
Фотополимеризуемые композиции для регенерации костной ткани
Резюме
В обзоре рассмотрены способы изготовления фотополимеризуемых композиций для восстановления костной ткани, а также использующиеся для этого полимеры и фотоинициаторы. Описаны их физические и биологические свойства. Приведены примеры отверждаемых светом композиций, используемых в биомедицине и тканевой инженерии. Рассмотрены перспективы развития технологии фотополимеризации для изготовления перспективных материалов для регенерации костной ткани в стоматологии, челюстно-лицевой хирургии и ортопедии.
Ключевые слова
- фотоотверждение
- полимеры
- регенерация костной ткани
- 3D-печать
Дата поступления: 21.10.2024
Дата принятия в печать: 29.10.2024
Дата публикации: 20.01.2025
Восстановление дефектов костной ткани представляет собой одну из наиболее важных задач в стоматологии, ортопедии и челюстно-лицевой хирургии. С развитием технологий стало возможным создание костно-пластических композиций, которые не только обладаю биологической совместимостью, но также характеризуются удобством применения. Одними из них стали материалы, способные к отверждению под действием излучения. Преимуществами технологии фотоотверждения являются возможность пространственно-временного контроля над получаемой формой композиции. Отверждаемые светом материалы формируют каркасы, характеризующиеся структурной стабильностью, а в случае с использования их в качестве чернил для 3D-печатьи — способностью формировать сложные биомиметические структуры, напоминающие по своему строению костную ткань [1]. Использование различных стратегий модификации композиций позволяет создавать материалы с улучшенными механическими и биологическими свойствами [2]. Контролируемая скорость биодеградации таких композиций приводит к тому, что ремоделирование тканей происходит со скоростью регенерации кости. Все это обусловливает удобство применения фотоотверждаемых композиций и делает их идеальными кандидатами для применения в стоматологии, челюстно-лицевой хирургии и ортопедии [3].
В статье рассмотрены ключевые аспекты разработки и применения фотополимеризуемых систем для регенерации костной ткани, включая их состав и механизмы полимеризации. Также обсуждено текущее состояние исследований в этой области и перспективы дальнейшего развития технологий.
Формы применения отверждаемых материалов для регенерации костной ткани
Фотополимеризуемые системы представляют собой фотоотверждаемые гидрогели, которые могут использоваться самостоятельно,или в качестве чернил для 3D-печати [1].
Гидрогели из сшитых гидрофильных полимеров, образующих сложные сети, обладают способностью поглощать значительные количества воды и имитируют внеклеточный матрикс [4]. Их структура позволяет включать в состав различные вещества, с сохранением механических и вязкоупругих свойств композиции. В связи с этим гидрогели широко используются в качестве материалов для тканевой инженерии, а также для доставки факторов роста, лекарственных средств, ионов металлов, низкомолекулярных препаратов или клеток [5].
Для восстановления костных дефектов также могут использоваться фотоотверждаемые каркасы, изготовленные с помощью 3D-печати [6]. На сегодняшний день существует несколько технологий трехмерной печати, основанных на технологии фотополимеризации. Среди них стереолитография и цифровая светодиодная проекция являются наиболее популярными [7].
Стереолитография (SLA) представляет собой процесс послойной полимеризации жидкого материала лучом ультрафиолетового лазера [8]. В технологии цифровой светодиодной проекции (DLP) слой чернил отверждается под воздействием излучения, поступающего от цифрового проектора. Это позволяет одновременно облучать весь полимерный слой материала и добиваться быстрой печати [9]. Технология SLA из-за зависимости от лазерного луча больше подходит для изготовления материалов большого размера с более низким разрешением печати, DLP — для материалов небольшого размера с высоким разрешением [10].
Однако использование 3D-печати для восстановления костных дефектов в клинической практике ограничено, поскольку требует наличия специального оборудования, специалистов, которые обладают необходимыми знаниями и навыками работы с 3D-принтерами. Также изготовление таких имплантатов требует времени и характеризуется высокой стоимостью [11]. В связи с этим для восстановления небольших костных дефектов актуальны отверждаемые in situ материалы. Они позволяют восполнять ткани минимально инвазивным способом, не требуют специальных ресурсов и громоздкого оборудования, и более удобны для применения практикующими специалистами [12].
Для изготовления фотополимеризуемых композиций необходимы фотоинициаторы и полимеры, которые будут рассмотрены далее.
