раннему и тяжелому кератоконусу, истончению роговицы и лептосклерии. Гетерозиготные мутации ассоциированы с более легким течением данных клинических симптомов [15].

Клиническая картина BCS включает в себя наиболее часто встречающиеся офтальмологические проявления, такие как экстремальное истончение роговицы, лептосклерия, кератоконус, кератоглобус, а также внеглазные проявления, включающие глухоту, гипермобильность суставов, гиперэластичность кожи, арахнодактилию и дисплазию развития тазобедренного сустава [12]. Отличием данного синдрома от других типов EDS является отсутствие выраженных генерализованных проявлений со стороны соединительной ткани.

Одним из основных и наиболее опасных офтальмологических проявлений BCS является прогрессирующее истончение роговицы с центральной толщиной менее 400 мкм, что приводит к повышенному риску ее спонтанного разрыва при минимальном механическом воздействии [16]. Данная перфорация возникает вследствие того, что роговицы пациентов с BCS не могут выдерживать нормальное биомеханическое напряжение в результате аномального корнеального гистерезиса [11]. Это отличает BCS от кифосколиотического типа EDS, при котором истончение происходит в основном за счет склеры. Перфорация роговицы, ассоциированная с BCS, чаще всего наблюдается у детей в возрасте 2—3 лет, что подчеркивает критическую важность ранней диагностики данного состояния [17].

У пациентов с BCS также может выявляться лептосклерия, миопия высокой степени, отслоение сетчатки, кератоконус и кератоглобус [16]. Кератоконус характеризуется ухудшающимся истончением роговицы, которое может привести к нечеткому или удвоенному зрению, астигматизму и повышенной чувствительности к свету. Аналогичным образом, кератоглобус является истончением роговицы, часто приводящим к изменению ее морфологии с гладкой кривой на более шарообразную форму [18].

Данные клинические проявления при отсутствии своевременной диагностики и профилактики в конечном итоге могут привести к полной потере зрения в результате перфорации роговицы или ее рубцевания после предшествующего разрыва [11, 16]. Поэтому любое изменение толщины роговицы в центральной части с центральной толщиной менее 400 мкм должно вызывать подозрения на BCS.

Подтверждение диагноза BCS и его окончательная дифференциация от других заболеваний соединительной ткани может быть осуществлена только с помощью генетического анализа по поиску мутаций в генах ZNF469 (BCS тип 1) и PRDM5 (BCS тип 2) [19]. Молекулярный анализ данных генов выполняется путем амплификации полимеразной цепной реакции и прямого секвенирования ДНК [15]. Результаты биохимических тестов, в отличие от кифосколиотического типа EDS, отражают нормальные значения активности лизилгидроксилазы, коэффициентов общего пиридинолина в моче и электрофоретической миграции коллагеновых цепей, производимых кожными фибробластами [20].

Также генетическое тестирование необходимо проводить и среди членов семьи пациента, с целью выявления гетерозиготных носителей мутаций, чтобы рассчитать риск возникновения BCS у потомков.

Кифосколиотический тип синдрома Элерса—Данлоса

Кифосколиотический тип EDS (kEDS) представляет собой редкое аутосомно-рецессивное генерализованное заболевание соединительной ткани, характеризующееся мышечной гипотонией, кифосколиозом с ранним началом и генерализованной гипермобильностью суставов в сочетании с хрупкостью кожи и различными аномалиями зрения [21], которые особенно были выделены в литературных источниках последних лет. Его распространенность составляет 1 на 100 000 [22]. Впервые генетически подтвержден и описан в 1974 г. M. Sussman и соавторами у двух родственных пациентов с EDS, у одного из которых был обнаружен коллаген с дефицитом гидроксилизина в культивируемых фибробластах [23]. В дополнение к характерным признакам данного синдрома у этих пациентов был выявлен тяжелый сколиоз, а также хрупкость тканей глаза, приводящая к разрыву глазного яблока или отслойке сетчатки. Наследуется kEDS аутосомно-рецессивно, т.е. если оба родителя являются носителями мутации, каждый их ребенок имеет 25% шанс быть пораженным, 50% шанс быть бессимптомным носителем и 25% шанс быть непораженным и не быть носителем [21].

До введения диагностики, основанной на генетическом подтверждении kEDS, данный тип разделяли на три варианта на основании биохимической характеристики: тяжелая форма со скелетными, кожными и глазными проявлениями, связанными с недостатком гидроксилизина в коже и низкой активностью лизилгидроксилазы в культивируемых фибробластах; аналогичная по симптоматике форма с почти нормальным содержанием гидроксилизина в коже, но с незначительной ферментативной активностью в культивируемых фибробластах; и преимущественно глазная форма без биохимических нарушений в коже или культивируемых фибробластах кожи [24].

В настоящее время выделяют 2 основных типа кифосколиотической формы EDS в зависимости от гена, в котором происходит мутация.

