Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Титов К.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы»;
ГБУЗ «Городская клиническая больница им. С.П. Боткина Департамента здравоохранения города Москвы»

Александр Андреевич Маркин

ГБУЗ «Московский клинический научно-практический центр имени А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы»

Греков Д.Н.

ГБУЗ «Городская клиническая больница им. С.П. Боткина» Департамента здравоохранения Москвы

Сынкова Д.А.

ГБУЗ «Московский клинический научно-практический центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения Москвы»

Лисица Т.С.

ФГБУ «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального медико-биологического агентства

Лебединский И.Н.

ГБУЗ «Городская клиническая больница им. С.П. Боткина» Департамента здравоохранения Москвы

Новые подходы к таргетной терапии метастатической меланомы при наличии в опухоли редких генетических изменений

Авторы:

Титов К.С., Маркин А.А., Греков Д.Н., Сынкова Д.А., Лисица Т.С., Лебединский И.Н.

Подробнее об авторах

Прочитано: 2975 раз


Как цитировать:

Титов К.С., Маркин А.А., Греков Д.Н., Сынкова Д.А., Лисица Т.С., Лебединский И.Н. Новые подходы к таргетной терапии метастатической меланомы при наличии в опухоли редких генетических изменений. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2023;12(1):65‑72.
Titov KS, Markin AA, Grekov DN, Synkova DA, Lisitsa TS, Lebedinsky IN. New approaches to targeted therapy for metastatic melanoma in the presence of rare genetic changes in the tumor. P.A. Herzen Journal of Oncology. 2023;12(1):65‑72. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/onkolog20231201165

Рекомендуем статьи по данной теме:
Связь меж­ду ки­шеч­ной мик­ро­би­отой и па­то­ге­не­зом псо­ри­аза. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2026;(1):15-22

По данным международных эпидемиологических исследований, отмечается рост заболеваемости меланомой кожи во всем мире в среднем на 10% в год [1]. В России за последние 10 лет заболеваемость меланомой кожи увеличилась на 28,72% и по общему приросту среди всех злокачественных образований кожи занимает 2-е место [2]. Открытия фундаментальной науки последних 10-летий в области онкологии привели к появлению новых высокоэффективных противоопухолевых препаратов: таргетных и ингибиторов иммунных контрольных точек, применение которых совершило прорыв в лечении онкологических заболеваний, особенно в терапии меланомы кожи. Долгое время единственными таргетными препаратами в лечении меланомы кожи являлись BRAF/МЕК и c-KIT-ингибиторы. Мутации в гене BRAF в меланоме обнаруживаются у 50—60% пациентов. Однако известно, что у половины больных, получающих таргетную терапию ингибиторами BRAF, через 6—8 мес развивается резистентность к данным препаратам [3]. Мутации в гене c-KIT обнаруживаются в лентигиозной и слизистой меланоме до 15% [4], при этом частота общих ответов на ингибиторы c-KIT не превышает 22% [5]. Развивающаяся резистентность меланомы к проводимой терапии лишает возможности продолжить лечение такой категории больных. Таким образом, на сегодняшний день существует острая необходимость разработки новых точек воздействия для лекарственной терапии. В настоящее время уже изучаются некоторые редкие мутации меланомы кожи, которые способны в перспективе стать новыми мишенями лекарственной терапии.

NTRK (the neurotrophin receptor tyrosine kinase)

Последнее время широко изучаются транслокации в генах NTRK практически при всех опухолях человека. Однако существует очень мало данных о распространенности транслокации в гене NTRK при меланоме. Транслокации в генах NTRK, по-видимому, относительно распространенаы в невусах Шпица, встречаемость составляет около 21% [7, 8], в то время как распространенность при меланоме кожи или слизистых оболочек — менее 1% [6, 9]. В когорте из 122 пациентов с акральной формой меланомы кожи слияния NTRK были обнаружены в 2,5% случаев [8].

C. Lezcano и соавт. [9] проанализировали группу из 751 пациента с метастатической меланомой, которым была показана системная терапия. Они обнаружили слияния NTRK в 3 кожных и 1 меланоме слизистых оболочек, что указывает на частоту 0,8—0,9%. Все меланомы, содержащие слияния NTRK, были толще 2 мм по Бреслоу и отличались эпителиоидным клеточным рисунком. Также примечательно, что гистологический подтип был беспигментным в 75% случаев с повышенным митотическим индексом [9].

Химерные белки и наиболее распространенные активирующие мутации в генах BRAF, NRAS, HRAS, GNAQ и GNA11 являются взаимоисключающими [7], поэтому химерные белки NTRK более распространены при меланоме дикого типа BRAF или NRAS.

Однако в одном из опубликованных случаев содержалась дополнительная активирующая мутация NRAS Q61 [9].

На данный момент золотым стандартом диагностики транслокаций NTRK (по текущим рекомендациям ESMO) является NGS (секвенирование нового поколения) [10]. В исследовании, которое включало 17 различных типов злокачественных новобразований с транслокациями NTRK, включая 7 случаев с меланомой кожи, ларотректиниб продемонстрировал высокую частоту ответов (ORR) — 76%. В 71% эффект от лечения составлял более 12 месяцев. Ларотректиниб показал противоопухолевую активность у пациентов любого возраста и при всех типах исследованных опухолей независимо от типа слияния NTRK. Среднее время до ответа было коротким — 1,8 мес (диапазон от 0,9 до 6,4 мес) [11]. Следует отметить, что ларотректиниб обладает высокой эффективеностью при внутримозговых метастазах, а также первичных опухолях головного мозга [12].

