Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Кузнецова В.С.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Васильев А.В.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Рудик И.С.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России

Миронов А.В.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России;
ФГБУ НИЦ «Курчатовский институт»

Лосев Ф.Ф.

ФГБУ НМИЦ «Центральный научно-исследовательский институт стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» Минздрава России;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Фотополимеризуемые композиции для регенерации костной ткани

Авторы:

Кузнецова В.С., Васильев А.В., Рудик И.С., Миронов А.В., Лосев Ф.Ф.

Подробнее об авторах

Журнал: Стоматология. 2024;103(6‑2): 58‑63

Прочитано: 1061 раз


Как цитировать:

Кузнецова В.С., Васильев А.В., Рудик И.С., Миронов А.В., Лосев Ф.Ф. Фотополимеризуемые композиции для регенерации костной ткани. Стоматология. 2024;103(6‑2):58‑63.
Kuznetsova VS, Vasilyev AV, Rudik IS, Mironov AV, Losev FF. Photopolymerizable compositions for bone tissue regeneration. Stomatology. 2024;103(6‑2):58‑63. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/stomat202410306258

Рекомендуем статьи по данной теме:

Восстановление дефектов костной ткани представляет собой одну из наиболее важных задач в стоматологии, ортопедии и челюстно-лицевой хирургии. С развитием технологий стало возможным создание костно-пластических композиций, которые не только обладаю биологической совместимостью, но также характеризуются удобством применения. Одними из них стали материалы, способные к отверждению под действием излучения. Преимуществами технологии фотоотверждения являются возможность пространственно-временного контроля над получаемой формой композиции. Отверждаемые светом материалы формируют каркасы, характеризующиеся структурной стабильностью, а в случае с использования их в качестве чернил для 3D-печатьи — способностью формировать сложные биомиметические структуры, напоминающие по своему строению костную ткань [1]. Использование различных стратегий модификации композиций позволяет создавать материалы с улучшенными механическими и биологическими свойствами [2]. Контролируемая скорость биодеградации таких композиций приводит к тому, что ремоделирование тканей происходит со скоростью регенерации кости. Все это обусловливает удобство применения фотоотверждаемых композиций и делает их идеальными кандидатами для применения в стоматологии, челюстно-лицевой хирургии и ортопедии [3].

В статье рассмотрены ключевые аспекты разработки и применения фотополимеризуемых систем для регенерации костной ткани, включая их состав и механизмы полимеризации. Также обсуждено текущее состояние исследований в этой области и перспективы дальнейшего развития технологий.

Формы применения отверждаемых материалов для регенерации костной ткани

Фотополимеризуемые системы представляют собой фотоотверждаемые гидрогели, которые могут использоваться самостоятельно,или в качестве чернил для 3D-печати [1].

Гидрогели из сшитых гидрофильных полимеров, образующих сложные сети, обладают способностью поглощать значительные количества воды и имитируют внеклеточный матрикс [4]. Их структура позволяет включать в состав различные вещества, с сохранением механических и вязкоупругих свойств композиции. В связи с этим гидрогели широко используются в качестве материалов для тканевой инженерии, а также для доставки факторов роста, лекарственных средств, ионов металлов, низкомолекулярных препаратов или клеток [5].

Для восстановления костных дефектов также могут использоваться фотоотверждаемые каркасы, изготовленные с помощью 3D-печати [6]. На сегодняшний день существует несколько технологий трехмерной печати, основанных на технологии фотополимеризации. Среди них стереолитография и цифровая светодиодная проекция являются наиболее популярными [7].

Стереолитография (SLA) представляет собой процесс послойной полимеризации жидкого материала лучом ультрафиолетового лазера [8]. В технологии цифровой светодиодной проекции (DLP) слой чернил отверждается под воздействием излучения, поступающего от цифрового проектора. Это позволяет одновременно облучать весь полимерный слой материала и добиваться быстрой печати [9]. Технология SLA из-за зависимости от лазерного луча больше подходит для изготовления материалов большого размера с более низким разрешением печати, DLP — для материалов небольшого размера с высоким разрешением [10].

Однако использование 3D-печати для восстановления костных дефектов в клинической практике ограничено, поскольку требует наличия специального оборудования, специалистов, которые обладают необходимыми знаниями и навыками работы с 3D-принтерами. Также изготовление таких имплантатов требует времени и характеризуется высокой стоимостью [11]. В связи с этим для восстановления небольших костных дефектов актуальны отверждаемые in situ материалы. Они позволяют восполнять ткани минимально инвазивным способом, не требуют специальных ресурсов и громоздкого оборудования, и более удобны для применения практикующими специалистами [12].