Дефицит лизилгидроксилазы 1 (LH1), важного посттрансляционного модифицирующего фермента в биосинтезе коллагена [25], чаще всего возникает из-за мутаций в гене PLOD1 (1p36.22) (проколлаген-лизин, 2-оксоглутарат-5-диоксигеназа 1) и идентифицируется как патогенетическая причина kEDS тип 1 (kEDS-PLOD1) [26]. Отсутствие или утрата функции LH1 приводит к недостаточному гидроксилированию и негликозилированию лизильных остатков в спиральном домене коллагена, тем самым нарушая сшивание коллагена и, как следствие, вызывая механическую нестабильность пораженной соединительной ткани [27].

Кифосколиотический EDS тип 2 возникает вследствие мутации в гене FKBP14 (7p14.3), который кодирует белок FKBP14, который известен также как FKBP22. Данный белок катализирует цис-транс-изомеризацию пролильных пептидных связей, которая является лимитирующей стадией сворачивания белка проколлагена, и, как было показано, катализирует сворачивание коллагена III типа. FKBP22 также функционирует как шаперон для коллагена типов III, VI и X, где, как считается, предотвращает преждевременные взаимодействия между коллагеном во время его сборки в эндоплазматическом ретикулуме [27]. Согласно базе данных OMIM (Online Mendelian Inheritance in Man), в мире официально зафиксировано несколько десятков случаев заболевания данного типа. Выявление заболевания затрудняет сходство клинических симптомов с другими типами EDS, в особенности EDS кифосколиотического типа 1.

Несмотря на генетическую гетерогенность, пораженные пациенты с мутациями либо в гене PLOD1, либо в FKBP14 могут быть клинически неразличимы [27].

При кифосколиотическом типе EDS дефицит лизилгидроксилазы приводит к аномальному составу коллагена типов III, IV и VI. Коллаген IV типа является важным компонентом базальных мембран, которые необходимы для функционирования кровеносных сосудов, в том числе сетчатки глаза [28]. Синтез аномально коллагена определяет формирование типичных клинических признаков. Согласно новой классификации, kEDS определяется в основном нарушениями со стороны склеры. Диагностическими критериями kEDS являются лептосклерия и нарушения рефракции, такие как миопия, гиперметропия [29], а для вариантов kEDS с мутациями в гене PLOD1 добавляют такие критерии, как микрокорнеа и хрупкость/разрыв склеры и глаза [9]. Лептосклерия возникает за счет истончения коллагеновых волокон в склере, что приводит к повышению визуализации сосудистой оболочки, находящейся под ней. Истончение склеры является не только косметическим дефектом, но и значительно повышает риск разрыва глазного яблока, причем этот разрыв может произойти спонтанно [30]. Посинение склер является проявлением не только kEDS, но и других заболеваний соединительной ткани, таких как несовершенный остеогенез, синдром Марфана, синдром Ван-дер-Хуве, поэтому при обнаружении данного симптома возникает необходимость проведения дифференциальной диагностики между этими патологиями. Также в литературе описаны случаи возникновения микрокорнеи, т.е. уменьшения диаметра роговицы до 9—10,5 мм у пациентов с подтверждённой мутацией в гене PLOD1 [31]. Аномалии размера и контура роговицы могут быть одной из причин развития нарушений рефракции.

Диагноз PLOD1-kEDS устанавливается у пробанда с типичными клиническими данными и биаллельными патогенными (или вероятными патогенными) вариантами в гене PLOD1, выявленными молекулярно-генетическим тестированием. Также проводится анализ на заметно повышенное соотношение дезоксипиридинолина к пиридинолиновым сшивкам в моче, измеренное с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии с использованием флуоресцентного детектора [21]. Данный метод является высокоспецифичным, чувствительным, неинвазивным и быстрым методом диагностики. Диагноз FKBP14-kEDS устанавливается у пробанда путем идентификации биаллельных патогенных вариантов в FKBP14 также с помощью молекулярно-генетического тестирования [32]. Основанием для постановки биохимического диагноза является определение активности коллагенлизил- и пролилгидроксилазы в культивируемых фибробластах методом генотипирования. Активность данных ферментов исследуется в дермальных фибробластах пробанда, его родителей и контрольных клетках. В результате должен быть выявлен дефицит лизилгидроксилазы коллагена в культивируемых клетках и одинаковая активность пролил-гидроксилазы в тех же лизатах во всех клеточных линиях, что свидетельствует о специфичности нарушения лизилгидроксилазы [33].

Также применяется пренатальная диагностика для оценки риска развития и определения клинического варианта заболевания ребенка в группах риска путем скрининга ДНК плода на наличие мутаций в гене лизилгидроксилазы. Для этого проводится секвенирование геномной ДНК, выделенной из культивированных клеток ворсин хориона на 10-й неделе беременности [34]. Но поскольку kEDS наследуется аутосомно-рецессивно, вероятность развития синдрома у таких детей очень мала.