Фотоинициаторы
Фотоинициаторы являются важными компонентами фотополимеризуемых систем. Концентрация, спектр поглощения излучения, стабильность, а также возможность образования свободных радикалов и молярное поглощение оказывают влияние на протекание реакции полимеризации, а цитотоксичность и растворимость в воде — на биосовместимые свойства композиций [13].
В зависимости от механизма полимеризации выделяют свободнорадикальные и катионные фотоинициаторы. Первые широко используются в биомедицине из-за их высокой безопасности. Применение катионных фотоинициаторов ограничено в связи с формированием в процессе полимеризации протонной среды, которая оказывает негативное влияние на клетки [14].
Свободнорадикальные фотоинициаторы представлены двумя типами. Тип I разлагается с образованием свободных радикалов после поглощения соответствующей длины волны, тип II требует использования соинициатора для извлечения и переноса электронов или для инициации полимеризации [15].
Рассматривая преимущества и недостатки фотоицициаторов следует отметить, что тип I подвергается полимеризации в более коротком диапазоне длин волн, менее склонен к изменению цвета, имеет высокий молярный коэффициент экстинкции. Второй тип характеризуются более медленной скоростью фотоинициации, необходимостью применения соинициатора. Преимуществом этого типа является способность к полимеризации под действием излучения видимого диапазона [16].
В зависимости от происхождения выделяют фотоинициаторы природного и синтетического происхождения. Основными преимуществами природных фотоинициаторов являются их биосовместимость, низкая токсичность. Помимо этого, с точки зрения фармакологии, такие фотоинициаторы обладают уникальными свойствами — противовоспалительным, противоаллергическим, антиоксидантным, антимикробным и противоопухолевым [17,18].
Фотоинициаторы природного происхождения
Рибофлавин — фотоинициатор II типа, водорастворимый витамин (витамин B2), природный пигмент, подвергающийся полимеризации под действием УФ и видимого излучения. Обладает окислительно-восстановительными свойствами и способен к модификации за счет включения функциональных молекул [19,20]. Рибофлавин был использован для разработки биоматериала на основе хитозана и гидроксиапатита для регенерации костной ткани. Изготовленная композиция обладала антимикробным потенциалом и антиоксидантной активностью, а также способствовала пролиферации и миграции клеток [21]. Сочетание рибофлавина и триэтаноламина в качестве соинициатора было использовано для печати гидрогелей с настраиваемыми свойствами из диметакрилата полиэтиленгликоля с помощью стереолитографии. Напечатанные структуры характеризовались высокой прочностью при растяжении, оставались при этом прочными и упругими. Цитосовместимые свойства позволили рассматривать их для применения в тканевой инженерии и для создания биомедицинских устройств [22].
Флавоны — семейство фенольных соединений, которые присутствуют в злаках, травах и цветах. Флавоны демонстрируют высокое поглощение в ближнем УФ- и видимом диапазоне, особенно между 350 и 470 нм [23]. Семейство флавонов включает такие соединения, как 3-гидроксифлавон, 6-гидроксифлавон, 7-гидроксифлавон, хризин и мирицетин. Флавоны могут быть использованы в качестве фотоинициаторов для композитов и 3D-печатных биоматериалов на основе метакрилатов бисфенол A-глицидилметакрилата и триэтиленгликоль диметакрилата [24,25].
Халконы — природные соединения, присутствующие во многих овощах, фруктах. Производные халконов способствуют остеогенной дифференцировке клеток, обладают ингибируют рост кариесогенных бактерий [26]. Халконы поглощают свет в ближней УФ и видимой области света — 344—423 нм и могут выполнять двойную роль в фотополимерных системах — фотоинициатора и мономера [27]. Халконы используются для фотополимеризации композиций на основе акрилатов, а также для получения 3D-печатных конструкций в тканевой инженерии [28].
Куркумин — гидрофобное фенольное природное вещество, представляющее собой желто-оранжевый природный краситель. Куркумин способен формировать высококонъюгированные системы, фотополимеризуемые при длине волны между 350 и 535 нм [29]. К преимуществам куркумина также можно отнести способность хорошо растворяться в полярных и неполярных мономерах и полимерах и низкую цитотоксичностью [29—31]. Вместе с этим, свойства куркумина зависят от используемого растворителя или среды. Система куркумин/иодониевая соль/трифенилфосфин инициировала фотополимеризацию метакрилата на воздухе при облучении ультрафиолетовыми, синими, зелеными, желтыми, красными и теплыми белыми бытовыми светодиодными лампами, что придает панхроматическую способность к фотоинициированию. Данное сочетание обладало большей эффективностью по сравнению с коммерческими фотоинициаторами — фенилбис(2,4,6-триметилбензоил)фосфин оксидом и камфорохиноном [32].
