Матвеева Н.Ю.

ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Павлуш Д.Г.

ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Калиниченко С.Г.

ФГБОУ ВО «Тихоокеанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Морфогенез и молекулярная регуляция полипозного риносинусита

Авторы:

Матвеева Н.Ю., Павлуш Д.Г., Калиниченко С.Г.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2025;87(1): 68‑76

Прочитано: 1448 раз


Как цитировать:

Матвеева Н.Ю., Павлуш Д.Г., Калиниченко С.Г. Морфогенез и молекулярная регуляция полипозного риносинусита. Архив патологии. 2025;87(1):68‑76.
Matveeva NYu, Pavlush DG, Kalinichenko SG. Morphogenesis and molecular regulation of polyposis rhinosinusitis. Russian Journal of Archive of Pathology. 2025;87(1):68‑76. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20258701168

Рекомендуем статьи по данной теме:

Полипозный риносинусит (ПРС) как хроническое воспалительное заболевание характеризуется рецидивирующим ростом полипов и нарушением целостности эпителия слизистой оболочки полости носа и околоносовых пазух. Это состояние сопровождается гиперплазией бокаловидных клеток, утолщением базальной мембраны, постоянной пролиферацией воспалительных клеток в собственной пластинке, стромальным фиброзом и патологическим изменением сосудов. После удаления полипа в слизистой оболочке сохраняется локальное продуктивное воспаление, которое способствует персистированию процесса [1].

Ткани полипов продуцируют многообразные сигнальные, трофические и морфогенетические молекулы, которые опосредуют морфофункциональные изменения слизистой оболочки и маркируют различные эндотипы [2, 3]. В регуляции полипогенеза участвуют комплексы TGFβ/SMAD, HIF-1α, AGE/RAGE/ERK, MEK1/2-ERK1/2, Wnt/β-катенин/GSK3 и PPARγ [4]. Передачу сигналов здесь координируют воспалительные цитокины. Дисбаланс в любом звене этой цепи приводит к нарушению эпителиального барьера, ремоделированию тканей, образованию и рецидивированию полипов [5].

В настоящей работе представлен краткий обзор данных о клеточных механизмах ПРС и приведена концепция молекулярного сигналинга при полипозном росте в слизистой оболочке полости носа.

Морфологическая классификация ПРС

Хронический риносинусит с полипами встречается в разных вариантах, среди которых превалирует эндотип Th2 с диффузной (двусторонней) или односторонней локализацией [2, 6—8]. Изменение ткани слизистой оболочки при ПРС возникает вследствие хронического воспаления, определяется неравнозначным участием клеток и спецификой метаболических условий их микроокружения [7]. Рецидивирующий рост полипов характеризуется эпителиально-мезенхимальным переходом и фиброзом слизистой оболочки вследствие пролиферации воспалительных клеток под действием цитотоксических и апоптотических факторов, модуляторных нейропептидов и газообразных мессенджеров [9].

Гистологическая классификация полипов полости носа основана на преобладании какого-либо структурного компонента: гиперплазии бокаловидных клеток, утолщения базальной мембраны, фиброза, наличия кист, нейтрофильных и эозинофильных инфильтратов, субэпителиального отека, железистой гиперплазии [10, 11]. Таким образом, к основным типам полипов относятся отечные, эозинофильные и фиброзные (фиброзно-сосудистые, фиброзно-кистозные, фиброзно-железистые) (рис. 1).

Рис. 1. Ткань отечного, эозинофильного, фиброзного полипов.

а — отечный тип; б — эозинофильный тип; в — фиброзный тип (К — кисты). Окраска гематоксилином и эозином. Масштаб: а — 100 мкм; б, в — 50 мкм.

Специфичной особенностью полипов отечного типа является редукция эпителиального пласта с гиперплазией бокаловидных клеток, значительным уплотнением базальной мембраны и отеком интерстициальной ткани. Эту картину дополняет гиперфункция слизистых желез в собственной пластинке. Клеточные инфильтраты здесь содержат большое количество фибробластов, эозинофилов и плазмоцитов и имеют относительно бедную плотность микрососудов [6, 12]. В некоторых случаях этот тип ПРС связывают с развитием аллергических реакций [13].

Иная ситуация складывается при эозинофильном типе полипов, когда многорядный мерцательный эпителий меняется на многослойный плоский, а плотность бокаловидных клеток существенно снижается. В этом случае во всех тканях полипа возникают полиморфные инфильтраты с преобладанием эозинофилов, моноцитов и тучных клеток.