Мышечно-контрактурный тип синдрома Элерса—Данлоса

Мышечно-контрактурный тип синдрома Элерса—Данлоса (mcEDS) представляет собой аутосомно-рецессивное заболевание, проявляющееся множественными врожденными пороками развития и прогрессирующими изменениями, связанными с хрупкостью соединительной ткани [35]. Вызывается мутациями в генах углеводной сульфотрансферазы 14 (CHST14) (mcEDS-CHST14) и дерматансульфат-эпимеразы (DSE) (mcEDS-DSE). Гены CHST14 (15q15.1) и DSE (6q22.1) кодируют ферменты D4ST1 и DSE соответственно, которые необходимы для биосинтеза дерматансульфата (DS). Таким образом, мутации в этих генах вызывают потерю ферментативной активности D4ST1 или DSE и нарушают биосинтез DS [36]. Протеогликаны DS являются компонентами различных соединительных тканей, и их дефицит и/или замена хондроитинсульфатом в протеогликанах, таких как декорин, приводит к аномальной регуляции сборки коллагеновых фибрилл, что объясняет возникновение хрупкости соединительной ткани [37]. Кроме того, DS взаимодействует с кофактором гепарина II и ингибирует тромбин в стенках сосудов после разрушения эндотелия и, таким образом, способствует образованию тромба [38].

Характерные клинические проявления mcEDS включают в себя многосистемные врожденные пороки, такие как черепно-лицевые особенности (большие фонтанеллы, гипертелоризм, короткие наклонные глазные щели, синие склеры, укорочение носа с гипопластической колумеллой, низко расположенные уши, длинный фильтрум, тонкий верхний губной вермильон, маленький рот и микроретрогнатия), множественные врожденные контрактуры (например, сгибательно-приводящая контрактура больших пальцев, косолапость), висцеральные и глазные пороки развития [37]. У пациентов с mcEDS также выявляется мышечная гипоплазия и слабость, что подтверждается УЗ-исследованием и электромиографией [38, 39].

Клиническая картина mcEDS-DSE имеет сходство с mcEDS-CHST14, но проявления, связанные с суставами (вывих, гипермобильность), кожные особенности (гиперэластичность, хрупкость), мышечная гипотония и грубые задержки двигательного развития встречаются гораздо реже, чем у пациентов с mcEDS-CHST14 [40].

При мышечно-контрактурном типе EDS наиболее часто встречающимися глазными проявлениями являются амблиопия и погрешности рефракции, включающие близорукость, астигматизм и дальнозоркость. Реже могут развиваться аномалии роговицы (помутнение, склерокорнеа), аномалии радужной оболочки (атрофия, синехии), микрокорнеа, микрофтальмия, узкая передняя камера, склеромаляция, катаракта, глаукома и ангиоидные полосы [41].

Окончательный диагноз mcEDS устанавливается при помощи прямого геномного секвенирования кодирующего экзона CHST14 или DSE. Выделяется геномная ДНК, а затем проводится полимеразная цепная реакция, которая усиливает кодирующие области и сайты сращивания.

Также для подтверждения генетической сегрегации проводится молекулярно-генетическое тестирование на наличие мутаций, обнаруженных у пробанда, среди родственников [38].

Спондилодиспластический тип синдрома Элерса—Данлоса

Спондилодиспластический тип EDS (spEDS) представляет собой редкое аутосомно-рецессивное заболевание соединительной ткани, вызванное мутациями в генах B4GALT7, B3GALT6 и SLC39A13 [9]. B4GALT7 и B3GALT6 регулируют выработку гликозаминогликанов, а SLC39A13 регулирует внутрицитозольный приток цинка [42].

Характеризуется spEDS гипермобильностью суставов, гипотонией мышц, низким ростом и изгибом конечностей. Кроме того, у людей с подтвержденным spEDS выявляется гиперэластичность кожи, остеопения, задержка моторики, а также нарушение когнитивного развития [18].

Каждый вариант spEDS, вызванный мутацией определенного гена, имеет свои генно-специфические клинические особенности. Варианты в гене B4GALT7 (5q35.3) имеют контрактуры локтевого сустава, наличие одной поперечной ладонной складки, выраженные черепно-лицевые особенности, помутнение роговицы и тяжелую гиперметропию. Варианты гена B3GALT6 (1p36.33) приводят к кифосколиозу, контрактурам суставов верхних конечностей, аномальной структуре пальцев, различным черепно-лицевым особенностям, спонтанным переломам, вторичным по отношению к остеопорозу, аневризме восходящей части аорты и ограниченным заболеваниям легких. Лептосклерия, выпуклость глаз и деформации кистей связаны с вариантами гена SLC39A13 (11p11.2) [18].

Спондилодиспластический тип EDS имеет генно-специфические офтальмологические проявления. Так, для spEDS-B4GALT7 характерна тяжелая гиперметропия и помутнение роговицы, для spEDS-SLC39A13 — лептосклерия и кератоконус [18, 43]. Для spEDS-B3GALT6 глазные проявления не характерны.

При подозрении на spEDS для постановки точного диагноза проводится прямое секвенирование Sanger, поскольку B4GALT7, B3GALT6 и SLC39A13 имеют короткие области кодирования и только несколько экзонов [44].