Для изготовления фотополимеризуемых композиций необходимы фотоинициаторы и полимеры, которые будут рассмотрены далее.

Фотоинициаторы

Фотоинициаторы являются важными компонентами фотополимеризуемых систем. Концентрация, спектр поглощения излучения, стабильность, а также возможность образования свободных радикалов и молярное поглощение оказывают влияние на протекание реакции полимеризации, а цитотоксичность и растворимость в воде — на биосовместимые свойства композиций [13].

В зависимости от механизма полимеризации выделяют свободнорадикальные и катионные фотоинициаторы. Первые широко используются в биомедицине из-за их высокой безопасности. Применение катионных фотоинициаторов ограничено в связи с формированием в процессе полимеризации протонной среды, которая оказывает негативное влияние на клетки [14].

Свободнорадикальные фотоинициаторы представлены двумя типами. Тип I разлагается с образованием свободных радикалов после поглощения соответствующей длины волны, тип II требует использования соинициатора для извлечения и переноса электронов или для инициации полимеризации [15].

Рассматривая преимущества и недостатки фотоицициаторов следует отметить, что тип I подвергается полимеризации в более коротком диапазоне длин волн, менее склонен к изменению цвета, имеет высокий молярный коэффициент экстинкции. Второй тип характеризуются более медленной скоростью фотоинициации, необходимостью применения соинициатора. Преимуществом этого типа является способность к полимеризации под действием излучения видимого диапазона [16].

В зависимости от происхождения выделяют фотоинициаторы природного и синтетического происхождения. Основными преимуществами природных фотоинициаторов являются их биосовместимость, низкая токсичность. Помимо этого, с точки зрения фармакологии, такие фотоинициаторы обладают уникальными свойствами — противовоспалительным, противоаллергическим, антиоксидантным, антимикробным и противоопухолевым [17,18].

Фотоинициаторы природного происхождения

Рибофлавин — фотоинициатор II типа, водорастворимый витамин (витамин B2), природный пигмент, подвергающийся полимеризации под действием УФ и видимого излучения. Обладает окислительно-восстановительными свойствами и способен к модификации за счет включения функциональных молекул [19,20]. Рибофлавин был использован для разработки биоматериала на основе хитозана и гидроксиапатита для регенерации костной ткани. Изготовленная композиция обладала антимикробным потенциалом и антиоксидантной активностью, а также способствовала пролиферации и миграции клеток [21]. Сочетание рибофлавина и триэтаноламина в качестве соинициатора было использовано для печати гидрогелей с настраиваемыми свойствами из диметакрилата полиэтиленгликоля с помощью стереолитографии. Напечатанные структуры характеризовались высокой прочностью при растяжении, оставались при этом прочными и упругими. Цитосовместимые свойства позволили рассматривать их для применения в тканевой инженерии и для создания биомедицинских устройств [22].

Флавоны — семейство фенольных соединений, которые присутствуют в злаках, травах и цветах. Флавоны демонстрируют высокое поглощение в ближнем УФ- и видимом диапазоне, особенно между 350 и 470 нм [23]. Семейство флавонов включает такие соединения, как 3-гидроксифлавон, 6-гидроксифлавон, 7-гидроксифлавон, хризин и мирицетин. Флавоны могут быть использованы в качестве фотоинициаторов для композитов и 3D-печатных биоматериалов на основе метакрилатов бисфенол A-глицидилметакрилата и триэтиленгликоль диметакрилата [24,25].

Халконы — природные соединения, присутствующие во многих овощах, фруктах. Производные халконов способствуют остеогенной дифференцировке клеток, обладают ингибируют рост кариесогенных бактерий [26]. Халконы поглощают свет в ближней УФ и видимой области света — 344—423 нм и могут выполнять двойную роль в фотополимерных системах — фотоинициатора и мономера [27]. Халконы используются для фотополимеризации композиций на основе акрилатов, а также для получения 3D-печатных конструкций в тканевой инженерии [28].