Энтректиниб является не только ингибитором pan-NTRK, он также ингибирует ROS1 и ALK [13]. Три исследования I и II фазы, куда было включено 54 пациента, получавших энтректиниб, из которых у 22% были метастазы в мозге, показали частоту ответов 57,4% и медиану выживаемости без прогрессирования 11,2 мес. Частота ответов для леченых энтректинибом пациентов без метастазов в головном мозге составила 59,5%. Медиана выживаемости без прогрессирования головного мозга 20,9 мес для пациентов без метастазов в головном мозге по сравнению с 12,9 мес в подгруппе с исходными метастазами в головном мозге [14]. Энтректиниб смог преодолеть гематоэнцефалический барьер и остался в центральной нервной системе [15]. Однако ни один пациент с меланомой не был включен в эти исследования.

Переносимость ларотректиниба и энтректиниба хорошая. В исследованиях энтректиниба побочные эффекты были в основном 1-й или 2-й степени, все они были купированы.

В настоящий момент идет исследование STARTRK-2 с NTRK 1/2/3, ROS1- или ALK-транслокацией, где будет оценена эффективность препарата энтректиниба (https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT025682 67).

Ларотректиниб был одобрен для пациентов с транслокацией NTRK. По этой причине важно отметить, что пациентов с нерезектабельными метастазами меланомы уже можно лечить специфическими ингибиторами TRK.

Также интерес представляют результаты исследования селитректиниба (BAY2731954) во второй линии у пациентов с транслокациями NTRK (NCT03206931).

ALK (anaplastic lymphoma kinase)

ALK является рецепторной тирозинкиназой из семейства инсулинзависимых рецепторов. В норме белок ALK активно экспрессируется в нервной ткани только во время эмбриогенеза, регулируя пролиферацию нейронов. Основными сигнальными путями, задействованными в передаче, являются PI3K/ERK и RAS/MAPK, те же, что участвуют и в передаче сигнала EGFR.

Существует 3 изоформы мутантной ALK: ALKATI, ALKwt и транслокация ALK (самая распространенная EML4—ALK), различающиеся по механизму образования [16]. Однако самой малоизученной и противоречивой из них является новая изоформа ALKATI.

В 2015 г. в журнале Nature опубликовали результаты исследования T.Wiesner и соавт. [17], в котором было изучено более 5 тыс. образцов из 15 различных типов рака для определения участков ATI. Wiesner с соавторами определили в 11% тканей меланомы изменение в инициации транскрипции, расположенное в 19-м интроне, что приводит к экспрессии новой усеченной изоформы ALK (ALKati-alternative transcription initiation), которая включает длинный конечный повтор (LTR) в 19-м интроне и длинную цепь в 18-м интроне. Преимущественно такая мутация обнаруживалась в невусах Шпица. В данном исследовании также установленно, что ALKATI может стимулировать онкогенез только в пределах порога экспрессии. Также был продемонстрирован ответ пациентов с мутацией ALKATI на терапию стандартными ингибиторами ALK [17]. Эти данные показались перспективными для дальнейшего изучения онкогенного потенциала такой мутации и ее ингибирования. Поэтому стали появляться дополнительные исследования новой изоформы.

G. Cesi и соавт. [18] провели изучение результатов исследования пациентов с меланомой, используя базы данных TCGA. Установлено, что из 470 пациентов у 203 имеется мутация BRAF V600, у 111 — мутация в ALK (23,6%), а у 41 мутации установлены в обоих генах. Для определения мутации они использовали метод NGS. Однако ИГХ-исследование указывало на наличие мутаций лишь при выраженной экспрессии белков (3+).

Данные по ингибированию ALKATI в различных исследованиях оказались очень противоречивыми, а в большинстве случаев ингибирование ALKATI в монорежиме показало негативные результаты [16, 19].

Однако в настоящее время идет 2-я фаза исследования по изучению эффективности ингибиторов ALK в лечении пациентов с меланомой и изменениями ALK или ее гиперэкспрессией [16, 20]. Планируемая дата окончания исследования — январь 2022 г.

В апреле 2020 г. K.K. Shah и соавт. [21] провели исследование экспрессии ALKATI и ответа на терапию у 324 пациентов с меланомой, из которых только у 4 встречались одновременно мутации ALKATI и BRAF. Интересно, что экспрессия ALKATI у этих 4 пациентов была на низком уровне и ни в одном случае не наблюдали уровня экспрессии ALK, прогнозирующего чувствительность к монотерапии (сильное диффузное окрашивание).

Совместное ингибирование ALKATI и BRAFV600 показало положительные результаты в нескольких исследованиях [19, 22, 23]. Это послужило поводом предположить, что ALKATI является одним из механизмов резистентности к BRAF-ингибиторам [18].

Следует сказать, что практически во всех исследованиях меланома с транслокацией ALK отвечала на таргетную терапию ингибиторами ALK.

Однако в недавнем исследовании Heider и соавт. [24] полностью опровергают онкогенную способность ALKATI, а также ответ опухоли с данной мутацией на ингибиторы ALK в монорежиме in vitro. ALKATI демонстрировал лишь незначительные онкогенные свойства, при этом данной мутации было недостаточно для роста/трансформации in vitro. Они доказали, что ALKATI не взаимоисключает мутацию BRAF или NRAS, как BRAF и NRAS друг с другом.