Дерматоспараксисный тип синдрома Элерса—Данлоса

Дерматоспараксисный тип EDS (dEDS) представляет собой редкое аутосомно-рецессивное заболевание соединительной ткани, характеризующееся экстремальной хрупкостью кожи [45]. Вызывается dEDS биаллельными мутациями гена ADAMTS2 (5q35.3), которые приводят к дефициту проколлаген-I-N-протеиназы, фермента, иссекающего N-концевой пропептид из α-цепей коллагена. Таким образом, не происходит удаления N-концевого пропептида, необходимого для правильной сборки высокоорганизованных, полностью функциональных коллагеновых фибрилл [46]. В результате коллагеновые фибриллы не собираются должным образом, на микроскопии они выглядят ленточными и дезорганизованными. Данные дефекты приводят к снижению прочности и растяжимости соединительной ткани кожи и других органов [47].

К наиболее характерным клиническим проявлениям dEDS относят экстремальную хрупкость кожи, наличие избыточной кожи, пупочных или паховых грыж, многочисленных ладонных складок, а также микрогнатию, лептосклерию и замедление роста [47].

В клинической картине дерматоспараксисного типа EDS глазные проявления составляют лишь небольшой процент, но в то же время являются одними из малых критериев, необходимых для постановки диагноза. К ним относят лептосклерию, рефракционные ошибки в виде миопии и астигматизма, а также косоглазие [9].

Предварительный клинический диагноз dEDS может быть поставлен на основании наличия характерной симптоматики и данных электронной микроскопии биоптатов кожи и скелетных мышц, на которых выявляются измененные коллагеновые фибриллы в виде иероглифов [47]. Окончательный диагноз устанавливается путем идентификации биаллельных патогенных вариантов в ADAMTS2 с помощью молекулярно-генетического тестирования.

Сосудистый тип синдрома Элерса—Данлоса

Сосудистый тип EDS (vEDS) представляет собой аутосомно-доминантное заболевание соединительной ткани, вызванное мутациями в гене COL3A1 (2q32.2) и реже в гене COL1A1 (17q21.33), которые кодируют коллаген III и I типа соответственно [48].

Основные клинические проявления vEDS включают артериальные кровотечения, особенно часто возникающие в молодом возрасте, образование каротидно-кавернозных фистул, аневризм, спонтанные перфорации толстой кишки, пневмоторакс и, в случае женщин, повышенный риск хрупкости стенки матки, угрожающий ее разрывом (особенно во время родов) [49].

Офтальмологическим диагностическим критерием сосудистого типа EDS, согласно последней классификации EDS 2017 г., является кератоконус [9]. Но также среди пациентов с vEDS могут встречаться рефракционные ошибки (например, миопия — 25,3% случаев), астигматизм, недостаточность конвергенции, истончение роговицы [49]. Характерной чертой vEDS является хрупкость кровеносных сосудов, которая может распространяться и на сосуды сетчатки, увеличивая риск угрожающего зрению кровоизлияния в сетчатку или стекловидное тело и отслойки сетчатки. Пациенты с vEDS также подвергаются повышенному риску расслоения или перфорации артерий, а также инсульта, который может развиться в перинатальном периоде. Инсульт, поражающий зрительные пути, может проявляться широким спектром проблем, включая снижение остроты зрения, потерю полей зрения, косоглазие и нистагм [22].

Окончательный диагноз vEDS определяется либо путем идентификации гетерозиготного патогенного варианта в гене COL3A1 при молекулярно-генетическом тестировании, либо путем выявления отклонений в синтезе и подвижности коллагеновых цепей типа III при биохимическом анализе проколлагена III типа из культивируемых фибробластов [49]. Молекулярно-генетическое тестирование проводится с использованием секвенирования Sanger, MLPA и секвенирования следующего поколения (NGS) [48].

Классический тип синдрома Элерса—Данлоса

Классический тип EDS (cEDS) является наследственным аутосомно-доминантным расстройством соединительной ткани, которое чаще всего проявляется хрупкостью, гиперэластичностью кожи, гипермобильностью суставов, наличием атрофических рубцов и гематом [50]. Классический тип EDS вызывается мутациями COL5A1 или COL5A2 генов, которые кодируют коллагеновую цепь α1(V) и α2(V) соответственно. Данные мутации приводят к выработке примерно половины нормального количества коллагена типа V. Также возможно возникновение точечных мутаций в COL5A1 или COL5A2, которые приводят к продукции аномальной полипептидной цепи. Полипептидная цепь включается в молекулу коллагена V и приводит к формированию его аномальной структуры.

Коллаген V присутствует в небольших количествах (2—5%) в наиболее коллагенсодержащих тканях, а также на него приходится 10—20% от общего количества коллагена в роговице [51].

Классический тип EDS может проявляться лептосклерией (84%), энофтальмом, инфраорбитальными складками, блефарохалазисом, конъюнктивохалазисом, птозом век, эпикантными складками, истончением роговицы и увеличением ее кривизны. Однако изменения кривизны роговицы не связаны с ошибками рефракции или увеличением распространенности кератоконуса. Эпикантные и инфраорбитальные складки чаще всего встречаются у людей моложе 18 лет, что позволяет предположить, что с возрастом эти проявления могут ослабевать [18].