Синтетические фотоинициаторы
2-гидрокси-1-[4-(2-гидроксиэтокси) фенил]-2-метил-1-пропанон (Irgacure 2959) — один из первых водорастворимых коммерческих фотоинициаторов. Пик поглощения приходится на 280 нм, а хвостовое поглощение наблюдается в спектре УФ-А. Однако для минимизации токсического эффекта традиционно полимеризация Irgacure 2959 проводится при излучении с длиной волны 365 нм. К недостаткам относится то, что из-за слабого поглощения фотоинициатор требует длительного времени экспозиции, что может приводить к клеточной гибели или мутагенезу. Помимо этого, он характеризуется низкой растворимостью в воде. Использование фотоинициатора при 3D-биопечати показало, что жизнеспособность клеток снижается по мере увеличения концентрации фотоинициатора. Однако с увеличением времени экспозиции его токсическое воздействия на клетки становилось менее выраженным [33]. Irgacure 2959 широко используют для получения гидрогелевых материалов для инкапсуляции клеток, доставки лекарств и биопечати [33—35].
Фенил-2,4,6-триметилбензоилфосфинат лития (LAP) — водорастворимый и цитосовместимый фотоинициатор [36]. По сравнению с Irgacure 2959 он менее токсичен, обладает высокой водорастворимостью и улучшенной кинетикой полимеризации при 365 нм [37]. LAP поглощает большее количество света, что приводит к более высокой скорости инициирования, полимеризации и, как следствие, образования большего количества сшивок [33]. В связи с этим материалы, содержащие LAP, характеризуются лучшими механическими свойствами. Фотоинициатор широко используется для получения гидрогелевых материалов для инкапсуляции клеток, доставки лекарств и 3D-печати [33,34,38].
2,4,6-триметилбензоилдифенилфосфиноксид (TPO) — слаборастворимый в воде фотоинициатор с хорошей термической стабильностью, который способен к полимеризации под действием УФ- и видимого излучения [24, 26]. Недостатком TPO является малая растворимость в воде, что не позволяет использовать его для полимеризации гидрогелевых структур на основе биополимеров типа коллагена или гиалуроновой кислоты. Фотоинициатор подходят для создания материалов для инкапсуляции клеток и высокоточной 3D-печати [37,40,41].
1,7,7-триметилбицикло[2.2.1]гептан-2,3-дион (камфорохинон) — фотоинициатор, широко используемый в стоматологии для создания фотокомпозитов [42]. Его полимеризация происходит под воздействием видимого излучения 375—500 нм, с пиком 470 нм [43]. Недостатками камфорохинона является способность окрашивать композиции в желтый цвет, а также внутренний экранирующий эффекта, способствующий образованию участков непрореагировавшего фотоинициатора [44,45]. Помимо этого, он характеризуется низкой растворимостью в воде и необходимостью включения третичных аминов для повышения эффективности процесса полимеризации [46]. Камфорохинон применяют для создания гидрогелей с инкапсулированными клетками и 3D-печати имплантатов для восстановления твердых тканей [47,48].
2,2’-азобис[2-метил-N-(2-гидроксиэтил) промионамид] (VA-086) — водорастворимый фотоинициатор, характеризующийся низкой цитотоксичностью. Его полимеризация протекает при воздействии УФ-излучения с длиной волны от 300 до 420 нм, с пиком 385 нм. Фотоинициатор используют для изготовления гидрогелей и 3D-печатных конструкций, содержащих клетки [49,50].
Эозин-Y используется для окрашивания гистологических препаратов. Фотоинициатор полимеризуется под действием видимого излучения с длиной волны 400—700 нм, с пиком абсорбции — 510 нм. Он характеризуется высокой растворимостью, цитосовместимостью, что позволяет использовать его для создания гидрогелей для доставки лекарств, клеток, изготовления чернил для биопечати [51—54].
Полимеры
Для создания фотополимеризуемых систем используют как природные, так и синтетические полимеры. К природным полимерам относятся коллаген, желатин, гиалуроновая кислота, хитозан, альгинат. Синтетические полимеры в основном представлены полиэтиленгликолем, поливиниловым спиртом и поликапролактоном.
