Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Семенков А.В.

ГБУЗ Московской области «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского»;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Суббот В.С.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Юрьев Д.Ю.

ГБУЗ Московской области «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского»

Видеофлуоресцентная навигация при паренхимосохранных резекциях печени с использованием отечественной системы флуоресцентной визуализации

Авторы:

Семенков А.В., Суббот В.С., Юрьев Д.Ю.

Подробнее об авторах

Прочитано: 974 раза


Как цитировать:

Семенков А.В., Суббот В.С., Юрьев Д.Ю. Видеофлуоресцентная навигация при паренхимосохранных резекциях печени с использованием отечественной системы флуоресцентной визуализации. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2024;(5):65‑74.
Semenkov AV, Subbot VS, Yuriev DY. Videofluorescence navigation during parenchymal-sparing liver resections using a domestic fluorescence imaging system. Pirogov Russian Journal of Surgery. 2024;(5):65‑74. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/hirurgia202405165

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Современное развитие гепатопанкреатобилиарной хирургии основывается на теоретических и клинических данных, позволяющих минимизировать риски, связанные с хирургическими вмешательствами на печени [1, 2]. Особое значение приобретает растущая популярность паренхимосохранных операций. Действительно, максимально возможное сохранение функциональной паренхимы печени, гипотетически сопряжено с залогом хороших исходов проводимого лечения, в том числе у пациентов, оперированных по поводу онкологических диагнозов, когда печень может быть дополнительно скомпрометирована проведением системной терапии. Применение продленного и этапного хирургического лечения с использованием различных хирургических опций вносит дополнительный вклад в возможность лечения пациентов, ранее считавшихся инкурабельными. Открытыми остаются вопросы онкологической радикальности и безопасности подобного рода хирургических вмешательств, когда требуется применять методы оценки соответствия этим критериям лечения [2]. Наиболее ярко такой подход был продемонстрирован в хирургии распространенных колоректальных метастазов печени, где практикуется лечение по двухфазной схеме. За фазой эскалации — терапевтической агрессии — следует фаза деэскалации со снижением агрессивности проводимого лечения для сохранения достигнутых успехов терапии и повышения показателя выживаемости. При этом количество метастатических поражений не ограничено, при условии, что объем вмешательства не приводит к летальной печеночной недостаточности.

Паренхимосохраняющая хирургия (ПСХ) — это стратегия деэскалации, которая нацелена только на метастазы с минимизацией риска стимуляции роста опухоли и возможностью проведения итеративных хирургических вмешательств. Кроме того, уменьшение потерь здоровой паренхимы повышает толерантность печени к интервальной химиотерапии.

Для обеспечения стратегии сокращения масштабов резекционных вмешательств в специализированных гепатобилиарных центрах были разработаны различные подходы, направленные на предпочтительное выполнение малых резекций печени по сравнению с обширными резекционными вмешательствами [3, 4]. Технически при ПСХ может быть использован любой тип резекций, без или с использованием интраоперационной абляции, для достижения главной задачи — уменьшения метастатической нагрузки [1].

В публикациях, посвященных паренхимосохранным хирургическим вмешательствам, даются различные определения такого рода вмешательствам, что вносит определенную путаницу [1, 5, 6—11]. Теоретически паренхимосохранные вмешательства в рамках хирургической деэкскалации могут включать большое количество процедур: одиночные и множественные клиновидные резекции печени, анатомические резекции одного или двух сегментов и ограниченные по объему неанатомические резекции, множественные метастазэктомии с одной стороны и, возможно, более сложные резекции при расположении опухолей глубоко в паренхиме и контакте с крупными внутрипеченочными сосудистыми структурами [1, 2, 5, 12—14]. Все перечисленные процедуры могут сочетаться с интраоперационной абляцией [15].

В конце 1980-х годов предполагалось, что ни один пациент, прооперированный более чем с четырьмя метастазами в печени, не проживет более 3 лет. Однако в последующем были использованы более агрессивные подходы с расширением диапазона показаний для все более распространенных стадий заболеваний. В конечном итоге показания к резекциям изменились, и теперь основное внимание уделяется сохранению достаточного количества функциональной паренхимы [1], а объем метастатического поражения перестал быть абсолютно лимитирующим фактором. G. Torzilli и соавт. сообщают об удалении до 50 глубоко расположенных очаговых образований печени за одну операцию [12].

Основываясь на новых знаниях в области биологии опухолей и в процессе деэскалации хирургических вмешательств, хирургическая стратегия превратилась в нацеленность на удаление только метастазов в печени с минимальным отступом от края опухоли при минимизации объема резекции для сохранения «неопухолевой» или здоровой паренхимы печени [2, 16—19]. Онкологический клиренс перитуморального края также последовательно увеличивался с более чем 2 см до 1 см, 2 мм, менее 1 мм и, наконец, до 0 мм и даже положительного сосудистого края (сосудистый R1) [2, 20—23].