Диагностика cEDS проводится на основании наличия характерных клинических критериев и подтверждается молекулярно-генетическим анализом. Генетическое тестирование в основном проводилось методом одногенного тестирования с помощью секвенирования Sanger. Однако в связи с фенотипической неоднородностью между типами EDS и между другими нарушениями соединительной ткани одногенное тестирование часто не является окончательным. Поэтому в настоящее время применяется более эффективное молекулярное тестирование с секвенированием следующего поколения (NGS) и мультигенной панелью, содержащей гены, связанные с EDS и другими расстройствами соединительной ткани, для более точной дифференциальной диагностики [52].

Современные методы коррекции офтальмологических проявлений синдрома Элерса—Данлоса

Ранняя диагностика является самым важным шагом в лечении пациентов, страдающих различными типами EDS с глазными проявлениями.

Раннее лечение защитными поликарбонатными очками и соблюдение правил поведения для избежания механического воздействия на глаза может предотвратить разрывы роговицы и, таким образом, свести к минимуму риск потери зрения. Ношение контактных линз может быть ограничено у пациентов с истончением роговицы.

Основные осложнения глазных проявлений EDS заключаются в возможности разрыва роговицы вследствие ее прогрессирующего истончения. Хирургическая коррекция разрывов роговицы может осложняться рыхлостью ткани, что может потребовать модификации швов. В случаях крайнего истончения роговицы для предотвращения ее разрыва может быть проведена упреждающая эпикератопластика, дополненная проникающей кератопластикой в последующие месяцы. В лечении эктазии роговицы подтверждена эффективность трансэпителиального кросслинкинга с использованием рибофлавина и ультрафиолетового света для повышения ее жесткости за счет сцепления коллагеновых волокон.

Также важно отметить, что EDS является абсолютным противопоказанием к операции лазерной коррекции зрения LASIK (laser assisted in situ keratomileusis) из-за высокого риска эктазии роговицы в послеоперационном периоде, разрыва глазного яблока, неадекватного заживления и плохого прогноза рефракционного результата [16].

Заключение

Описанные типы синдрома Элерса—Данлоса (EDS), таким образом, имеют ряд особенностей клинической картины, связанных с нарушениями со стороны органа зрения. Данные офтальмологические проявления требуют незамедлительной коррекции, поскольку могут привести к необратимым последствиям, таким как разрывы глазного яблока, отслойка сетчатки и т.д. Поэтому возникает необходимость ранней диагностики, основанной на генетическом подтверждении наличия того или иного типа EDS у пациентов, и своевременного начала симптоматического лечения для улучшения качества жизни и избежания появления различных осложнений.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования: Резникова Л.В., Дегтяревская Т.Ю.

Сбор и обработка материала: Кучминская М.Б.

Написание текста: Кучминская М.Б.