Куркумин — гидрофобное фенольное природное вещество, представляющее собой желто-оранжевый природный краситель. Куркумин способен формировать высококонъюгированные системы, фотополимеризуемые при длине волны между 350 и 535 нм [29]. К преимуществам куркумина также можно отнести способность хорошо растворяться в полярных и неполярных мономерах и полимерах и низкую цитотоксичностью [29—31]. Вместе с этим, свойства куркумина зависят от используемого растворителя или среды. Система куркумин/иодониевая соль/трифенилфосфин инициировала фотополимеризацию метакрилата на воздухе при облучении ультрафиолетовыми, синими, зелеными, желтыми, красными и теплыми белыми бытовыми светодиодными лампами, что придает панхроматическую способность к фотоинициированию. Данное сочетание обладало большей эффективностью по сравнению с коммерческими фотоинициаторами — фенилбис(2,4,6-триметилбензоил)фосфин оксидом и камфорохиноном [32].

Синтетические фотоинициаторы

2-гидрокси-1-[4-(2-гидроксиэтокси) фенил]-2-метил-1-пропанон (Irgacure 2959) — один из первых водорастворимых коммерческих фотоинициаторов. Пик поглощения приходится на 280 нм, а хвостовое поглощение наблюдается в спектре УФ-А. Однако для минимизации токсического эффекта традиционно полимеризация Irgacure 2959 проводится при излучении с длиной волны 365 нм. К недостаткам относится то, что из-за слабого поглощения фотоинициатор требует длительного времени экспозиции, что может приводить к клеточной гибели или мутагенезу. Помимо этого, он характеризуется низкой растворимостью в воде. Использование фотоинициатора при 3D-биопечати показало, что жизнеспособность клеток снижается по мере увеличения концентрации фотоинициатора. Однако с увеличением времени экспозиции его токсическое воздействия на клетки становилось менее выраженным [33]. Irgacure 2959 широко используют для получения гидрогелевых материалов для инкапсуляции клеток, доставки лекарств и биопечати [33—35].

Фенил-2,4,6-триметилбензоилфосфинат лития (LAP) — водорастворимый и цитосовместимый фотоинициатор [36]. По сравнению с Irgacure 2959 он менее токсичен, обладает высокой водорастворимостью и улучшенной кинетикой полимеризации при 365 нм [37]. LAP поглощает большее количество света, что приводит к более высокой скорости инициирования, полимеризации и, как следствие, образования большего количества сшивок [33]. В связи с этим материалы, содержащие LAP, характеризуются лучшими механическими свойствами. Фотоинициатор широко используется для получения гидрогелевых материалов для инкапсуляции клеток, доставки лекарств и 3D-печати [33,34,38].

2,4,6-триметилбензоилдифенилфосфиноксид (TPO) — слаборастворимый в воде фотоинициатор с хорошей термической стабильностью, который способен к полимеризации под действием УФ- и видимого излучения [24, 26]. Недостатком TPO является малая растворимость в воде, что не позволяет использовать его для полимеризации гидрогелевых структур на основе биополимеров типа коллагена или гиалуроновой кислоты. Фотоинициатор подходят для создания материалов для инкапсуляции клеток и высокоточной 3D-печати [37,40,41].

1,7,7-триметилбицикло[2.2.1]гептан-2,3-дион (камфорохинон) — фотоинициатор, широко используемый в стоматологии для создания фотокомпозитов [42]. Его полимеризация происходит под воздействием видимого излучения 375—500 нм, с пиком 470 нм [43]. Недостатками камфорохинона является способность окрашивать композиции в желтый цвет, а также внутренний экранирующий эффекта, способствующий образованию участков непрореагировавшего фотоинициатора [44,45]. Помимо этого, он характеризуется низкой растворимостью в воде и необходимостью включения третичных аминов для повышения эффективности процесса полимеризации [46]. Камфорохинон применяют для создания гидрогелей с инкапсулированными клетками и 3D-печати имплантатов для восстановления твердых тканей [47,48].

2,2’-азобис[2-метил-N-(2-гидроксиэтил) промионамид] (VA-086) — водорастворимый фотоинициатор, характеризующийся низкой цитотоксичностью. Его полимеризация протекает при воздействии УФ-излучения с длиной волны от 300 до 420 нм, с пиком 385 нм. Фотоинициатор используют для изготовления гидрогелей и 3D-печатных конструкций, содержащих клетки [49,50].

Эозин-Y используется для окрашивания гистологических препаратов. Фотоинициатор полимеризуется под действием видимого излучения с длиной волны 400—700 нм, с пиком абсорбции — 510 нм. Он характеризуется высокой растворимостью, цитосовместимостью, что позволяет использовать его для создания гидрогелей для доставки лекарств, клеток, изготовления чернил для биопечати [51—54].