Другим аспектом выбора в пользу паренхимосохранных резекций и отказа от обширных резекций печени является концепция возможного микрометастазирования. Одним из теоретических обоснований такого подхода считается гипотеза о синхронности всех метастаз с первичной опухолью [24]. Полагается, что метахронное метастазирование — это следствие отсутствия иммунного надзора за дремлющими микрометастатическими поражениями [24], которые присутствуют на ранней стадии заболевания. Микрометастазы могут быть распространены в различные сегменты печени уже на начальных этапах заболевания и не выявляются при инструментальных методах исследования. В соответствии с этой гипотезой увеличение объема резекции — одноразовая стратегия, которая не сопряжена с улучшением результатов лечения.

Так, с одной стороны, регенеративные свойства печени обеспечивают уникальные хирургические возможности, когда селективная окклюзия участков с метастатическим поражением позволяет вызвать гипертрофию ремнанта печени и минимизировать риск послеоперационной печеночной недостаточности при сложных, обширных по объему одно- или двухэтапных хирургических вмешательствах [25], с другой стороны, определяют повышение риска запуска роста остаточных микрометастазов [25].

Отчасти возможность реализации таких подходов осуществилась за счет улучшения результатов системного контроля на фоне появления и эффективного использования системного контроля онкологического процесса при использовании нескольких линий химиотерапии и таргетной терапии. Однако за эту эффективность системного лечения приходится расплачиваться гепатотоксичностью, сопряженной с увеличением заболеваемости и смертности при необходимости выполнения расширенных резекций [26].

В этом случае выбор паренхимосохранных вариантов хирургических пособий, направленных на выявление и удаление множественных метастазов, вне зависимости от их расположения в органе, при условии соблюдения прецизионной техники, направленной на сохранение максимального количества неизмененной паренхимы с максимально возможным сохранением паренхиматозного резерва, для потенциально итеративных хирургических вмешательств, по аналогии с повторными системными химиотерапевтическими воздействиями, ориентирован на возможное увеличение продолжительности жизни [1].

В некоторых исследованиях отмечалось, что паренхимосохранные вмешательства демонстрировали хорошие результаты как при больших, так и при малых резекция, при условии, что резецируется лишь небольшая часть нормальной паренхимы [6].

При этом высококачественная визуализация имеет решающее значение для разработки и планирования успешных паренхимосохранных онкохирургических вмешательств на печени [2]. Несмотря на пересмотр данных о необходимом хирургическом клиренсе [2, 20—23], позиция о целесообразности обеспечения онкологической радикальности с выполнением R0-резекции остается ключевым моментом планирования хирургического пособия. Интраоперационная навигация при выполнении резекции позволяет не только провести паренхимосберегающую процедуру за счет более экономной резекции [27, 28], но и обеспечить R0-край резекции [29, 30]. Основным методом интраоперационной навигации, до сих пор сохраняющим позицию «золотого стандарта» данной опции, является интраоперационное ультразвуковое исследование (УЗИ), которое также не лишено недостатков и определенных ограничений. В ряде случаев не удается визуализировать все опухолевые очаги [31], определять образования в поверхностных слоях паренхимы (до 1 см) и очаги размером менее 3 мм [32, 33], что влияет на радикальность выполняемой резекции.

Одним из современных направлений интраоперационной навигации, направленных на повышение безопасности и радикальности резекции, является видеофлуоресцентный метод картирования с использованием индоцианина зеленого (Indocyanine green, ICG) [34]. Несмотря на длительную историю использования ICG в хирургии печени в качестве функционального теста оценки риска пострезекционной печеночной недостаточности (одобрен FDA в 1959 г.) [35, 36], начало навигационного видеофлуоресцентного использования пришлось на 2008—2009 гг. В основу такого применения ICG легла его способность связываться с альбумином и альфа-1-липопротеином крови после внутривенного введения [35, 37] и при интраоперационном облучении околоинфракрасным светом с длиной волны около 760 нм, флуоресцировать с пиком волны 840 нм, что при улавливании NIR-камерой (near infrared) позволяет определять флуоресценцию различных анатомических образований, в частности сегментарных структур печени, желчных протоков [38] и опухолевых очагов [39] за счет разницы в накоплении ICG. К существенным недостаткам метода относится невозможность глубокого проникновения околоинфракрасного излучения в ткани (более 10 мм) [29], низкая специфичность [34] и, как следствие, относительное высокое количество ложноположительных результатов [40], особенно у пациентов с циррозом печени [29].