Редактирование: Резникова Л.В., Самбурова Н.В., Асламазова А.Э.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Parapia LA, Jackson C. Ehlers—Danlos syndrome — a historical review. British Journal of Haematology. 2008;141(1):32-35.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2141.2008.06994.x
  2. Rand-Hendriksen S, Wekre LL, Paus B. Ehlers—Danlos’ syndrom — diagnostikk og subklassifisering [Ehlers—Danlos syndrome — diagnosis and subclassification]. Tidsskrift for Den norske legeforening. 2006;126(15):1903-1907.
  3. Denko CW. Chernogubov’s syndrome: a translation of the first modern case report of the Ehlers-Danlos syndrome. The Journal of Rheumatology. 1978; 5(3):347-352. 
  4. Ritelli M, Colombi M. Molecular Genetics and Pathogenesis of Ehlers—Danlos Syndrome and Related Connective Tissue Disorders. Genes. 2020; 11(5):547.  https://doi.org/10.3390/genes11050547
  5. Malfait F, Castori M, Francomano CA, Giunta C, Kosho T, Byers PH. The Ehlers—Danlos syndromes. Nature reviews. Disease Primers. 2020;6(1):64.  https://doi.org/10.1038/s41572-020-0194-9
  6. Beighton P. Ehlers—Danlos syndrome. Annals of the Rheumatic Diseases. 1970;29(3):332-333.  https://doi.org/10.1136/ard.29.3.332
  7. Beighton P, de Paepe A, Danks D, Finidori G, Gedde-Dahl T, Goodman R, Hall JG, Hollister DW, Horton W, McKusick VA, et al. International Nosology of Heritable Disorders of Connective Tissue, Berlin, 1986. American Journal of Medical Genetics. 1988;29(3):581-594.  https://doi.org/10.1002/ajmg.1320290316
  8. Beighton P, De Paepe A, Steinmann B, Tsipouras P, Wenstrup RJ. Ehlers—Danlos syndromes: revised nosology, Villefranche, 1997. Ehlers—Danlos National Foundation (USA) and Ehlers—Danlos Support Group (UK). American Journal of Medical Genetics. 1998;77(1):31-37.  https://doi.org/10.1002/(sici)1096-8628(19980428)77:1<31::aid-ajmg8>3.0.co;2-o
  9. Malfait F, Francomano C, Byers P, et al. The 2017 international classification of the Ehlers—Danlos syndromes. American Journal of Medical Genetics. Part C, Seminars in medical genetics. 2017;175(1):8-26.  https://doi.org/10.1002/ajmg.c.31552
  10. Moshirfar M, Barke MR, Huynh R, Waite AJ, Ply B, Ronquillo YC, et al. Controversy and consideration of refractive surgery in patients with heritable disorders of connective tissue. Journal of Clinical Medicine. 2021; 10(17):3769. https://doi.org/10.3390/jcm10173769
  11. Walkden A, Burkitt-Wright E, Au L. Brittle cornea syndrome: current perspectives. Clinical Ophthalmology. 2019;13:1511-1516. https://doi.org/10.2147/OPTH.S185287
  12. Wan Q, Tang J, Han Y, Xiao Q, Deng Y. Brittle cornea syndrome: a case report and review of the literature. BMC Ophthalmology. 2018;18(1):252.  https://doi.org/10.1186/s12886-018-0903-2
  13. Skalicka P, Porter LF, Brejchova K, Malinka F, Dudakova L, Liskova P. Brittle cornea syndrome: Disease-causing mutations in ZNF469 and two novel variants identified in a patient followed for 26 years. Biomedical Papers. 2020;164(2):183-188.  https://doi.org/10.5507/bp.2019.017
  14. Geng X, Zhu L, Li J, Li Z. Brittle cornea syndrome: A novel mutation. Heliyon. 2024;10(11):e32506. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2024.e32506
  15. Avgitidou G, Siebelmann S, Bachmann B, Kohlhase J, Heindl LM, Cursiefen C. Brittle Cornea Syndrome: Case Report with Novel Mutation in the PRDM5 Gene and Review of the Literature. Case Reports in Ophthalmological Medicine. 2015;2015:637084. https://doi.org/10.1155/2015/637084
  16. Archer RM, Sosa DIG. Manifestaciones oculares y mucocutáneas del síndrome de Ehlers—Danlos. Revista Electronica de PortalesMedicos.com. 2022;17(8):292. Accessed July 15, 2024. https://www.revista-portalesmedicos.com/revista-medica/manifestaciones-oculares-y-mucocutaneas-del-sindrome-de-ehlers-danlos
  17. Burkitt Wright EM, Porter LF, Spencer HL, Clayton-Smith J, Au L, Munier FL, Smithson S, Suri M, Rohrbach M, Manson FD, Black GC. Brittle cornea syndrome: recognition, molecular diagnosis and management. Orphanet Journal of Rare Diseases. 2013;8:68.  https://doi.org/10.1186/1750-1172-8-68
  18. Islam M, Chang C, Gershwin ME. Ehlers—Danlos Syndrome: Immunologic contrasts and connective tissue comparisons. Journal of Translational Autoimmunity. 2020;4:100077. https://doi.org/10.1016/j.jtauto.2020.100077
  19. Mandlik K, Betdur RA, Rashmita R, Narayana S. Brittle cornea syndrome: A tale of three brothers. Indian Journal of Ophthalmology. 2022;70(7):2594-2597. https://doi.org/10.4103/ijo.IJO_2894_21