Таким образом, перспективным направлением остается совместное ингибирование ALKATI с другими сопутствующими мутациями, а также изучение онкогенного потенциала in vivo.

NRAS (ген суперсемейства малых гуанозинтрифосфатаз)

Мутации NRAS присутствуют примерно в 10—25% меланом кожи, причем чаще в узловой меланоме.

Несколько исследований показали, что мутации NRAS связаны с плохим прогнозом у пациентов с меланомой [25]. Ингибирование гена MEK в настоящее время является наиболее распространенной стратегией воздействия на NRAS-мутированную меланому. Ингибиторы MEK второго и третьего поколений (траметиниб, кобиметиниб, биниметиниб, пимасертиб, селуметиниб) являются наиболее изученными, однако результаты клинических исследований разочаровывают. Биниметиниб является наиболее изученным ингибитором MEK при NRAS-мутированной меланоме, он изучался в рандомизированном исследовании III фазы в сравнении с дакарбазином. В этом исследовании у 15% пациентов был эффект на фоне лечения биниметинибом против 7% у дакарбазина. Выживаемость без прогрессирования болезни составила 2,8 мес в группе пациентов с применением биниметиниба по сравнению с 1,5 мес в группе дакарбазина, при этом никакой разницы в общей выживаемости не отмечено [26].

Обнадеживающие результаты также докладывались в исследованиии с пимасертибом и дакарбазином в исследовании II фазы в NRAS-мутированной меланомы. Медиана выживаемости без прогрессирования была значительно больше при применении пимасертиба, чем дакарбазина (13 нед против 6,9 нед соответственно) [27]. Однако эти результаты не сочтены клинически значимыми, и ингибиторы MEK не были одобрены при меланоме с NRAS-мутацией.

Механизм первичной устойчивости к однократному ингибированию MEK при NRAS-мутированной меланоме все еще неясен. Тем не менее недавние данные показали, что ингибирование пути MAPK посредством ингибирования MEK индуцировало аутофагию, защищая опухолевые клетки от цитотоксических эффектов такого воздейстаия.

Защитная аутофагия обнаружилась как механизм устойчивости к BRAF- и MEK-ингибиторам с мутацией RAS и BRAF в меланоме, опухолях головного мозга у детей и аденокарциноме поджелудочной железы.

Кроме того, в моделях ксенотрансплантата (PDX), полученных у пациентов с NRAS-мутированной меланомой, комбинация ингибитора MEK траметиниба и ингибитора аутофагии хлорохина индуцировала значительную регрессию опухоли [28]. Это открытие привело к разработке исследования II фазы, сочетающего применение хлорохина и траметиниба при NRAS-мутированной меланоме (NCT03979651, продолжается).

Ингибиторы ERK

ERK является последним эффектором сигнального каскада MAPK и соответствующей лекарственной мишенью. Доклинические данные показали эффективность комбинированной стратегии ингибирования ERK и MEK при NRAS-мутированных опухолях [32]. Было разработано несколько ингибиторов ERK, которые тестируются при нескольких видах рака, включая меланому. Так, например, уже опубликованы результаты I фазы исследования ингибиторов ERK MK-8353 [33] и уликсертиниб (BVD523) [34], в которых препараты показали хороший профиль безопасности.

Исследования на ранней стадии с другими ингибиторами ERK (ASN007, LY3214996) продолжаются (NCT02857270, NCT03415126) [35, 36]. Комбинация MEK и ERK может быть более эффективной при мутированной NRAS-меланоме, если профиль безопасности будет приемлемым.

G9a (гистоновая метилтрансфераза)

Гистоновые метилтрансферазы являются членами большого семейства белков. Гистон H3K9 первоначально метилируется димерами G9a (ген EHMT2) и GLP (ген EHMT1) с образованием активирующего монометилирования H3K9, а затем метилируется G9a для образования репрессивного диметилирования H3K9 (H3K9me2) [37].

В целом G9a необходим во время развития эмбриона, он подавляет ключевые гены, чтобы обеспечить дифференцировку клеток.

G9a также является важным регулятором иммунных клеток [38]. Переход от T-хелперов к функциональным CD8+ T-клеткам зависит от G9a. Он играет роль в терминальной дифференцировке CD8+ Т-клеток памяти.

В B-клетках потеря G9a не ингибирует дифференцировку, но может повлиять на стабильность зрелых B-клеток [38]. Белки, которые взаимодействуют с G9a, включая JARID2, также способствуют нормальной дифференцировке иммунных клеток, таких как естественные T-клетки-киллеры (iNKT) [39].

Онкогенная роль G9a в меланоме

В недавних исследованиях G9a был определен как функциональный онкоген при меланоме посредством повторяющихся активирующих мутаций в домене SET или путем амплификации геномного локуса [40]. Некоторые ключевые пути при меланоме нарушаются из-за амплификации G9a. Активация лиганда Wnt приводит к клеточному каскаду, который предотвращает разрушение бета-катенина, что позволяет активировать фактор транскрипции LEF1. В меланоцитах этот процесс способствует пигментации, так как несколько генов, необходимых для синтеза меланина, связываются и активируются через LEF1 [41]. Исследования передачи сигналов Wnt при меланоме показали, что стабилизация бета-катенина способствует развитию опухоли и подавляет ответ на иммунотерапию у мышей BrafV600E с потерей Pten [42].

При исследовании меланомы мышей установлено, что ингибирование G9a в сочетании с анти-PD-1 или анти-CTLA-4 увеличивает выживаемость по сравнению с иммунотерапией в монорежиме [40].