Указанные недостатки ограничили рутинное использование методики, однако ее комплексное использование с другими методами интраоперационной навигации позволяют получать более точные результаты интраоперационного картирования, особенно в случаях множественного метастатического поражения печени.

Актуальность

Традиционные методы визуализации, стандартно входящие в арсенал диагностических методов, используемых при планировании операций на печени (компьютерная томография (КТ), магнитно-резонансная томография (МРТ), интраоперационное УЗИ), являясь, с одной стороны, удобными и надежными инструментами на этапе планирования, с другой стороны, имеют определенные ограничения при непосредственной интраоперационной навигации в процессе выполнения хирургического пособия. Эти ограничения потенциально могут негативным образом влиять на радикальность операции. При распространенном опухолевом поражении все также актуальны риски послеоперационной печеночной недостаточности, вследствие выполнения избыточных резекций при удалении большого количества сохранной паренхимы. Применение ICG-видеофлуоресцентного картирования опухолей и сегментов печени не может изолированно решить указанные проблемы, однако комплексное использование различных методик потенциально способно улучшить результаты операций. В связи с этим ICG-навигационная хирургия представляется довольно перспективным направлением в хирургии печени. Дополнительную актуальность рассматриваемой темы привносит необходимость оценки эффективности использования отечественной системы видеофлуоресцентной навигации «МАРС».

Цель исследования — анализ клинического применения отечественной системы видеофлуоресцентной навигации «МАРС» при паренхимосохранных резекциях очаговых образований печени.

Задачи исследования — оценка динамики распределения контрастного препарата при ICG-видеофлуоресцентном картировании при паренхимосохранных резекционных вмешательствах на печени с анализом материалов гистологического исследования тканей с учетом трехзональной видеофлуоресцентной маркировки края резекции, выполненной с использованием отечественной системы видеофлуоресцентной визуализации «МАРС».

Дизайн исследования — пилотное одноцентровое проспективное когортное исследование.

Материал и методы

В исследование включены 17 пациентов (9 мужчин и 8 женщин) в возрасте от 42 лет до 71 года среди мужчин и от 38 лет до 73 года среди женщин. Все они перенесли резекцию печени различного объема в период с марта 2020 по сентябрь 2023 г. в рамках двух апробационных использований отечественной системы видеофлуоресцентной визуализации «МАРС» в двух клиниках — Университетской клинической больнице №1 (УКБ №1) (Сеченовский университет) и на базе онкологического отделения хирургических методов лечения ГБУЗ Московской области «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского». Наличие очаговых образований подтверждалось УЗИ брюшной полости, КТ и/или МРТ с контрастным усилением. У всех включенных пациентов имелось морфологически верифицированное метастатическое поражение печени. Химиотерапия проводилась у всех исследуемых. В исследование включены только пациенты с оперативным лечением в объеме паренхимосохранных резекционных вмешательств — 11 периопухолевых резекций, 6 сегментэктомий в объеме менее 3 сегментов. Помимо ICG-видеофлуоресцентного картирования, использовалась интраоперационная ультразвуковая навигация. Критериями включения являлись: подтвержденное поражение печени с помощью УЗИ, КТ и/или МРТ брюшной полости с контрастным усилением; отсутствие иных отдаленных поражений; отсутствие цирротического поражения печени; отсутствие вирусных гепатитов и иных заболеваний печени в анамнезе; паренхимосохранный планируемый объем хирургического вмешательства; наличие добровольного письменного согласия на проведение процедуры флуоресцентной диагностики.

ICG-видеофлуоресцентное картирование

Флуоресцентная диагностика заключалась в следующем — системы облучения лазерным излучением с длиной волны 785 нм и мощностью 1,5 Вт (установка лазерная ЛФТ-02-Биоспек, РФ), регистрации флуоресцентного излучения в области 820—870 нм и записи (устройство светодиодное видеофлуоресцентное для проведения диагностики и фотодинамической терапии опухолей и участков метастазирования УФФ-630/675-01-Биоспек, РФ) позиционировались над исследуемой областью пациента (рис. 1). Исследуемому вводился флуоресцентный препарат («Вердай», индоцианин зеленый, лиофилизат для приготовления раствора для внутривенного введения, 25 мг в флаконе, «Диагностик Грин ГмбХ», Германия) в УКБ №1 (Сеченовский Университет) в 2020 г. и индоцианин зеленый лиофилизат для приготовления раствора для внутривенного введения 25 мг (ООО «Лайф Сайнсес ОХФК», Россия) в ГБУЗ Московской области «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского» в 2023 г. Использовался предоперационный и интраоперационный вариант введения флуоресцирующего контрастного препарата.

