Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Жиров А.М.

ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора

Ковалев Д.А.

ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора

Курчева С.А.

ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора

Пономаренко Д.Г.

ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора

Куличенко А.Н.

ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора

CPG олигонуклеотиды как адъюванты вакцин для профилактики инфекционных болезней

Авторы:

Жиров А.М., Ковалев Д.А., Курчева С.А., Пономаренко Д.Г., Куличенко А.Н.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1223 раза


Как цитировать:

Жиров А.М., Ковалев Д.А., Курчева С.А., Пономаренко Д.Г., Куличенко А.Н. CPG олигонуклеотиды как адъюванты вакцин для профилактики инфекционных болезней. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2024;42(3):3‑11.
Zhirov AM, Kovalev DA, Kurcheva SA, Ponomarenko DG, Kulichenko AN. CPG oligonucleotides as vaccine adjuvants for prevention of infectious diseases. Molecular Genetics, Microbiology and Virology. 2024;42(3):3‑11. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/molgen2024420313

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ле­че­ние са­хар­но­го ди­абе­та 1 ти­па. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2025;(8):131-137

Введение

Врожденный иммунитет обеспечивает первую линию активной защиты макроорганизма от патогенов и служит для ограничения их размножения и распространения in vivo. Впоследствии развивается адаптивный иммунный ответ, характеризующийся экспансией антиген-специфических Т- и В-клеток, что приводит к выработке антител (АТ) и образованию цитотоксических Т-клеток, которые обеспечивают элиминацию патогена и формирование иммунологической памяти для защиты от повторного заболевания [1].

Врожденный иммунитет активируется при взаимодействии с чужеродными, эволюционно консервативными молекулярными структурами, называемыми патоген-ассоциированными молекулярными паттернами (ПАМП), которые экспрессируются широким спектром микроорганизмов [2]. Среди белков, распознающих ПАМП, первым был обнаружен и лучше всех охарактеризован рецептор TLR9 [3]. TLR9 экспрессируются на внутриклеточных везикулах (эндоплазматическом ретикулуме, эндосомах и лизосомах), где распознает участки вирусной и бактериальной ДНК, а также синтетические олигодезоксинуклеотиды [4]. Короткие синтетические одноцепочечные олигодезоксинуклеотиды, содержащие неметилированные CpG-динуклеотиды (CpG-ОДН), имитируют бактериальную ДНК и проявляют сходные иммуностимулирующие эффекты.

TLR9 человека в основном экспрессируется B-клетками и плазмацитоидными дендритными клетками (пДК), в то время как у мышей множество миелоидных клеток экспрессируют TLR9 и могут реагировать на стимуляцию CpG. Это различие необходимо учитывать при анализе результатов доклинических исследований и оценке терапевтического потенциала CpG-ОДН в клинических испытаниях [5].

Связывание CpG ДНК с TLR9 вызывает протеолитическое расщепление рецептора аспарагиновой эндопептидазой и/или катепсином [6]. Расщепление эктодомена обеспечивает механизм, с помощью которого активация рецептора ограничивается эндолизосомными компартментами, дополнительно предотвращая реакцию TLR9 на собственную ДНК. Укороченная форма TLR9 затем рекрутирует MyD88, IL-1R-ассоциированной киназы и фактора 6, ассоциированного с рецептором фактора некроза опухоли, и впоследствии включает активацию нескольких MAP-киназ и факторов транскрипции, таких как NF-kB, AP-1 и IRF-7 (рис.). Врожденный иммунный ответ, вызванный активацией TLR, характеризуется продукцией провоспалительных цитокинов, хемокинов, интерферонов I типа и антимикробных пептидов [2].

Активация TLR9 сигнального пути CpG олигонуклеотидами

Как правило, активации TLR9 достаточно, чтобы вызвать пролиферацию B-клеток иммунологической памяти человека, переключение клеток на синтез IgG2a и секрецию антител. В то же время наивные B-клетки слабо экспрессируют TLR9 и не реагируют на CpG-ОДН [7]. Стимуляция АГ через рецептор B-клеток побуждает наивные B-клетки повышать экспрессию TLR9 и приобретать CpG-реактивность [8], что предотвращает нежелательную поликлональную активацию B-клеток.

Изменения в экспрессии генов могут быть обнаружены в течение 30 мин после введения CpG-ОДН in vivo и включают активацию TNF, IL-1β и IL-1α [9]. Экспрессия генов достигает пика через 3 ч после воздействия CpG-ОДН, в это время происходит активация около 1000 генов, относящихся к различным функциональным категориям [1, 10].

Вышеуказанное позволяет предположить, что, имитируя бактериальную ДНК, CpG-ОДН активируют не только врожденную, но и адаптивную иммунную систему, что позволяет рассматривать их в качестве эффективных адъювантов для вакцин против инфекций [11].

Синтетические CpG олигонуклеотиды

Открытие иммуногенных свойств бактериальной ДНК привело к разработке синтетических CpG олигонуклеотидов, различающихся не только нуклеотидной последовательностью, но и спецификой опосредуемых иммуностимулирующих эффектов. Основываясь на особенностях структурных характеристик, а также иммуностимулирующей активности, все CpG-ОДН были разделены на четыре основных типа: классы A, B, C и P.

Класс A (D-ОДН) — представители этого класса являются мощными индукторами IFN-α и активаторами NK-клеток, молекулы которых построены из смешанного фосфодиэфирного / фосфотиоатного остова, содержат один CpG-мотив, окруженный палиндромными последовательностями, и имеют поли-G-хвосты на 3’- и 5’-концах, не устойчивы к воздействию нуклеаз [12]. D-ОДН вызывают созревание пДК, но не влияют на B-клетки [13].

Известно о проведении опытов по капсулированию D-ODN в стабильные вирусоподобные частицы и последующем использовании соответствующих препаратов в качестве адъювантов вакцины в доклинических и клинических исследованиях [14].

Способность индуцировать синтез NO в нейтрофилах характерна для ОДН класса A. Механизм стимуляции синтазы оксида азота, основного источника продукции NO в клетках млекопитающих, связан со специфическим взаимодействием центральной «шпильки» этих олигонуклеотидов с рецептором TLR9, поскольку этот эффект полностью исчезал при нарушении палиндромности или инверсии участков CpG и сохранялся в полностью фосфодиэфирных последовательностях [15].