Ингибирование G9a может модулировать передачу сигналов Wnt, что непосредственно подавляет онкогенное поведение клеток меланомы и усиливает ответ на иммунотерапию.

Другим путем, на который влияет ингибирование G9a, является активация Notch [42]. При меланоме повышенная активность Notch связана с противоопухолевым иммунитетом, устойчивостью к ингибиторам MEK и подавлением MITF, что приводит к инвазивному фенотипу [43]. Активация Notch также может влиять на G9a, так как при холангиокарциноме и раке желчного протока эти опухоли были чувствительны к ингибированию G9a [44].

Некоторые данные свидетельствуют о том, что в фибробластах, ассоциированных с меланомой, передача сигналов Notch снижает жизнеспособность клеток меланомы [45], а потеря Notch может способствовать развитию клеток, инициирующих меланому [46].

G9a позволяет повысить экспрессию HOXA1, стимулирующего рост опухоли [48]. HOX-гены играют определенную роль в меланоме, а повышенная экспрессия HOXA1 свидетельствует о высокой метастатической активности опухоли [47].

Недостаток G9a может запускать аутофагию и блокировать пролиферацию посредством метилирования промоторов c-MYC и MAP1LC3B1 [49]. Кроме того, G9a также блокирует аутофагию через H3K9me промотора mTOR при раке желудка [50]. Также есть доказательства того, что ингибирование G9a приводит к активации аутофагии через MAP1LC3B при меланоме [51].

Возможно, в скором времени ингибирование G9a тоже займет свое место в лечении меланомы.

WNT (лиганд)

Как уже было упомянуто в эффектах G9a, WNT может влиять на развитие опухоли. Поэтому было изучено несколько ингибиторов пути WNT.

Сигнальные компоненты WNT, FRZDs и DVL рассматривались в качестве мишеней для лечения рака с использованием низкомолекулярных ингибиторов.

OMP-18R5 (вантиктумаб) представляет собой антитело, которое препятствует связыванию лигандов WNT с FRZDS. Он показал активность в подавлении роста различных моделей ксенотрансплантата опухоли человека и проявлял активность при лечении с использованием стандартной химиотерапии [52].

Другой мишенью передачи сигналов WNT стал фермент porcupine, необходимый для переноса лигандов WNT. Ингибиторы porcupine IWP2 и C59 продемонстрировали высокую активность in vitro и in vivo. Кроме того, LGK979, еще один ингибитор porcupine, продемонстрировал высокую эффективность ингибирования передачи сигналов WNT in vivo в хорошо переносимых дозах и заложил основу для лечения опухолей, вызванных WNT [53]. В настоящее время группой ученых проводится исследование I фазы LGK979 (NCT01351103) для определения безопасных доз LGK979 при меланоме и других солидных злокачественных новообразованиях.

Еще одна потенциальная терапевтическая стратегия, нацеленная на передачу сигналов WNT, включает разработку специфических пептидов, которые имитируют белки WNT (WNT3A и WNT5A) и приводят к ингибированию рецепторов. Они показали эффективность в доклинических исследованиях меланомы и многообещающие результаты при других заболеваниях [53].

Также учеными разрабатываются таргетные методы лечения с воздействием на внеклеточные и внутриклеточные компоненты пути WNT, включая аксин, APC и β-катенин [53]. Блокирование WNT5 моноклональными антителами привело к ингибированию активности протеинкиназы C и снижению клеточной инвазии [53].

NF1 (нейрофибромин 1)

Loss-of-function-мутация в нейрофибромине 1 может приводить к чрезмерной стимуляции RAS, BRAF и ее нижестоящих мишеней [54].

Мутации в гене NF1 встречаются в 5,7% случаев меланомы. Они активируют путь MAPK, что способствует образованию меланомы, а также могут вызывать устойчивость к BRAF-ингибиторам. Мутации NF1 выявляют в 2% случаев меланомы с мутациями BRAF или NRAS и в 25% опухолей с диким типом BRAF или NRAS [53].

NFkB (универсальный фактор транскрипции)

Ингибирование NFkB может способствовать усилению апоптоза, посредством воздействия на пути PI3K-AKT и MAPK [55].

Ингибиторы протеасом, такие как бортезомиб, использовались A.Takacs и соавт. для ингибирования NFkB путем предотвращения деградации IkB. Ими было показано, что эти ингибиторы индуцируют снижение пролиферации меланомы in vitro [53, 56]. Бортезомиб также индуцирует уменьшение роста опухоли in vivo, но показал значительную токсичность в клинических испытаниях [57].

Последние усилия ученых были направлены на разработку селективных ингибиторов пути NFkB. Так, C. Teixido и соавт. было показано, что BMS-345541, специфический ингибитор IKK, снижает активность IKK и вызывает апоптоз клеток меланомы [53]. Пептид NBD (NEMO-связывающий домен) может связываться с NEMO и предотвращать его взаимодействие с IKkA/β, что имеет значение для активности комплекса IKK и активации NFkB. Использование пептидов NBD может способствовать значительному снижению пролиферации в клеточных линиях меланомы кожи человека, но ни пептиды NBD, ни BMS-345541 еще не прошли клинические испытания [53].