Рис. 1. Позиционирование светодиодного видеофлуоресцентного устройства для проведения диагностики опухолей и участков метастазирования над исследуемой областью пациента. Далее отечественная система флуоресцентной визуализации «МАРС».

Предоперационное введение препарата производилось пациенту за 24 ч до операции внутривенно капельно через центральный венозный катетер в объеме из расчета 0,25 мг/кг. Интраоперационное введение флуоресцентного красителя заключалось в непосредственном введении в опухолевое образование 5 мг раствора препарата индоцианина зеленого (рис. 2, а).

Рис. 2. Трехзональная маркировка при интраоперационном внутриопухолевом введении индоцианина зеленого.

а — внутриопухолевое интраоперационное введение 5 мг раствора ICG; б — визуализация через 1 мин после введения раствора ICG; в — трехзональная визуализация (красный — опухоль, синий — периопухолевая зона с переходной интенсивностью свечения, зеленый — нормальная паренхима печени); г — маркировка края резекции монополярным коагулятором в соответствии с трехзональным картированием.

Интраоперационно производилась запись флуоресцентного сигнала. При этом на экране персонального компьютера наблюдалось свечение флуоресценции. Запись длилась не менее 1 мин (рис. 2, б). После завершения записи в специальном программном обеспечении (DualVision, ООО «Биоспек», Россия) производилось зонирование, границы определялись соотношением яркости флуоресценции в зонах накопления контраста с флуоресценцией нормальной тканью (рис. 2, в). На основании полученного изображения электрокоагулятором отмечалась трехзональная маркировка: 1) патологического очага; 2) зона переходной яркости свечения; 3) зона нормальной яркости свечения (неизмененная паренхима). Резекция производилась с отступов 10 мм от зоны переходного свечения (рис. 2, г). После резекции осуществлялась повторная запись и оценка флуоресценции краев резекции.

Всем пациентам производилось ICG-флуоресцентная визуализация очаговых образований и на основании полученных данных осуществлялась резекция образований. После каждой операции выполнялось патогистологическое исследование с оценкой материалов из 3 локализаций — зоны очагового образования, зоны переходного свечения (периферийная область) и из области краев резекции. Учитывая пилотный характер исследования, обусловленный апробационным предоставлением оборудования, основной задачей было получение материалов гистологического исследования тканей с учетом трехзональной маркировки. Все вмешательства выполнялись одной хирургической бригадой.

Результаты

При патологогистологическом исследовании во всех случаях был получен R0 (отрицательный) край резекции.

Интересным представляются данные о несоответствии пальпаторно и визуально определяемой границы опухоли результатам маркировки на основании ICG картирования (рис. 3).

Рис. 3. Интраоперационные фотографии пациента №5.

Слева — снимок произведен NIR-камерой через 1 мин после введения ICG (масштаб 1:1); справа — снимок произведен на обычный фотоаппарат в тот же момент времени. 1 — края резекции в соответствии с накоплением опухолью ICG; 2 — пальпаторно определяемый край опухоли.

При внутривенном введении индоцианина зеленого за 24 ч до операции (рис. 4). Область метастаза наиболее яркая, в переходной зоне среднее значение и минимальное в нормальной паренхиме. Соотношение яркости к норме составило 3:1.

Рис. 4. Внутривенное введение индоцианина зеленого за 24 ч до операции.

Красный столбец — метастаз; синий столбец — периферическая зона; зеленый столбец — нормальная паренхима.

При интраоперационном введении ICG (индоцианина зеленого) в опухоль наблюдается другая динамика относительной яркости свечения (рис. 5).

Рис. 5. Динамика яркости свечения ICG при интраоперационном введении 5 мг.

Красный столбец — метастаз; синий столбец — периферическая зона; зеленый столбец — нормальная паренхима.

Место введения ICG в очаг визуализируется как область с низкой относительной яркостью флюоресценции за счет высокой концентрации и концентрационного тушения флюоресценции. В переходной зоне свечения достигается максимальная относительная яркость; эта зона так же, как на рис. 3, отличается от визуально определяемой границы очага, что определяло маркировку зоны резекции за переходной зоной (рис. 5, 6) с последующим получением заключения о выполнении R0-резекции.

Рис. 6. Интраоперационная фотография зоны маркировки опухоли и переходной зоны, фотография после резекции.

При гистологическом исследовании паренхимы в переходной зоне свечения в ней получали микрокомплексы опухолевых клеток в просветах синусоидов (рис. 7).

Рис. 7. Микрофотография переходной зоны (×400).

В просветах синусоидов располагаются три микрокомплекса (обозначены желтыми кружками) опухолевых клеток (примерная площадь большего из них сопоставима с шестью гепатоцитами). Очажки состоят из пластов, сложенных из клеток средних размеров с крупными ядрами и умеренной атипией, напоминающих строение опухоли в метастазах.