Класс B (K-ODN) — модифицированные фосфоротиоатные нуклеотидные последовательности с одним или несколькими CpG-мотивами. К K-ODN относятся CpG-ОДН с гексамерной структурой и основной формулой «пурин-пиримидин-C-G-пиримидин-пиримидин» (например, 5’-GTCGTT-3’ и 5’-GACGTT-3’). В отличие от CpG-ОДН класса A, K-ODN резистентны к действию нуклеаз, что приводит к более длительному периоду их полураспада in vivo. Кроме того, представители этого класса активируют B-лимфоциты и индуцируют секрецию фактора некроза опухоли и IL-12, но при этом слабо активируют NK-клетки [12, 13].

Класс C — CpG-ОДН класса C сочетают в себе иммуностимулирующие свойства CpG-ОДН класса A и B, хотя выражены они немного слабее. Подобно K-ОДН, молекулы CpG-ОДН класса C имеют модифицированный фосфоротиоатный остов и стимулируют секрецию IL-6 B-лимфоцитами, но при этом, подобно D-ОДН, также обладают выраженной интерфероногенной активностью [16]. CpG-ОДН класса C присутствуют как в ранних, так и в поздних эндосомах и, таким образом, проявляют общие свойства с K-ОДН и D-ОДН [17].

Класс P представлен мощными индукторами IFN-α, хотя, как и представители CpG-ОДН класса C, они слабо стимулируют активацию B-клеток и пДК. CpG-ОДН класса P содержат две палиндромные последовательности, образующих конкатемеры и/или мультимерные единицы, где каждая молекула связана посредством Уотсон-Криковского спаривания оснований со вторым и третьим палиндромами, фланкирующими CpG динуклеотиды [18].

К обособленному классу синтетических CpG олигонуклеотидов можно отнести ОДН, образующие G-квадруплексную вторичную структуру (G4) за счет связывания квартетов гуаниновых оснований водородными связями. Структуры G4 могут повышать устойчивость молекулы к нуклеазам CpG-ОДН с фосфодиэфирным скелетом. CpG-ОДН гибридного класса G4 с мотивом CpG в центральной петле показали высокий иммуностимулирующий эффект, представители указанного класса CpG легко преодолевают клеточную мембрану [19].

Известно, что поли(dG) мотивы образуют четырехцепочечные спирали, стабилизированные квартетом оснований, называемые G-квадруплексами. Наличие G-квадруплексной структуры в ОДН повышает ее поглощение и увеличивает индукцию IL-12 [20].

Однако следует отметить, что мотив поли(dG), содержащийся в ОДН, может индуцировать иммунную активность независимо от CpG-мотивов и запуска TLR9. Сообщалось, что ОДН, содержащие мотивы поли(dG), ко-стимулируют Т-клетки [21] и активируют литическую активность, а также продукцию IFN-γ естественными киллерами (NK-клетками).

Количество мотивов CpG является одним из параметров, влияющих на эффективность стимуляции TLR9 с помощью G4 CpG-ОДН. Даже при наличии только одного мотива CpG, G4 CpG-ОДН способствуют продукции цитокинов при условии, что мотив CpG пространственно удален от фланкирующих G-трактов. Фосфодиэфирный Y-образный ОДН, содержащий только один мотив CpG, индуцирует продукцию IL-6 и TNF-α в клетках RAW264 [22]. Иммуностимулирующая активность G4 CpG-ОДН усиливается с увеличением количества мотивов CpG. Эта закономерность характерна как для линейных CpG-ОДН [23], так и для ОДН с внутренними структурами [22]. Однако добавление более двух мотивов CpG не оказывает существенного влияния на иммуностимулирующую активность ОДН. Более того, добавление более четырех мотивов CpG к ОДН снижает его активность.

CpG-ОДН в составе препаратов против инфекционных болезней

Разными группами ученых установлено, что CpG-ОДН усиливают гуморальный иммунитет, индуцированный вакцинами против большого числа патогенов с увеличением титров антиген-специфических антител до трех порядков (табл.) [24—26]. Работ об исследованиях вакцин, предназначенных для индукции Т-клеточных ответов, известно значительно меньше, но они также свидетельствуют об эффективности адъювантов CpG-ОДН. Например, на мышиной модели лейшманиоза включение CpG-ОДН в состав вакцины ускоряло образование IFN-γ-секретирующих Т-клеток и увеличивало их количество в 2—3 раза [27].

Таблица. CpG олигонуклеотиды в составе вакцин против инфекционных болезней

№ п/п

Инфекция

Адъювант

Эффект применения CpG адъюванта

Источник

1

Лейшманиоз

TCAACGTTGA; GCTAGACGTTAGCGT

Ускорение образования IFN-γ-секретирующих Т-клеток и увеличение их количества до 3 раз.

[27]

2

Сибирская язва

CpG ODN 1555 GCTAGACGTTAGCGT

Время формирования протективного уровня антител сокращается с 15 до 5 дней.

[28]

CpG ODN 7909

TCGTCGTTTTGTCGTTTTGTCGTT;

квасцы

Увеличение пикового уровня антител в 6—8 раза, время достижения максимальной концентрации антител сокращается с 42 до 21 дня.

[41]

CpG ODN 7909

TCGTCGTTTTGTCGTTTTGTCGTT;

квасцы

Увеличение пикового уровня антител, время достижения максимальной концентрации антител сокращается с 35 до 28 дней.

[49]

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT;

холерный токсин

Повышение уровня IgA и IgG.

[46]

CpG ODN 7909

TCGTCGTTTTGTCGTTTTGTCGTT;

CpG ODN 1555

GCTAGACGTTAGCGT;

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT

Повышение ЛД50 у иммунизированных животных с 3,1·103 спор B. anthracis до 2·105. Приводит к развитию напряженного и продолжительного иммунитета.

[29]

3

Вирус простого герпеса

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT

Индуцируется сильный слизистый и системный Th1-иммунный ответ. Увеличение уровня IgG1 и IgG2c до 4 раз.

[31]

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT

Повышение уровня IgA, увеличивается защита от ВПГ-2.

[32]

CpG ODN 2007

TCGTCGTTGTCGTTTTGTCGTT

Значительное увеличение уровня IgA и IgG.