Внеклеточные везикулы, секретируемые опухолевыми клетками (extracellular vesicles, EVs)

Внеклеточные везикулы являются важными факторами, участвующими в ряде физиологических процессов, включая межклеточный обмен белками и РНК, индукцию ангиогенеза, иммунную регуляцию. После высвобождения везикулы из клетки-донора с функционально активной мРНК и микроРНК внутри клетки-реципиента (таргетная клетка) содержимое EVs может регулировать экспрессию генов посредством трансляции и посттрансляционной регуляции целевых мРНК и миРНК. EVs также могут оказывать воздействие на клетки, стимулируя специфические сигнальные пути. Способность EVS изменять транскрипцию и сигнальную активность в клетках-реципиентах позволяет им индуцировать специфические фенотипические изменения [59].

В современной литературе существуют данные, что внеклеточные везикулы, выделяемые опухолями, могут быть важным фактором в формировании иммуносупрессорного микроокружения. Негативное влияние на иммунитет может осуществляться рецепторными действиями между таргетными клетками и везикулами, вызывающими анергию или апоптоз T-клеток. Везикулы и их содержимое могут поглощаться таргетными клетками, что также приведет к передаче иммуносупрессорного сигнала.

Действие везикул может быть одной из причин резистентности к терапии и фенотипических изменений в клетках опухоли, индуцированных химио- и радиотерапией. Поскольку действие EVs на клетки иммунитета, в частности T-клетки, изучено слабо, исследование EV и молекулярных механизмов, лежащих в основе их связывания и биологического эффекта, является актуальной задачей с научной и практической точки зрения [58].

Преодоление резистентности к терапии, осуществляемой посредством внеклеточных везикул, является также перспективным направлением в лечении опухолей.