В фиброзном типе полипов увеличение высоты эпителия соотносится с гиалинозом утолщенной базальной мембраны и значительным нарастанием количества бокаловидных клеток в составе эпителиального пласта. Характерна базально-клеточная дисплазия с нарушением пролиферативной функции и аберрантной дифференцировкой эпителиоцитов. Эти изменения сопровождаются утратой нормальной структуры ресничек и резким снижением мукоцилиарного клиренса [5, 6, 14]. О высокой активности пролиферативных процессов можно судить по увеличению количества желез в качестве адаптивной реакции на длительное продуктивное воспаление. Избыточная секреция мукоцитов дает густой и плотный секрет, который задерживается в протоках желез и способствует кистообразованию. Ткани фиброзного полипа хорошо обеспечены сосудами, многочисленными мио- и фибробластами. Их инфильтрируют нейтрофилы, а коллагеновые волокна образуют здесь толстые плотные пучки. Такой тип полипов закономерно возникает при длительном воспалительном процессе, сопровождается активным коллагеногенезом и фиброзом [15, 16].

Следует отметить, что в пределах одного воспалительного процесса встречаются различные морфотипы полипов. Сочетание этих множественных форм создает условие взаимодействия плюрихимических факторов, которые влияют на полипозный рост и репаративные процессы в слизистой оболочке.

Молекулярная регуляция полипозного роста

В патоморфогенез полипа неизменно включаются гистогенетические и трофические молекулы. Они способствуют выживанию клеток при окислительном стрессе и воспалении, оказывают противоапоптотическое действие и влияют на репаративные процессы [17]. В ткани полипов обнаружена повышенная экспрессия гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора, трансформирующего фактора роста (TGF-β), фактора роста кератиноцитов, инсулиноподобного фактора роста-1, основного фактора роста фибробластов. Эти факторы стимулируют пролиферацию и васкулогенез, вызывая полипозный рост [18].

Собственная пластинка слизистой оболочки при ПРС является источником целого спектра интерлейкинов, интерферона-γ и фактора некроза опухоли (TNF-α) [19]. Эндотелиальные клетки и эпителиоциты активно секретируют молекулы адгезии ICAM-1, VCAM-1 и E-селектин, которые облегчают инфильтрацию воспалительных клеток [19, 20]. Значительные морфологические преобразования здесь связаны с разрушением внеклеточного матрикса и активностью матриксных металлопротеиназ (MMP) и их ингибиторов (TIMP) [21]. Так, в ткани полипов железистого типа обнаружена высокая экспрессия MMP-9 и MMP-7 в эпителии, концевых отделах желез, клетках воспалительных инфильтратов и эндотелиоцитах с одновременным низким уровнем TIMP-1/2 [22]. При этом MMP-9-позитивные воспалительные клетки локализуются в интерстициальной ткани вокруг псевдокист [21, 22].

Данные многих гистохимических исследований указывают на возможность нейрогенного воспаления при полипозном росте [19, 23]. В слизистой оболочке активные ноцицептивные волокна выделяют тахикинины, субстанцию P, кальцитонин-ген-родственный пептид и нейрокинин A (рис. 2, а, б). Эти нейропептиды вызывают вазодилатацию и дегрануляцию тучных клеток, избыточную секреторную активность желез и миграцию лимфоцитов. Другим фактором нейрогенного воспаления является экспрессия нейротрофинов [24, 25]. В слизистой оболочке полости носа описаны фактор роста нервов, нейротрофический фактор мозга, глиальный нейротрофический фактор и нейротрофины [25, 26]. Их источниками здесь считаются эпителиоциты, эозинофилы, нейтрофилы и тучные клетки [26]. Комплексное воздействие молекул провоцирует нейроиммунную реакцию. Обратный цитопротективный эффект нейротрофинов связан с активацией антиапоптотических белков Bcl-2 и Bcl-xl [27].

Рис. 2. Иммунолокализация маркеров в ткани полипов.

а — распределение SP в эозинофильном типе в стенках кровеносных сосудов (стрелки); б — локализация нейрокининовых рецепторов NK-1R в ткани полипов, NK-1R-позитивные клетки в составе воспалительных инфильтратов при фиброзном типе полипов (стрелки); (КС — кровеносный сосуд, К — киста); в — локализация nNOS в ткани полипа эозинофильного типа, в стенке сосудов (стрелки); г — экспрессия iNOS в железистых эпителиоцитах (стрелки) при полипах фиброзного типа; д — локализация IL-1β в эпителиоцитах (Э) и соединительнотканных клетках (стрелки) в ткани полипа эозинофильного типа.

