Лебедева О.П.

ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет» Минобрнауки России;
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет инженерных технологий» Минобрнауки России

Навроцкая Д.

ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет» Минобрнауки России

Взаимосвязь микробиомов мочевыводящих и половых путей у женщин репродуктивного возраста

Авторы:

Лебедева О.П., Навроцкая Д.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2022;28(6): 175‑182

Прочитано: 2669 раз


Как цитировать:

Лебедева О.П., Навроцкая Д. Взаимосвязь микробиомов мочевыводящих и половых путей у женщин репродуктивного возраста. Проблемы репродукции. 2022;28(6):175‑182.
Lebedeva OP, Navrotska D. Interrelations of urinary and genital tract microbiomes in reproductive age women. Russian Journal of Human Reproduction. 2022;28(6):175‑182. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro202228061175

Рекомендуем статьи по данной теме:
Фак­то­ры под­дер­жа­ния хро­ни­чес­ко­го вос­па­ле­ния при пси­хи­чес­ких за­бо­ле­ва­ни­ях. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(8):7-15

Введение

Инфекции мочевыводящих путей (ИМП) играют важную роль в патогенезе акушерских осложнений [1, 2]. Они являются доказанным фактором риска преэклампсии [3—5], преждевременных родов [6], синдрома задержки роста плода [7—9], анемии [10], а также хориоамнионита [11].

Большинство опубликованных работ посвящены особенностям диагностики ИМП с помощью культуральных методов исследования. Однако с появлением некультуральных методов, таких как количественная полимеразная цепная реакция и метод высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК, представления о микробиоме мочевыводящих путей были расширены.

Ранее считалось, что мочевыводящие пути в норме являются стерильными, поэтому их исследование в проекте «Микробиом человека» не проводилось [12]. Однако с помощью высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК установлено, что в норме мочевыделительную систему колонизируют микроорганизмы, которые в большинстве случаев нельзя выделить стандартными культуральными методами из-за их медленного роста и необходимости создания анаэробных условий [13]. Некультуральными методами также выявлена взаимосвязь между микроорганизмами, колонизирующими мочевыводящие пути и нижние отделы женского генитального тракта. Понимание механизмов этого взаимного влияния необходимо для дальнейшего улучшения стратегий профилактики, диагностики и лечения акушерских и гинекологических осложнений.

Нами выполнен обзор литературы на основании публикаций в PubMed, Google Academy, EBSCO, eLibrary, ResearchGate за последние 20 лет, посвященных взаимосвязи микробиомов мочевыводящих путей и генитального тракта у пациенток репродуктивного возраста. Поиск проводили с использованием ключевых слов: «микробиом мочевыводящих путей», «микробиом мочевого пузыря», «микробиом женского репродуктивного тракта», «микробиом влагалища», «взаимосвязь», «женщины репродуктивного возраста», «urinary tract microbiome», «urinary bladder microbiome», «female reproductive tract microbiome», «vaginal microbiome», «interrelations», «correlations», «reproductive age women» и их сочетаний.

Нормальный микробиом мочевыводящих путей

Термин «микробиота» означает совокупность микроорганизмов, которые обитают в определенной биологической нише [14]. К ним относятся бактерии, археи, грибы, вирусы и простейшие. Термином «микробиом» принято обозначать совокупность генов вышеуказанных микроорганизмов в данной биологической нише [15]. Для исследований метагенома, включающего гены всех вышеуказанных микроорганизмов, применяют некультуральный метод полногеномного секвенирования с использованием случайного фрагментирования (shotgun sequencing). Для исследований совокупности всех видов бактерий, населяющих данную биологическую нишу, также используют некультуральный метод высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК [16].

Как правило, под термином «микробиом мочевыводящих путей» подразумевают микробиом мочевого пузыря [17]. Определены особенности получения образцов для дальнейшего исследования микробиома мочевыводящих путей. Доказано, что у женщин средняя порция мочи, полученная при мочеиспускании, содержит также микроорганизмы, попавшие в нее с наружных половых органов и из влагалища [13]. Поэтому этот способ не рекомендуется использовать для изучения микробиома мочевыводящих путей. Для сбора материала можно использовать трансуретральный катетер или надлобковую пункцию мочевого пузыря после обработки кожи антисептическими растворами [16], однако последний метод является инвазивным и болезненным. Кроме того, доказано, что образцы, полученные с помощью катетера и надлобковой пункции, не имеют статистически значимых различий [13], что делает катетеризацию мочевого пузыря наиболее предпочтительным методом для получения образцов. Показано, что микробиом мочи, полученной при катетеризации мочевого пузыря, имеет ряд различий с микробиомом, полученным при биопсии стенки мочевого пузыря, так как ряд микроорганизмов персистируют не в просвете мочевого пузыря, а в его эпителии [18]. В целом микробиом женских мочевыводящих путей отличается меньшим разнообразием по сравнению с микробиомами других локализаций, а количество выявляемых там бактерий невелико и не превышает суммарно 104—105 КОЕ/мл [19].