[33]

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT;

CpG ODN 2007

TCGTCGTTGTCGTTTTGTCGTT;

минеральное масло

Использование адъюванта на основе минерального масла в уменьшенных дозах в сочетании с CpG ODN ослабило повреждение тканей, не снижая при этом величину иммунного ответа.

[43]

4

Респираторно-синцитиальный вирус

CpG ODN 2007

TCGTCGTTGTCGTTTTGTCGTT

Увеличение IFN-γ-секретирующих клеток, повышение уровня IgG2.

[34]

5

Вирус псевдобешенства

GCTAGACGTTAGCGT;

GGGCTAGACGTTAGCGTGGGGG;

TGCATCGATGCAG;

GGTGCATCGATGCAGGGGGG;

TCGTCGTTGTCGTTTTGTCGTT;

GGTCGTCGTTGTCGTTTTGTCGTTGGGGG

Усиление системного (IgG в сыворотке) и мукозального (IgA в кишечнике) иммунного ответа.

[35]

6

Болезнь Ньюкасла

TCGACGTTTGACGTTTGACGTT

Увеличение уровня IgG в 3 раза.

[36]

7

Гепатит B

CpG ODN 7909

TCGTCGTTTTGTCGTTTTGTCGTT;

квасцы

HBsAg-специфические антитела появлялись раньше и были значительно выше. Протективный уровень IgG наблюдался через две недели после первой дозы вакцины.

[39]

1018 ISS

TGACTGTGAACGTTCGAGATGA;

гидроксид алюминия

HBsAg-специфические антитела появлялись раньше и были значительно выше. Протективный уровень антител наблюдался через 7 дней, тогда как после введения одного антигена антитела детектировались через 4 месяца.

[40]

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT

2—4-кратное увеличение продукции IFN-γ и IL-4 у пациентов с хронической инфекцией.

[48]

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT;

квасцы

Полная сероконверсия происходит за 7 дней, при вакцинации комплексами антиген/CpG1826 и антиген/квасцы сероконверсия происходит за 14 дней.

[38]

8

Грипп

CpG ODN 7909

TCGTCGTTTTGTCGTTTTGTCGTT

1/10 дозы вакцины Fluarix с адъювантом приводит к индукции большего количества IFN-γ, чем полная доза вакцины.

[42]

CpG ODN 10104

TCGTCGTTTCGTCGTTTTGTCGTT

Увеличение продукции антител, 20% снижение вирусной активности.

[51]

9

Малярия

CpG ODN 7909

TCGTCGTTTTGTCGTTTTGTCGTT;

гидроксид алюминия

Увеличение уровня AMA1-специфических антител и IFN-γ.

[50]

CpG ODN 1826

TCCATGACGTTCCTGACGTT;

Montanide ISA 51

Значительное снижение паразитарной нагрузки. Увеличение уровня IgG2a и IgG2b.

[44]

У мышей, вакцинированных адсорбированной вакциной против сибирской язвы с CpG адъювантом, защитный иммунитет развивался в 3 раза быстрее, чем у мышей, иммунизированных без адъюванта. При этом формирование защитного уровня антител наблюдалось через 5 дней после введения препарата, без адъюванта — через 15 дней. Комбинация CpG-ОДН с сибиреязвенной вакциной способствовала более раннему формированию IgG против ПА в значительно более высоких титрах [28]. Применение протективного антигена и белка S-слоя ЕА1 сибиреязвенного микроба в сочетании с CpG адъювантом приводит к формированию напряженного и продолжительного иммунитета, а также увеличивает ЛД50 с 3,1·103 до 2·105 спор тест-штамма B. anthracis [29, 30].

Была также исследована способность CpG-ОДН усиливать мукозальный иммунный ответ при местном применении вакцин. У животных, иммунизированных интравагинально вакциной против вируса простого герпеса HSV-2 в сочетании с CpG-ОДН, быстро развился сильный слизистый и системный Th1-иммунный ответ, который защищал от летальной инфекции HSV-2 [31]. Введение CpG-ОДН с рекомбинантным гликопротеином-B HSV интраназально индуцировало значительные уровни гликопротеина B-специфического IgA и анти-ВПГ ЦТЛ в половых путях и защищало мышей от заражения HSV-2 [32]. Конъюнктивальное применение вакцины HSV-1 в сочетании с CpG-ОДН у кроликов способствовало образованию специфических вируснейтрализующих IgA и IgG как в слезной жидкости, так и в сыворотке крови [33].

Как и в ходе доклинических исследований на лабораторных мышах, адъювантный эффект CpG-ОДН наблюдался на нескольких моделях крупных животных. Иммунизация телят вакциной, полученной путем инактивации формалином респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в сочетании с CpG-ОДН, усиливала ответ антиген-специфических антител и снижала количество вируса в легких животных, иммунизированных вакциной без адъюванта [34]. Пероральная вакцинация новорожденных поросят живым аттенуированным вирусом псевдобешенства в сочетании с CpG-ОДН приводила к 18-кратному повышению титров IgG в сыворотке и повышению в 10 раз уровня IgA слизистых оболочек по сравнению с животными, иммунизированными только вирусом [35]. Точно так же CpG-ОДН повышала активность вакцины против болезни Ньюкасла у цыплят, увеличивая антиген-специфический ответ IgG в 3 раза по сравнению с обычной вакциной [36].

Препараты, разрабатываемые для медицинского применения CpG-ОДН, эффективны в качестве адъювантов у приматов. Иммунная система нечеловекообразных приматов распознает и реагирует на все классы CpG-ОДН, которые стимулируют клетки человека [7, 37]. Наблюдаемый иммунный ответ развивался быстрее, антитела имели высокую авидность и обеспечивали большую защиту от сибирской язвы, чем те, которые наблюдались после вакцинации без адъюванта. Сходные реакции наблюдались и у мышей [28]. Также K-ОДН значительно усиливали антиген-специфический ответ IgG в сыворотке у обезьян рода Aotus, иммунизированных противомалярийной вакциной на основе пептидов. Эта эффективная индукция антиген-специфического иммунного ответа была характерна для используемой последовательности, так как контрольные ОДН не влияли на иммуногенность вакцины.