Полимеры

Для создания фотополимеризуемых систем используют как природные, так и синтетические полимеры. К природным полимерам относятся коллаген, желатин, гиалуроновая кислота, хитозан, альгинат. Синтетические полимеры в основном представлены полиэтиленгликолем, поливиниловым спиртом и поликапролактоном.

Одними из наиболее популярных природных полимеров являются коллаген и желатин. Благодаря своему строению, они способны образовывать гидрогели даже в отсутствие фотоинициаторов, характеризуются высокой биологической совместимостью, биодеградируемостью. Помимо этого желатин содержит пептидную последовательность аргинин-глицин-аспарагиновая кислота, которая способствует прикреплению клеток к его поверхности [55]. Чаще всего для создания фотополимеризуемых материалов полимеры модифицируют метакриловым ангидридом. В результате получают метакрилированный коллаген и желатин. Отличительными свойствами таких гидрогелей является высокая биосовместимость, способность усиливать адгезию и пролиферацию клеток, а также инициировать минерализацию в клетках в отсутствие каких-либо экзогенных остеогенных факторов [56, 57].

Гиалуроновая кислота обладает биоактивными свойства, отсутствием иммуногенности, биодеградируемостью и гидрофильностью [58]. Ее структура способствует миграции клеток, их пролиферации, дифференцировке [59]. Наличие большого количества гидроксильных и карбоксильных групп позволяет модифицировать гиалуроновую кислоту путем включения метакрилатных, винильных, тиольных, норборненовых и тираминных функциональные группы, посредством реакций сшивания, этерификации [60].

Хитозан является природным катионным сополимером, который представляет большой интерес для создания гидрогелей [61]. Он имеет гидрофильную природу, биосовместим и биодеградируем [62]. Хитозан проявляет мукоадгезивные свойства, что широко используется при изготовлении гидрогелей для доставки лекарственных средств [63].

Альгинат натрия обладает рядом преимуществ, включая хорошую биосовместимость, низкую токсичность, иммуногенность. Недостатками альгинатных гидрогелей является недостаточная клеточная адгезия и то, что они имеют тенденцию терять свою механическую прочность в культуре in vitro [64]. Для создания прочных 3D-конструкций зачастую требуется использование гидрогелей с высокой концентрацией альгината, обладающих цитотоксическими свойствами [65].

Преимуществами описанных природных полимеров является их высокая биологическая совместимость, структура, способствующая прикреплению клеток, способность к биодеградации, а также наличие функциональных групп для связывания с фотоинициаторами [2]. Несмотря на описанные преимущества, они могут вызывать иммунный ответ, характеризуются неконтролируемой скоростью биодеградации, низкой механической прочностью и сложной воспроизводимостью. В то время как синтетические гидрогели отличаются большей механической прочностью и гибкостью структуры, однако при этом они в меньшей степени способствуют адгезии и пролиферации клеток и не обладают биологической активностью [66].

Полиэтиленгликоль (PEG) — гидрофильный полимер с высокой биосовместимостью, устойчивостью к адсорбции белков и структурной гибкостью [67, 68]. Наличие модифицируемых концевых групп позволяют использовать его для образования гидрогелей и конъюгации с биомолекулами. Некоторые из материалов, полученных из PEG, такие как поли(этиленгликоль)диакрилат, характеризуются хорошей биосовместимостью, приемлемыми механическими свойствами и низкой стоимостью [69].

Поливиниловый спирт — гидрофильный синтетический полимер, отличающийся простотой синтеза, способностью к биорезорбции. Благодаря высокому содержанию воды и пористой микроструктуре гидрогели на его основе считаются подходящими материалами для тканевой инженерии [70, 71]. Кроме того, они обладают уникальной прочностью по сравнению с большинством других синтетических гидрогелей [72].

Поликапролактон — гидрофобный полимер. Он отличается простой изготовления, возможностью модифицирования для придания необходимых механических и биологических свойств [73]. Благодаря этому из поликапролактона могут быть изготовлены материалы с высокими прочностными, адгезивными, гидрофильными и биосовместимыми свойствами [74]. В отличие от полилактида он обладает большей стабильностью, но подвергается биодеградации в течение более длительного периода времени [75].