В норме в микробиоме мочевыводящих путей у женщин преобладают Lactobacillus spp. [19, 20]. Снижение количества лактобактерий приводит к увеличению числа условно-патогенных микроорганизмов [21]. Однако, как и в микробиоме влагалища, различные виды лактобактерий обладают разными свойствами. L. crispatus выявляется преимущественно у здоровых пациенток, в то время как наличие L. gasseri ассоциировано с наличием императивного недержания мочи [19]. На втором месте по частоте выявления находится Gadnerella spp., особенно Gardnerella vaginalis [19].

C. Gottschick и соавт. (2017) предложили классификацию микробиома мочевыводящих путей, разделив его на восемь уротипов (UTs) в зависимости от преобладающих микроорганизмов (рис. 1) [22]. При этом микробиом, в котором доминирует L. crispatus, выявлен только у здоровых женщин.

Рис. 1. Микробиом женских мочевыводящих путей.

* — данный тип микробиома отсутствует у здоровых женщин (без бактериального вагиноза).

Нормальный микробиом влагалища

Исследования влагалищного микробиома с помощью высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК позволили выявить ряд микроорганизмов (Sneathia, Dialister, Atopobium, Megasphaera), которые ранее не были известны как представители микрофлоры женских половых путей [23]. Установлено, что они могут стать причиной целого ряда акушерских и гинекологических осложнений [24, 25].

Согласно классификации VALENCIA (VAginaL community state typE Nearest CentroId clAssifier), предложенной в 2020 г., можно выделить пять типов микробиома влагалища (community state types — CSTs) на основании преобладающих в них микроорганизмов (рис. 2): CST I (с преобладанием Lactobacillus crispatus), CST II (с преобладанием Lactobacillus gasseri), CST III (с преобладанием Lactobacillus iners), CST V (с преобладанием Lactobacillus jensenii) и CST IV (с преобладанием облигатных и факультативных анаэробов и без преобладания лактобактерий) [26—28]. В свою очередь, CST I и CST III разделяются на подтипы A и B (с более высоким и более низким количеством преобладающего вида лактобактерий).

Рис. 2. Микробиом влагалища у женщин репродуктивного возраста.

Известно, что CST III, который отличается преобладанием L. iners, ассоциирован с высоким риском заражения половыми инфекциями [29, 30], а также с развитием осложнений беременности [30, 31].

Тип влагалищного микробиома CST IV разделяется на три подтипа: CST IV-A (с высоким содержанием Candidatus Lachnocurva vaginae (BVAB1) и с умеренным содержанием G. vaginalis и A. vaginae), CST IV-B (с высоким содержанием G. vaginalis, низким содержанием Ca. L. vaginae и умеренным содержанием A. vaginae) и CST IV-C (с низким содержанием Ca. L. vaginae, G. vaginalis, A. vaginae и Lactobacillus spp., но с преобладанием других факультативных и облигатных анаэробов) [28]. CST IV-C разделяют на пять групп: CST IV-C0 (с умеренным содержанием Prevotella), CST IV-C1 (с преобладанием Streptococcus), CST IV-C2 (с преобладанием Enterococcus), CST IV-C3 (с преобладанием Bifidobacterium) и CST IV-C4 (с преобладанием Staphylococcus). Указанное разделение CST IV на подтипы понадобилось, чтобы выделить типы вагинальных сообществ, ассоциированных с бактериальным вагинозом (CST IV-A и CST IV-B) и не связанных с ним (CST IV-C). У женщин репродуктивного возраста основными подтипами CST IV-C являются вагинальные сообщества с преобладанием стрептококков (CST IV-C1) и бифидобактерий (CST IV-C3) [28]. Пациентки с CST IV имеют больший риск заражения инфекциями, передающимися половым путем [32], и ВИЧ [33,34], а также бесплодия, неудач имплантации при ЭКО [35], невынашивания, преждевременных родов и внутриутробного инфицирования [36].

Таким образом, наиболее благоприятными типами микробиома можно считать те, в которых преобладают Lactobacillus spp. [37]. Лактобактерии способны выделять молочную кислоту и перекись водорода [38], обладающие бактерицидным действием, конкурируют с патогенами за адгезию к влагалищным эпителиальным клеткам [39], способствуют выработке секреторного иммуноглобулина А, лизоцима, белков системы комплемента [39—42]. Микроорганизмы, входящие в состав различных типов микробиома, способны регулировать интенсивность иммунного ответа, связываясь с сигнальными рецепторами системы врожденного иммунитета (Толл-подобными, NOD-подобными и другими типами рецепторов) [43—46].

Взаимосвязь между микробиомами мочевыводящих путей и влагалища

Существует целый ряд работ, в которых с помощью культуральных методов выявлена взаимосвязь между микробиотой мочевыводящих и половых путей, что можно объяснить анатомической близостью данных образований [47].

Так, Ю.Л. Набока и соавт. (2019) выявили прямую взаимосвязь между 15 таксонами микроорганизмов в мочевом пузыри и влагалище, причем преимущественно между представителями факультативно-анаэробной микрофлоры [48].