Адъювантную активность CpG-ОДН исследовали путем введения его в комбинации с квасцами. Включение CpG-ОДН улучшало как гуморальный, так и клеточный иммунитет у мышей, особенно Th1-зависимый и цитотоксический иммунный ответ [38]. CpG-ОДН способствовал повышению иммуногенности вакцин на основе квасцов против инфекционных заболеваний, включая гепатит B [39, 40], сибирскую язву [41] и грипп [42]. Также исследованы эффекты применения CpG-ОДН с адьювантами на масляной основе. Агонисты TLR9 в целом усиливают иммунный ответ на вакцинные антигены в составе комплексов Quil A Emulsigen® (эмульсия минерального масла в воде) [43] и Montanide® (эмульсия вода-в-минеральном масле) [44].

Холерный токсин стал ведущим экспериментальным адъювантом для индукции сильного антиген-специфического иммунного ответа слизистой оболочки [45]. Недавние исследования показывают, что сочетание с CpG-ОДН увеличивает эффективность холерного токсина в качестве адъюванта.

Исследования вакцины против сибирской язвы показали, что введение CpG-ОДН с холерным токсином приводило к более высоким титрам антиген-специфических антител по сравнению с иммунизацией с одним из адъювантов [46].

Первой CpG-содержащей вакциной против вируса гепатита B (HBV), завершившей клинические испытания фазы III, была HEPLISAV. Одобренная в настоящее время вакцина требует трех иммунизаций в течение 6 мес для достижения защитных титров антител. При этом у 5—10% иммунизированных лиц не наблюдается защитных титров антител [47]. Включение CpG-ОДН в HEPLISAV улучшает индукцию гуморального и клеточного иммунного ответа.

Другой вариант иммуногенной вакцины против HBV был основан на использовании поверхностного антигена вируса гепатита B (HbsAg), который экспрессируется на поверхности HBV и высвобождается в сыворотку после инфицирования. Доклинические исследования показали, что CpG 2216 и CpG 2395 вызывают 2—4-кратное увеличение продукции IFN-γ и IL-4 у пациентов с хронической инфекцией HBV [48]. Аналогичные результаты наблюдались при оценке CpG 7909 и ISS 1018 в клинических испытаниях: у здоровых добровольцев при иммунизации адъювантной вакциной титры анти-HBV-АГ АТ были выше в 3—10 раз по сравнению с контрольной группой [39, 40]. CpG-ОДН 7909 в дозе 0,5 мг был наиболее эффективным, индуцируя у всех субъектов защитные титры, которые сохранялись до 24-й недели [39].

Вакцина против сибирской язвы адсорбированная («Biothrax», «Cyfendus»), лицензированная в США для иммунизации людей, вводится путем 6 подкожных инъекций в течение 18 мес с последующими ежегодными бустерными прививками.

Результаты клинических испытаний показали, что добавление CpG-ОДН к адсорбированной вакцине против сибирской язвы увеличивает титры сывороточных IgG анти-ПА в 6—8 раз, сокращая время, необходимое для индукции защитного титра, почти на 3 нед [41]. Результаты исследования по оценке двух доз адсорбированной вакцины, введенных внутримышечно, подтверждают, что добавление CpG 7909 значительно улучшило титры АТ и ускорило индукцию иммунитета [49].

Результаты клинических испытаний свидетельствуют, что у добровольцев наблюдался значительно более сильный иммунный ответ на малярийные антигены, которые вводили совместно с CpG-ОДН [50].

Проведенные испытания на некоторых животных моделях показали, что добавление CpG-ОДН к лицензированным противогриппозным вакцинам улучшает их иммуногенность [51]. Например, добавление CpG-ОДН к вакцине против гриппа человека Fluviral (включая антигены A/Сидней, A/Пекин и B/Харбин) индуцировало более высокие титры вирус-специфичных антител, что приводило к лучшей защите у хорьков, о чем свидетельствует снижение вирусной активности на 20% по сравнению с вакциной без адъюванта [51].

Безопасность

Профиль безопасности CpG-ОДН широко исследовали на грызунах, нечеловекообразных приматах и людях. Установлено, что иммунная стимуляция, вызванная CpG олигонуклеотидами, может снижать апоптотическую гибель стимулированных лимфоцитов, индуцировать активацию поликлональных B-клеток и увеличивать продукцию ауто-АТ и провоспалительных цитокинов [51]. Все эти эффекты могут увеличить риск аутоиммунных заболеваний [52]. Чтобы установить масштабы этой проблемы, были проведены эксперименты in vivo, в которых мышам многократно вводили иммуностимулирующие дозы ДНК CpG. Хотя количество B-клеток, секретирующих IgG анти-ДНК, увеличилось в 2—3 раза, а титры антител IgG к ДНК в сыворотке увеличились на 60%, величина этих эффектов была недостаточной, чтобы вызвать аутоиммунные реакции [53].

Другой результат наблюдался в случае органоспецифических аутоиммунных заболеваний, которым обычно способствует тип ответа Th1, предпочтительно вызываемый ДНК CpG. В IL-12-зависимой модели экспериментального аллергического энцефаломиелита (имитирующего рассеянный склероз) у животных, получавших CpG-ДНК, а затем зараженных ауто-АГ, формировались аутореактивные эффекторные Th1-клетки [54]. В модели молекулярной мимикрии CpG-ДНК совместно с антигеном, полученным из хламидий, способствовали индукции аутоиммунного миокардита [55]. Установлено также, что CpG-ОДН повышают восприимчивость мышей к артриту [56]. Эти данные указывают на то, что мотивы CpG могут при определенных обстоятельствах способствовать развитию аутоиммунных реакций.

Проведение очередного этапа клинического испытания с использованием CpG-ОДН в качестве адъюванта для вакцины против гепатита B было остановлено, когда у одного субъекта развился гранулематоз Вегенера — аутоиммунное заболевание, характеризующееся воспалением сосудистой системы [57]. Принимая во внимание отсутствие значимых различий в частоте аутоиммунных заболеваний между реципиентами HEPLISAV и реципиентами вакцины Engerix-B с квасцовым адъювантом, консультативный комитет FDA заключил, что HEPLISAV не вызывает опасений по поводу безопасности его применения [57]. Поскольку имеются многочисленные сообщения о развитии васкулита после введения обычной вакцины против гепатита [58], значение и причинно-следственную связь этого единичного события трудно оценить.