Заключение

Возможность пространственно-временного контроля и мягкие условия отверждения позволяют изготавливать удобные для применения фотоотверждаемые материалы, в том числе содержащие клетки, факторы роста или лекарственные вещества, способствующие регенерации костной ткани. Помимо использования фотоотверждаемых композиций in situ для заполнения небольших дефектов сложной формы, они могут применяться для 3D-печати индивидуальных конструкций для восстановления протяженных костных дефектов. Следует ожидать, что дальнейшее развитие технологий изготовления фотоотверждаемых материалов будет направлено на повышение биосовместимых свойств композиций и входящих в их состав компонентов, в том числе фотоинициаторов, улучшение физико-механических свойств и разработку способов создания сложных структур, позволяющих добиться полной органо- и гистотипической регенерации.

Работа выполнена в рамках госзадания Минздрава России по теме: «Фотоотверждаемый биополимерный материал для регенерации пародонта и периимплантных тканей» (WLGC-2024-0001), рег. №1023021300027-9-3.2.14

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Nguyen KT, West JL. Photopolymerizable hydrogels for tissue engineering applications. Biomaterials. 2002; 23: 4307-14. 
  2. Chiulan I, Heggset EB, Voicu ŞI, Chinga-Carrasco G. Photopolymerization of Bio-Based Polymers in a Biomedical Engineering Perspective. Biomacromolecules. 2021; 22: 1795-814. 
  3. Leijten J, Seo J, Yue K et al. Spatially and temporally controlled hydrogels for tissue engineering. Materials Science and Engineering: R: Reports 2017; 119: 1-35. 
  4. Kowalski G, Witczak M, Kuterasiński Ł. Structure Effects on Swelling Properties of Hydrogels Based on Sodium Alginate and Acrylic Polymers. Molecules (Basel, Switzerland). 2024; 29: 1937.
  5. Khan MUA, Aslam MA, Abdullah MFB, Al-Arjan WS, Stojanovic GM, Hasan A. Hydrogels: Classifications, fundamental properties, applications, and scopes in recent advances in tissue engineering and regenerative medicine — A comprehensive review. Arabian Journal of Chemistry. 2024;17: 105968.
  6. Budi HS, Jameel Al-azzawi MF, Al-Dolaimy F et al. Injectable and 3D-printed hydrogels: State-of-the-art platform for bone regeneration in dentistry. Inorganic Chemistry Communications. 2024; 161: 112026.
  7. Enbergs S, Spinnen J, Dehne T, Sittinger M. 3D Printing of Bone Substitutes Based on Vat Photopolymerization Processes: A Systematic Review. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 2023; 2023: 1-18. 
  8. Tabriz AG, Douroumis D. Recent advances in 3D printing for wound healing: A systematic review. Journal of Drug Delivery Science and Technology. 2022; 74: 103564.
  9. Lu Z, Gao W, Liu F et al. Vat photopolymerization based digital light processing 3D printing hydrogels in biomedical fields: Key parameters and perspective. Additive Manufacturing. 2024; 94: 104443.
  10. Li W, Wang M, Ma H, Chapa-Villarreal FA, Lobo AO, Zhang YS. Stereolithography apparatus and digital light processing-based 3D bioprinting for tissue fabrication. iScience. 2023; 26: 106039.
  11. Brachet A, Bełżek A, Furtak D et al. Application of 3D Printing in Bone Grafts. Cells. 2023; 12: 859. 
  12. Wu S, Gai T, Chen J, Chen X, Chen W. Smart responsive in situ hydrogel systems applied in bone tissue engineering. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2024; 12: 1389733.
  13. Dzwonkowska-Zarzycka M, Sionkowska A. Photoinitiators for Medical Applications-The Latest Advances. Molecules (Basel, Switzerland). 2024;29: 3898.
  14. Lalevée J, Fouassier J-P, eds. Photopolymerisation Initiating Systems. The Royal Society of Chemistry, 2018.
  15. Chen W, Wang L, Liu X, Chen B, Zhao G. Synthesis and preliminary photopolymerization evaluation of novel photoinitiators containing phototrigger to overcome oxygen inhibition in the UV- curing system. Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry. 2020;388:112187.
  16. Dzwonkowska-Zarzycka M, Sionkowska A. Photoinitiators for Medical Applications — The Latest Advances. Molecules. 2024;29:3898.