Культуральными методами также установлено, что влагалище может являться резервуаром для E. coli, что в дальнейшем приводит к развитию ИМП [49, 50]. Экспериментально доказано, что кишечная палочка может персистировать не только на поверхности влагалищного эпителия, но и внутриклеточно, в дальнейшем способствуя развитию восходящей инфекции мочевывыводящих путей [48]. При этом риск персистенции E. coli во влагалище был выше у пациенток со сниженным количеством лактобактерий [49] и признаками бактериального вагиноза [51, 52]. Это объясняется тем, что даже in vitro лактобактерии способны ингибировать рост E. coli за счет снижения pH [53]. Наибольшей способностью ингибировать рост кишечной палочки среди всех вагинальных лактобактерий обладает L. crispatus, в то время как у L. iners такая способность отсутствует [54].

Staphylococcus aureus, S. epidermidis и S. saprophyticus также могут быть причинами ИМП [55, 56]. Золотистый и эпидермальный стафилококки могут персистировать и в генитальном тракте, при этом персистенция S. aureus способствует персистенции кишечной палочки в женских половых путях [57].

Стрептококк группы B (Streptococcus agalactiae) может персистировать во влагалище, а также быть причиной ИМП [49]. Доказана взаимосвязь между его персистенцией в половых путях и развитием гестационного пиелонефрита [58].

Культуральными методами установлено, что одной из недооцененных в патогенезе ИМП бактерий является G. vaginalis. Доказано, что она может быть причиной недержания мочи, уролитиаза и пиелонефрита [47]. В экспериментах на мышах показано, что персистенция G. vaginalis в мочевом пузыре приводит к активации E. coli за счет усиления апоптоза эпителиоцитов мочевыводящих путей [59]. G. vaginalis может также влиять на местную иммунореактивность мочевыводящих путей [60]. Однако взаимосвязь между наличием G. vaginalis во влагалище и мочевом пузыре лучше всего продемонстрирована некультуральными методами.

В нескольких исследованиях сравнение микробиома мочевого пузыря и влагалищного микробиома проводилось методом высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК. В исследовании S.E. Brown и соавт. (2021) проведено сравнение микробиомов влагалища и мочевыводящих путей, включавшее определение ДНК бактерий в первой порции мочи, полученной без обработки наружных половых органов антисептиками (random-catch urine), и средней порции мочи, полученной после обработки наружных половых органов антисептиками (clean-catch urine) [61]. Тип влагалищного микробиома (CST) был аналогичен микробиому в образцах первой порции мочи у 89% пациенток и микробиому в средней порции мочи у 86,9% пациенток репродуктивного возраста и у 76,9% женщин в пременопаузе. Женщины, у которых наблюдались расхождения между типом микробиома влагалища и типом микробиома, полученного при свободном мочеиспускании, как правило, имели тип микробиома CST III или CST IV. Однако ограничением данного исследования можно считать тот факт, что при свободном мочеиспускании происходит контаминация мочи микроорганизмами из влагалища, что отмечают и сами авторы.

C. Gottschick и соавт. (2017) выявили, что достоверная сильная корреляционная связь наблюдается между микробиомами мочевыводящих путей и влагалища только у пациенток с уротипом UT 1, в котором преобладают анаэробные микроорганизмы, характерные для бактериального вагиноза [22]. После лечения метронидазолом и элиминации данных возбудителей корреляционная связь между данными микробиомами перестает быть статистически значимой. Интересно, что лечение метронидазолом приводило к увеличению содержания L. iners и в моче, и во влагалищной слизи до величин, которые превышают их содержание у здоровых пациенток. В то же время после лечения метронидазолом ни у одной пациентки не выявлены L. crispatus, доминирующие у здоровых пациенток (UT 7). Авторы установили, что существует ряд бактерий, которые выявлялись преимущественно в моче: E. faecalis, E. coli, Chitiniphagaceae, S. sonnei, S. agalactiae, Citrobacter murliniae и Propionibacterium propionicus. Эти микроорганизмы, за исключением Chitinophagaceae, обнаружены как у здоровых пациенток, так и у женщин с бактериальным вагинозом, а лечение метронидазолом не оказывало существенного влияния на их количество. Авторы делают вывод, что микробиом мочевыводящих путей и микробиом влагалища представляют собой разные ниши, в которых представлены отличающиеся друг от друга совокупности микроорганизмов. Исключение составляют пациентки с UT 1, у которых и в моче, и во влагалищной слизи преобладают анаэробные бактерии, характерные для бактериального вагиноза. Однако следует отметить, что ограничением в данном исследовании было то, что группа пациенток без бактериального вагиноза включала в себя женщин от 19 до 62 лет, а с бактериальным вагинозом — от 18 до 51 года. Таким образом, в состав обеих групп входили пациентки как репродуктивного возраста, так и в пременопаузе, а в группе здоровых женщин некоторые пациентки находились в постменопаузе. Вероятно, именно из-за неоднородности группы здоровых пациенток (без бактериального вагиноза) исследователи не выявили у них статистически значимых взаимосвязей микробиомов влагалища и мочевого пузыря. В качестве образцов в данном исследовании использовали среднюю порцию мочи, а не мочу, полученную катетером.