Бактериальный токсический шок могут вызвать повторные воздействия на инфицированный макроорганизм липополисахарида и D-галактозамина [59]. Токсический шок наблюдался у мышей после введения CpG-ОДН в сочетании с сублетальными дозами липополисахарида и у животных, предварительно сенсибилизированных D-галактозамином [4, 60]. Однако токсический шок у лабораторных животных не наблюдался при введении CpG-ОДН в концентрациях, характерных для вакцинных препаратов [61].

Данные клинических испытаний показывают, что CpG-ОДН относительно безопасны при использовании в качестве адъювантов вакцин. Вакцинные препараты и соответствующие препараты с адъювантом CpG по профилю безопасности, как правило, значимо не отличаются [40]. Тем не менее в нескольких исследованиях было отмечено повышение частоты и/или тяжести местных нежелательных явлений (НЯ) (реакций в месте инъекции, таких как боль, отек, уплотнение, зуд и эритема) и системных симптомов (включая гриппоподобные симптомы) при использовании вакцин с CpG адъювантом. Большинство НЯ, о которых сообщалось в клинических исследованиях, были легкой или средней степени тяжести, появлялись в течение 24 ч после приема препарата и сохранялись несколько дней. В одном двойном слепом плацебо-контролируемом исследовании с участием ВИЧ-инфицированных взрослых добровольцев инъекция PPV-23 привела к значительно более высокой частоте гриппоподобных симптомов в сочетании с CpG-ОДН по сравнению с вакциной без адъюванта (37 из 41 против 2 из 41 участников) [62]. В общей сложности у 75,6% субъектов, вакцинированных CpG-ОДН плюс PPV-23, развились НЯ, классифицированные как умеренные-тяжелые по интенсивности, и один субъект был госпитализирован с лихорадкой и недомоганием в течение 5 дней. Напротив, гриппоподобные симптомы были редкостью среди тех, кто получал только PPV-23. Возможно, что повышенная реактогенность, обнаруженная с адъювантной вакциной, отражает синергизм между CpG-ОДН и ПАМП бактериальной клеточной стенки, присутствующими в вакцине PPV-23 [63].

В ходе клинических исследований HEPLISAV около 5000 пациентов получили препарат, содержащий CpG-ОДН. Общие НЯ включали местные реакции в месте инъекции (эритема, отек, воспаление и боль) или системные гриппоподобные симптомы (головная боль, озноб, тошнота и лихорадка) [12]. Эти симптомы обычно развивались в течение 24 ч после введения вакцины и были проходящими, длящимися менее двух дней. За некоторыми исключениями, они были легкой и средней степени тяжести (1/2 балла по Общепринятым терминологическим критериям). Серьезных НЯ, связанных с введением HEPLISAV здоровым взрослым людям, не отмечено [61].

Заключение

Создание эффективных вакцин против инфекций — актуальная цель биомедицинских исследований. Результаты исследований показывают, что CpG-ОДН усиливают гуморальный и клеточный иммунные ответы при введении вакцины здоровым людям. CpG-ОДН ускоряют индукцию специфических иммуноглобулинов и способствуют образованию более высоких и стойких титров антител при использовании совместно с белковыми вакцинами. Лучше всего это продемонстрировали обширные испытания вакцин против сибирской язвы и гепатита B. Важным преимуществом использования CpG-ОДН в качестве адъюванта является повышение активности адаптивного иммунитета даже у субъектов с ослабленной иммунной системой, значительно улучшая реакцию на вакцину.

CpG-ОДН активируют врожденную иммунную систему, связываясь с родственными им рецепторами TLR-9 внутри клетки. Иммунный ответ характеризуется продукцией Th1, провоспалительных цитокинов, хемокинов, и поддерживает индукцию адаптивного иммунного ответа в присутствии АГ CpG-ОДН. CpG-ОДН также улучшают антиген-презентирующую функцию ДК, моноцитов и макрофагов, индуцирует пролиферацию B-клеток и косвенно стимулирует активность естественных киллеров. Эти разнообразные эффекты подтверждают способность CpG-ОДН действовать в качестве адъювантов вакцин, индуцируя быстрые, сильные, более высокие аффинные и продолжительные гуморальные и клеточные иммунные ответы.

