ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроектыО насРекламаДоставка/ОплатаКонтакты
+7 (495) 482-43-29
  • Главная
  • / Журналы
  • / Вернуться в журнал
  • / Содержание номера
  • / Статья
Роль адипозопатии в развитии ассоциированных с ожирением заболеваний

Роль адипозопатии в развитии ассоциированных с ожирением заболеваний

Авторы:
Ким О.Т.,
Валида Арсланалиевна Дадаева,
Джинна Ивановна Лебедева,
Оксана Михайловна Драпкина

Журнал: Профилактическая медицина. 2025;28(2):96-102.

DOI: 10.17116/profmed20252802196

Прочитано: 1025 раз

Скачать PDF

Резюме

Ожирение связано с развитием многих ассоциированных с ним заболеваний, однако механизмы, ведущие к их появлению, ясны не до конца.

ЦЕЛЬ ОБЗОРА

Проанализировать роль адипозопатии в механизме развития ассоциированных с ожирением заболеваний.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Поиск опубликованных данных проведен в электронных базах данных MedLine (PubMed) и eLibrary.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Теория увеличения жировой ткани утверждает, что происходит увеличение не абсолютного количества клеток жировой ткани, а их способности накапливать липиды и тем самым влиять на метаболический гомеостаз. При превышении предела расширяемости жировой ткани происходят миграция и осаждение липидов в других органах. Эктопическое накопление липидов вызывает липотоксические эффекты, приводя к развитию метаболических заболеваний. В данном обзоре рассматриваются возможные механизмы нарушения расширяемости жировой ткани и примеры заболеваний, подтверждающие данную теорию.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Адаптация программы снижения массы тела, направленная на улучшение метаболических показателей индивидуума, а не на общие значения, основанные на популяционных исследованиях, может привести к более успешному лечению ожирения и метаболических заболеваний.

Ключевые слова

  • теория увеличения жировой ткани
  • адипоцитарная дисфункция
  • липолиз
  • липотоксичность

Дата поступления: 27.09.2024

Дата принятия в печать: 25.10.2024

Дата публикации: 27.02.2025

Введение

Ожирение и избыточная масса тела являются значимыми факторами риска развития широкого спектра заболеваний, включающих сердечно-сосудистые, онкологические и аутоиммунные заболевания, сахарный диабет 2 типа, остеоартрит и обструктивное апноэ сна. Эта связь подтверждена многочисленными эпидемиологическими исследованиями, однако ее патофизиологические механизмы окончательно не изучены [1].

На сегодняшний день открыто большое количество механизмов, играющих роль в развитии ассоциированных с ожирением заболеваний — от хронического воспаления до изменений кишечного микробиома и эпигенетических модификаций [2].

Одна из самых интересных теорий, так называемая теория расширяемости жировой ткани, сфокусирована на ограничении функциональных возможностей адипоцитов. Это видение ставит жировую ткань на тот же уровень, что и другие жизненно важные органы. С данной точки зрения, наряду с сердечной, печеночной и почечной недостаточностью есть и «адипоцитарная недостаточность» [3].

Цель обзора — проанализировать роль адипозопатии в механизме развития ассоциированных с ожирением заболеваний.

Материалы и методы

Поиск опубликованных данных проведен в электронных базах данных MedLine (PubMed) и eLibrary. Для поиска англоязычных статей использованы ключевые слова «obesity», «lipid droplets», «adipose tissue expandability hypothesis», «adipocyte», «dyslipidemia», «atherosclerosis», «non-alcoholic fatty liver disease», «metabolic cardiomitopathy», «diabetes mellitus». Для поиска русскоязычных статей использованы следующие ключевые слова: «ожирение», «липидные капли», «теория расширяемости жировой ткани», «адипоцит», «дислипидемия», «атеросклероз», «неалкогольная жировая болезнь печени», «метаболическая кардиомитопатия», «сахарный диабет».

Оценку приемлемости англоязычных оригинальных источников осуществляли в несколько этапов: просматривали заголовки, аннотации и полнотекстовые статьи. Кроме того, проводили дополнительный поиск ссылок из документов.

Публикации отдельных наблюдений, исследования на животных, а также статьи, в которых приведены предварительные результаты исследования или дублировались результаты исследований, исключены из анализа.

Теория расширяемости жировой ткани

Теория расширяемости жировой ткани утверждает, что при достижении определенного лимита накопления липидов в адипоците происходит их миграция в другие ткани. В свою очередь, эктопические липиды, откладываясь в тканях, отличных от жировой, вызывают липотоксический эффект за счет усиления стресса эндоплазматического ретикулума, хронического воспаления, фиброза и некроапоптоза [3].