K. Thomas-White и соавт. (2018) методом высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК исследовали микробиом мочевыводящих путей 38 здоровых пациенток и 39 пациенток с симптомами ИМП, а затем сравнили полученные данные с результатами исследований влагалищного микробиома здоровых женщин (67 образцов), размещенных в базах данных [62]. Они обнаружили, что 23 вида бактерий выявляются как в мочевыводящих путях, так и в женском репродуктивном тракте. Четыре вида микроорганизмов (Actinomyces neuii, L. crispatus, L. jensenii и L. gasseri) были общими представителями нормального микробиома здоровых женщин в мочевом пузыре и во влагалище. В своей работе исследователи также установили, что у одних и тех же пациенток во влагалище и мочевом пузыре выявляются те же штаммы не только таких уропатогенов, как E. coli и Streptococcus anginosus, но, и представителей нормальной микрофлоры — L. crispatus и L. iners. Это может свидетельствовать о том, что одни и те же представители нормальной микрофлоры выполняют функции защиты мочевыводящих путей и женского полового тракта. У пациенток с симптомами ИМП статистически значимо чаще выявлялись P. aeruginosa, Bacillus infantis, E. cloacae, E. coli, Gardnerella terrae, K. pneumoniae, Bacillus idriensis. При этом E. cloacae, P. aeruginosa, K. pneumoniae обнаруживались только у пациенток с ИМП и отсутствовали у здоровых женщин. Авторы также сравнили результаты культурального исследования мочи по протоколу EQUC [63] и результаты, полученные методом высокопроизводительного секвенирования, и установили, что сходство видов выявляемых бактерий составляет 72%. Культуральными методами не выявлялись анаэробные микроорганизмы классов Actinobacteria, Firmicutes и Bacteroidetes. В данном исследовании авторы также включали в исследуемые группы пациенток от 27 до 91 года. Таким образом, они обследовали пациенток как репродуктивного возраста, так и в пременопаузе и постменопаузе, не разделяя их на группы. Образцы мочи для исследования получали при помощи трансуретрального катетера.

Y.M. Komesu и соавт. (2020) в исследовании, включающем анализ микробиомов мочевого пузыря и влагалища у 212 пациенток, установили, что девять родов микроорганизмов (Lactobacillus, Gardnerella, Sneathia, Shuttleworthia, Veillonella, Streptococcus, Prevotella, Escherichia, Ureaplasma) выявлялись одновременно и во влагалище, и в мочевом пузыре [64]. Среди них наибольших коэффициент корреляции был выявлен между обнаружением в мочевыводящих и половых путях микроорганизмов родов Gardnerella, Prevotella, Ureaplasma и Lactobacillus. Однако в данном исследовании были следующие ограничения: исследователи объединили в одну группу образцы не только здоровых женщин, но и женщин с воспалительными заболеваниями мочевыводящих путей, при этом исследование включало как женщин репродуктивного возраста, так и пациенток в пременопаузе и постменопаузе, большинство пациенток имели избыточную массу тела или ожирение. Для исследования использовали образцы, полученные при катетеризации мочевого пузыря.

Заключение

Исследования взаимосвязи микробиомов мочевыводящих и половых путей в настоящее время продолжаются. Ранее культуральными методами выявлена взаимосвязь между бактериальной микрофлорой влагалища и мочевого пузыря. Однако результаты единичных некультуральных исследований взаимосвязи микробиомов влагалища и мочевыводящих путей методом высокопроизводительного секвенирования 16S рРНК, позволяющих оценить также и особенности анаэробной микрофлоры у пациенток репродуктивного возраста, являются противоречивыми.

В большинстве работ в исследуемые группы объединены пациентки как в репродуктивном возрасте, так и в пременопаузе и постменопаузе. В ряде работ здоровые пациентки не отделены от пациенток с симптомами ИМП. В единственном исследовании, включающем в себя только здоровых пациенток репродуктивного возраста, для исследования использовали мочу, полученную при свободном мочеиспускании, а не методом катетеризации мочевого пузыря. Все это диктует необходимость дальнейших исследований взаимосвязи микробиомов мочевыводящих путей и генитального тракта у пациенток репродуктивного возраста, что позволит в дальнейшем использовать эти данные с целью коррекции выявленных нарушений, а в долгосрочной перспективе — для улучшения репродуктивных исходов.