Иммуногистохимическая реакция. Масштаб 100 мкм.

Регуляторный механизм развития ПРС поддерживают цитокины, которые секретируют воспалительные клетки, фибробласты и эпителиоциты (рис. 2, д). Например, провоспалительный интерлейкин-1 (IL-1α и IL-1β) в ткани полипов активирует T-лимфоциты и моноциты, повышает экспрессию молекул адгезии на моноцитах, необходимых для привлечения эозинофилов [27, 28]. Поступление IL-1β отвечает также за резистентность к глюкокортикоидам в ткани полипов, что делает местное лечение менее эффективным и увеличивает риск рецидивов [29]. IL-4 стимулирует дифференцировку Th0-лимфоцитов в Th2 и B-лимфоцитов в плазмоциты, участвует в переключении изотипа иммуноглобулина IgM/IgG на IgE. Показано, что эти эффекты разрушают плотные контакты между эпителиоцитами и стимулируют диффузию IL-6 [29]. Последний ускоряет дифференцировку плазмоцитов и заметно усиливает пролиферацию эпителия в период полипозного роста [30].

Эффекты цитокинов зависят от степени продукции TNF и TGF и клинико-морфологического типа ПРС. В одних случаях они регулируют пролиферацию и дифференцировку клеток слизистой оболочки при воспалении, а в других — оказывают цитопротективное противовоспалительное действие на мишень либо индуцируют апоптоз [31]. TGF-β1 также действует как мощный хемоаттрактант для моноцитов и фибробластов, стимулирует ангиогенез и фиброз в растущем полипе [32, 33].

Маркером нейрогенного воспаления является синтез оксида азота (NO) в эпителии, эндотелиоцитах и нервных волокнах на стенках микрососудов (рис. 2, в, г). NO функционирует как координатор местных нейроиммунных механизмов в ремоделировании слизистой оболочки, что также ведет к рецидиву ПРС [34]. Индукция NO-синтазы не только расширяет артериолы, усиливая отек ткани и миграцию провоспалительных клеток, но также повышает секрецию слизи в собственных железах и бокаловидных клетках [16]. Гиперпродукция NO в этой ситуации становится самостоятельным цитотоксическим фактором в патогенезе полипов.

Регуляция апоптоза и пролиферации при полипозном росте

Полипозный рост вовлекает в воспалительный процесс всю слизистую оболочку, а его прогрессирование соотносится с локализацией факторов апоптоза [35]. Последний способствует удалению поврежденных клеток и предотвращает гиперплазию ткани полипа [36]. Селективным методом диагностики апоптотической гибели является картирование эффекторных белков каспаза-3, p53 и p21. Их баланс контролируют молекулы, блокирующие наступление апоптоза, где Bcl-2 и Mdm2 отводится основная регулирующая роль [37].

Каскад апоптотических молекул инициируется внутренними и/или внешними факторами при участии белка p53 с активацией мембранных рецепторов FasR и TNFR1 [38]. Во время эффекторной стадии проапоптотические члены семейства Bcl-2 (Bax, Bad, Bak, Bid) встраиваются в наружную мембрану митохондрий и формируют мегаканалы, которые пропускают в цитоплазму протеазу AIF (apoptosis inducing factor) и цитохром C [16]. Цитохром C связывается с цитоплазматическим адаптером Apaf-1 (apoptotic protease activating factor-1) и в комплексе с ним активирует каспазу-9 и каспазу-3. Последняя индуцирует Ca2+/Mg2+-зависимую эндонуклеазу (CPAN/DFF40), разрушающую линкерные участки ДНК. Процесс завершается фрагментацией ядра и образованием апоптотических телец [22].

Формирование ПРС характеризуется повышенной экспрессией p53, p21, каспазы-3, Mdm2 и Bcl-2 в тканях полипа [16]. Установлено, что факторы апоптоза имеют неоднородное распределение, которое коррелирует с определенным клинико-морфологическим типом полипа. Наименьшая экспрессия p53, p21, каспазы-3 и Mdm2 описана в фибробластах и нейтрофилах при фиброзном типе [16]. Умеренная экспрессия факторов обнаруживается при отечном типе в эпителии и фибробластоподобных клетках под базальной мембраной [16]. Однако наиболее высокая степень продукции p53 и каспазы-3 установлена в эозинофилах, плазмоцитах и тучных клетках при эозинофильном типе полипов (рис. 3). Можно считать, что хроническое иммунное воспаление ведет к формированию в полипе разновеликих популяций клеток, одна из которых элиминируется через апоптоз, а другая поддерживает непрерывный генез ПРС [16, 30].