  17. Islam MdR, Rauf A, Akash S et al. Targeted therapies of curcumin focus on its therapeutic benefits in cancers and human health: Molecular signaling pathway-based approaches and future perspectives. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2024; 170: 116034.
  18. Dhaliwal JS, Moshawih S, Goh KW et al. Pharmacotherapeutics Applications and Chemistry of Chalcone Derivatives. Molecules (Basel, Switzerland). 2022;27:7062.
  19. Alonso-de Castro S, Terenzi A, Hager S et al. Biological activity of PtIV prodrugs triggered by riboflavin-mediated bioorthogonal photocatalysis. Scientific Reports. 2018;8:17198.
  20. Zaborniak I, Surmacz K, Flejszar M, Chmielarz P. Triple‐functional riboflavin‐based molecule for efficient atom transfer radical polymerization in miniemulsion media. Journal of Applied Polymer Science. 2020; 137: 49275.
  21. Gaweł J, Milan J, Żebrowski J, Płoch D, Stefaniuk I, Kus-Liśkiewicz M. Biomaterial composed of chitosan, riboflavin, and hydroxyapatite for bone tissue regeneration. Scientific Reports. 2023;13:17004.
  22. Karakurt I, Aydoğdu A, Çıkrıkcı S, Orozco J, Lin L. Stereolithography (SLA) 3D printing of ascorbic acid loaded hydrogels: A controlled release study. International Journal of Pharmaceutics. 2020;584:119428.
  23. Al Mousawi A, Garra P, Dumur F, Graff B, Fouassier JP, Lalevée J. Flavones as natural photoinitiators for light mediated free‐radical polymerization via light emitting diodes. Journal of Polymer Science. 2020;58:254-62. 
  24. Al Mousawi A, Garra P, Dumur F, Graff B, Fouassier JP, Lalevée J. Flavones as natural photoinitiators for light mediated free‐radical polymerization via light emitting diodes. Journal of Polymer Science. 2020; 58: 254-62. 
  25. Al Mousawi A, Garra P, Schmitt M et al. 3-Hydroxyflavone and N -Phenylglycine in High Performance Photoinitiating Systems for 3D Printing and Photocomposites Synthesis. Macromolecules. 2018; 51: 4633-41. 
  26. Choi D, Park JC, Lee HN et al. In Vitro Osteogenic Differentiation and Antibacterial Potentials of Chalcone Derivatives. Molecular Pharmaceutics. 2018; 15: 3197-204. 
  27. Chang JY, Nam SW, Hong CG, Im J-H, Kim J-H, Han MJ. Photoimaging on an Optically Anisotropic Film with a Polymerizable Smectic Liquid Crystal. Advanced Materials. 2001; 13: 1298.
  28. Chen H, Noirbent G, Sun K et al. Photoinitiators derived from natural product scaffolds: monochalcones in three-component photoinitiating systems and their applications in 3D printing. Polymer Chemistry. 2020; 11: 4647-59. 
  29. Stohs SJ, Chen O, Ray SD, Ji J, Bucci LR, Preuss HG. Highly Bioavailable Forms of Curcumin and Promising Avenues for Curcumin-Based Research and Application: A Review. Molecules. 2020; 25: 1397.
  30. Payton F, Sandusky P, Alworth WL. NMR Study of the Solution Structure of Curcumin. Journal of Natural Products. 2007; 70: 143-6. 
  31. Nakayama Y, Ito Y, Fukaminato T et al. Water‐soluble hyperbranched polymer with high curcumin content. Journal of Applied Polymer Science. 2023; 140: e54673.
  32. Zhao J, Lalevée J, Lu H et al. A new role of curcumin: as a multicolor photoinitiator for polymer fabrication under household UV to red LED bulbs. Polymer Chemistry. 2015; 6: 5053-61. 
  33. Xu H, Casillas J, Krishnamoorthy S, Xu C. Effects of Irgacure 2959 and lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate on cell viability, physical properties, and microstructure in 3D bioprinting of vascular-like constructs. Biomedical Materials. 2020; 15: 055021.
  34. Nichol JW, Koshy ST, Bae H, Hwang CM, Yamanlar S, Khademhosseini A. Cell-laden microengineered gelatin methacrylate hydrogels. Biomaterials. 2010;31:5536-44. 
  35. De Witte T-M, Wagner AM, Fratila-Apachitei LE, Zadpoor AA, Peppas NA. Degradable Poly(Methyl Methacrylate)-co-Methacrylic Acid Nanoparticles for Controlled Delivery of Growth Factors for Bone Regeneration. Tissue Engineering Part A. 2020;26:1226-42. 