Одними из наиболее популярных природных полимеров являются коллаген и желатин. Благодаря своему строению, они способны образовывать гидрогели даже в отсутствие фотоинициаторов, характеризуются высокой биологической совместимостью, биодеградируемостью. Помимо этого желатин содержит пептидную последовательность аргинин-глицин-аспарагиновая кислота, которая способствует прикреплению клеток к его поверхности [55]. Чаще всего для создания фотополимеризуемых материалов полимеры модифицируют метакриловым ангидридом. В результате получают метакрилированный коллаген и желатин. Отличительными свойствами таких гидрогелей является высокая биосовместимость, способность усиливать адгезию и пролиферацию клеток, а также инициировать минерализацию в клетках в отсутствие каких-либо экзогенных остеогенных факторов [56, 57].
Гиалуроновая кислота обладает биоактивными свойства, отсутствием иммуногенности, биодеградируемостью и гидрофильностью [58]. Ее структура способствует миграции клеток, их пролиферации, дифференцировке [59]. Наличие большого количества гидроксильных и карбоксильных групп позволяет модифицировать гиалуроновую кислоту путем включения метакрилатных, винильных, тиольных, норборненовых и тираминных функциональные группы, посредством реакций сшивания, этерификации [60].
Хитозан является природным катионным сополимером, который представляет большой интерес для создания гидрогелей [61]. Он имеет гидрофильную природу, биосовместим и биодеградируем [62]. Хитозан проявляет мукоадгезивные свойства, что широко используется при изготовлении гидрогелей для доставки лекарственных средств [63].
Альгинат натрия обладает рядом преимуществ, включая хорошую биосовместимость, низкую токсичность, иммуногенность. Недостатками альгинатных гидрогелей является недостаточная клеточная адгезия и то, что они имеют тенденцию терять свою механическую прочность в культуре in vitro [64]. Для создания прочных 3D-конструкций зачастую требуется использование гидрогелей с высокой концентрацией альгината, обладающих цитотоксическими свойствами [65].
Преимуществами описанных природных полимеров является их высокая биологическая совместимость, структура, способствующая прикреплению клеток, способность к биодеградации, а также наличие функциональных групп для связывания с фотоинициаторами [2]. Несмотря на описанные преимущества, они могут вызывать иммунный ответ, характеризуются неконтролируемой скоростью биодеградации, низкой механической прочностью и сложной воспроизводимостью. В то время как синтетические гидрогели отличаются большей механической прочностью и гибкостью структуры, однако при этом они в меньшей степени способствуют адгезии и пролиферации клеток и не обладают биологической активностью [66].
Полиэтиленгликоль (PEG) — гидрофильный полимер с высокой биосовместимостью, устойчивостью к адсорбции белков и структурной гибкостью [67, 68]. Наличие модифицируемых концевых групп позволяют использовать его для образования гидрогелей и конъюгации с биомолекулами. Некоторые из материалов, полученных из PEG, такие как поли(этиленгликоль)диакрилат, характеризуются хорошей биосовместимостью, приемлемыми механическими свойствами и низкой стоимостью [69].
Поливиниловый спирт — гидрофильный синтетический полимер, отличающийся простотой синтеза, способностью к биорезорбции. Благодаря высокому содержанию воды и пористой микроструктуре гидрогели на его основе считаются подходящими материалами для тканевой инженерии [70, 71]. Кроме того, они обладают уникальной прочностью по сравнению с большинством других синтетических гидрогелей [72].
Поликапролактон — гидрофобный полимер. Он отличается простой изготовления, возможностью модифицирования для придания необходимых механических и биологических свойств [73]. Благодаря этому из поликапролактона могут быть изготовлены материалы с высокими прочностными, адгезивными, гидрофильными и биосовместимыми свойствами [74]. В отличие от полилактида он обладает большей стабильностью, но подвергается биодеградации в течение более длительного периода времени [75].
Заключение
Возможность пространственно-временного контроля и мягкие условия отверждения позволяют изготавливать удобные для применения фотоотверждаемые материалы, в том числе содержащие клетки, факторы роста или лекарственные вещества, способствующие регенерации костной ткани. Помимо использования фотоотверждаемых композиций in situ для заполнения небольших дефектов сложной формы, они могут применяться для 3D-печати индивидуальных конструкций для восстановления протяженных костных дефектов. Следует ожидать, что дальнейшее развитие технологий изготовления фотоотверждаемых материалов будет направлено на повышение биосовместимых свойств композиций и входящих в их состав компонентов, в том числе фотоинициаторов, улучшение физико-механических свойств и разработку способов создания сложных структур, позволяющих добиться полной органо- и гистотипической регенерации.
