Характеристика гистохимических, молекулярно-генетических и лучевых изменений печени в зависимости от давности смерти

Щеголев А.И.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России

ORCID: 0000-0002-2111-1530

Туманова У.Н.

ORCID: 0000-0002-0924-6555

Савва О.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России;
ГБУ РО «Бюро судебно-медицинской экспертизы им. Д.И. Мастбаума»

ORCID: 0000-0002-0926-5609

Характеристика гистохимических, молекулярно-генетических и лучевых изменений печени в зависимости от давности смерти

Авторы:

Щеголев А.И., Туманова У.Н., Савва О.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Судебно-медицинская экспертиза. 2023;66(3): 59‑63

DOI: 10.17116/sudmed20236603159

Загрузок: 2

Связаться с автором

Оглавление

Как цитировать:

Щеголев А.И., Туманова У.Н., Савва О.В. Характеристика гистохимических, молекулярно-генетических и лучевых изменений печени в зависимости от давности смерти. Судебно-медицинская экспертиза. 2023;66(3):59‑63.
Shchegolev AI, Tumanova UN, Savva OV. Characteristics of histochemical, molecular genetic and radiation-induced liver changes depending on the postmortem interval. Forensic Medical Expertise. 2023;66(3):59‑63. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/sudmed20236603159

Доказательная гастроэнтерология: pro et contra

Актуальные вопросы педиатрической практики

Использование инфографики авторами научных работ

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Математическое моделирование процесса изменения температуры трупа при воздействии на него прямой солнечной радиации в целях диагностики давности смерти. Судебно-медицинская экспертиза. 2023;(6):18-23

Развитие COVID-19 у пациентки с АА-амилоидозом. (Клинический случай). Профилактическая медицина. 2023;(8):82-85

ЦЕЛЬ

Работы — анализ данных литературы, касающихся посмертных изменений ткани печени и их использования для определения давности наступления смерти. Наступление биологической смерти закономерно влечет развитие посмертных нарушений не только структуры печени, но и изменений биохимических и гистохимических показателей. Представлены данные литературы об изменении гистохимических, иммуногистохимических, молекулярно-биологических характеристик ткани печени, а также о бактериальной миграции в печень в зависимости от давности наступления смерти. Отмечена эффективность посмертных лучевых исследований для визуализации посмертных изменений и, соответственно, определения давности смерти.

Ключевые слова:

печень

посмертные изменения

аутолиз

давность смерти

Авторы:

Щеголев А.И.

ORCID: 0000-0002-2111-1530

Туманова У.Н.

ORCID: 0000-0002-0924-6555

Савва О.В.

ORCID: 0000-0002-0926-5609

Дата поступления:

01.06.2022

Дата принятия в печать:

23.06.2022

Список литературы:

Щеголев А.И., Туманова У.Н., Савва О.В. Характеристика изменений печени в зависимости от давности смерти. Судебно-медицинская экспертиза. 2023;66(1):50-54. https://doi.org/10.17116/sudmed20236601150
Lesnikova I, Schreckenbach MN, Kristensen MP, Papanikolaou LL, Hamilton-Dutoit S. Usability of immunohistochemistry in forensic samples with varying decomposition. Am J Forensic Med Pathol. 2018;39(3):185-191. https://doi.org/10.1097/PAF.0000000000000408
Madea B, Henssge C, Reibe S, Tsokos M, Kernbach-Wighton G. Postmortem changes and time since death. In. Handbook of forensic medicine. UK: Wiley-Blackwell; 2014.
Elmore S. Apoptosis: a review of programmed cell death. Toxicol Pathol. 2007;35(4):495-516. https://doi.org/10.1080/01926230701320337
Jin Z, El-Deiry WS. Overview of cell death signaling pathways. Cancer Biol Ther. 2005;4(2):139-163. https://doi.org/10.4161/cbt.4.2.1508
Locksley RM, Killeen N, Lenardo MJ. The TNF and TNF receptor superfamilies: integrating mammalian biology. Cell. 2001;104(4):487-501. https://doi.org/10.1016/s0092-8674(01)00237-9
Noshy PA. Postmortem expression of apoptosis-related genes in the liver of mice and their use for estimation of the time of death. Int J Legal Med. 2021;135(2):539-545. https://doi.org/10.1007/s00414-020-02419-5
Halawa AA, Marghani BH. Thanatotranscriptome study on particular hepatic genes and their correlation with postmortem interval in the presence or absence of postmortem heat stress. Alexandria J Vet Sci. 2018;57(2):13-20.
Javan GT, Can I, Finley SJ, Soni S. The apoptotic thanatotranscriptome associated with the liver of cadavers. Forensic Sci Med Pathol. 2015;11(4):509-516. https://doi.org/10.1007/s12024-015-9704-6
Kim JY, Kim Y, Cha HK, Lim HY, Kim H, Chung S, Hwang JJ, Park SH, Son GH. Cell death-associated ribosomal RNA cleavage in postmortem tissues and its forensic applications. Mol Cells. 2017;40(6):410-417. https://doi.org/10.14348/molcells.2017.0039
Finger JM, Mercer JF, Cotton RG, Danks DM. Stability of protein and mRNA in human postmortem liver — analysis by two-dimensional gel electrophoresis. Clin Chim Acta. 1987;170(2-3):209-218. https://doi.org/10.1016/0009-8981(87)90130-6
Lv YH, Ma JL, Pan H, Zeng Y, Tao L, Zhang H, Li WC, Ma KJ, Chen L. Estimation of the human postmortem interval using an established rat mathematical model and multi-RNA markers. Forensic Sci Med Pathol. 2017;13(1):20-27. https://doi.org/10.1007/s12024-016-9827-4
Халиков А.А., Кильдюшов Е.М., Кузнецов К.О., Искужина Л.Р., Рахматуллина Г.Р. Использование микроРНК с целью определения давности наступления смерти: обзор. Судебная медицина. 2021;3:132-138.
Tu C, Du T, Shao C, Liu Z, Li L, Shen Y. Evaluating the potential of housekeeping genes, rRNAs, snRNAs, microRNAs and circRNAs as reference genes for the estimation of PMI. Forensic Sci Med Pathol. 2018;14(2):194-201. https://doi.org/10.1007/s12024-018-9973-y
Mao S, Fu G, Seese RR, Wang ZY. Estimation of PMI depends on the changes in ATP and its degradation products. Leg Med (Tokyo). 2013;15(5):235-238. https://doi.org/10.1016/j.legalmed.2013.03.004
Miura M, Naka T, Miyaishi S. Postmortem changes in myoglobin content in organs. Acta Med Okayama. 2011;65(4):225-230. https://doi.org/10.18926/AMO/46847
Gos T, Raszeja S. Postmortem activity of lactate and malate dehydrogenase in human liver in relation to time after death. Int J Legal Med. 1993;106(1):25-29. https://doi.org/10.1007/BF01225020
Sakurada K, Kobayashi M, Iwase H, Yoshino M, Mukoyama H, Takatori T, Yoshida K. Production of gamma-hydroxybutyric acid in postmortem liver increases with time after death. Toxicol Lett. 2002;129(3):207-217. https://doi.org/10.1016/s0378-4274(02)00019-x
Paltian JJ, da Fonseca CAR, Pinz MP, Luchese C, Antunes Wilhelm E. Post-mortem interval estimative through determination of catalase and Δ-aminolevulinate dehydratase activities in hepatic, renal, skeletal muscle and cerebral tissues of Swiss mice. Biomarkers. 2019;24(5):478-483. https://doi.org/10.1080/1354750X.2019.1619837
da Fonseca CAR, Paltian J, Dos Reis AS, Bortolatto CF, Wilhelm EA, Luchese C. Na+/K+-ATPase, acetylcholinesterase and glutathione S-transferase activities as new markers of postmortem interval in Swiss mice. Leg Med (Tokyo). 2019;36:67-72. https://doi.org/10.1016/j.legalmed.2018.11.003
Пермяков Н.К. Патология реанимации и интенсивной терапии. М.: Медицина; 1985.
Mishnev OD, Shchegolev AI. Histophotometric characteristics of structural-metabolic heterogeneity of hepatocytes in acute hemorrhage and pulmonary artery thromboembolism. Biull Eksp Biol Med. 1992;113(4):433-435.