Обсуждение

Выполнение паренхимосохранных резекций печени, направленных на максимально возможное сохранение не пораженной опухолью паренхимы — актуальный тренд гепатопанкреатобилиарной хирургии. С другой стороны, обязательным аспектом паренхимосохранных операций считается обеспечение радикальности выполняемого хирургического пособия. Для эффективного решения этой задачи используются все имеющиеся в арсенале онкохирурга методы диагностической визуализации, позволяющие комплексно решать вопросы периоперационного планирования объема и технических особенностей планируемой операции. Дополнительной ценностью обладают методы диагностической визуализации, позволяющие осуществлять интраоперационную навигацию, посредством интраоперационного, инструментально обоснованного определения границы опухоли и плоскости резекции.

Одним из методов такого картирования является ICG-видеофлуоресцентная интраоперационная навигация, использование которой основано на способности индоцианина зеленого в разной степени накапливаться в клетках первичных и вторичных опухолей печени, гепатоцитах или слепых желчных канальцах в фокусах опухолевого поражения [35]. Описанные выше недостатки ICG-картирования с успехом купируются в случае комплексного использования с другими методами интраоперационной визуализации (например, в сочетании с интраоперационным УЗИ), способствуя более широкому и безопасному внедрению паренхимосохранных хирургических вмешательств. В настоящем исследовании у всех пациентов использована именно эта комбинация интраоперационного картирования и навигации в процессе выполнения хирургического пособия.

Существуют публикации, отражающие эффективность флуоресцентной диагностики как одного из способов интраоперационной навигации [41, 42].

Несомненным достоинством использованной в работе отечественной системы видеофлуоресцентной визуализации является возможность количественной оценки яркости флуоресценции, что потенциально чрезвычайно наукоемко и позволяет планировать большое количество научных исследований, основанных на этой возможности, и, кроме того, служит удобным инструментом рутинной клинической практики. На основании цифровой оценки показателей соотношения яркости флуоресценции в зонах поражения, переходной зоне и зоне непораженной паренхимы гипотетически можно сформулировать рекомендации с клиническими характеристиками использования флуоресцентной визуализации при выполнении резекционных вмешательств. Интересной, на наш взгляд, находкой стало патологогистологическое выявление микрокомплексов опухолевых клеток в переходной зоне видеофлуоресцентного свечения. Пилотный характер исследования не позволяет делать окончательных выводов, но, несомненно, определяет направление дальнейших публикаций. В частности, требует последующего изучения гипотеза о наличии взаимосвязи яркости свечения с диссеминацией микроопухолевых комплексов. Полученных данных пока недостаточно для установления статистически достоверной взаимосвязи, что подталкивает к продолжению научных исследований в данном направлении и указывает на перспективу нового подхода в области планирования резекционных вмешательств.