Работа выполнена в рамках госзадания Минздрава России по теме: «Фотоотверждаемый биополимерный материал для регенерации пародонта и периимплантных тканей» (WLGC-2024-0001), рег. №1023021300027-9-3.2.14
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
- Nguyen KT, West JL. Photopolymerizable hydrogels for tissue engineering applications. Biomaterials. 2002; 23: 4307-14.
- Chiulan I, Heggset EB, Voicu ŞI, Chinga-Carrasco G. Photopolymerization of Bio-Based Polymers in a Biomedical Engineering Perspective. Biomacromolecules. 2021; 22: 1795-814.
- Leijten J, Seo J, Yue K et al. Spatially and temporally controlled hydrogels for tissue engineering. Materials Science and Engineering: R: Reports 2017; 119: 1-35.
- Kowalski G, Witczak M, Kuterasiński Ł. Structure Effects on Swelling Properties of Hydrogels Based on Sodium Alginate and Acrylic Polymers. Molecules (Basel, Switzerland). 2024; 29: 1937.
- Khan MUA, Aslam MA, Abdullah MFB, Al-Arjan WS, Stojanovic GM, Hasan A. Hydrogels: Classifications, fundamental properties, applications, and scopes in recent advances in tissue engineering and regenerative medicine — A comprehensive review. Arabian Journal of Chemistry. 2024;17: 105968.
- Budi HS, Jameel Al-azzawi MF, Al-Dolaimy F et al. Injectable and 3D-printed hydrogels: State-of-the-art platform for bone regeneration in dentistry. Inorganic Chemistry Communications. 2024; 161: 112026.
- Enbergs S, Spinnen J, Dehne T, Sittinger M. 3D Printing of Bone Substitutes Based on Vat Photopolymerization Processes: A Systematic Review. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 2023; 2023: 1-18.
- Tabriz AG, Douroumis D. Recent advances in 3D printing for wound healing: A systematic review. Journal of Drug Delivery Science and Technology. 2022; 74: 103564.
- Lu Z, Gao W, Liu F et al. Vat photopolymerization based digital light processing 3D printing hydrogels in biomedical fields: Key parameters and perspective. Additive Manufacturing. 2024; 94: 104443.
- Li W, Wang M, Ma H, Chapa-Villarreal FA, Lobo AO, Zhang YS. Stereolithography apparatus and digital light processing-based 3D bioprinting for tissue fabrication. iScience. 2023; 26: 106039.
- Brachet A, Bełżek A, Furtak D et al. Application of 3D Printing in Bone Grafts. Cells. 2023; 12: 859.
- Wu S, Gai T, Chen J, Chen X, Chen W. Smart responsive in situ hydrogel systems applied in bone tissue engineering. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2024; 12: 1389733.
- Dzwonkowska-Zarzycka M, Sionkowska A. Photoinitiators for Medical Applications-The Latest Advances. Molecules (Basel, Switzerland). 2024;29: 3898.
- Lalevée J, Fouassier J-P, eds. Photopolymerisation Initiating Systems. The Royal Society of Chemistry, 2018.
- Chen W, Wang L, Liu X, Chen B, Zhao G. Synthesis and preliminary photopolymerization evaluation of novel photoinitiators containing phototrigger to overcome oxygen inhibition in the UV- curing system. Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry. 2020;388:112187.
- Dzwonkowska-Zarzycka M, Sionkowska A. Photoinitiators for Medical Applications — The Latest Advances. Molecules. 2024;29:3898.
- Islam MdR, Rauf A, Akash S et al. Targeted therapies of curcumin focus on its therapeutic benefits in cancers and human health: Molecular signaling pathway-based approaches and future perspectives. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2024; 170: 116034.
- Dhaliwal JS, Moshawih S, Goh KW et al. Pharmacotherapeutics Applications and Chemistry of Chalcone Derivatives. Molecules (Basel, Switzerland). 2022;27:7062.
- Alonso-de Castro S, Terenzi A, Hager S et al. Biological activity of PtIV prodrugs triggered by riboflavin-mediated bioorthogonal photocatalysis. Scientific Reports. 2018;8:17198.
- Zaborniak I, Surmacz K, Flejszar M, Chmielarz P. Triple‐functional riboflavin‐based molecule for efficient atom transfer radical polymerization in miniemulsion media. Journal of Applied Polymer Science. 2020; 137: 49275.
- Gaweł J, Milan J, Żebrowski J, Płoch D, Stefaniuk I, Kus-Liśkiewicz M. Biomaterial composed of chitosan, riboflavin, and hydroxyapatite for bone tissue regeneration. Scientific Reports. 2023;13:17004.