Заключение

На данный момент активно ведутся исследования по изучению всевозможных способов воздействия на опухолевую клетку меланомы кожи. Идет поиск новых мишеней лекарственной терапии в ДНК опухоли, ее белках и микроокружении. Во многих этих направлениях есть оптимистичные данные, которые открывают перспективы дальнейшего изучения как редких генетических изменений в опухоли, так и всей ее биологии. Возможно, недостаточно воздействовать лишь на драйверные мутации опухоли. Воздействие на множественные молекулярно-генетические нарушения, отвечающие за злокачественность опухоли, может быть перспективным направлением терапии будущего. На данный момент из таргетных препаратов для лечения редких генетических изменений меланомы кожи одобрены FDA только ларотректиниб и энтректиниб при перестройках генов NTRK. Однако, вероятно, в ближайшее время мы столкнемся с большим количеством новых схем в клинической практике.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Karimkhani C, Green AC, Nijsten T, Weinstock MA, Dellavalle RP, Naghavi M, Fitzmaurice C. The global burden of melanoma: results from the Global Burden of Disease study 2015. Br J Dermatol. 2017;177(1):134-140.  https://doi.org/10.1111/bjd.15510
  2. Потекаев Н.Н., Титов К.С., Маркин А.А., Кашурников А.Ю. Эпидемиология меланомы кожи в Российской Федерации и в городе Москве за 10 лет (2008—2018 гг.). Клиническая дерматология и венерология. 2020;19(6):810-816.  https://doi.org/10.17116/klinderma202019061810
  3. Holderfield M, Deuker MM, McCormick F, McMahon M. Targeting RAF kinases for cancer therapy: BRAF-mutated melanoma and beyond. Nat Rev Cancer. 2014;14(7):455-467.  https://doi.org/10.1038/nrc3760
  4. Torres-Cabala CA, Wang WL, Trent J, Yang D, Chen S, Galbincea J, Kim KB, Woodman S, Davies M, Plaza JA, et al, Correlation between KIT expression and KIT mutation in melanoma: a study of 173 cases with emphasis on the acral-lentiginous/mucosal type. Mod Pathol. 2009;22(11):1446-1456. https://doi.org/10.1038/modpathol.2009.116
  5. Steeb T, Wessely A, Petzold A, Kohl C, Erdmann M, Berking C, Heppt MV. c-Kit inhibitors for unresectable or metastatic mucosal, acral or chronically sun-damaged melanoma: a systematic review and one-arm meta-analysis. Eur J Cancer. 2021;157:348-357.  https://doi.org/10.1016/j.ejca.2021.08.015
  6. Stransky N, Cerami E, Schalm S, Kim JL, Lengauer C. The landscape of kinase fusions in cancer. Nat Commun. 2014;5:4846. https://doi.org/10.1038/ncomms5846
  7. Wiesner T, He J, Yelensky R, Esteve-Puig R, Botton T, Yeh I, Lipson D, Otto G, Brennan K, Murali R, et al. Kinase fusions are frequent in Spitz tumours and spitzoid melanomas. Nat Commun. 2014;5:3116. https://doi.org/10.1038/ncomms4116
  8. Yeh I, Jorgenson E, Shen L, Xu M, North JP, Shain AH, Reuss D, Wu H, Robinson WA, Olshen A, et al. Targeted genomic profiling of acral melanoma. J Natl Cancer Inst. 2019;111(10):1068-1077. https://doi.org/10.1093/jnci/djz005
  9. Lezcano C, Shoushtari AN, Ariyan C, Hollmann TJ, Busam KJ. Primary and metastatic melanoma with NTRK fusions. Am J Surg Pathol. 2018;42(8):1052-1058. https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000001070
  10. Marchio C, Scaltriti M, Ladanyi M, Lafrate AJ, Bibeau F, Dietel M, Hechtman JF, Troiani T, López-Rios F, Douillard JY, et al. ESMO recommendations on the standard methods to detect NTRK fusions in daily practice and clinical research. Ann Oncol. 2019;30(9):1417-1427. https://doi.org/10.1093/annonc/mdz204
  11. Drilon A, Laetsch TW, Kummar S, DuBois SG, Lassen UN, Turpin BD, Nathenson M, Doebele RC, Farago AF, Pappo AS, et al. Efficacy of larotrectinib in TRK fusion-positive cancers in adults and children. N Engl J Med. 2018;378(8):731-739.  https://doi.org/10.1056/NEJMoa1714448
  12. Drilon A, DuBois S, Farago AF, Geoerger B, Grilley-Olson JE, Hong DS, Sohal D, van Tilburg CM, Ziegler DS, Ku N, et al. Activity of larotrectinib in TRK fusion cancer patients with brain metastases or primary central nervous system tumors. J Clin Oncol. 2019;37(15 suppl):2006. https://doi.org/10.1200/JCO.2019.37.15_suppl.2006
  13. Drilon A, Siena S, Ou SI, Patel M, Ahn MJ, Lee J, Bauer T, Farago AF, Wheler JJ, Liu SV, et al. Safety and antitumor activity of the multitargeted Pan-TRK, ROS1, and ALK inhibitor entrectinib: combined results from two phase I trials (ALKA-372-001 and STARTRK-1). Cancer Discov. 2017;7(4):400-409.  https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-16-1237
  14. Doebele RC, Drilon A, Paz-Ares L, Siena S, Shaw AT, Farago AF, Blakely CM, Seto T, Cho BC, Tosi D Siena S, et al. Entrectinib in patients with advanced or metastatic NTRK fusion-positive solid tumours: integrated analysis of three phase 1-2 trials. Lancet Oncol. 2020;21(2):271-282.  https://doi.org/10.1016/S1470-2045(19)30691-6
  15. Amatu A, Sartore-Bianchi A, Siena S. NTRK gene fusions as novel targets of cancer therapy across multiple tumour types. ESMO Open. 2016;1(2):e000023. https://doi.org/10.1136/esmoopen-2015-000023
  16. Титов К.С., Маркин А.А., Казаков А.М., Чулкова С.В. Роль новой изоформы ALK в диагностике и таргетной терапии меланомы кожи. Российский биотерапевтический журнал. 2021;20(4):33-41.  https://doi.org/10.17650/1726-9784-2021-20-4-33-41
  17. Wiesner T, Lee W, Obenauf AC, Ran L, Murali R, Zhang QF, Wong EW, Hu W, Scott SN, Shah RN, et al. Alternative transcription initiation leads to expression of a novel ALK isoform in cancer. Nature. 2015;526(7573):453-457.  https://doi.org/10.1038/nature15258