Выводы

Полученные результаты свидетельствуют о перспективности использования метода ICG-видеофлуоресцентной визуализации при выполнении паренхимосохранных резекций печени. Внедрение в клиническую практику количественной оценки яркости флуоресценции потенциально сопряжено с улучшением результатов хирургического лечения пациентов с метастатическим поражением печени, поскольку направлено на повышение радикальности вмешательств при минимизации объема резекции.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Evrard S, Torzilli G, Caballero C, Bonhomme B. Parenchymal sparing surgery brings treatment of colorectal liver metastases into the precision medicine era. European Journal of Cancer. 2018;104:195-200.  https://doi.org/10.1016/j.ejca.2018.09.030
  2. Torzilli G, McCormack L, Pawlik T. Parenchyma-sparing liver resections. International Journal of Surgery. 2020;82S:192-197.  https://doi.org/10.1016/j.ijsu.2020.04.047
  3. Deng G, Li H, Jia GQ, Fang D, Tang YY, Xie J, Chen KF, Chen ZY. Parenchymal-sparing versus extended hepatectomy for colorectal liver metastases: A systematic review and meta-analysis. Cancer Medicine. 2019;8(14):6165-6175. https://doi.org/10.1002/cam4.2515
  4. Viganò L, Torzilli G, Troisi R, Aldrighetti L, Ferrero A, Majno P, Toso C, Figueras J, Cherqui D, Adam R, Kokudo N, Hasegawa K, Guglielmi A, Krawczyk M, Giuliante F, Hilal MA, Costa-Maia J, Pinna AD, Cescon M, De Santibanes E, Urbani L, Pawlik T, Costa G, Zugna D; CLISCO group. Minor Hepatectomies: Focusing a Blurred Picture: Analysis of the Outcome of 4471 Open Resections in Patients Without Cirrhosis. Annals of Surgery. 2019;270(5):842-851.  https://doi.org/10.1097/SLA.0000000000003493
  5. Gold JS, Are C, Kornprat P, Jarnagin WR, Gönen M, Fong Y, DeMatteo RP, Blumgart LH, D’Angelica M. Increased use of parenchymal-sparing surgery for bilateral liver metastases from colorectal cancer is associated with improved mortality without change in oncologic outcome: trends in treatment over time in 440 patients. Annals of Surgery. 2008;247(1):109-17.  https://doi.org/10.1097/SLA.0b013e3181557e47
  6. Desjardin M, Desolneux G, Brouste V, Degrandi O, Bonhomme B, Fonck M, Becouarn Y, Béchade D, Evrard S. Parenchymal sparing surgery for colorectal liver metastases: The need for a common definition. European Journal of Surgical Oncology. 2017;43(12):2285-2291. https://doi.org/10.1016/j.ejso.2017.10.209
  7. Donadon M, Cescon M, Cucchetti A, Cimino M, Costa G, Pesi B, Ercolani G, Pinna AD, Torzilli G. Parenchymal-Sparing Surgery for the Surgical Treatment of Multiple Colorectal Liver Metastases Is a Safer Approach than Major Hepatectomy Not Impairing Patients’ Prognosis: A Bi-Institutional Propensity Score-Matched Analysis. Digestive Surgery. 2018;35(4):342-349.  https://doi.org/10.1159/000479336
  8. Lordan JT, Roberts JK, Hodson J, Isaac J, Muiesan P, Mirza DF, Marudanayagam R, Sutcliffe RP. Case-controlled study comparing peri-operative and cancer-related outcomes after major hepatectomy and parenchymal sparing hepatectomy for metastatic colorectal cancer. HPB. 2017;19(8):688-694.  https://doi.org/10.1016/j.hpb.2017.04.007
  9. Matsuki R, Mise Y, Saiura A, Inoue Y, Ishizawa T, Takahashi Y. Parenchymal-sparing hepatectomy for deep-placed colorectal liver metastases. Surgery. 2016;160(5):1256-1263. https://doi.org/10.1016/j.surg.2016.06.041
  10. Memeo R, de Blasi V, Adam R, Goéré D, Azoulay D, Ayav A, Gregoire E, Kianmanesh R, Navarro F, Sa Cunha A, Pessaux P; French Colorectal Liver Metastases Working Group, Association Française de Chirurgie (AFC). Parenchymal-sparing hepatectomies (PSH) for bilobar colorectal liver metastases are associated with a lower morbidity and similar oncological results: a propensity score matching analysis. HPB. 2016;18(9):781-790.  https://doi.org/10.1016/j.hpb.2016.06.004
  11. Mise Y, Aloia TA, Brudvik KW, Schwarz L, Vauthey JN, Conrad C. Parenchymal-sparing Hepatectomy in Colorectal Liver Metastasis Improves Salvageability and Survival. Annals of Surgery. 2016;263(1):146-152.  https://doi.org/10.1097/SLA.0000000000001194
  12. Torzilli G, Procopio F, Botea F, Marconi M, Del Fabbro D, Donadon M, Palmisano A, Spinelli A, Montorsi M. One-stage ultrasonographically guided hepatectomy for multiple bilobar colorectal metastases: a feasible and effective alternative to the 2-stage approach. Surgery. 2009;146(1):60-71.  https://doi.org/10.1016/j.surg.2009.02.017