- Karakurt I, Aydoğdu A, Çıkrıkcı S, Orozco J, Lin L. Stereolithography (SLA) 3D printing of ascorbic acid loaded hydrogels: A controlled release study. International Journal of Pharmaceutics. 2020;584:119428.
- Al Mousawi A, Garra P, Dumur F, Graff B, Fouassier JP, Lalevée J. Flavones as natural photoinitiators for light mediated free‐radical polymerization via light emitting diodes. Journal of Polymer Science. 2020;58:254-62.
- Al Mousawi A, Garra P, Dumur F, Graff B, Fouassier JP, Lalevée J. Flavones as natural photoinitiators for light mediated free‐radical polymerization via light emitting diodes. Journal of Polymer Science. 2020; 58: 254-62.
- Al Mousawi A, Garra P, Schmitt M et al. 3-Hydroxyflavone and N -Phenylglycine in High Performance Photoinitiating Systems for 3D Printing and Photocomposites Synthesis. Macromolecules. 2018; 51: 4633-41.
- Choi D, Park JC, Lee HN et al. In Vitro Osteogenic Differentiation and Antibacterial Potentials of Chalcone Derivatives. Molecular Pharmaceutics. 2018; 15: 3197-204.
- Chang JY, Nam SW, Hong CG, Im J-H, Kim J-H, Han MJ. Photoimaging on an Optically Anisotropic Film with a Polymerizable Smectic Liquid Crystal. Advanced Materials. 2001; 13: 1298.
- Chen H, Noirbent G, Sun K et al. Photoinitiators derived from natural product scaffolds: monochalcones in three-component photoinitiating systems and their applications in 3D printing. Polymer Chemistry. 2020; 11: 4647-59.
- Stohs SJ, Chen O, Ray SD, Ji J, Bucci LR, Preuss HG. Highly Bioavailable Forms of Curcumin and Promising Avenues for Curcumin-Based Research and Application: A Review. Molecules. 2020; 25: 1397.
- Payton F, Sandusky P, Alworth WL. NMR Study of the Solution Structure of Curcumin. Journal of Natural Products. 2007; 70: 143-6.
- Nakayama Y, Ito Y, Fukaminato T et al. Water‐soluble hyperbranched polymer with high curcumin content. Journal of Applied Polymer Science. 2023; 140: e54673.
- Zhao J, Lalevée J, Lu H et al. A new role of curcumin: as a multicolor photoinitiator for polymer fabrication under household UV to red LED bulbs. Polymer Chemistry. 2015; 6: 5053-61.
- Xu H, Casillas J, Krishnamoorthy S, Xu C. Effects of Irgacure 2959 and lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate on cell viability, physical properties, and microstructure in 3D bioprinting of vascular-like constructs. Biomedical Materials. 2020; 15: 055021.
- Nichol JW, Koshy ST, Bae H, Hwang CM, Yamanlar S, Khademhosseini A. Cell-laden microengineered gelatin methacrylate hydrogels. Biomaterials. 2010;31:5536-44.
- De Witte T-M, Wagner AM, Fratila-Apachitei LE, Zadpoor AA, Peppas NA. Degradable Poly(Methyl Methacrylate)-co-Methacrylic Acid Nanoparticles for Controlled Delivery of Growth Factors for Bone Regeneration. Tissue Engineering Part A. 2020;26:1226-42.
- Fairbanks BD, Schwartz MP, Bowman CN, Anseth KS. Photoinitiated polymerization of PEG-diacrylate with lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate: polymerization rate and cytocompatibility. Biomaterials. 2009; 30:6702-7.
- Fairbanks BD, Schwartz MP, Bowman CN, Anseth KS. Photoinitiated polymerization of PEG-diacrylate with lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate: polymerization rate and cytocompatibility. Biomaterials. 2009; 30:6702-7.
- Wang Y, Wang S, Hu W et al. In situ Hydrogels Prepared by Photo-initiated Crosslinking of Acrylated Polymers for Local Delivery of Antitumor Drugs. Journal of Pharmaceutical Sciences. 2023;112:1863-71.
- Lin H, Zhang D, Alexander PG et al. Application of visible light-based projection stereolithography for live cell-scaffold fabrication with designed architecture. Biomaterials. 2013;34:331-9.
- Lebedevaite M, Ostrauskaite J. Influence of photoinitiator and temperature on photocross-linking kinetics of acrylated epoxidized soybean oil and properties of the resulting polymers. Industrial Crops and Products. 2021;161: 113210.