  18. Cesi G, Philippidou D, Kozar I, Kim YJ, Bernardin F, Van Niel G, Wienecke-Baldacchino A, Felten P, Letellier E, Dengler S, et al. A new ALK isoform transported by extracellular vesicles confers drug resistance to melanoma cells. Mol Cancer. 2018;17(1):145.  https://doi.org/10.1186/s12943-018-0886-x
  19. Couts KL, Bemis J, Turner JA, Bagby SM, Murphy D, Christiansen J, Hintzsche JD, Le A, Pitts TM, Wells K, et al. ALK inhibitor response in melanomas expressing EML4-ALK fusions and alternate ALK isoforms. Mol Cancer Ther. 2018;17(1):222-231.  https://doi.org/10.1158/1535-7163.MCT-17-0472
  20. CCLE. Motivations for the Cancer Cell Line Encyclopedia (CCLE). https://portals.broadinstitute.org/ccle
  21. Shah KK, Neff JL, Erickson LA, Jackson RA, Jenkins SM, Mansfield AS, Moser JC, Harris AL, Copland JA, Halling KC, Flotte TJ. Correlation of novel ALKATI with ALK immunohistochemistry and clinical outcomes in metastatic melanoma. Histopathology. 2020;77(4):601-610.  https://doi.org/10.1111/his.14191
  22. Holla VR, Elamin YY, Bailey AM, Johnson AM, Litzenburger BC, Khotskaya YB, Sanchez NS, Zeng J, Shufean MA, Shaw KR, et al. ALK: a tyrosine kinase target for cancer therapy. Cold Spring Harb Mol Case Stud. 2017;3(1):a001115. https://doi.org/10.1101/mcs.a001115
  23. Zito Marino F, Liguori G, Aquino G, La Mantia E, Bosari S, Ferrero S, Rosso L, Gaudioso G, De Rosa N, Scrima M, et al. Intratumor heterogeneity of ALK-rearrangements and homogeneity of EGFR-mutations in mixed lung adenocarcinoma. PLoS One. 2015;10(9):e0139264. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0139264
  24. Inam H, Sokirniy I, Rao Y, Shah A, Naeemikia F, O’Brien E, Dong C, McCandlish DM, Pritchard JR. Genomic and experimental evidence that ALKATI does not predict single agent sensitivity to ALK inhibitors. iScience. 2021;24(11):103343. https://doi.org/10.1016/j.isci.2021.103343
  25. Bauer J, Curtin JA, Pinkel D, Bastian BC. Congenital melanocytic nevi frequently harbor NRAS mutations but no BRAF mutations. J Invest Dermatol. 2007;127(1):179-182.  https://doi.org/10.1038/sj.jid.5700490
  26. Dummer R, Schadendorf D, Ascierto PA, Arance A, Dutriaux C, Di Giacomo AM, Rutkowski P, Del Vecchio M, Gutzmer R, Mandala M, et al. Binimetinib versus dacarbazine in patients with advanced NRAS-mutant melanoma (NEMO): a multicentre, open-label, randomised, phase 3 trial. Lancet Oncol. 2017;18(4):435-445.  https://doi.org/10.1016/S1470-2045(17)30180-8
  27. Lebbe C, Dutriaux C, Lesimple T, Kruit W. Pimasertib (PIM) versus dacarbazine (DTIC) in patients (pts) with cutaneous NRAS melanoma: a controlled, openlabel phase II trial with crossover. Ann Oncol. 2016;27(suppl 6):1136.
  28. Kinsey CG, Camolotto SA, Boespflug AM, Guillen KP, Foth M, Truong A, Schuman SS, Shea JE, Seipp MT, Yap JT, et al. Protective autophagy elicited by RAF!MEK!ERK inhibition suggests a treatment strategy for RAS-driven cancers. Nat Med. 2019;25(4):620-627.  https://doi.org/10.1038/s41591-019-0367-9
  29. U.S. National Library of Medicine. ClinicalTrials.gov. Study of CDX-3379, a human monoclonal antibody targeting ERBB3, in combination with the MEK inhibitor, Trametinib, in patients with advanced stage NRAS mutant and BRAF/NRAS Wildtype (WT) melanoma. https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT03580382
  30. Clinical trial. Phase I study of HL-085 in patients with advanced solid tumor tumors. https://www.wikidata.org/wiki/Q104675844
  31. U.S. National Library of Medicine. ClinicalTrials.gov. MEK and autophagy inhibition in metastatic/locally advanced, unresectable neuroblastoma RAS (NRAS) Melanoma (CHLOROTRAMMEL). https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT03979651
  32. Merchant M, Moffat J, Schaefer G, Chan J, Wang X, Orr C, Cheng J, Cheng J, Hunsaker T, Shao L, et al. Combined MEK and ERK inhibition overcomes therapy-mediated pathway reactivation in RAS mutant tumors. PLoS One. 2017;12(10):e0185862. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0185862
  33. Moschos SJ, Sullivan RJ, Hwu WJ, Ramanathan RK, Adjei A, Fong PC, Shapira-Frommer R, Tawbi HA, Rubino J, Rush TS 3rd, et al. Development of MK-8353, an orally administered ERK1/2 inhibitor, in patients with advanced solid tumors. JCI Insight. 2018;3(4):e92352. https://doi.org/10.1172/jci.insight.92352
  34. Sullivan RJ, Infante JR, Janku F, Wong DJL, Sosman JA, Keedy V, Patel MR, Shapiro GI, Mier JW, Tolcher AW, et al. First-in-class ERK1/2 inhibitor ulixertinib (BVD-523) in patients with MAPK mutant advanced solid tumors: results of a phase I dose-escalation and expansion study. Cancer Discov. 2018;8(2):184-195.  https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-17-1119
  35. U.S. National Library of Medicine. ClinicalTrials.gov. A study of LY3214996 administered alone or in combination with other agents in participants with advanced/metastatic cancer. https://clinicaltrials.gov/show/NCT02857270
  36. U.S. National Library of Medicine. ClinicalTrials.gov. A study of ASN007 in patients with advanced solid tumors. https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT03415126
  37. Barski A, Cuddapah S, Cui K, Roh TY, Schones DE, Wang Z, Wei G, Chepelev I, Zhao K. High-resolution profiling of histone methylations in the human genome. Cell. 2007;129(4):823-837.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2007.05.009
  38. Thomas LR, Miyashita H, Cobb RM, Pierce S, Tachibana M, Hobeika E, Reth M, Shinkai Y, Oltz EM. Functional analysis of histone methyltransferase G9a in B and T lymphocytes. J Immunol. 2008;181(1): 485-493.  https://doi.org/10.4049/jimmunol.181.1.485
  39. Pereira RM, Martinez GJ, Engel I, Cruz-Guilloty F, Barboza BA, Tsagaratou A, Lio CWJ, Berg LJ, Lee Y, Kronenberg M, et al. Jarid2 is induced by TCR signalling and controls iNKT cell maturation. Nat Commun. 2014;5:4540. https://doi.org/10.1038/ncomms5540