  13. Donadon M, Torzilli G. Intraoperative ultrasound in patients with hepatocellular carcinoma: from daily practice to future trends. Liver Cancer. 2013;2(1):16-24.  https://doi.org/10.1159/000346421
  14. Cauchy F, Aussilhou B, Dokmak S, Fuks D, Gaujoux S, Farges O, Faivre S, Lepillé D, Belghiti J. Reappraisal of the risks and benefits of major liver resection in patients with initially unresectable colorectal liver metastases. Annals of Surgery. 2012;256(5):746-752; discussion 752-754.  https://doi.org/10.1097/SLA.0b013e3182738204
  15. Evrard S, Rivoire M, Arnaud J-, Lermite E, Bellera C, Fonck M, Becouarn Y, Lalet C, Puildo M, Mathoulin-Pelissier S. Unresectable colorectal cancer liver metastases treated by intraoperative radiofrequency ablation with or without resection. British Journal of Surgery. 2012;99(4):558-565.  https://doi.org/10.1002/bjs.8724
  16. Even Storli P, Johnsen G, Juel IS, Grønbech JE, Bringeland EA. Impact of increased resection rates and a liver parenchyma sparing strategy on long-term survival after surgery for colorectal liver metastases. A population-based study. Scandinavian Journal of Gastroenterology. 2019;54(7):890-898.  https://doi.org/10.1080/00365521.2019.1641215
  17. Kalil JA, Poirier J, Becker B, Van Dam R, Keutgen X, Schadde E. Laparoscopic Parenchymal-Sparing Hepatectomy: the New Maximally Minimal Invasive Surgery of the Liver-a Systematic Review and Meta-Analysis. Journal of Gastrointestinal Surgery. 2019;23(4):860-869.  https://doi.org/10.1007/s11605-019-04128-w
  18. Kazaryan AM, Aghayan DL, Barkhatov LI, Fretland ÅA, Edwin B. Laparoscopic Multiple Parenchyma-sparing Concomitant Liver Resections for Colorectal Liver Metastases. Surgical Laparoscopy Endoscopy and Percutaneous Techniques. 2019;29(3):187-193.  https://doi.org/10.1097/SLE.0000000000000606
  19. Okumura S, Tabchouri N, Leung U, Tinguely P, Louvet C, Beaussier M, Gayet B, Fuks D. Laparoscopic Parenchymal-Sparing Hepatectomy for Multiple Colorectal Liver Metastases Improves Outcomes and Salvageability: A Propensity Score-Matched Analysis. Annals of Surgical Oncology. 2019;26(13):4576-4586. https://doi.org/10.1245/s10434-019-07902-x
  20. de Haas RJ, Wicherts DA, Flores E, Azoulay D, Castaing D, Adam R. R1 resection by necessity for colorectal liver metastases: is it still a contraindication to surgery? Annals of Surgery. 2008;248(4):626-637.  https://doi.org/10.1097/SLA.0b013e31818a07f1
  21. Donadon M, Terrone A, Procopio F, Cimino M, Palmisano A, Viganò L, Del Fabbro D, Di Tommaso L, Torzilli G. Is R1 vascular hepatectomy for hepatocellular carcinoma oncologically adequate? Analysis of 327 consecutive patients. Surgery. 2019;165(5):897-904.  https://doi.org/10.1016/j.surg.2018.12.002
  22. Viganò L, Procopio F, Cimino MM, Donadon M, Gatti A, Costa G, Del Fabbro D, Torzilli G. Is Tumor Detachment from Vascular Structures Equivalent to R0 Resection in Surgery for Colorectal Liver Metastases? An Observational Cohort. Annals of Surgical Oncology. 2016;23(4):1352-1360. https://doi.org/10.1245/s10434-015-5009-y
  23. Torzilli G, Viganò L, Fontana A, Procopio F, Terrone A, Cimino MM, Donadon M, Del Fabbro D. Oncological outcome of R1 vascular margin for mass-forming cholangiocarcinoma. A single center observational cohort analysis. HPB. 2020;22(4):570-577.  https://doi.org/10.1016/j.hpb.2019.08.015
  24. Aguirre-Ghiso JA. Models, mechanisms and clinical evidence for cancer dormancy. Nature Reviews Cancer. 2007;7(11):834-846.  https://doi.org/10.1038/nrc2256
  25. Adam R, Laurent A, Azoulay D, Castaing D, Bismuth H. Two-stage hepatectomy: A planned strategy to treat irresectable liver tumors. Annals of Surgery. 2000;232(6):777-785.  https://doi.org/10.1097/00000658-200012000-00006
  26. Vauthey JN, Pawlik TM, Ribero D, Wu TT, Zorzi D, Hoff PM, Xiong HQ, Eng C, Lauwers GY, Mino-Kenudson M, Risio M, Muratore A, Capussotti L, Curley SA, Abdalla EK. Chemotherapy regimen predicts steatohepatitis and an increase in 90-day mortality after surgery for hepatic colorectal metastases. Journal of Clinical Oncology. 2006;24(13):2065-2072. https://doi.org/10.1200/JCO.2005.05.3074
  27. Kubo N, Araki K, Harimoto N, Ishii N, Tsukagoshi M, Igarashi T, Watanabe A, Shirabe K. Hepatic resection for the right hepatic vein drainage area with indocyanine green fluorescent imaging navigation. Journal of Hepato-Biliary-Pancreatic Sciences. 2020;27(7):371-379.  https://doi.org/10.1002/jhbp.728