Прогресс в разработке терапевтических CpG-ОДН включает в себя не только поиск новых классов CpG-ОДН и улучшение активности уже известных, но и определение механизмов действия ОДН на отдельные элементы иммунной системы. Еще одним важным направлением исследований является изучение способов доставки и применение CpG-ОДН в сочетании с другими адъювантами, включая лиганды, нацеленные на другие TLR. Такие комбинации могут стать мощным средством повышения иммуногенности вакцин.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Paul W.E. Fundamental immunology. 7th ed, Lippincott Williams & Wilkins; 2012.
  2. Akira S., Uematsu S., Takeuchi O. Pathogen Recognition and Innate Immunity. Cell. 2006;124(4):783-801.  https://doi.org/10.1016/j.cell.2006.02.015
  3. Wagner H. Bacterial CpG DNA activates immune cells to signal infectious danger. Advances in immunology. 1999;73:329-368.  https://doi.org/10.1016/s0065-2776(08)60790-7
  4. Barton G.M., Kagan J.C., Medzhitov R. Intracellular localization of Toll-like receptor 9 prevents recognition of self DNA but facilitates access to viral DNA. Nature immunology. 2006;7(1):49-56.  https://doi.org/10.1038/ni1280
  5. Iwasaki A., Medzhitov R. Toll-like receptor control of the adaptive immune responses. Nature immunology. 2004;5(10):987-995.  https://doi.org/10.1038/ni1112
  6. Ewald S.E., Engel A., Lee J., Wang M., Bogyo M., Barton G.M. Nucleic acid recognition by Toll-like receptors is coupled to stepwise processing by cathepsins and asparagine endopeptidase. Journal of Experimental Medicine. 2011;208(4):643-651.  https://doi.org/10.1084/jem.20100682
  7. Hartmann G., Weeratna R.D., Ballas Z.K., Payette P., Blackwell S., Suparto I. et al. Delineation of a CpG phosphorothioate oligodeoxynucleotide for activating primate immune responses in vitro and in vivo. The Journal of Immunology. 2000;164(3):1617-1624. https://doi.org/10.4049/jimmunol.164.3.1617
  8. Eckl-Dorna J., Batista F.D. BCR-mediated uptake of antigen linked to TLR9 ligand stimulates B-cell proliferation and antigen-specific plasma cell formation. Blood, The Journal of the American Society of Hematology. 2009;113(17):3969-3977. https://doi.org/10.1182/blood-2008-10-185421
  9. Klaschik S., Tross D., Klinman D.M. Inductive and suppressive networks regulate TLR9-dependent gene expression in vivo. Journal of leukocyte biology. 2009;85(5):788-795.  https://doi.org/10.1189/jlb.1008671
  10. Klaschik S., Tross D., Shirota H., Klinman D.M. Short and long-term changes in gene expression mediated by the activation of TLR9. Molecular immunology. 2010;47;(6):1317-1324. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2009.11.014
  11. Kuwajima S., Sato T., Ishida K., Tada H., Tezuka H., Ohteki T. Interleukin 15-dependent crosstalk between conventional and plasmacytoid dendritic cells is essential for CpG-induced immune activation. Nature immunology. 2006;7(7):740-746.  https://doi.org/10.1038/ni1348
  12. Verthelyi D., Ishii K.J., Gursel M., Takeshita F., Klinman D.M. Human peripheral blood cells differentially recognize and respond to two distinct CpG motifs. The Journal of Immunology. 2001;166(4):2372-2377. https://doi.org/10.4049/jimmunol.166.4.2372
  13. Krug A., Rothenfusser S., Hornung V., Jahrsdörfer B., Blackwell S., Ballas Z.K. et al. Identification of CpG oligonucleotide sequences with high induction of IFN-alpha/beta in plasmacytoid dendritic cells. European journal of immunology. 2001;31(7):2154-2163. https://doi.org/10.1002/1521-4141(200107)31:7<2154::AID-IMMU2154>3.0.CO;2-U
  14. Speiser D.E., Schwarz K., Baumgaertner P., Manolova V., Devevre E., Sterry W. et al. Memory and effector CD8 T-cell responses after nanoparticle vaccination of melanoma patients. Journal of Immunotherapy. 2010;33(8):848-858.  https://doi.org/10.1097/cji.0b013e3181f1d614
  15. Golenkina E.A., Galkina S.I., Viryasova G.M., Sud’ina G.F. The Pro-Oxidant Effect of Class A CpG ODNs on Human Neutrophils Includes Both Non-Specific Stimulation of ROS Production and Structurally Determined Induction of NO Synthesis. Oxygen. 2023;3:20-31.  https://doi.org/10.3390/oxygen3010002
  16. Marshall J.D., Fearon K., Abbate C., Subramanian S., Yee P., Gregorio J. et al. Identification of a novel CpG DNA class and motif that optimally stimulate B cell and plasmacytoid dendritic cell functions. Journal of leukocyte biology. 2003;73(6):781-792.  https://doi.org/10.1189/jlb.1202630
  17. Guiducci C., Ott G., Chan J.H., Damon E., Calacsan C., Matray T. et al. Properties regulating the nature of the plasmacytoid dendritic cell response to Toll-like receptor 9 activation. The Journal of experimental medicine. 2006;203(8):1999-2008. https://doi.org/10.1084/jem.20060401
  18. Samulowitz U., Weber M., Weeratna R., Uhlmann E., Noll B., Krieg A.M., Vollmer J. A Novel Class of Immune-Stimulatory CpG Oligodeoxynucleotides Unifies High Potency in Type I Interferon Induction with Preferred Structural Properties. Oligonucleotides. 2010;20(2):93-101.  https://doi.org/10.1089/oli.2009.0210
  19. Hao F., Ma Y., Guan Y. Effects of Central Loop Length and Metal Ions on the Thermal Stability of G-Quadruplexes. Molecules. 2019;24(10):1863. https://doi.org/10.3390/molecules24101863
  20. Lee S.W., Song M.K., Baek K.H., Park Y., Kim J.K., Lee C.H. et al. Effects of a hexameric deoxyriboguanosine run conjugation into CpG oligodeoxynucleotides on their immunostimulatory potentials. The Journal of Immunology. 2000;165(7):3631-3631. https://doi.org/10.4049/jimmunol.165.7.3631
  21. Lipford G.B., Bendigs S., Heeg K., Wagner H. Poly-guanosine motifs costimulate antigen-reactive CD8 T cells while bacterial CpG-DNA affect T-cell activation via antigen-presenting cell-derived cytokines. Immunology. 2000;101(1):46-52.  https://doi.org/10.1046/j.1365-2567.2000.00077.x
  22. Nishikawa M., Matono M., Rattanakiat S., Matsuoka N., Takakura Y. Enhanced immunostimulatory activity of oligodeoxynucleotides by Y-shape formation. Immunology. 2008;124(2):247-255.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2567.2007.02762.x