Классическая парадигма утверждает, что чем больше жировой ткани, тем выше вероятность развития ассоциированных заболеваний, но некоторые клинические парадоксы опровергают эту линейную корреляцию [4]. Известно, что у лиц с липодистрофиями, группой заболеваний, характеризующихся дисфункцией адипоцитов, наблюдается уменьшение объема жировой ткани в сочетании с инсулинорезистентностью, дислипидемией, ранним развитием сахарного диабета, стеатоза печени и почечной недостаточности [5]. В противоположность этому все чаще обсуждается так называемое метаболически здоровое ожирение, при котором у некоторых лиц с ожирением не наблюдается явного кардиометаболического риска [6]. Кроме того, показано, что антидиабетические препараты тиазолидиндионы (глитазоны) снижают инсулинорезистентность, уменьшают выраженность стеатоза печени, но увеличивают массу тела за счет повышения емкости адипоцитов для липидов [7].

Таким образом, теория расширяемости жировой ткани утверждает, что буферная способность адипоцитов является более важной детерминантой метаболических нарушений, чем абсолютное количество жировой ткани, которым обладает индивидуум. Считается, что эктопическое отложение липидов в органах, отличных от жировой ткани, вызывает развитие ассоциированных с ожирением заболеваний через липид-индуцированную токсичность (липотоксичность) [8].

Депо-специфичные особенности жировой ткани

Известно, что разные депо жировой ткани оказывают различные кардиометаболические эффекты. Эпидемиологические исследования выявили, что абдоминальное ожирение ассоциировано с повышенным метаболическим риском и общей смертностью, в то время как увеличение количества подкожной жировой ткани не несет в себе выраженного негативного эффекта [9]. В условиях избытка питательных веществ жировая ткань накапливает излишки энергии в виде триглицеридов, а при дефиците доставляет питательные вещества в другие ткани посредством липолиза [10]. Как эндокринный орган, жировая ткань высвобождает биологически активные вещества адипокины, участвующие в поддержании нормального функционирования организма и развитии ряда заболеваний [11].

Увеличение объема жировой ткани может происходить посредством увеличения размера существующих адипоцитов (гипертрофия) и/или пролиферации и дифференциации преадипоцитов в адипоциты (гиперплазия или адипогенез) [12]. Обнаружено, что преадипоциты подкожной жировой ткани дифференцируются быстрее и более чувствительны к тиазолидиндионам [13, 14]. Повышенный гиперпластический потенциал адипоцитов подкожного депо согласуется с теорией расширяемости жировой ткани. Другими словами, метаболически здоровая жировая ткань обладает большей способностью к гиперплазии, чем к гипертрофии. Избыток жирных кислот из гипертрофированных адипоцитов выходит в системный кровоток и эктопически откладывается в печени, мышцах и поджелудочной железе [15].

Эта теория находит подтверждение в исследованиях гендерных и возрастных особенностей распределения жировой ткани. Женщины в пременопаузе имеют подкожное ягодично-бедренное отложение жира, характеризующееся более благоприятным кардиометаболическим профилем, тогда как у мужчин преобладает отложение жира в висцеральном депо [16]. Эксперименты, проведенные на животных, показали, что гендерные особенности ремоделирования жировой ткани влияют на системный метаболизм. При избытке калорий жировые отложения у самцов увеличиваются за счет гипертрофии, в то время как у самок — за счет гипертрофии и гиперплазии. У самок наблюдался меньший уровень апоптоза макрофагов жировой ткани, производства провоспалительных цитокинов и инсулинорезистентности при ожирении по сравнению с самцами [17]. Исследование лиц с нормальной массой тела под руководством D.P. Andersson и соавт. (2017) показало, что у мужчин в висцеральном депо наблюдался больший размер адипоцитов, а у женщин — большее количество [18]. Отмечено, что женщины в пременопаузе по сравнению с мужчинами имеют больше ранних дифференцированных адипоцитов, особенно в области бедер [16]. Подобные различия в распределении жировой ткани связывают с экспрессией альфа-рецептора эстрогена (ERα) в подкожных депо жировой ткани бедренной области, который опосредует активность липопротеинлипазы и накопление триацилглицерина в адипоцитах [19]. После достижения менопаузы уровень эстрогенов у женщин снижается, а соотношение андрогенов к эстрогенам увеличивается. При этом увеличивается объем висцеральной жировой ткани и повышается риск сердечно-сосудистых заболеваний, гипертонии и диабета [20]. Отношение андрогенов к эстрогенам также изменено у женщин в пременопаузе с синдромом поликистозных яичников. При этом состоянии также наблюдается перераспределение липидов, приводящее к висцеральному ожирению [20]. Кроме того, дополнительный вклад висцерального жира в метаболический риск может заключаться в непосредственной миграции свободных жирных кислот в портальное кровообращение и его большой восприимчивости к продуктам жизнедеятельности кишечного микробиома [21].

Биология липидных капель

В свете теории о расширяемости жировой ткани интересными представляются механизмы, регулирующие буферную способность адипоцита. Адипоциты белой жировой ткани состоят из одной большой липидной капли и небольшого количества митохондрий [22]. Липидные капли состоят из триацилглицерина, стеролэфирного нейтрального липидного ядра, стабилизированного фосфолипидным монослоем и множественными регуляторными белками [23]. Результаты протеомных анализов липидных капель обнаружили более 200 содержащихся в них белков, включающих в себя поверхностные перилипины, ферменты, связанные с метаболизмом липидов и внутриклеточным переносом, белки суперсемейства Rab, шапероны, элементы цитоскелета, эндоплазматического ретикулума и белки митохондрий [24].