  28. Schwarz C, Plass I, Fitschek F, Punzengruber A, Mittlböck M, Kampf S, Asenbaum U, Starlinger P, Stremitzer S, Bodingbauer M, Kaczirek K. The value of indocyanine green clearance assessment to predict postoperative liver dysfunction in patients undergoing liver resection. Scientific Reports. 2019;9(1):8421. https://doi.org/10.1038/s41598-019-44815-x
  29. Marino MV, Podda M, Fernandez CC, Ruiz MG, Fleitas MG. The application of indocyanine green-fluorescence imaging during robotic-assisted liver resection for malignant tumors: a single-arm feasibility cohort study. HPB. 2020;22(3):422-431.  https://doi.org/10.1016/j.hpb.2019.07.013
  30. Nomi T, Hokuto D, Yoshikawa T, Matsuo Y, Sho M. A Novel Navigation for Laparoscopic Anatomic Liver Resection Using Indocyanine Green Fluorescence. Annals of Surgical Oncology. 2018;25(13):3982. https://doi.org/10.1245/s10434-018-6768-z
  31. Nakaseko Y, Ishizawa T, Saiura A. Fluorescence-guided surgery for liver tumors. Journal of Surgical Oncology. 2018;118(2):324-331.  https://doi.org/10.1002/jso.25128
  32. Peloso A, Franchi E, Canepa MC, Barbieri L, Briani L, Ferrario J, Bianco C, Quaretti P, Brugnatelli S, Dionigi P, Maestri M. Combined use of intraoperative ultrasound and indocyanine green fluorescence imaging to detect liver metastases from colorectal cancer. HPB. 2013;15(12):928-934.  https://doi.org/10.1111/hpb.12057
  33. Inoue Y, Tanaka R, Komeda K, Hirokawa F, Hayashi M, Uchiyama K. Fluorescence detection of malignant liver tumors using 5-aminolevulinic acid-mediated photodynamic diagnosis: principles, technique, and clinical experience. World Journal of Surgery. 2014;38(7):1786-1794. https://doi.org/10.1007/s00268-014-2463-9
  34. Takasaki K. Glissonean pedicle transection method for hepatic resection: a new concept of liver segmentation. Journal of Hepato-Biliary-Pancreatic Surgery. 1998;5(3):286-291.  https://doi.org/10.1007/s005340050047
  35. CHERRICK GR, STEIN SW, LEEVY CM, DAVIDSON CS. Indocyanine green: observations on its physical properties, plasma decay, and hepatic extraction. The Journal of clinical investigation. 1960;39(4):592-600.  https://doi.org/10.1172/JCI104072
  36. Schwarz C, Plass I, Fitschek F, Punzengruber A, Mittlböck M, Kampf S, Asenbaum U, Starlinger P, Stremitzer S, Bodingbauer M, Kaczirek K. The value of indocyanine green clearance assessment to predict postoperative liver dysfunction in patients undergoing liver resection. Scientific Reports. 2019;9(1):8421. https://doi.org/10.1038/s41598-019-44815-x
  37. Baker KJ. Binding of sulfobromophthalein (BSP) sodium and indocyanine green (ICG) by plasma alpha-1 lipoproteins. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 1966;122(4):957-963.  https://doi.org/10.3181/00379727-122-31299
  38. Aoki T, Yasuda D, Shimizu Y, Odaira M, Niiya T, Kusano T, Mitamura K, Hayashi K, Murai N, Koizumi T, Kato H, Enami Y, Miwa M, Kusano M. Image-guided liver mapping using fluorescence navigation system with indocyanine green for anatomical hepatic resection. World Journal of Surgery. 2008;32(8):1763-1767. https://doi.org/10.1007/s00268-008-9620-y
  39. Ishizawa T, Fukushima N, Shibahara J, Masuda K, Tamura S, Aoki T, Hasegawa K, Beck Y, Fukayama M, Kokudo N. Real-time identification of liver cancers by using indocyanine green fluorescent imaging. Cancer. 2009;115(11):2491-2504. https://doi.org/10.1002/cncr.24291
  40. Peyrat P, Blanc E, Guillermet S, Chen Y, Ferlay C, Perol D, Basso V, Rivoire M, Dupré A. HEPATOFLUO: A prospective monocentric study assessing the benefits of indocyanine green (ICG) fluorescence for hepatic surgery. Journal of Surgical Oncology. 2018;117(5):922-927.  https://doi.org/10.1002/jso.25011
  41. Abo T, Nanashima A, Tobinaga S, Hidaka S, Taura N, Takagi K, Arai J, Miyaaki H, Shibata H, Nagayasu T. Usefulness of intraoperative diagnosis of hepatic tumors located at the liver surface and hepatic segmental visualization using indocyanine green-photodynamic eye imaging. European Journal of Surgical Oncology. 2015;41(2):257-264.  https://doi.org/10.1016/j.ejso.2014.09.008
  42. Zhang YM, Shi R, Hou JC, Liu ZR, Cui ZL, Li Y, Wu D, Shi Y, Shen ZY. Liver tumor boundaries identified intraoperatively using real-time indocyanine green fluorescence imaging. Journal of Cancer Research Clinical Oncology. 2017;143(1):51-58.  https://doi.org/10.1007/s00432-016-2267-4

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.