- Ghazali HS, Askari E, Seyfoori A, Naghib SM. A high-absorbance water-soluble photoinitiator nanoparticle for hydrogel 3D printing: synthesis, characterization and in vitro cytotoxicity study. Scientific Reports. 2023; 13: 8577.
- Kowalska A, Sokołowski J, Szynkowska-Jóźwik MI, Gozdek T, Kopacz K, Bociong K. Can TPO as Photoinitiator Replace “Golden Mean” Camphorquinone and Tertiary Amines in Dental Composites? Testing Experimental Composites Containing Different Concentration of Diphenyl(2,4,6-trimethylbenzoyl)phosphine Oxide. International Journal of Molecular Sciences. 2022; 23: 11594.
- Neumann MG, Schmitt CC, Ferreira GC, Corrêa IC. The initiating radical yields and the efficiency of polymerization for various dental photoinitiators excited by different light curing units. Dental Materials. 2006;22:576-84.
- Janda R, Roulet J, Kaminsky M, Steffin G, Latta M. Color stability of resin matrix restorative materials as a function of the method of light activation. European Journal of Oral Sciences. 2004;112:280-5.
- Jakubiak J, Sionkowska A, Lindén L-Å, Rabek JF. Isothermal photo differential scanning calorimetry. Crosslinking polymerization of muitifunctional monomers in presence of visible light photoinitiators. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 2001;65:435-443.
- Kamoun EA, Winkel A, Eisenburger M, Menzel H. Carboxylated camphorquinone as visible-light photoinitiator for biomedical application: Synthesis, characterization, and application. Arabian Journal of Chemistry. 2016; 9:745-754.
- Bryant SJ, Nuttelman CR, Anseth KS. Cytocompatibility of UV and visible light photoinitiating systems on cultured NIH/3T3 fibroblasts in vitro. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2000;11:439-457.
- Shakouri T, Cha J-R, Owji N et al. Comparative study of photoinitiators for the synthesis and 3D printing of a light-curable, degradable polymer for custom-fit hard tissue implants. Biomedical Materials. 2020;16:015007.
- Coates EE, Riggin CN, Fisher JP. Photocrosslinked alginate with hyaluronic acid hydrogels as vehicles for mesenchymal stem cell encapsulation and chondrogenesis. Journal of Biomedical Materials Research. Part A 2013; 101A: 1962-1970.
- Occhetta P, Visone R, Russo L, Cipolla L, Moretti M, Rasponi M. VA‐086 methacrylate gelatine photopolymerizable hydrogels: A parametric study for highly biocompatible 3 D cell embedding. Journal of Biomedical Materials Research. Part A 2015;103:2109-2017.
- Arakawa C, Ng R, Tan S, Kim S, Wu B, Lee M. Photopolymerizable chitosan-collagen hydrogels for bone tissue engineering: Photopolymerizable chitosan-collagen hydrogels. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 2017;11:164-174.
- Oregon Health & Science University, Department of Orthopaedics & Rehabilitation, OP31, 3181 Sam Jackson Park Road, Portland OR 97239, USA, Bahney C, Lujan T et al. Visible light photoinitiation of mesenchymal stem cell-laden bioresponsive hydrogels. European Cells and Materials. 2011;22: 43-55.
- Elbert DL, Hubbell JA. Conjugate Addition Reactions Combined with Free-Radical Cross-Linking for the Design of Materials for Tissue Engineering. Biomacromolecules. 2001; 2: 430-441.
- Kumar H, Sakthivel K, Mohamed MGA, Boras E, Shin SR, Kim K. Designing Gelatin Methacryloyl (GelMA)‐Based Bioinks for Visible Light Stereolithographic 3D Biofabrication. Macromolecular Bioscience. 2021;21: 2000317.
- Wu S-C, Chang W-H, Dong G-C, Chen K-Y, Chen Y-S, Yao C-H. Cell adhesion and proliferation enhancement by gelatin nanofiber scaffolds. Journal of Bioactive and Compatible Polymers. 2011;26:565-577.
- Zhang T, Chen H, Zhang Y et al. Photo-crosslinkable, bone marrow-derived mesenchymal stem cells-encapsulating hydrogel based on collagen for osteogenic differentiation. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2019;174: 528-535.
- McBeth C, Lauer J, Ottersbach M, Campbell J, Sharon A, Sauer-Budge AF. 3D bioprinting of GelMA scaffolds triggers mineral deposition by primary human osteoblasts. Biofabrication. 2017;9:015009.
- Burdick JA, Chung C, Jia X, Randolph MA, Langer R. Controlled Degradation and Mechanical Behavior of Photopolymerized Hyaluronic Acid Networks. Biomacromolecules. 2005;6:386-391.