  36. Fairbanks BD, Schwartz MP, Bowman CN, Anseth KS. Photoinitiated polymerization of PEG-diacrylate with lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate: polymerization rate and cytocompatibility. Biomaterials. 2009; 30:6702-7. 
  37. Fairbanks BD, Schwartz MP, Bowman CN, Anseth KS. Photoinitiated polymerization of PEG-diacrylate with lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate: polymerization rate and cytocompatibility. Biomaterials. 2009; 30:6702-7. 
  38. Wang Y, Wang S, Hu W et al. In situ Hydrogels Prepared by Photo-initiated Crosslinking of Acrylated Polymers for Local Delivery of Antitumor Drugs. Journal of Pharmaceutical Sciences. 2023;112:1863-71. 
  39. Lin H, Zhang D, Alexander PG et al. Application of visible light-based projection stereolithography for live cell-scaffold fabrication with designed architecture. Biomaterials. 2013;34:331-9. 
  40. Lebedevaite M, Ostrauskaite J. Influence of photoinitiator and temperature on photocross-linking kinetics of acrylated epoxidized soybean oil and properties of the resulting polymers. Industrial Crops and Products. 2021;161: 113210.
  41. Ghazali HS, Askari E, Seyfoori A, Naghib SM. A high-absorbance water-soluble photoinitiator nanoparticle for hydrogel 3D printing: synthesis, characterization and in vitro cytotoxicity study. Scientific Reports. 2023; 13: 8577.
  42. Kowalska A, Sokołowski J, Szynkowska-Jóźwik MI, Gozdek T, Kopacz K, Bociong K. Can TPO as Photoinitiator Replace “Golden Mean” Camphorquinone and Tertiary Amines in Dental Composites? Testing Experimental Composites Containing Different Concentration of Diphenyl(2,4,6-trimethylbenzoyl)phosphine Oxide. International Journal of Molecular Sciences. 2022; 23: 11594.
  43. Neumann MG, Schmitt CC, Ferreira GC, Corrêa IC. The initiating radical yields and the efficiency of polymerization for various dental photoinitiators excited by different light curing units. Dental Materials. 2006;22:576-84. 
  44. Janda R, Roulet J, Kaminsky M, Steffin G, Latta M. Color stability of resin matrix restorative materials as a function of the method of light activation. European Journal of Oral Sciences. 2004;112:280-5. 
  45. Jakubiak J, Sionkowska A, Lindén L-Å, Rabek JF. Isothermal photo differential scanning calorimetry. Crosslinking polymerization of muitifunctional monomers in presence of visible light photoinitiators. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 2001;65:435-443. 
  46. Kamoun EA, Winkel A, Eisenburger M, Menzel H. Carboxylated camphorquinone as visible-light photoinitiator for biomedical application: Synthesis, characterization, and application. Arabian Journal of Chemistry. 2016; 9:745-754. 
  47. Bryant SJ, Nuttelman CR, Anseth KS. Cytocompatibility of UV and visible light photoinitiating systems on cultured NIH/3T3 fibroblasts in vitro. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2000;11:439-457. 
  48. Shakouri T, Cha J-R, Owji N et al. Comparative study of photoinitiators for the synthesis and 3D printing of a light-curable, degradable polymer for custom-fit hard tissue implants. Biomedical Materials. 2020;16:015007.
  49. Coates EE, Riggin CN, Fisher JP. Photocrosslinked alginate with hyaluronic acid hydrogels as vehicles for mesenchymal stem cell encapsulation and chondrogenesis. Journal of Biomedical Materials Research. Part A 2013; 101A: 1962-1970.
  50. Occhetta P, Visone R, Russo L, Cipolla L, Moretti M, Rasponi M. VA‐086 methacrylate gelatine photopolymerizable hydrogels: A parametric study for highly biocompatible 3 D cell embedding. Journal of Biomedical Materials Research. Part A 2015;103:2109-2017.
  51. Arakawa C, Ng R, Tan S, Kim S, Wu B, Lee M. Photopolymerizable chitosan-collagen hydrogels for bone tissue engineering: Photopolymerizable chitosan-collagen hydrogels. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 2017;11:164-174. 
  52. Oregon Health & Science University, Department of Orthopaedics & Rehabilitation, OP31, 3181 Sam Jackson Park Road, Portland OR 97239, USA, Bahney C, Lujan T et al. Visible light photoinitiation of mesenchymal stem cell-laden bioresponsive hydrogels. European Cells and Materials. 2011;22: 43-55. 