Структурные белки семейства перилипинов играют ключевую роль в регуляции липолиза в жировой ткани. Наиболее распространенный белок перилипин-1 (PLIN1) образует динамический каркас для липидной капли и физический барьер для гормон-чувствительной липазы (HSL) [25]. Другим важным структурным белком липидных капель является перилипин-2 (PLIN2), который экспрессируется во многих тканях организма, в том числе миокарде и печеночной ткани. Его функция заключается в образовании и стабилизации липидных капель и образовании жировой ткани за счет увеличения поглощения жирных кислот. Сверхэкспрессия PLIN2 усиливает накопление липидных капель в печеночных и других клетках [26]. Подобно PLIN2, перилипин-5 (PLIN5) увеличивает накопление триглицеридов и подавляет инсулинорезистентность, обусловленную диетой с высоким содержанием жиров [27]. Функции перилипинов 3 и 4 в контроле липолиза изучены недостаточно [24].

Липолиз — это биохимический путь, ответственный за катаболизм триацилглицеролов (ТАГ), хранящихся в липидных каплях клетки. Процесс липолиза происходит в нестимулированных (базальных) или в условиях, стимулированных гормонами [28]. Липолиз состоит из последовательного гидролиза ТАГ до молекул глицерина и жирных кислот. На первой стадии этого процесса ТАГ гидролизуется до диацилглицерина (ДАГ) и одной молекулы жирной кислоты в реакции, катализируемой ферментом адипоцитарной триглицеридлипазой (ATGL). После этого ДАГ превращается в моноацилглицерин (МАГ) и жирную кислоту под действием гормон-чувствительной липазы (HSL). Моноацилглицероллипаза гидролизует МАГ с образованием глицерина и жирной кислоты [29]. Показано, что ATGL отвечает за большую часть липолитической активности в базальных и стимулированных условиях. Однако в базальных условиях коактиватор ATGL белок CGI-58 остается связанным с перилипинами, что ограничивает активность липазы. При этом около 70% жирных кислот остаются внутри клетки и обратно включаются в ТАГ. Остальные 30% жирных кислот выходят в кровь и используются в тканях. В печени они превращаются в липопротеины очень низкой плотности, часть которых становится атерогенными липопротеинами низкой плотности [29]. Логично предположить, что количество атерогенных липопротеинов прямо коррелирует с количеством жировой ткани, что связывает ожирение с развитием ассоциированных заболеваний.

При стимуляции липолиза гормонами, главным образом катехоламинами, происходит ряд внутриклеточных реакций, меняющих свойства ATGL и перилипинов. Это приводит к резкому усилению процесса липолиза, и, соответственно, дистрофии жировой ткани, гипертриглицеридемии, накоплению липидов в других органах [30]. Ярким примером модифицированного катехоламинами усиления липолиза служит синдром Кушинга, рассматриваемый сегодня как архетип метаболического синдрома [31].

Кроме перилипинов идентифицировано еще несколько белков, играющих важную роль в функционировании липидных капель. Семейство белков-активаторов гибели клеток CIDE в настоящее время состоит из трех белков: Cidea, Cideb и Fsp27 (мышиных)/Cidec (человека) [32]. Экспрессия семейства CIDE тканеспецифична: Cidea экспрессируется в основном в бурых адипоцитах, Fsp27/Cidec в белых адипоцитах и Cideb в печени. Все три белка CIDE находятся в эндоплазматическом ретикулуме и на поверхности липидных капель [33], Fsp27/Cidec и Cidea участвуют в регуляции размера липидных капель и накоплении триглицеридов в адипоцитах [34]. Показано, что Fsp27 и Cidea способствуют кластеризации липидных капель, опосредуя перенос липидов из небольших капель в более крупные, усиливая тем самым рост липидной капли [35].

Кавеолины и кавины прежде всего известны как два основных белковых компонента кавеол, инвагинаций в плазматических мембранах клеток. Их особенно много в белых адипоцитах, где, как считается, они играют важную роль в метаболизме липидов [36, 37]. Высказано предположение, что некоторые подтипы кавеол являются участками синтеза триглицеридов в плазматических мембранах адипоцитов. Возможно, это является тканеспецифической адаптацией к накоплению большого объема триглицеридов в жировой ткани [36]. Кавеолины и кавины взаимодействуют с перилипинами и гормон-чувствительной липазой, потенциально изменяя рост липидной капли [37].

Аполипопротеин E (apoE) — это многофункциональный белок, синтезируемый и секретируемый множеством тканей млекопитающих. Он регулирует размер адипоцитов, транспорт липидов и экспрессию генов, участвующих в окислении жирных кислот. У нокаутированных по гену apoE мышей наблюдались тяжелая гиперхолестеринемия и раннее развитие атеросклероза на фоне низкой массы тела и меньшего количества жировой ткани [38].