- Cowman MK, Schmidt TA, Raghavan P, Stecco A. Viscoelastic Properties of Hyaluronan in Physiological Conditions. F1000Research. 2015; 4: 622.
- Hintze V, Schnabelrauch M, Rother S. Chemical Modification of Hyaluronan and Their Biomedical Applications. Frontiers in Chemistry. 2022;10: 830671.
- Kuznetsova VS, Vasilyev AV, Grigoriev TE et al. The prospects of hydrogels usage as a basis for curable osteoplastic materials. Stomatologiya. 2017;96: 68.
- Yao K, Li J, Yao F, Yin Y, eds. Chitosan-Based Hydrogels: Functions and Applications. Boca Raton, Fla.: CRC Press, 2011.
- Chitosan in Drug Delivery. Elsevier, 2022.
- Jana S, Jana S, eds. Alginate Biomaterial: Drug Delivery Strategies and Biomedical Engineering. Singapore: Springer Nature Singapore, 2023.
- Kavand A, Noverraz F, Gerber-Lemaire S. Recent Advances in Alginate-Based Hydrogels for Cell Transplantation Applications. Pharmaceutics. 2024;16:469.
- Kumbar S, Laurencin C, Deng M, eds. Natural and Synthetic Biomedical Polymers, First edition. Amsterdam Boston, Mass Heidelberg London New York Oxford Paris San Diego San Francisco Singapore: Elsevier, 2014.
- Qian S, Zhou C, Xu L, Yao F, Cen L, Fu G. High strength biocompatible PEG single-network hydrogels. RSC Adv. 2014;4:25241-25250.
- Liu MG, Zhao R, Liu SQ. Study on self-assembly of novel hydrophilic silane containing PEG segments and its resistance to protein adsorption. Journal of Physics: Conference Series. 2021;1765:012012.
- Sarabia-Vallejos MA, Cerda-Iglesias FE, Terraza CA et al. Biocompatible and bioactive PEG-Based resin development for additive manufacturing of hierarchical porous bone scaffolds. Materials & Design. 2023;234:112315.
- Li H, Wu C, Yu X, Zhang W. Recent advances of PVA-based hydrogels in cartilage repair application. Journal of Materials Research and Technology. 2023;24:2279-2298.
- Xiang C, Wang Z, Zhang Q et al. Tough physically crosslinked poly(vinyl alcohol)-based hydrogels loaded with collagen type I to promote bone regeneration in vitro and in vivo. International Journal of Biological Macromolecules. 2024;261:129847.
- Drury JL, Mooney DJ. Hydrogels for tissue engineering: scaffold design variables and applications. Biomaterials. 2003;24:4337-51.
- Pramanik K, ed. Polycaprolactone: Applications, Synthesis and Characterization. Nova Science Publishers, 2022.
- Malikmammadov E, Tanir TE, Kiziltay A, Hasirci V, Hasirci N. PCL and PCL-based materials in biomedical applications. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2018; 29: 863—93.
- Li L, Yu F, Shi J et al. In situ repair of bone and cartilage defects using 3D scanning and 3D printing. Scientific Reports. 2017;7:9416.
Рекомендуем статьи по данной теме:
Влияние состава и технологии применения полимерных материалов для временных реставраций в ортопедической стоматологии на показатели водопоглощения и растворимости.Стоматология. 2026;105(4):5-10
Влияние современных биоматериалов на процессы предотвращения возникновения периимплантитов.Стоматология. 2026;105(3):71-77
Влияние стерилизации автоклавированием на физико-механические свойства образцов из фотополимерных материалов.Стоматология. 2026;105(3):5-9
Роль 3D-технологий и цифровых баз данных в современной судебной стоматологии (обзор литературы).Стоматология. 2026;105(2):60-64
Оценка параметров водопоглощения и водорастворимости материалов 3M Protemp 4 и HARZ Labs Dental Sand.Российская стоматология. 2026;19(1):73-80
Оценка остеогенных свойств материалов, содержащих рекомбинантный белок BMP-2.Стоматология. 2025;104(6-2):19-24
Применение симвастатина и пентоксифиллина для потенцирования действия BMP-2 в условиях моделируемого постменопаузального остеопороза.Стоматология. 2025;104(5):7-11
Применение 3D-печати при эндопротезировании трахеи и главных бронхов при рубцовом стенозе.Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2025;(7):87-93
Особенности комплексной терапии у пациента с осложненным течением сахарного диабета 2-го типа (клиническое наблюдение).Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2025;(6):128-132