  53. Elbert DL, Hubbell JA. Conjugate Addition Reactions Combined with Free-Radical Cross-Linking for the Design of Materials for Tissue Engineering. Biomacromolecules. 2001; 2: 430-441. 
  54. Kumar H, Sakthivel K, Mohamed MGA, Boras E, Shin SR, Kim K. Designing Gelatin Methacryloyl (GelMA)‐Based Bioinks for Visible Light Stereolithographic 3D Biofabrication. Macromolecular Bioscience. 2021;21: 2000317.
  55. Wu S-C, Chang W-H, Dong G-C, Chen K-Y, Chen Y-S, Yao C-H. Cell adhesion and proliferation enhancement by gelatin nanofiber scaffolds. Journal of Bioactive and Compatible Polymers. 2011;26:565-577. 
  56. Zhang T, Chen H, Zhang Y et al. Photo-crosslinkable, bone marrow-derived mesenchymal stem cells-encapsulating hydrogel based on collagen for osteogenic differentiation. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2019;174: 528-535. 
  57. McBeth C, Lauer J, Ottersbach M, Campbell J, Sharon A, Sauer-Budge AF. 3D bioprinting of GelMA scaffolds triggers mineral deposition by primary human osteoblasts. Biofabrication. 2017;9:015009.
  58. Burdick JA, Chung C, Jia X, Randolph MA, Langer R. Controlled Degradation and Mechanical Behavior of Photopolymerized Hyaluronic Acid Networks. Biomacromolecules. 2005;6:386-391. 
  59. Cowman MK, Schmidt TA, Raghavan P, Stecco A. Viscoelastic Properties of Hyaluronan in Physiological Conditions. F1000Research. 2015; 4: 622. 
  60. Hintze V, Schnabelrauch M, Rother S. Chemical Modification of Hyaluronan and Their Biomedical Applications. Frontiers in Chemistry. 2022;10: 830671.
  61. Kuznetsova VS, Vasilyev AV, Grigoriev TE et al. The prospects of hydrogels usage as a basis for curable osteoplastic materials. Stomatologiya. 2017;96: 68. 
  62. Yao K, Li J, Yao F, Yin Y, eds. Chitosan-Based Hydrogels: Functions and Applications. Boca Raton, Fla.: CRC Press, 2011.
  63. Chitosan in Drug Delivery. Elsevier, 2022.
  64. Jana S, Jana S, eds. Alginate Biomaterial: Drug Delivery Strategies and Biomedical Engineering. Singapore: Springer Nature Singapore, 2023.
  65. Kavand A, Noverraz F, Gerber-Lemaire S. Recent Advances in Alginate-Based Hydrogels for Cell Transplantation Applications. Pharmaceutics. 2024;16:469. 
  66. Kumbar S, Laurencin C, Deng M, eds. Natural and Synthetic Biomedical Polymers, First edition. Amsterdam Boston, Mass Heidelberg London New York Oxford Paris San Diego San Francisco Singapore: Elsevier, 2014.
  67. Qian S, Zhou C, Xu L, Yao F, Cen L, Fu G. High strength biocompatible PEG single-network hydrogels. RSC Adv. 2014;4:25241-25250.
  68. Liu MG, Zhao R, Liu SQ. Study on self-assembly of novel hydrophilic silane containing PEG segments and its resistance to protein adsorption. Journal of Physics: Conference Series. 2021;1765:012012.
  69. Sarabia-Vallejos MA, Cerda-Iglesias FE, Terraza CA et al. Biocompatible and bioactive PEG-Based resin development for additive manufacturing of hierarchical porous bone scaffolds. Materials & Design. 2023;234:112315.
  70. Li H, Wu C, Yu X, Zhang W. Recent advances of PVA-based hydrogels in cartilage repair application. Journal of Materials Research and Technology. 2023;24:2279-2298.
  71. Xiang C, Wang Z, Zhang Q et al. Tough physically crosslinked poly(vinyl alcohol)-based hydrogels loaded with collagen type I to promote bone regeneration in vitro and in vivo. International Journal of Biological Macromolecules. 2024;261:129847.
  72. Drury JL, Mooney DJ. Hydrogels for tissue engineering: scaffold design variables and applications. Biomaterials. 2003;24:4337-51. 
  73. Pramanik K, ed. Polycaprolactone: Applications, Synthesis and Characterization. Nova Science Publishers, 2022.
  74. Malikmammadov E, Tanir TE, Kiziltay A, Hasirci V, Hasirci N. PCL and PCL-based materials in biomedical applications. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2018; 29: 863—93. 
  75. Li L, Yu F, Shi J et al. In situ repair of bone and cartilage defects using 3D scanning and 3D printing. Scientific Reports. 2017;7:9416.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.