Источник финансирования. Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда №22-24-00802.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Kalinderi K, Delkos D, Kalinderis M, Athanasiadis A, Kalogiannidis I. Urinary tract infection during pregnancy: current concepts on a common multifaceted problem. Journal of Obstetrics and Gynaecology. 2018;38(4):448-453.  https://doi.org/10.1080/01443615.2017.1370579
  2. Климкин А., Фрейдин А., Петров С., Хурасева А. Хронический пиелонефрит беременных. Врач. 2017;1:22-24. 
  3. Izadi B, Rostami-Far Z, Jalilian N, Khazaei S, Amiri A, Madani SH, Rostami-Far M. Urinary tract infection (UTI) as a risk factor of severe preeclampsia. Global Journal of Health Science. 2016;8(11):54364. https://doi.org/10.5539/gjhs.v8n11p77
  4. Bilano VL, Ota E, Ganchimeg T, Mori R, Souza JP. Risk factors of pre-eclampsia/eclampsia and its adverse outcomes in low- and middle-income countries: A WHO secondary analysis. PLoS One. 2014; 9(3):e91198. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0091198
  5. Zahedkalaei AT, Kazemi M, Zolfaghari P, Rashidan M, Sohrabi MB. Association between Urinary Tract Infection in the First Trimester and Risk of Preeclampsia: A Case-Control Study. International Journal of Women’s Health. 2020;12:521-526.  https://doi.org/10.2147/IJWH.S256943
  6. Vogel JP, Lee ACC, Souza JP. Maternal morbidity and preterm birth in 22 low- and middle-income countries: A secondary analysis of the WHO Global Survey dataset. BMC Pregnancy Childbirth. 2014;14:56.  https://doi.org/10.1186/1471-2393-14-56
  7. Kessous R, Weintraub AY, Sergienko R, Lazer T, Press F, Wiznitzer A, Sheiner E. Bacteruria with group-B streptococcus: is it a risk factor for adverse pregnancy outcomes? Journal of Maternal-Fetal and Neonatal Medicine. 2012;25(10):1983-1986. https://doi.org/10.3109/14767058.2012.671872
  8. Jain V, Das V, Agarwal A, Pandey A. Asymptomatic bacteriuria and obstetric outcome following treatment in early versus late pregnancy in north Indian women. Indian Journal of Medical Research. 2013;137(4):753-758. 
  9. Hantush Zadeh S, Khosravi D, Shahbazi F, Kaviani Jebeli Z, Ahmadi F, Shirazi M. Idiopathic urinary findings and fetal growth restriction in low risk pregnancy. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 2013;171(1):57-60.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2013.08.037
  10. Рымашевский А.Н., Волков А.Е., Набока Ю.Л., Красникова Н.А., Маркина В.В. Анализ течения беременности, родов и перинатальных исходов у женщин, страдающих пиелонефритом. Медицинский вестник Юга России. 2011;2:86-90. 
  11. Anderson BL, Simhan HN, Simons KM, Wiesenfeld HC. Untreated asymptomatic group B streptococcal bacteriuria early in pregnancy and chorioamnionitis at delivery. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2007;196(6):524.e1-524.e5.  https://doi.org/10.1016/j.ajog.2007.01.006
  12. Huttenhower C, Gevers D, Knight R; Human Microbiome Project Consortium. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome. Nature. 2012;486(7402):207-214.  https://doi.org/10.1038/nature11234
  13. Wolfe AJ, Toh E, Shibata N, Evidence of uncultivated bacteria in the adult female bladder. Journal of Clinical Microbiology. 2012; 50(4):1376-1383. https://doi.org/10.1128/JCM.05852-11
  14. Banerjee S, Robertson ES. Future Perspectives: Microbiome, Cancer and Therapeutic Promise. In: Robertson ES, ed. Microbiome and Cancer. Current Cancer Research. Springer International Publishing; 2019:363-389.  https://doi.org/10.1007/978-3-030-04155-7_17
  15. Cimadamore A, Santoni M, Massari F, Gasparrini S, Cheng L, Lopez-Beltran A, Montironi R, Scarpelli M. Microbiome and Cancers, With Focus on Genitourinary Tumors. Frontiers in Oncology. 2019;9:178.  https://doi.org/10.3389/fonc.2019.00178
  16. Perez-Carrasco V, Soriano-Lerma A, Soriano M, Gutiérrez-Fernández J, Garcia-Salcedo JA. Urinary Microbiome: Yin and Yang of the Urinary Tract. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2021;11:421.  https://doi.org/10.3389/fcimb.2021.617002
  17. Pohl HG, Groah SL, Pérez-Losada M, Ljungberg I, Sprague BM, Chandal N, Caldovic L, Hsieh M. The Urine Microbiome of Healthy Men and Women Differs by Urine Collection Method. International Neurourology Journal. 2020;24(1):41-51.  https://doi.org/10.5213/inj.1938244.122