  20. Al-Hussain H, Zeisberger SM, Huber PR, Giunta C, Steinmann B. Brittle cornea syndrome and its delineation from the kyphoscoliotic type of Ehlers-Danlos syndrome (EDS VI): report on 23 patients and review of the literature. American journal of medical genetics. Part A. 2004;124A(1):28-34.  https://doi.org/10.1002/ajmg.a.20326
  21. Yeowell HN, Steinmann B. PLOD1-Related Kyphoscoliotic Ehlers—Danlos Syndrome. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, et al., eds. GeneReviews®. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 2000.
  22. Asanad S, Bayomi M, Brown D, Buzzard J, Lai E, Ling C, Miglani T, Mohammed T, Tsai J, Uddin O, Singman E. Ehlers—Danlos syndromes and their manifestations in the visual system. Frontiers in Medicine. 2022;9:996458. https://doi.org/10.3389/fmed.2022.996458
  23. Sussman M, Lichtenstein JR, Nigra TP, Martin GR, McKusick VA. Hydroxylysine-deficient skin collagen in a patient with a form of the Ehlers—Danlos syndrome. The Journal of Bone and Joint Surgery. 1974;56(6):1228-1234.
  24. Ihme A, Risteli L, Krieg T, Risteli J, Feldmann U, Kruse K, Müller PK. Biochemical characterization of variants of the Ehlers—Danlos syndrome type VI. European Journal of Clinical Investigation. 1983;13(4):357-362.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2362.1983.tb00113.x
  25. Yeowell HN, Walker LC. Mutations in the lysyl hydroxylase 1 gene that result in enzyme deficiency and the clinical phenotype of Ehlers—Danlos syndrome type VI. Molecular Genetics and Metabolism. 2000;71(1-2):212-224. 
  26. Ni X, Jin C, Jiang Y, Wang O, Li M, Xing X, Xia W. The first case report of Kyphoscoliotic Ehlers—Danlos syndrome of Chinese origin with a novel PLOD1 gene mutation. BMC Medical Genetics. 2020;21(1):214.  https://doi.org/10.1186/s12881-020-01154-3
  27. Lim PJ, Lindert U, Opitz L, Hausser I, Rohrbach M, Giunta C. Transcriptome Profiling of Primary Skin Fibroblasts Reveal Distinct Molecular Features Between PLOD1- and FKBP14-Kyphoscoliotic Ehlers—Danlos Syndrome. Genes (Basel). 2019;10(7):517.  https://doi.org/10.3390/genes10070517
  28. Chikamoto N, Teranishi S, Chikama T, Nishida T, Ohshima K, Hatsukawa Y. Abnormal retinal blood vessels in Ehlers—Danlos syndrome type VI. Japanese Journal of Ophthalmology. 2007;51(6):453-455.  https://doi.org/10.1007/s10384-007-0470-1
  29. Арсентьев В.Г., Кадурина Т.И., Аббакумова Л.Н. Новые принципы диагностики и классификации синдрома Элерса—Данло. Педиатр. 2018;9(1):118-125.  https://doi.org/10.17816/PED91118-125
  30. Lozada R, Amaral C, Alvarez-Falcón S, Izquierdo NJ, Oliver AL. Successful repair of a spontaneous scleral rupture in a patient with type VI Ehlers—Danlos syndrome. American Journal of Case Reports. 2020;20:100961. https://doi.org/10.1016/j.ajoc.2020.100961
  31. Abdalla EM, Rohrbach M, Bürer C, Kraenzlin M, El-Tayeby H, Elbelbesy MF, Nabil A, Giunta C. Kyphoscoliotic type of Ehlers—Danlos Syndrome (EDS VIA) in six Egyptian patients presenting with a homogeneous clinical phenotype. European Journal of Pediatrics. 2015;174(1):105-112.  https://doi.org/10.1007/s00431-014-2429-9
  32. Giunta C, Rohrbach M, Fauth C, Baumann M. FKBP14 Kyphoscoliotic Ehlers—Danlos Syndrome. In: Adam MP, Feldman J, Mirzaa GM, et al., eds. GeneReviews®. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 2019.
  33. Dembure PP, Priest JH, Snoddy SC, Elsas LJ. Genotyping and prenatal assessment of collagen lysyl hydroxylase deficiency in a family with Ehlers—Danlos syndrome type VI. American Journal of Human Genetics. 1984;36(4): 783-790. 
  34. Yeowell HN, Walker LC. Prenatal exclusion of Ehlers—Danlos syndrome type VI by mutational analysis. Proceedings of the Association of American Physicians. 1999;111(1):57-62.  https://doi.org/10.1046/j.1525-1381.1999.09112.x
  35. Yue F, Era T, Yamaguchi T, Kosho T. Pathophysiological Investigation of Skeletal Deformities of Musculocontractural Ehlers—Danlos Syndrome Using Induced Pluripotent Stem Cells. Genes. 2023;14(3):730.  https://doi.org/10.3390/genes14030730
  36. Yoshizawa T, Kosho T. Mouse Models of Musculocontractural Ehlers—Danlos Syndrome. Genes. 2023;14(2):436.  https://doi.org/10.3390/genes14020436
  37. Kosho T, Mizumoto S, Watanabe T, Yoshizawa T, Miyake N, Yamada S. Recent Advances in the Pathophysiology of Musculocontractural Ehlers—Danlos Syndrome. Genes. 2019;11(1):43.  https://doi.org/10.3390/genes11010043
  38. Janecke AR, Li B, Boehm M, Krabichler B, Rohrbach M, Müller T, Fuchs I, Golas G, Katagiri Y, Ziegler SG, Gahl WA, Wilnai Y, Zoppi N, Geller HM, Giunta C, Slavotinek A, Steinmann B. The phenotype of the musculocontractural type of Ehlers—Danlos syndrome due to CHST14 mutations. American Journal of Medical Genetics. Part A. 2016;170A(1):103-115.  https://doi.org/10.1002/ajmg.a.37383