Белок PNPLA3 также связан с функцией мембран липидных капель. Механизм его функционирования пока остается неясным, предполагается, что он снижает активность ATGL [39]. Таким образом, буферная способность адипоцитов опосредована значительным количеством факторов, функция которых требует дальнейших исследований.

Адипоцитарная дисфункция и метаболические нарушения. Дислипидемия и атеросклероз

Адипоциты играют важную роль в гомеостазе холестерина и сывороточных липопротеидов. Жировая ткань — самый большой запас холестерина в организме. Многочисленные наблюдения показали, что между пулами сывороточного липопротеина и холестерина в адипоцитах может существовать динамическое равновесие. В нормальном состоянии адипоциты экспортируют холестерин в циркулирующие липопротеины и захватывают холестерин из сывороточных липопротеинов при гиперхолестеринемии, вызванной диетой [40]. Адипоциты путем поглощения и высвобождения регулируют гомеостаз холестерина во всем организме. Поскольку накопление холестерина в адипоцитах связано с увеличением количества триглицеридов при гипертрофии, возможно, что нарушенный отток или приток холестерина адипоцитов приводит к задержке холестерина в свободном кровотоке [41].

Гипертрофированные белые адипоциты выделяют больше жирных кислот из-за усиления базального липолиза. Повышение уровня циркулирующих свободных жирных кислот приводит к развитию гипертриглицеридемии и инсулинорезистентности [42]. Закономерно возникает вопрос: если адипоциты регулируют уровень и липопротеидов высокой плотности, почему их уровень не повышается при ожирении? Ожирение сопровождается гипоксией и состоянием хронического слабого воспаления жировой ткани. Предполагается, что усиление провоспалительного статуса нарушает отток холестерина из адипоцитов в сывороточные липопротеиды [43].

Накопление липидов в макрофагах приводит к появлению пенистых клеток, ведущих к развитию и прогрессированию атеросклероза. Согласно этой модели, усиление поглощения холестерина адипоцитами является эффективным методом ослабления атеросклеротического поражения. Гидролиз внутриклеточного эфира холестерина является первым шагом к устранению избытка холестерина в пенистых клетках, тесно связанного с атеросклеротическими поражениями [44]. Протеомный анализ выявил белки липидных капель HCE-1, HSL и LDAH, ответственные за этот процесс, что делает их потенциальными мишенями для лечения атеросклероза [45]. Обнаружено также, что дефицит PLIN2 уменьшает липидную каплю, снижает образование пенистых клеток и защищает мышей, нокаутированных по apoE, от атеросклероза [46].

Неалкогольная жировая болезнь печени

Неалкогольная жировая болезнь печени (НАЖБП) широко встречается среди лиц с ожирением. Ее распространенность достигает почти одной трети от общей численности населения и продолжает увеличиваться [47]. Примерно у одной трети пациентов с НАЖБП в перспективе разовьется фиброз печени. Другие исходы включают цирроз печени и гепатоцеллюлярную карциному [48].

Белок PNPLA3 играет важную роль в развитии НАЖБП. Как говорилось выше, механизм его действия ясен не до конца, но многочисленные исследования с использованием полногеномного секвенирования (GWAS) выявили значительную ассоциацию полиморфизма PNPLA3 (148 М) со стеатозом печени у лиц испаноязычного, афроамериканского и европейского происхождения [39]. Обнаружена тесная связь варианта 148 М с циррозом печени и высоким риском развития гепатоцеллюлярной карциномы [49]. Генетические полиморфизмы PNPLA3 (148 М) в будущем могут стать диагностическим биомаркером и потенциальной терапевтической целью для персонализированного лечения НАЖБП.

Обнаружено, что белки PLIN2 и PLIN3 локализуются на липидных каплях печени [50]. Потеря экспрессии PLIN2 у мышей снижала накопление триглицеридов в печени с высоким содержанием жиров [51]. Белки DGAT2 и активаторы гибели клеток (CIDE) также участвуют в формировании липидных капель в тканях печени [52].

Исследования показали, что 17β-гидроксистероиддегидрогеназа 13 (17β-HSD13) синтезируется в печени и играет важную роль в развитии стеатоза печени. Сравнительное протеомное исследование выявило резкое повышение уровня 17β-HSD13 у пациентов с НАЖБП по сравнению со здоровыми испытуемыми. Белки семейства 17β-HSD катализируют ключевой этап синтеза половых гормонов, поэтому предполагается, что 17β-HSD13 участвуют в развитии стеатоза печени через гормонально индуцированный синтез липидов [53].

Метаболическая кардиомиопатия

Свободные жирные кислоты важны для функционирования миокарда. Тем не менее чрезмерная липидная нагрузка или нарушения липолиза ведут к чрезмерному накоплению липидов в сердечной мышце, что может вызвать сердечную недостаточность [54]. У лиц с мутацией гена PNPLA2 или CGI-58 развивается синдром накопления нейтральных липидов, сопровождающийся стеатозом сердца и кардиомиопатией [54].