  18. Mansour B, Monyók Á, Makra N, Gajdács M, Vadnay I, Ligeti B, Juhász J, Szabó D, Ostorházi E. Bladder cancer-related microbiota: examining differences in urine and tissue samples. Scientific Reports. 2020;10(1):11042. https://doi.org/10.1038/s41598-020-67443-2
  19. Pearce MM, Hilt EE, Rosenfeld AB, Zilliox MJ, Thomas-White K, Fok C, Kliethermes S, Schreckenberger PC, Brubaker L, Gai X, Wolfe AJ. The female urinary microbiome: A comparison of women with and without urgency urinary incontinence. mBio. 2014; 5(4):e01283-01214. https://doi.org/10.1128/mBio.01283-14
  20. Pearce MM, Hilt EE, Rosenfeld AB, Zilliox MJ, Thomas-White K, Fok C, Kliethermes S, Schreckenberger PC, Brubaker L, Gai X, Wolfe AJ. The Clinical Urine Culture: Enhanced Techniques Improve Detection of Clinically Relevant Microorganisms. Journal of Clinical Microbiology. 2016;54(5):1216-1222. https://doi.org/10.1128/JCM.00044-16
  21. Fouts DE, Pieper R, Szpakowski S, Pohl H, Knoblach S, Suh MJ, Huang ST, Ljungberg I, Sprague BM, Lucas SK, Torralba M, Nelson KE, Groah SL. Integrated next-generation sequencing of 16S rDNA and metaproteomics differentiate the healthy urine microbiome from asymptomatic bacteriuria in neuropathic bladder associated with spinal cord injury. Journal of Translational Medicine. 2012; 10(1):174.  https://doi.org/10.1186/1479-5876-10-174
  22. Gottschick C, Deng ZL, Vital M, Masur C, Abels C, Pieper DH, Wagner-Döbler I. The urinary microbiota of men and women and its changes in women during bacterial vaginosis and antibiotic treatment. Microbiome. 2017;5(1):99.  https://doi.org/10.1186/s40168-017-0305-3
  23. Martin DH, Marrazzo JM. The Vaginal Microbiome: Current Understanding and Future Directions. The Journal of Infectious Diseases. 2016;214(Suppl 1):36-41.  https://doi.org/10.1093/infdis/jiw184
  24. Theis KR, Florova V, Romero R, Borisov AB, Winters AD, Galaz J, Gomez-Lopez N. Sneathia: An emerging pathogen in female reproductive disease and adverse perinatal outcomes. Critical Reviews in Microbiology. 2021;47(4):517-542.  https://doi.org/10.1080/1040841X.2021.1905606
  25. So KA, Yang EJ, Kim NR, Hong SR, Lee JH, Hwang CS, Shim SH, Lee SJ, Kim TJ. Changes of vaginal microbiota during cervical carcinogenesis in women with human papillomavirus infection. PLoS One. 2020;15(9) e0238705. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0238705
  26. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, Schneider GM, Koenig SS, McCulle SL, Karlebach S, Gorle R, Russell J, Tacket CO, Brotman RM, Davis CC, Ault K, Peralta L, Forney LJ. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2011; 108(Suppl 1):4680-4687. https://doi.org/10.1073/pnas.1002611107
  27. Gajer P, Brotman RM, Bai G, Sakamoto J, Schütte UM, Zhong X, Koenig SS, Fu L, Ma ZS, Zhou X, Abdo Z, Forney LJ, Ravel J. Temporal dynamics of the human vaginal microbiota. Science Translational Medicine. 2012;4(132):132ra52. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3003605
  28. France MT, Ma B, Gajer P, Brown S, Humphrys MS, Holm JB, Waetjen LE, Brotman RM, Ravel J. VALENCIA: A nearest centroid classification method for vaginal microbial communities based on composition. Microbiome. 2020;8(1):166.  https://doi.org/10.1186/s40168-020-00934-6
  29. Van Houdt R, Ma B, Bruisten SM, Speksnijder AG, Ravel J, de Vries HJ. Lactobacillus iners-dominated vaginal microbiota is associated with increased susceptibility to Chlamydia trachomatis infection in Dutch women: A case-control study. Sexually Transmitted Infections. 2018; 94(2):117-123.  https://doi.org/10.1136/sextrans-2017-053133
  30. Zheng N, Guo R, Wang J, Zhou W, Ling Z. Contribution of Lactobacillus iners to Vaginal Health and Diseases: A Systematic Review. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2021;11. Accessed February 20, 2022. https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fcimb.2021.792787
  31. Mls J, Stráník J, Kacerovsk M. Lactobacillus iners-dominated vaginal microbiota in pregnancy. Česká Gynekologie. 2019;84(6): 463-467. 
  32. Aiyar A, Quayle AJ, Buckner LR, Sherchand SP, Chang TL, Zea AH, Martin DH, Belland RJ. Influence of the tryptophan-indole-IFNγ axis on human genital Chlamydia trachomatis infection: role of vaginal co-infections. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2014;4:72.  https://doi.org/10.3389/fcimb.2014.00072