  23. Meng W., Yamazaki T., Nishida Y., Hanagata N. Nuclease-resistant immunostimulatory phosphodiester CpG oligodeoxynucleotides as human Toll-like receptor 9 agonists. BMC Biotechnology. 2011;11(1):88.  https://doi.org/10.1186/1472-6750-11-88
  24. Половинкина В.С., Марков Е.Ю. Структура и Иммуноадъювантные свойства CpG-ДНК. Медицинская иммунология. 2010;12(6):469-476.  https://doi.org/10.15789/1563-0625-2010-6-469-476
  25. Беседнова Н.Н., Макаренова И.Д, Федянина Л.Н., Авдеева Ж.И., Крыжановский С.П., Кузнецова Т.А., Запорожец Т.С. Дезоксирибонуклеиновая кислота про- и эукариот в профилактике инфекционных болезней. Антибиотики и химиотерапия. 2018;63(5-6):52-67. 
  26. Семакова А.П., Микшис Н.И. Адъювантные технологии в создании современных вакцин. Проблемы особо опасных инфекций. 2016;(2):28-35.  https://doi.org/10.21055/0370-1069-2016-2-28-35
  27. Mendez S., Tabbara K., Belkaid Y., Bertholet S., Verthelyi D., Klinman D. et al. Coinjection with CpG-Containing Immunostimulatory Oligodeoxynucleotides Reduces the Pathogenicity of a Live Vaccine against Cutaneous Leishmaniasis but Maintains Its Potency and Durability. Infection and immunity. 2003;71(9):5121-5129. https://doi.org/10.1128/iai.71.9.5121-5129.2003
  28. Klinman D.M., Currie D., Lee G., Grippe V., Merkel T. Systemic but not mucosal immunity induced by AVA prevents inhalational anthrax. Microbes and infection. 2007;9(12-13):1478-1483. https://doi.org/10.1016/j.micinf.2007.08.002
  29. Кудрявцева О.М., Семакова А.П., Микшис Н.И., Попова П.Ю., Кожевников В.А., Степанов А.В., Бугорков С.А. Иммунологическая эффективность и безопасность синтезированных олигонуклеотидов CpG. Биотехнология. 2018;34(1):35-41.  https://doi.org/10.21519/0234-2758-2018-34-1-35-44
  30. Микшис Н.И., Семакова А.П., Попова П.Ю., Кудрявцева О.М., Бугоркова С.А., Комиссаров А.В и др. Определение соответствия прототипа рекомбинантной сибиреязвенной вакцины требованиям, предъявляемым к иммунобиологическим препаратам. Инфекция и иммунитет. 2018;8(3):388-392.  https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-388-392
  31. Tengvall S., Lundqvist A., Eisenberg R.J., Cohen G.H., Harandi A.M. Mucosal administration of CpG oligodeoxynucleotide elicits strong CC and CXC chemokine responses in the vagina and serves as a potent Th1-tilting adjuvant for recombinant gD2 protein vaccination against genital herpes. Journal of virology. 2006;80(11):5283-5291. https://doi.org/10.1128/jvi.02013-05
  32. Gallichan W.S., Woolstencroft R.N., Guarasci T., McCluskie M.J., Davis H.L., Rosenthal K.L. Intranasal immunization with CpG oligodeoxynucleotides as an adjuvant dramatically increases IgA and protection against herpes simplex virus-2 in the genital tract. The Journal of Immunology. 2001;166(5):3451-3457. https://doi.org/10.4049/jimmunol.166.5.3451
  33. Nesburn A.B., Ramos T.V., Zhu X., Asgarzadeh H., Nguyen V., BenMohamed L. Local and systemic B cell and Th1 responses induced following ocular mucosal delivery of multiple epitopes of herpes simplex virus type 1 glycoprotein D together with cytosine-phosphate-guanine adjuvant. Vaccine. 2005;23(7):873-883.  https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2004.08.019
  34. Mapletoft J.W., Oumouna M., Townsend H.G., Gomis S., Babiuk L.A., evan Drunen Littel-van den Hurk S. Formulation with CpG oligodeoxynucleotides increases cellular immunity and protection induced by vaccination of calves with formalin-inactivated bovine respiratory syncytial virus. Virology. 2006;353(2):316-323.  https://doi.org/10.1016/j.virol.2006.06.001
  35. Linghua Z., Xingshan T., Fengzhen Z. In vivo oral administration effects of various oligodeoxynucleotides containing synthetic immunostimulatory motifs in the immune response to pseudorabies attenuated virus vaccine in newborn piglets. Vaccine. 2008;26(2):224-233.  https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2007.10.058
  36. Linghua Z., Xingshan T., Fengzhen Z. Vaccination with Newcastle disease vaccine and CpG oligodeoxynucleotides induces specific immunity and protection against Newcastle disease virus in SPF chicken. Veterinary immunology and immunopathology. 2007;115(3-4):216-222.  https://doi.org/10.1016/j.vetimm.2006.10.017
  37. Verthelyi D., Wang V.W., Lifson J.D., Klinman D.M. CpG oligodeoxynucleotides improve the response to hepatitis B immunization in healthy and SIV-infected rhesus macaques. Aids. 2004;18(7):1003-1008. https://doi.org/10.1097/00002030-200404300-00007
  38. Millan C.L.B., Weeratna R., Krieg A.M., Siegrist C.-A., Davis H.L. CpG DNA can induce strong Th1 humoral and cell-mediated immune responses against hepatitis B surface antigen in young mice. Proceedings of the National Academy of Sciences. 1998;95(26):15553-15558. https://doi.org/10.1073/pnas.95.26.15553
  39. Cooper C., Davis H., Morris M., Efler S., Adhami M., Krieg A. et al. CpG 7909, an immunostimulatory TLR9 agonist oligodeoxynucleotide, as adjuvant to Engerix-B HBV vaccine in healthy adults: a double-blind phase I/II study. Journal of clinical immunology. 2004:24(6):693-701.  https://doi.org/10.1007/s10875-004-6244-3
  40. Halperin S.A., Van Nest G., Smith B., Abtahi S., Whiley H., Eiden J.J. A phase I study of the safety and immunogenicity of recombinant hepatitis B surface antigen co-administered with an immunostimulatory phosphorothioate oligonucleotide adjuvant. Vaccine. 2003:21(19-20):2461-2467. https://doi.org/10.1016/s0264-410x(03)00045-8
  41. Rynkiewicz D., Rathkopf M., Sim I., Waytes A.T., Hopkins R.J., Giri L., et al. Marked enhancement of the immune response to BioThrax® (Anthrax Vaccine Adsorbed) by the TLR9 agonist CPG 7909 in healthy volunteers. Vaccine. 2011;29(37):6313-6320. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.05.047