По данным исследований, PLIN5 играет важную роль в липидном гомеостазе сердца, взаимодействует с ATGL и его ко-активатором CGI-58, снижая липолиз в кардиомиоцитах [55]. Гиперэкспрессия PLIN5 приводит к тяжелому стеатозу миокарда и сердечной дисфункции за счет снижения липолиза в кардиомиоцитах. Предполагается, что избыточная экспрессия PLIN5 в кардиомиоцитах может непосредственно разрушать функцию митохондрий, что, в свою очередь, вызывает накопление липидов в миокарде, стеатоз и дисфункцию [56]. В целом связь между функцией протеинов липидных капель и развитием неатеросклеротических заболеваний сердца еще требует дальнейшего изучения.

Сахарный диабет

Адипоцитарная дисфункция играет сразу несколько ролей в развитии сахарного диабета. Развитие инсулинорезистентности тесно связано с накоплением эктопических триглицеридов в липидных каплях скелетных мышц. Синаптосомно-ассоциированный белок 23 (SNAP23) в соединении с синтаксином-4 образует комплекс t-SNARE, необходимый для инсулинзависимой транслокации транспортера глюкозы GLUT4 на плазматическую мембрану. Накопление липидов в клетке при ожирении сдвигает SNAP23 от плазматической мембраны к внутренней части клетки, что приводит к инсулинорезистентности [57]. С другой стороны, хроническое повышение количества свободных жирных кислот в крови оказывает липотоксическое действие на бета-клетки поджелудочной железы. Это, в свою очередь, приводит к снижению секреции инсулина островками Лангерганса [58].

Заключение

Теория расширяемости жировой ткани создала единую платформу для понимания, каким образом различные депо жировой ткани вносят свой вклад в кардиометаболический риск. Понимание биологии липидных капель проливает свет на то, как изменения в строении и функции адипоцита приводят к разнообразию ассоциированных с ожирением заболеваний и объясняет некоторые клинические парадоксы, связанные с липидным обменом.

В будущем требуются исследования, детальнее раскрывающие механизмы зарождения, дифференциации, продолжительности жизни и функционирования адипоцитов. Понимание и детальное изучение теории расширяемости жировой ткани может позволить разработать более успешные методы лечения ожирения, особенно в отношении персонализированного подхода к снижению массы тела. Вероятно, что адаптация программы снижения веса, направленная на улучшение метаболических показателей индивидуума, а не на общие значения, основанные на популяционных исследованиях, может привести к более успешному лечению ожирения и метаболических заболеваний.

Вклад авторов: концепция и дизайн исследования — Ким О.Т., Дадаева В.А.; сбор и обработка материала — Ким О.Т., Дадаева В.А., Лебедева Д.И.; статистический анализ данных — не требовался; написание текста — Ким О.Т., Дадаева В.А., Лебедева Д.И.; научное редактирование — Драпкина О.М.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Authors contribution: study design and concept — Kim O.T., Dadaeva V.A.; data collection and processing — Kim O.T., Dadaeva V.A., Lebedeva D.I.; statistical analysis — unnecessary; text writing — Kim O.T., Dadaeva V.A., Lebedeva D.I.; scientific editing — Drapkina O.M.