  33. Anahtar MN, Byrne EH, Doherty KE, Bowman BA, Yamamoto HS, Soumillon M, Padavattan N, Ismail N, Moodley A, Sabatini ME, Ghebremichael MS, Nusbaum C, Huttenhower C, Virgin HW, Ndung’u T, Dong KL, Walker BD, Fichorova RN, Kwon DS. Cervicovaginal bacteria are a major modulator of host inflammatory responses in the female genital tract. Immunity. 2015;42(5):965-976.  https://doi.org/10.1016/j.immuni.2015.04.019
  34. Pyles RB, Vincent KL, Baum MM, Elsom B, Miller AL, Maxwell C, Eaves-Pyles TD, Li G, Popov VL, Nusbaum RJ, Ferguson MR. Cultivated vaginal microbiomes alter HIV-1 infection and antiretroviral efficacy in colonized epithelial multilayer cultures. PloS One. 2014;9(3):e93419. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0093419
  35. Moreno I, Codoñer FM, Vilella F, et al. Evidence that the endometrial microbiota has an effect on implantation success or failure. American Journal of Obstetrics and Gynaecology. 2016;215(6):684-703.  https://doi.org/10.1016/j.ajog.2016.09.075
  36. Moreno I, Simon C. Deciphering the effect of reproductive tract microbiota on human reproduction. Reproductive Medicine and Biology. 2019;18(1):40-50.  https://doi.org/10.1002/rmb2.12249
  37. Лебедева О.П., Грязнова М.В., Козаренко О.Н., Сыромятников М.Ю., Попов В.Н. Микробиом влагалища при нарушениях менструального цикла (обзор). Научные результаты биомедицинских исследований. 2021;7(4):433-450.  https://doi.org/10.18413/2658-6533-2021-7-4-0-9
  38. Кира Е.Ф., Молчанов О.Л., Семенова К.Е. Биологическая роль молочной кислоты в обеспечении стабильности микроэкосистемы влагалища. Акушерство и гинекология. 2014;12:31-36. 
  39. Maldonado-Barragán A, Caballero-Guerrero B, Martín V, Ruiz-Barba JL, Rodríguez JM. Purification and genetic characterization of gassericin E, a novel co-culture inducible bacteriocin from Lactobacillus gasseri EV1461 isolated from the vagina of a healthy woman. BMC Microbiology. 2016;16(1):37.  https://doi.org/10.1186/s12866-016-0663-1
  40. Селихова М.С., Солтыс П.А., Смольянинов А.А. Воспалительные заболевания органов малого таза: современные акценты проблемы: монография. Волгоград: Волгоградский государственный медицинский университет; 2020.
  41. Солтыс П.А., Селихова М.С. Микробиом репродуктивного тракта женщины и воспалительные заболевания органов малого таза. Якутский медицинский журнал. 2020;1(69):95-98.  https://doi.org/10.25789/YMJ.2020.69.23
  42. Кира Е.Ф., Прилепская В.Н, Костава М.Н, Гамирова Е.В, Довлетханова Э.Р., Душкина Е.А., Байрамова Г.Р., Трофимов Д.Ю., Донников А.Е. Современные подходы к выбору препарата локального действия в терапии бактериального вагиноза. Акушерство и гинекология. 2012;7:60-67. 
  43. Лебедева О.П., Кирко Р. Экспрессия толл-подобных рецепторов в женском репродуктивном тракте и ее гормональная регуляция (обзор). Научные результаты биомедицинских исследований. 2018;4(3):3-17.  https://doi.org/10.18413/2313-8955-2018-4-3-0-1
  44. Lebedeva OP, Pakhomov SP, Ivashova ON, Starceva N, Churnosov M, Kuznetsova Y, Kuznichenko E. Expression of TLR 1-10 and caspase-3 alfa in human endometrium at women with early miscarriages. Giornale Italiano di Ostetricia e Ginecologia. 2013;35(1): 270-271. 
  45. Лебедева О.П. Роль рецепторов NOD1 и NOD2 в распознавании патогенов в женском репродуктивном тракте. Акушерство и гинекология. 2019;5:25-29.  https://doi.org/10.18565/aig.2019.5.25-29
  46. Лебедева О.П., Жукова И.О., Ивашова О.Н., Пахомов С.П., Чурносов М.И. Роль рецепторов RIG-I, AIM2 и IFI16, распознающих вирусную ДНК и РНК, в патогенезе самопроизвольных выкидышей и неразвивающейся беременности ранних сроков. Акушерство и гинекология. 2018;7:57-61.  https://doi.org/10.18565/aig.2018.7.57-61
  47. Meštrović T, Matijašić M, Perić M, Čipčić Paljetak H, Barešić A, Verbanac D. The Role of Gut, Vaginal, and Urinary Microbiome in Urinary Tract Infections: From Bench to Bedside. Diagnostics. 2021;11(1):7.  https://doi.org/10.3390/diagnostics11010007
  48. Набока Ю.Л., Коган М.И., Гудима И.А., Митусова Е.В., Джалагония К.Т., Иванов С.Н. Существует ли взаимосвязь между микробиотой мочи, влагалища и кишечника при инфекции верхних мочевых путей? Вестник урологии. 2019;7(1):38-45.  https://doi.org/10.21886/2308-6424-2019-7-1-38-45
  49. Lewis AL, Gilbert NM. Roles of the vagina and the vaginal microbiota in urinary tract infection: evidence from clinical correlations and experimental models. GMS Infectious Diseases. 2020;8:Doc02. https://doi.org/10.3205/id000046