  39. Lautrup CK, Teik KW, Unzaki A, Mizumoto S, Syx D, Sin HH, Nielsen IK, Markholt S, Yamada S, Malfait F, Matsumoto N, Miyake N, Kosho T. Delineation of musculocontractural Ehlers—Danlos Syndrome caused by dermatan sulfate epimerase deficiency. Molecular Genetics & Genomic Medicine. 2020;8(5):e1197. https://doi.org/10.1002/mgg3.1197
  40. Isobe F, Hayashi M, Kobayashi R, Nakamura M, Kosho T, Takahashi J. Clinical Presentation and Characteristics of the Upper Extremity in Patients with Musculocontractural Ehlers-Danlos Syndrome. Genes. 2022; 13(11):1978. https://doi.org/10.3390/genes13111978
  41. Minatogawa M, Unzaki A, Morisaki H, et al. Clinical and molecular features of 66 patients with musculocontractural Ehlers—Danlos syndrome caused by pathogenic variants in CHST14 (mcEDS-CHST14). Journal of Medical Genetics. 2022;59(9):865-877.  https://doi.org/10.1136/jmedgenet-2020-107623
  42. Agrawal P, Kaur H, Kondekar A, Rathi S. A case of Ehlers-Danlos syndrome presenting as short stature: a novel mutation in SLC39A13 causing spondylodysplastic Ehlers—Danlos syndrome. Oxford Medical Case Reports. 2023; 2023(1):omac107. https://doi.org/10.1093/omcr/omac107
  43. Kumps C, Campos-Xavier B, Hilhorst-Hofstee Y, Marcelis C, Kraenzlin M, Fleischer N, Unger S, Superti-Furga A. The Connective Tissue Disorder Associated with Recessive Variants in the SLC39A13Zinc Transporter Gene (Spondylo-Dysplastic Ehlers—Danlos Syndrome Type 3): Insights from Four Novel Patients and Follow-Up on Two Original Cases. Genes. 2020;11(4):420.  https://doi.org/10.3390/genes11040420
  44. Caraffi SG, Maini I, Ivanovski I, Pollazzon M, Giangiobbe S, Valli M, Rossi A, Sassi S, Faccioli S, Rocco MD, Magnani C, Campos-Xavier B, Unger S, Superti-Furga A, Garavelli L. Severe Peripheral Joint Laxity is a Distinctive Clinical Feature of Spondylodysplastic-Ehlers—Danlos Syndrome (EDS)-B4GALT7 and Spondylodysplastic-EDS-B3GALT6. Genes. 2019;10(10):799.  https://doi.org/10.3390/genes10100799
  45. Colige A, Sieron AL, Li SW, Schwarze U, Petty E, Wertelecki W, Wilcox W, Krakow D, Cohn DH, Reardon W, Byers PH, Lapière CM, Prockop DJ, Nusgens BV. Human Ehlers—Danlos syndrome type VII C and bovine dermatosparaxis are caused by mutations in the procollagen I N-proteinase gene. American Journal of Human Genetics. 1999;65(2):308-317.  https://doi.org/10.1086/302504
  46. Jaffey JA, Bullock G, Guo J, Mhlanga-Mutangadura T, O’Brien DP, Coates JR, Morrissey R, Hutchison R, Donnelly KS, Cohn LA, Katz ML, Johnson GS. Novel Homozygous ADAMTS2 Variants and Associated Disease Phenotypes in Dogs with Dermatosparactic Ehlers—Danlos Syndrome. Genes. 2022;13(11):2158. https://doi.org/10.3390/genes13112158
  47. Rincón-Sánchez AR, Arce IE, Tostado-Rabago EA, Vargas A, Padilla-Gómez LA, Bolaños A, Barrios-Guyot S, Anguiano-Alvarez VM, Ledezma-Rodríguez VC, Islas-Carbajal MC, Rivas-Estilla AM, Feria-Velasco A, Dávalos NO. Ehlers—Danlos Syndrome Type VIIC: A Mexican Case Report. Case Reports in Dermatology. 2012;4(1):104-113.  https://doi.org/10.1159/000338277
  48. Miklovic T, Sieg VC. Ehlers—Danlos Syndrome. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023. Accessed July 24, 2024. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK549814
  49. Cherecheanu MP, Romanitan MO, Pirvulescu R, Iancu R, Garhöfer G, Iancu G, Cherecheanu AP, Zemba M, Vasile V, Simonov A, Branisteanu D. Uncommon association between vascular Ehlers—Danlos syndrome and ocular complications. Frontiers in Medicine. 2023;10:1089652. https://doi.org/10.3389/fmed.2023.1089652
  50. Malfait F, Wenstrup RJ, De Paepe A. Clinical and genetic aspects of Ehlers—Danlos syndrome, classic type. Genetics in Medicine. 2010;12(10):597-605.  https://doi.org/10.1097/GIM.0b013e3181eed412
  51. Villani E, Garoli E, Bassotti A, Magnani F, Tresoldi L, Nucci P, Ratiglia R. The cornea in classic type Ehlers—Danlos syndrome: macro-and microstructural changes. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2013;54: 8062-8068. https://doi.org/10.1167/iovs.13-12837
  52. Junkiert-Czarnecka A, Pilarska-Deltow M, Bąk A, Heise M, Latos-Bieleńska A, Zaremba J, Bartoszewska-Kubiak A, Haus O. Next-Generation Sequencing of Connective Tissue Genes in Patients with Classical Ehlers—Danlos Syndrome. Current issues in molecular biology. 2022;44(4): 1472-1478. https://doi.org/10.3390/cimb44040099

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.