Lysova NL, Gurevich LE, Trusov OA, Shchegolev AI, Mishnev OD. Immunohistochemical characteristics of the liver in patients with peritonitis (early autopsy). Bull Exp Biol Med. 2001;132(5):1125-1129. https://doi.org/10.1023/a:1017993214196
Mishnev OD, Shchegolev AI, Salakhov IM. Comparative morphofunctional study of liver acini in peritonitis of different origin. Bull Exp Biol Med. 1998;126(4):1056-1058. https://doi.org/10.1007/BF02447320
Huang P, Tian W, Tuo Y, Wang Z, Yang G. Estimation of postmortem interval in rat liver and spleen using fourier transform infrared spectroscopy. Spectroscopy Letters: An Intern. J Rapid Commun. 2009;42(2):108-116. https://doi.org/10.1080/00387010802375362
Huang P, Zou D, Li S, Xu C, Luo Y, Sun Q, Deng K, Wang Z, Wang Z, Chen Y. Characterization of the postmortem interval by infrared microscopy. Anal Lett. 2015:49(2):290-298. https://doi.org/10.1080/00032719.2015.1070162
Mourino-Alvarez L, Iloro I, de la Cuesta F, Azkargorta M, Sastre-Oliva T, Escobes I, Lopez-Almodovar LF, Sanchez PL, Urreta H, Fernandez-Aviles F, Pinto A, Padial LR, Akerström F, Elortza F, Barderas MG. MALDI-Imaging mass spectrometry: a step forward in the anatomopathological characterization of stenotic aortic valve tissue. Sci Rep. 2016;6:27106. https://doi.org/10.1038/srep27106
Li C, Li Z, Tuo Y, Ma D, Shi Y, Zhang Q, Zhuo X, Deng K, Chen Y, Wang Z, Huang P. MALDI-TOF MS as a novel tool for the estimation of postmortem interval in liver tissue samples. Sci Rep. 2017;7(1):4887. https://doi.org/10.1038/s41598-017-05216-0
Wilson SJ, Wilson ML, Reller LB. Diagnostic utility of postmortem blood cultures. Arch Pathol Lab Med. 1993;117(10):986-988.
Carpenter HM, Wilkins RM. Autopsy bacteriology: review of 2,033 cases. Arch Pathol. 1964;77:73-81.
Morris JA, Harrison LM, Partridge SM. Postmortem bacteriology: a re-evaluation. J Clin Pathol. 2006;59(1):1-9. https://doi.org/10.1136/jcp.2005.028183
Weber MA, Hartley JC, Brooke I, Lock PE, Klein NJ, Malone M, Sebire NJ. Post-mortem interval and bacteriological culture yield in sudden unexpected death in infancy (SUDI). Forensic Sci Int. 2010;198(1-3):121-125. https://doi.org/10.1016/j.forsciint.2010.02.002
Tuomisto S, Karhunen PJ, Vuento R, Aittoniemi J, Pessi T. Evaluation of postmortem bacterial migration using culturing and real-time quantitative PCR. J Forensic Sci. 2013;58(4):910-916. https://doi.org/10.1111/1556-4029.12124
Dell’Annunziata F, Martora F, Pepa MED, Folliero V, Luongo L, Bocelli S, Guida F, Mascolo P, Campobasso CP, Maione S, Franci G, Galdiero M. Postmortem interval assessment by MALDI-TOF mass spectrometry analysis in murine cadavers. J Appl Microbiol. 2022;132(1):707-714. https://doi.org/10.1111/jam.15210
Туманова У.Н. Становление и развитие посмертных лучевых исследований в мире и России. REJR. 2020;10(4):250-263. https://doi.org/10.21569/2222-7415-2020-10-4-250-263
Туманова У.Н., Щеголев А.И., Ковалев А.В. Организация проведения посмертных лучевых исследований в структуре патолого-анатомических отделений и бюро судебно-медицинской экспертизы. Судебно-медицинская экспертиза. 2021;1:57-63. https://doi.org/10.17116/sudmed20216401157
Фетисов В.А., Куприна Т.А., Синицын В.Е., Дуброва С.Э., Филимонов Б.А. Зарубежный опыт использования современных методов лучевой диагностики в решении вопросов давности наступления смерти и причинения повреждений. Судебно-медицинская экспертиза. 2016;2:47-54. https://doi.org/10.17116/sudmed201659247-54
Туманова У.Н., Щеголев А.И. Лучевая визуализация неспецифических посмертных изменений сердечно-сосудистой системы. Судебно-медицинская экспертиза. 2016;5:59-63. https://doi.org/10.17116/sudmed2016595559-63
Jackowski C, Thali M, Aghayev E, Yen K, Sonnenschein M, Zwygart K, Dirnhofer R, Vock P. Postmortem imaging of blood and its characteristics using MSCT and MRI. Int J Legal Med. 2006;120(4):233-240. https://doi.org/10.1007/s00414-005-0023-4
Tumanova UN, Bychenko VG, Serova NS, Shchegolev AI. Postmortem MRI Characterization of Cadaveric Hypostases in Deceased Newborns. Bull Exp Biol Med. 2021;170(3):371-377. https://doi.org/10.1007/s10517-021-05070-1
Крупнов Н.М., Туманова У.Н., Щеголев А.И., Быченко В.Г., Ванюков В.Н., Услонцев Д.Н., Савва О.В. Способ определения давности наступления смерти. Патент РФ №2746665. 2021. Бюл. №11.
Shelmerdine SC, Main C, Hutchinson JC, Langan D, Sebire NJ, Arthurs OJ. The use of whole body diffusion-weighted post-mortem magnetic resonance imaging in timing of perinatal deaths. Int J Legal Med. 2018;132(6):1735-1741. https://doi.org/10.1007/s00414-018-1906-5
Shiotani S, Kobayashi T, Hayakawa H, Homma K, Sakahara H. Hepatic relaxation times from postmortem MR imaging of adult humans. Magn Reson Med Sci. 2016;15(3):281-287. https://doi.org/10.2463/mrms.mp.2015-0086

Закрыть метаданные