  50. Navas-Nacher EL, Dardick F, Venegas MF, Anderson BE, Schaeffer AJ, Duncan JL. Relatedness of Escherichia coli Colonizing Women Longitudinally. Molecular Urology. 2001;5(1):31-36.  https://doi.org/10.1089/109153601750124285
  51. Sumati AH, Saritha NK. Association of Urinary Tract Infection in Women with Bacterial Vaginosis. Journal of Global Infectious Diseases. 2009;1(2):151-152.  https://doi.org/10.4103/0974-777X.56254
  52. Harmanli OH, Cheng GY, Nyirjesy P, Chatwani A, Gaughan JP. Urinary tract infections in women with bacterial vaginosis. Obstetrics and Gynecology. 2000;95(5):710-712.  https://doi.org/10.1016/S0029-7844(99)00632-8
  53. Vagios S, Hesham H, Mitchell C. Understanding the potential of lactobacilli in recurrent UTI prevention. Microbial Pathogenesis. 2020;148:104544. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2020.104544
  54. Hudson PL, Hung KJ, Bergerat A, Mitchell C. Effect of Vaginal Lactobacillus Species on Escherichia coli Growth. Female Pelvic Medicine and Reconstructive Surgery. 2020;26(2):146-151.  https://doi.org/10.1097/SPV.0000000000000827
  55. Gilbert NM, O’Brien VP, Hultgren S, Macones G, Lewis WG, Lewis AL. Urinary tract infection as a preventable cause of pregnancy complications: opportunities, challenges, and a global call to action. Global Advances in Health and Medicine. 2013;2(5):59-69.  https://doi.org/10.7453/gahmj.2013.061
  56. Kline KA, Lewis AL. Gram-Positive Uropathogens, Polymicrobial Urinary Tract Infection, and the Emerging Microbiota of the Urinary Tract. Microbiology Spectrum. 2016;4(2):10.  https://doi.org/10.1128/microbiolspec.UTI-0012-2012
  57. Chow AW, Bartlett KH, Percival-Smith R, Morrison BJ. Vaginal colonization with Staphylococcus aureus, positive for toxic-shock marker protein, and Escherichia coli in healthy women. Journal of Infectious Diseases. 1984;150(1):80-84.  https://doi.org/10.1093/infdis/150.1.80
  58. Мелкумян А.Р., Припутневич Т.В., Кочетов А.Г., Любасовская Л.А., Анкирская А.С., Дубоделов Д.В., Родченко Ю.В., Муравьева В.В., Тартаковский И.С., Цибин А.Н., Кафарская Л.И., Ефимов Б.А., Зубков В.В., Рюмина И.И., Шмаков Р.Г., Павлович С.В., Кан Н.Е., Тютюнник В.Л., Сухих Г.Т. Микробиологическая диагностика инфекций, вызванных стрептококком группы B у беременных и новорожденных. Лабораторная служба. 2017;6(2):54-75.  https://doi.org/10.17116/labs20176254-75
  59. Gilbert NM, O’Brien VP, Lewis AL. Transient microbiota exposures activate dormant Escherichia coli infection in the bladder and drive severe outcomes of recurrent disease. PLoS Pathogens. 2017; 13(3):e1006238. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1006238
  60. De Seta F, Lonnee-Hoffmann R, Campisciano G, Comar M, Verstraelen H, Vieira-Baptista P, Ventolini G, Lev-Sagie A. The Vaginal Microbiome: III. The Vaginal Microbiome in Various Urogenital Disorders. Journal of Lower Genital Tract Disease. 2022;26(1):85-92.  https://doi.org/10.1097/LGT.0000000000000645
  61. Brown SE, Robinson CK, Shardell MD, Holm JB, Ravel J, Ghanem KG, Brotman RM. Assessing the Concordance Between Urogenital and Vaginal Microbiota: Can Urine Specimens Be Used as a Proxy for Vaginal Samples? Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2021;11. Accessed March 23, 2022. https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fcimb.2021.671413
  62. Thomas-White K, Forster SC, Kumar N, Van Kuiken M, Putonti C, Stares MD, Hilt EE, Price TK, Wolfe AJ, Lawley TD. Culturing of female bladder bacteria reveals an interconnected urogenital microbiota. Nature Communications. 2018;9(1):1557. https://doi.org/10.1038/s41467-018-03968-5
  63. Hilt EE, McKinley K, Pearce MM, Rosenfeld AB, Zilliox MJ, Mueller ER, Brubaker L, Gai X, Wolfe AJ, Schreckenberger PC. Urine is not sterile: use of enhanced urine culture techniques to detect resident bacterial flora in the adult female bladder. Journal of Clinical Microbiology. 2014;52(3):871-876.  https://doi.org/10.1128/JCM.02876-13
  64. Komesu YM, Dinwiddie DL, Richter HE, Lukacz ES, Sung VW, Siddiqui NY, Zyczynski HM, Ridgeway B, Rogers RG, Arya LA, Mazloomdoost D, Levy J, Carper B, Gantz MG; Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development Pelvic Floor Disorders Network. Defining the relationship between vaginal and urinary microbiomes. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2020;222(2):154.e1-154.e10.  https://doi.org/10.1016/j.ajog.2019.08.011

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.