Литература / References
  1. Blüher M. Obesity: global epidemiology and pathogenesis. Nature Reviews. Endocrinology. 2019;15(5):288-298. https://doi.org/10.1038/s41574-019-0176-8
  2. Ferrucci L, Fabbri E. Inflammageing: chronic inflammation in ageing, cardiovascular disease, and frailty. Nature Reviews. Cardiology. 2018;15(9):505-522. https://doi.org/10.1038/s41569-018-0064-2
  3. Caprio, Sonia, Pierpont, Bridget and Kursawe, Romy. The “adipose tissue expandability” hypothesis: a potential mechanism for insulin resistance in obese youth. Hormone Molecular Biology and Clinical Investigation, 2018; 33(2):20180005. https://doi.org/10.1515/hmbci-2018-0005
  4. Moreno-Indias I, Tinahones FJ. Impaired adipose tissue expandability and lipogenic capacities as ones of the main causes of metabolic disorders. Journal of Diabetes Research. 2015;2015:970375. https://doi.org/10.1155/2015/970375
  5. Lightbourne M, Brown RJ. Genetics of Lipodystrophy. Endocrinology and Metabolism Clinics of North America. 2017;46(2):539-554. https://doi.org/10.1016/j.ecl.2017.01.012
  6. Blüher M. Metabolically Healthy Obesity. Endocrine Reviews. 2020;41(3): 405-420. https://doi.org/10.1210/endrev/bnaa004
  7. Skat-Rørdam J, Højland Ipsen D, Lykkesfeldt J, et. al. A role of peroxisome proliferator-activated receptor γ in non-alcoholic fatty liver disease. Basic and Clinical Pharmacology and Toxicology. 2019;124(5):528-537. https://doi.org/10.1111/bcpt.13190
  8. Engin AB. What Is Lipotoxicity? Advances in Experimental Medicine and Biology. 2017;960:197-220. https://doi.org/10.1007/978-3-319-48382-5_8
  9. Mittal B. Subcutaneous adipose tissue & visceral adipose tissue. The Indian Journal of Medical Research. 2019;149(5):571-573. https://doi.org/10.4103/ijmr.IJMR_1910_18
  10. Mancuso P, Bouchard B. The Impact of Aging on Adipose Function and Adipokine Synthesis. Frontiers in Endocrinology. 2019;10:137. https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00137
  11. Booth A, Magnuson A, Fouts J, et. al. Adipose tissue: an endocrine organ playing a role in metabolic regulation. Hormone Molecular Biology and Clinical Investigation. 2016;26(1):25-42. https://doi.org/10.1515/hmbci-2015-0073
  12. Muir LA, Neeley CK, Meyer KA, et. al. Adipose tissue fibrosis, hypertrophy, and hyperplasia: Correlations with diabetes in human obesity. Obesity (Silver Spring). 2016;24(3):597-605. https://doi.org/10.1002/oby.21377
  13. Strieder-Barboza C, Baker NA, Flesher CG, et. al. Depot-specific adipocyte-extracellular matrix metabolic crosstalk in murine obesity. Adipocyte. 2020;9(1):189-196. https://doi.org/10.1080/21623945.2020.1749500
  14. Stefan N. Causes, consequences, and treatment of metabolically unhealthy fat distribution. Lancet. Diabetes and Endocrinology. 2020;8(7):616-627. https://doi.org/10.1016/S2213-8587(20)30110-8
  15. Vishvanath L, Gupta RK. Contribution of adipogenesis to healthy adipose tissue expansion in obesity. Journal of Clinical Investigation. 2019;129(10): 4022-4031. https://doi.org/10.1172/JCI129191
  16. Chang E, Varghese M, Singer K. Gender and Sex Differences in Adipose Tissue. Current Diabetes Reports. 2018;18(9):69. https://doi.org/10.1007/s11892-018-1031-3
  17. Wu Y, Lee MJ, Ido Y, et. al. High-fat diet-induced obesity regulates MMP3 to modulate depot- and sex-dependent adipose expansion in C57BL/6J mice. American Journal of Physiology. Endocrinology and Metabolism. 2017;312(1): E58-E71. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00128.2016
  18. Andersson DP, Arner E, Hogling DE, et. al. Abdominal subcutaneous adipose tissue cellularity in men and women. International Journal of Obesity. 2017;41(10):1564-1569. https://doi.org/10.1038/ijo.2017.148
  19. Frank AP, de Souza Santos R, Palmer BF, et. al. Determinants of body fat distribution in humans may provide insight about obesity-related health risks. Journal of Lipid Research. (2018) 10:jlr.R086975. https://doi.org/10.1194/jlr.R086975
  20. Kempegowda P, Melson E, Manolopoulos KN, et. al. Implicating androgen excess in propagating metabolic disease in polycystic ovary syndrome. Therapeutic Advances in Endocrinology and Metabolism. 2020;11:2042018820934319. https://doi.org/10.1177/2042018820934319
  21. Hersoug LG, Møller P, Loft S. Role of microbiota-derived lipopolysaccharide in adipose tissue inflammation, adipocyte size and pyroptosis during obesity. Nutrition Research Reviews. 2018;31(2):153-163. https://doi.org/10.1017/S0954422417000269
  22. Konige M, Wang H, Sztalryd C. Role of adipose specific lipid droplet proteins in maintaining whole body energy homeostasis. Biochimica et Biophysica Acta. 2014;1842(3):393-401. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2013.05.007
  23. Thiam AR, Dugail I. Lipid droplet-membrane contact sites — from protein binding to function. Journal of Cell Science. 2019;132(12):jcs230169. https://doi.org/10.1242/jcs.230169
  24. Sztalryd C, Brasaemle DL. The perilipin family of lipid droplet proteins: Gatekeepers of intracellular lipolysis. Biochimica et Biophysica Acta. Molecular and Cell Biology of Lipids. 2017;1862(10 Pt B):1221-1232. https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2017.07.009
  25. Hansen JS, de Maré S, Jones HA, et. al. Visualization of lipid directed dynamics of perilipin 1 in human primary adipocytes. Scientific Reports. 2017; 7(1):15011. https://doi.org/10.1038/s41598-017-15059-4
  26. Najt CP, Lwande JS, McIntosh AL, Senthivinayagam S, et. al. Structural and functional assessment of perilipin 2 lipid binding domain(s). Biochemistry. 2014;53(45):7051-7066. https://doi.org/10.1021/bi500918m
  27. Laurens C, Bourlier V, Mairal A, et. al. Perilipin 5 fine-tunes lipid oxidation to metabolic demand and protects against lipotoxicity in skeletal muscle. Scientific Reports. 2016;6:38310. https://doi.org/10.1038/srep38310
  28. Demine S, Tejerina S, Bihin B, Thiry M, et. al. Mild mitochondrial uncoupling induces HSL/ATGL-independent lipolysis relying on a form of autophagy in 3T3-L1 adipocytes. Journal of Cellular Physiology. 2018;233(2): 1247-1265. https://doi.org/10.1002/jcp.25994
  29. Mullins GR, Wang L, Raje V, Sherwood SG, et. al. Catecholamine-induced lipolysis causes mTOR complex dissociation and inhibits glucose uptake in adipocytes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2014;111(49):17450-17455. https://doi.org/10.1073/pnas.1410530111
  30. Mota M, Banini BA, Cazanave SC, Sanyal AJ. Molecular mechanisms of lipotoxicity and glucotoxicity in nonalcoholic fatty liver disease. Metabolism. 2016;65(8):1049-1061. https://doi.org/10.1016/j.metabol.2016.02.014