  40. Kato S, Weng QY, Insco ML, Chen KY, Muralidhar S, Pozniak J, Diaz JMS, Drier Y, Nguyen N, Lo JA, et al. Gain-of-function genetic alterations of G9a drive oncogenesis. Cancer Discov. 2020;10(7):980-997.  https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-19-0532
  41. Serre C, Busuttil V, Botto JM. Intrinsic and extrinsic regulation of human skin melanogenesis and pigmentation. Int J Cosmet Sci. 2018;40(4):328-347.  https://doi.org/10.1111/ics.12466
  42. Dang NN, Jiao J, Meng X, An Y, Han C, Huang S. Abnormal overexpression of G9a in melanoma cells promotes cancer progression via upregulation of the Notch1 signaling pathway. Aging (Albany NY). 2020;12(3):2393-2407. https://doi.org/10.18632/aging.102750
  43. Porcelli L, Mazzotta A, Garofoli M, Di Fonte R, Guida G, Guida M, Tommasi S, Azzariti A. Active notch protects MAPK activated melanoma cell lines from MEK inhibitor cobimetinib. Biomed Pharmacother. 2021;133:111006. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2020.111006
  44. Ma W, Han C, Zhang J, Song K, Chen W, Kwon H, Wu T. The histone methyltransferase G9a promotes cholangiocarcinogenesis through regulation of the hippo pathway kinase LATS2 and YAP signaling pathway. Hepatology. 2020;72(4):1283-1297. https://doi.org/10.1002/hep.31141
  45. Shao H, Moller M, Cai L, Prokupets R, Yang C, Costa C, Yu K, Le N, Liu ZJ. Converting melanoma-associated fibroblasts into a tumor-suppressive phenotype by increasing intracellular Notch1 pathway activity. PLoS ONE. 2021;16(3):e0248260. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0248260
  46. Du Y, Shao H, Moller M, Prokupets R, Tse YT, Liu ZJ. Intracellular Notch1 signaling in cancer-associated fibroblasts dictates the plasticity and stemness of melanoma stem/initiating cells. Stem Cells. 2019;37(7):865-75.  https://doi.org/10.1002/stem.3013
  47. Maeda K, Hamada JI, Takahashi Y, Tada M, Yamamoto Y, Sugihara T, Moriuchi T. Altered expressions of HOX genes in human cutaneous malignant melanoma. Int J Cancer. 2005;114(3):436-441.  https://doi.org/10.1002/ijc.20706
  48. Li Q, Dong C, Cui J, Wang Y, Hong X. Over-expressed lncRNA HOTAIRM1 promotes tumor growth and invasion through up-regulating HOXA1 and sequestering G9a/EZH2/Dnmts away from the HOXA1 gene in glioblastoma multiforme. J Exp Clin Cancer Res. 2018;37(1):265.  https://doi.org/10.1186/s13046-018-0941-x
  49. Ke XX, Zhang R, Zhong X, Zhang L, Cui H. Deficiency of G9a inhibits cell proliferation and activates autophagy via transcriptionally regulating c-Myc expression in glioblastoma. Front Cell Dev Biol. 2020;8:593964. https://doi.org/10.3389/fcell.2020.593964
  50. Yin C, Ke X, Zhang R, Hou J, Dong Z, Wang F, Zhang K, Zhong X, Yang L, Cui H. G9a promotes cell proliferation and suppresses autophagy in gastric cancer by directly activating mTOR. FASEB J. 2019;33(12):14036-14050. https://doi.org/10.1096/fj.201900233RR
  51. Kelly GM, Al-Ejeh F, McCuaig R, Casciello F, Ahmad Kamal NA, Ferguson B, Pritchard AL, Ali S, Silva IP, Wilmott JS, et al. G9a inhibition enhances checkpoint inhibitor blockade response in melanoma. Clin Cancer Res. 2021;27(9):2624-2635. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-20-3463
  52. Gurney A, Axelrod F, Bond CJ, Cain J, Chartier C, Donigan L, Fischer M, Chaudhari A, Ji M, Kapoun AM, et al. Wnt pathway inhibition via the targeting of Frizzled receptors results in decreased growth and tumorigenicity of human tumors. Proc Natl Acad Sci USA. 2012;109(29):11717-11722. https://doi.org/10.1073/pnas.1120068109
  53. Teixido C, Castillo P, Martinez-Vila C, Arance A, Alos L. Molecular markers and targets in melanoma. Cells. 2021;10(9):2320. https://doi.org/10.3390/cells10092320
  54. Nissan MH, Pratilas CA, Jones AM, Ramirez R, Won H, Liu C, Tiwari S, Kong L, Hanrahan AJ, Yao Z, et al. Loss of NF1 in cutaneous melanoma is associated with RAS activation and MEK dependence. Cancer Res. 2014;74(8):2340-2350. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-13-2625
  55. Dey A, Wong E, Kua N, Teo HL, Tergaonkar V, Lane D. Hexamethylene bisacetamide (HMBA) simultaneously targets AKT and MAPK pathway and represses NF-κappaB activity: implications for cancer therapy. Cell Cycle. 2008;7(23):3759-3767. https://doi.org/10.4161/cc.7.23.7213
  56. Takács A, Lajkó E, Láng O, Istenes I, Kőhidai L. Alpha-lipoic acid alters the antitumor effect of bortezomib in melanoma cells in vitro. Sci Rep. 2020;10(1):14287. https://doi.org/10.1038/s41598-020-71138-z
  57. Croghan GA, Suman VJ, Maples WJ, Albertini M, Linette G, Flaherty L, Eckardt J, Ma C, Markovic SN, Erlichman C. A study of paclitaxel, carboplatin, and bortezomib in the treatment of metastatic malignant melanoma: a phase 2 consortium study. Cancer. 2010;116(14):3463-3468. https://doi.org/10.1002/cncr.25191
  58. Украинская В.М., Рубцов Ю.П., Кнорре В.Д., Масчан М.А., Габибов А.Г., Степанов А.В. Везикулы, секретируемые опухолевыми клетками, и их роль в регуляции противоопухолевого иммунитета. Acta Naturae. 2019;11(4):33-41.  https://doi.org/10.32607/20758251-2019-11-4-33-41
  59. Mulcahy LA, Pink RC, Carter DR. Routes and mechanisms of extracellular vesicle uptake. J Extracell Vesicles. 2014;3.  https://doi.org/10.3402/jev.v3.24641
  60. Homicsko K, Russell K, Voss A, Michielin O. Triple wild type melanoma profiling in the Caris Molecular Intelligence registry. J Clin Oncol. 2015;33(15 suppl):9054. https://doi.org/10.1200/JCO.2015.33.15_SUPPL.9054

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.