Рис. 3. Локализация p53, p21, каспазы-3, Mdm2 и BMP-2 в слизистой оболочке ткани полипа.

а — p53-иммунореактивные клетки собственной пластинки ткани полипа отечного типа (стрелки); б — каспаза-3-позитивные клетки собственной пластинки ткани полипа отечного типа (стрелки); в — распределение p21-иммунореактивных клеток собственной пластинки в эозинофильном типе полипа; г — Mdm2 маркирует клетки глубокой зоны в эозинофильном типе полипа (стрелки); д — BMP-2-иммунореактивные эпителиоциты (Э) и клетки субэпителиального слоя слизистой оболочки (стрелки) в ткани полипа эозинофильного типа. Масштаб: а—в, д — 50 мкм, г — 100 мкм.

Таким образом, про- и антиапоптотические молекулы формируют своеобразный «реостат», определяющий динамику и исход хронического иммунного воспаления [16]. Эпигенетические воздействия остаются определяющим фактором ПРС [16]. Поэтому высокие значения p53, p21, а также Bax и каспазы-3 могут препятствовать малигнизации растущих полипов [30].

Ткань полипа формируется относительно независимо от интактной слизистой оболочки по типу локального пролиферативного воспаления. Эпителиальные и соединительнотканные клетки растущего полипа формируют автономную пролиферирующую «нишу», которая отделяет их от соседних участков слизистой оболочки. В этой системе устанавливаются молекулярные механизмы саморегуляции воспроизведения клеток. Недавно было открыто, что метаплазию при полипозном росте стимулирует костный морфогенетический белок-2 (BMP-2), который рассматривается в качестве потенциального маркера рефрактерного ПРС [39]. BMP-2 координирует пролиферацию и дифференцировку, активирует хемотаксис и апоптоз клеток слизистых оболочек [39]. Таким образом, поддерживается активность сигнального пути BMP-2/pSmad1/5/8/p38, способствующая эпителиально-мезенхимальному переходу [40].

Экспрессия иммунореактивного BMP-2 значительно представлена в полипах эозинофильного типа. В этом случае BMP-2 локализуется в эпителиальных, соединительнотканных и железистых клетках глубокого слоя собственной пластики слизистой оболочки (см. рис. 3, д). Подобный паттерн связан с особенностью цитогенеза, где основным участником процесса и источником BMP-2 являются эозинофилы [11, 39]. BMP можно рассматривать как стыковочное звено этих клеточных «ниш», костной части стенки полости носа и интактной слизистой оболочки. Экспрессия BMP-2 находится в определенной зависимости от выработки IL-1β в популяции фибробластов, макрофагов и эпителиоцитов. Процессинг IL-1β зависит от каспазы-1, интерлейкин-1-превращающего фермента. Активированная каспаза-1 может индуцировать пироптоз [40]. Есть основание полагать, что эта форма программированной гибели клеток участвует в механизме ПРС [16].

Итак, IL-1β пролонгирует воспаление при активном высвобождении BMP-2, который можно рассматривать в качестве маркера рецидивирующего ПРС [11]. Ввиду отсутствия подслизистой основы в стенке полости носа существует тесное взаимодействие элементов кости, собственной пластинки и эпителиального пласта. Кость является поставщиком камбиальных клеток, BMP-2 и других морфогенетических белков при том, что ткань полипов не имеет с ней прямых контактов. С помощью BMP клетки слизистой оболочки получают возможность сигнального взаимообмена в регуляции пролиферативной «ниши» полипа. Его дальнейший рост можно рассматривать как результат самоиндукции, где морфогенетическая функция BMP может потенцировать полипозный рост [11, 39].