  31. Ferraù F, Korbonits M. Metabolic Syndrome in Cushing’s Syndrome Patients. Frontiers of Hormone Research. 2018;49:85-103. https://doi.org/10.1159/000486002
  32. Chen FJ, Yin Y, Chua BT, et. al. CIDE family proteins control lipid homeostasis and the development of metabolic diseases. Traffic. 2020;21(1):94-105. https://doi.org/10.1111/tra.12717
  33. Gao G, Chen FJ, Zhou L, et. al. Control of lipid droplet fusion and growth by CIDE family proteins. Biochimica et Biophysica Acta. Molecular and Cell Biology of Lipids. 2017;1862(10 Pt B):1197-1204. https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2017.06.009
  34. Nishimoto Y, Tamori Y. CIDE Family-Mediated Unique Lipid Droplet Morphology in White Adipose Tissue and Brown Adipose Tissue Determines the Adipocyte Energy Metabolism. Journal of Atherosclerosis and Thrombosis. 2017;24(10):989-998. https://doi.org/10.5551/jat.RV17011
  35. Karki S. FSP27 and Links to Obesity and Diabetes. Current Obesity Reports. 2019;8(3):255-261. https://doi.org/10.1007/s13679-019-00343-3
  36. Haddad D, Al Madhoun A, Nizam R, et. al. Role of Caveolin-1 in Diabetes and Its Complications. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2020;2020:9761539. https://doi.org/10.1155/2020/9761539
  37. Zhou SR, Guo L, Wang X, et. al. Acetylation of Cavin-1 Promotes Lipolysis in White Adipose Tissue. Molecular and Cellular Biology. 2017;37(16): e00058-17. https://doi.org/10.1128/MCB.00058-17
  38. Huang ZH, Reardon CA, Getz GS, et. al. Selective suppression of adipose tissue apoE expression impacts systemic metabolic phenotype and adipose tissue inflammation. Journal of Lipid Research. 2015;56(2):215-226. https://doi.org/10.1194/jlr.M050567
  39. Dong XC. PNPLA3-A Potential Therapeutic Target for Personalized Treatment of Chronic Liver Disease. Frontiers in Medicine. 2019;6:304. https://doi.org/10.3389/fmed.2019.00304
  40. Luna-Luna M, Medina-Urrutia A, Vargas-Alarcón G, et. al. Adipose Tissue in Metabolic Syndrome: Onset and Progression of Atherosclerosis. Archives of Medical Research. 2015;46(5):392-407. https://doi.org/10.1016/j.arcmed.2015.05.007
  41. Zhang T, Chen J, Tang X, et. al. Interaction between adipocytes and high-density lipoprotein:new insights into the mechanism of obesity-induced dyslipidemia and atherosclerosis. Lipids in Health and Disease. 2019;18(1):223. https://doi.org/10.1186/s12944-019-1170-9
  42. van Dam AD, Boon MR, Berbée JFP, et. al. Targeting white, brown and perivascular adipose tissue in atherosclerosis development. European Journal of Pharmacology. 2017;816:82-92. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2017.03.051
  43. Iqbal F, Baker WS, Khan MI, et. al. Current and future therapies for addressing the effects of inflammation on HDL cholesterol metabolism. British Journal of Pharmacology. 2017;174(22):3986-4006. https://doi.org/10.1111/bph.13743
  44. Maguire EM, Pearce SWA, Xiao Q. Foam cell formation: A new target for fighting atherosclerosis and cardiovascular disease. Vascular Pharmacology. 2019;112:54-71. https://doi.org/10.1016/j.vph.2018.08.002
  45. Goo YH, Son SH, Kreienberg PB, Paul A. Novel lipid droplet-associated serine hydrolase regulates macrophage cholesterol mobilization. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 2014;34(2):386-396. https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.113.302448
  46. Paul A, Chang BH, Li L, Yechoor VK, et. al. Deficiency of adipose differentiation-related protein impairs foam cell formation and protects against atherosclerosis. Circulation Research. 2008;102(12):1492-1501. https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.107.168070
  47. Younossi ZM, Marchesini G, Pinto-Cortez H, et. al. Epidemiology of Nonalcoholic Fatty Liver Disease and Nonalcoholic Steatohepatitis: Implications for Liver Transplantation. Transplantation. 2019;103(1):22-27. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000002484
  48. Mitra S, De A, Chowdhury A. Epidemiology of non-alcoholic and alcoholic fatty liver diseases. Translational Gastroenterology and Hepatology. 2020;5:16. https://doi.org/10.21037/tgh.2019.09.08
  49. Liu Z, Chen T, Lu X, et. al. Overexpression of variant PNPLA3 gene at I148M position causes malignant transformation of hepatocytes via IL-6-JAK2/STAT3 pathway in low dose free fatty acid exposure: a laboratory investigation in vitro and in vivo. American Journal of Translational Research. 2016;8(3):1319-1338.
  50. Hayward GC, Fenech RK, Yang AJ, et. al. The role of PLIN protein in healthy lipid storage and lipid droplet expansion. Journal of Physiology. 2017;595(24):7273-7274. https://doi.org/10.1113/JP275346
  51. Orlicky DJ, Libby AE, Bales ES, et. al. Perilipin-2 promotes obesity and progressive fatty liver disease in mice through mechanistically distinct hepatocyte and extra-hepatocyte actions. Journal of Physiology. 2019;597(6): 1565-1584. https://doi.org/10.1113/JP277140
  52. Bhatt-Wessel B, Jordan TW, Miller JH, et. al. Role of DGAT enzymes in triacylglycerol metabolism. Archives of Biochemistry and Biophysics. 2018;655:1-11. https://doi.org/10.1016/j.abb.2018.08.001
  53. Zhang X, Wang Y, Liu P. Omic studies reveal the pathogenic lipid droplet proteins in non-alcoholic fatty liver disease. Protein and Cell. 2017;8(1):4-13. https://doi.org/10.1007/s13238-016-0327-9
  54. Kintscher U, Foryst-Ludwig A, Haemmerle G, et. al. The Role of Adipose Triglyceride Lipase and Cytosolic Lipolysis in Cardiac Function and Heart Failure. Cell Reports. Medicine. 2020;1(1):100001. https://doi.org/10.1016/j.xcrm.2020.100001
  55. Zheng P, Xie Z, Yuan Y, et. al. Plin5 alleviates myocardial ischaemia/reperfusion injury by reducing oxidative stress through inhibiting the lipolysis of lipid droplets. Scientific Reports. 2017;7:42574. https://doi.org/10.1038/srep42574
  56. Varghese M, Kimler VA, Ghazi FR et al. Adipocyte lipolysis affects Perilipin 5 and cristae organization at the cardiac lipid droplet-mitochondrial interface. Scientific Reports. 2019;9(1):4734. https://doi.org/10.1038/s41598-019-41329-4
  57. Aslamy A, Thurmond DC. Exocytosis proteins as novel targets for diabetes prevention and/or remediation? American Journal of Physiology. Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 2017;312(5):R739-R752. https://doi.org/10.1152/ajpregu.00002.2017
  58. Ferdaoussi M, MacDonald PE. Toward Connecting Metabolism to the Exocytotic Site. Trends in Cell Biology. 2017;27(3):163-171. https://doi.org/10.1016/j.tcb.2016.10.003
slide-cover
slide-cover
slide-cover
slide-cover