  42. Cooper C., Davis H., Morris M., Efler S., Krieg A., Li Y. et al. Safety and immunogenicity of CPG 7909 injection as an adjuvant to Fluarix influenza vaccine. Vaccine. 2004;22(23-24):3136-3143. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2004.01.058
  43. Ioannou X.P., Gomis S.M., Karvonen B., Hecker R., Babiuk L., van Drunen Littel-van den Hurk S. CpG-containing oligodeoxynucleotides, in combination with conventional adjuvants, enhance the magnitude and change the bias of the immune responses to a herpesvirus glycoprotein. Vaccine. 2002;21(1-2):127-137.  https://doi.org/10.1016/s0264-410x(02)00378-x
  44. Kumar S., Jones T.R., Oakley M.S., Zheng H., Kuppusamy S.P., Taye A., et al. CpG Oligodeoxynucleotide and Montanide ISA 51 Adjuvant Combination Enhanced the Protective Efficacy of a Subunit Malaria Vaccine. Infection and Immunity. 2004;72(2):949-957.  https://doi.org/10.1128/iai.72.2.949-957.2004
  45. Nashar T.O., Amin T., Marcello A., Hirst T.R. Current progress in the development of the B subunits of cholera toxin and Escherichia coli heat-labile enterotoxin as carriers for the oral delivery of heterologous antigens and epitopes. Vaccine. 1993;11(2):235-240.  https://doi.org/10.1016/0264-410x(93)90023-q
  46. Boyaka P.N., Tafaro A., Fischer R., Leppla S.H., Fujihashi K., McGhee J.R. Effective mucosal immunity to anthrax: neutralizing antibodies and Th cell responses following nasal immunization with protective antigen. The Journal of Immunology. 2003;170(11):5636-5643. https://doi.org/10.4049/jimmunol.170.11.5636
  47. Kuan R.K., Janssen R., Heyward W., Bennett S., Nordyke R. Cost-effectiveness of hepatitis B vaccination using HEPLISAV™ in selected adult populations compared to Engerix-B® vaccine. Vaccine. 2013;31(37):4024-4032. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2013.05.014
  48. Wang S., Han Q., Zhang G., Zhang N., Li Z., Chen J. ett al. CpG oligodeoxynucleotide-adjuvanted fusion peptide derived from HBcAg epitope and HIV-Tat may elicit favorable immune response in PBMCs from patients with chronic HBV infection in the immunotolerant phase. International immunopharmacology. 2011;11(4):406-411.  https://doi.org/10.1016/j.intimp.2010.12.005
  49. Hopkins R.J., Daczkowski N.F., Kaptur P.E., Muse D., Sheldon E., LaForce C. et al. Randomized, double-blind, placebo-controlled, safety and immunogenicity study of 4 formulations of Anthrax Vaccine Adsorbed plus CPG 7909 (AV7909) in healthy adult volunteers. Vaccine. 2013;31(30):3051-3058. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2013.04.063
  50. Duncan C.J., Sheehy S.H., Ewer K.J., Douglas A.D., Collins K.A., Halstead F.D. et al. Impact on malaria parasite multiplication rates in infected volunteers of the protein-in-adjuvant vaccine AMA1-C1/Alhydrogel+CPG 7909. PloS one. 2011;6(7):e22271. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0022271
  51. Fang Y., Rowe T., Leon A.J., Banner D., Danesh A., Xu L.et al. Molecular Characterization of In Vivo Adjuvant Activity in Ferrets Vaccinated against Influenza Virus. Journal of virology. 2010;84(17):8369-8388. https://doi.org/10.1128/jvi.02305-09
  52. Yi A.-K., Hornbeck P., Lafrenz D.E., Krieg A.M. CpG DNA rescue of murine B lymphoma cells from anti-IgM-induced growth arrest and programmed cell death is associated with increased expression of c-myc and bcl-xL. The Journal of Immunology. 1996;157(11):4918-4925.
  53. Gilkeson G.S., Conover J., Halpern M., Pisetsky D.S., Feagin A., Klinman D.M. Effects of bacterial DNA on cytokine production by (NZB/NZW)F1 mice. The Journal of Immunology. 1998;161(8):3890-3895.
  54. Segal B.M., Chang J.T., Shevach E.M. CpG oligonucleotides are potent adjuvants for the activation of autoreactive encephalitogenic T cells in vivo. The Journal of Immunology. 2000;164(11):5683-5688. https://doi.org/10.4049/jimmunol.164.11.5683
  55. Bachmaier K., Neu N., La Maza L.M. de, Pal S., Hessel A., Penninger J.M. Chlamydia infections and heart disease linked through antigenic mimicry. Science. 1999;283(5406):1335-1339. https://doi.org/10.1126/science.283.5406.1335
  56. Zeuner R.A., Verthelyi D., Gursel M., Ishii K.J., Klinman D.M. Influence of stimulatory and suppressive DNA motifs on host susceptibility to inflammatory arthritis. Arthritis & Rheumatism: Official Journal of the American College of Rheumatology. 2003;48(6):1701-1707. https://doi.org/10.1002/art.11035
  57. DeFrancesco L. Dynavax trial halted. Nature Biotechnology. 2008;26(5):484-485.  https://doi.org/10.1038/nbt0508-484a
  58. Le Hello C., Cohen P., Bousser M., Letellier P., Guillevin L. Suspected hepatitis B vaccination related vasculitis. The Journal of Rheumatology. 1999;26(1):191-194. 
  59. Opal S.M. Endotoxins and other sepsis triggers. Contributions to nephrology. 2010;167:14-24.  https://doi.org/10.1159/000315915
  60. Cowdery J.S., Chace J.H., Yi A.-K., Krieg A.M. Bacterial DNA induces NK cells to produce IFN-gamma in vivo and increases the toxicity of lipopolysaccharides. The Journal of Immunology. 1996;156(12):4570-4575.
  61. Krieg A.M., Efler S.M., Wittpoth M., Al Adhami M.J., Davis H.L. Induction of Systemic TH1-Like Innate Immunity in Normal Volunteers Following Subcutaneous but Not Intravenous Administration of CPG 7909, a Synthetic B-Class CpG Oligodeoxynucleotide TLR9 Agonist. Journal of Immunotherapy. 2004;27(6):460-471.  https://doi.org/10.1097/00002371-200411000-00006
  62. Søgaard O.S., Lohse N., Harboe Z.B., Offersen R., Bukh A.R., Davis H.L et al. Improving the immunogenicity of pneumococcal conjugate vaccine in HIV-infected adults with a toll-like receptor 9 agonist adjuvant: a randomized, controlled trial. Clinical infectious diseases. 2010;51(1):42-50.  https://doi.org/10.1086/653112
  63. Sen G., Khan A.Q., Chen Q., Snapper C.M. In vivo humoral immune responses to isolated pneumococcal polysaccharides are dependent on the presence of associated TLR ligands. The Journal of Immunology. 2005;175(5):3084-3091. https://doi.org/10.4049/jimmunol.175.5.3084

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.