Рекомендуем статьи по данной теме:

Дерматоскопические и патогистологические особенности дерматофибром.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):685-694

Высокая безопасность филлеров на основе агарозы. Собственное наблюдение.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):676-684

Коррекция признаков старения кожи лица с помощью экзосом.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):668-674

Антибактериальная резистентность в дерматологии: современный взгляд на проблему и место амоксициллина и клавулановой кислоты в лечении бактериальных инфекций кожи.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):660-667

Дерматозы как ятрогенное осложнение инвазивных аппаратных процедур.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):652-658

Эволюция эмолентов и активных компонентов в дерматологии.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):641-650

Лекарственно-индуцированная саркоидоподобная реакция на фоне терапии ингибиторами BRAF/MEK метастатической меланомы.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):632-640

Мазь такролимуса: селективный T-клеточный иммуносупрессант в дерматологии.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):619-630

Клинический случай лечения препаратом нетакимаб пациента с псориазом среднетяжелой степени тяжести, ассоциированным с метаболическим синдромом.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):613-618

Современные подходы к терапии NCMT-инфекций, передаваемых половым путем (N. gonorrhoeae, C. trachomatis, M. genitalium, T. vaginalis). Часть II. M. genitalium.Клиническая дерматология и венерология. 2026;25(4):603-612

Издательство «Медиа Сфера»
РекламаДоставка/ОплатаО насКонтактыОбучение для редакцийПолитика конфиденциальностиПолитика обработки персональных данныхПубличная оферта на реализацию издательской продукции
ЖурналыПодпискаАрхивКнигиПроекты
  • RuStore

© 1998-2026

  • Телефоны издательства:

  • +7 (495) 482-41-18
  • +7 (495) 482-43-29
  • Прямой телефон отдела подписки
    (только по вопросам заказов и доставки журналов)

  • +7 (800) 250-18-12
  • пн-пт с 10:00 до 18:00

  • Telegram
  • VK
info@mediasphera.ru
  • Почтовый адрес:

  • Издательство «Медиа Сфера»,
    а/я 54, Москва, Россия, 127238

  • RuStore

© 1998-2026