На рис. 4 представлена обобщенная концепция основных сигнальных молекул при ПРС. Слизистая оболочка полости носа функционирует в результате адаптивного взаимодействия клеток мерцательного эпителия, соединительнотканных клеток собственной пластинки и остеогенерирующего пула подлежащей кости. Между ними устанавливается сложный спектр сигнальных посредников, которые выступают как интегративное звено в адаптивных перестройках при повреждении и воспалении. Патоморфологические изменения слизистой оболочки при ПРС обусловлены T2-воспалением с избыточной и персистирующей продукцией провоспалительных цитокинов, субстанции P и нейрокининов. Нарушение мукоцилиарного барьера ведет к ремоделированию слизистой оболочки и является важным механизмом в патогенезе ПРС. Индукция NO и факторов апоптоза регулирует эти события [41, 42]. IL-1β вырабатывается в эндотелиоцитах, макрофагах, фибробластах и эпителиоцитах. Он обладает широким спектром воспалительных, физиологических, иммунологических и других свойств и играет важную роль в патогенезе полипозных изменений. В этот процесс включается BMP-2 как регуляторный фактор пролиферации эпителия слизистой оболочки, воспалительных клеток и остеобластов.

Рис. 4. Распределение основных сигнальных молекул в зависимости от типологии полипозного риносинусита.

Молекулярные регуляторы ПРС как потенциальная мишень для фармакотерапии

Классификация полипов с уточнением их морфологического типа позволяет усовершенствовать диагностику ПРС и служит основанием для назначения патогномоничной терапии.

Поскольку распределение маркеров нейрогенного воспаления, анти- и проапоптотических молекул, BMP-2, MMP, цитокинов является специфическим для каждого клинико-морфологического типа ПРС, исследования [43, 44] в этой области позволят сформулировать избирательную фармакологическую стратегию. ПРС традиционно связывают с воспалением 2-го типа, которое, однако, не является уникальным для полипоза [8, 45]. Так, продуктивное воспаление при ревматоидном артрите характеризуется патологической формой апоптоза синовиальных фибробластов, и одна из стратегий в лечении — использование препаратов на основе малых молекул p53, Mdm2, PUMA, p21, Bcl-2 [38].

Традиционные консервативные методы лечения отечного типа ПРС широко используют глюкокортикостероиды системного действия, которые обладают противовоспалительным и иммуносупрессивным действием [45]. При эозинофильном типе основным методом считается применение блокаторов лейкотриеновых рецепторов и топических назальных кортикостероидов [15, 43]. При наличии фиброзных полипов и возникновении гнойного воспаления эффективно хирургическое лечение с сопровождением антибактериальной терапии [7].

В последнее время все больше внимания уделяется патофизиологическим эндотипам, учитывающим специфические биомаркеры в общем патогенезе ПРС [46, 47]. Было обнаружено, что у пациентов с редкими рецидивами регистрируются высокие уровни IFN-γ, а при частых рецидивах повышена концентрация IL-5, IL-17A, эотоксинов 1—3, хемокина RANTES, сосудистой молекулы клеточной адгезии VCAM-1, фактора активации B-клеток BAFF [48—50]. Высокие показатели TGF-β свидетельствуют о формировании фиброза, тогда как для эозинофильного типа характерно повышение IL-33 [51, 52]. Понимание молекулярных и клеточных взаимодействий, происходящих в слизистой оболочке полости носа при различных эндотипах ПРС, необходимо для предупреждения рецидивирования. Топография BMP и других морфогенетических факторов коррелирует с различными эндотипами ПРС и представляет полезную систему для разработки таргетной терапии полипозного роста.

Заключение

Молекулярно-клеточные механизмы ПРС характеризуют его как пролиферативное нейрогенное воспаление слизистой оболочки. В процесс вовлекаются все структуры стенки полости носа, между которыми устанавливаются интегративные отношения и формируется система молекулярных мессенджеров. Последние распространяются в трехмерном пространстве, охватывая большие группы клеток горизонтально вдоль эпителиального пласта и трансламинарно до надкостницы. В результате продолжительного воспаления и морфофункциональной перестройки слизистой оболочки развивается эпителиально-мезенхимальный переход. Эпителиоциты демонстрируют фенотип мезенхимальных клеток, специфическую миграционную способность, устойчивость к апоптозу и активную секрецию компонентов межклеточного матрикса. Слизистая оболочка полости носа представляет собой источник выработки BMP-2. Его регуляторное действие складывается как сумма эффектов BMP подлежащей кости и обеспечивает рецидивирование ПРС.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Kato A, Schleimer RP, Bleier BS. Mechanisms and pathogenesis of chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol. 2022;149(5):1491-1503. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2022.02.016
  2. Савлевич Е.Л., Зурочка А.В., Курбачева О.М., Егоров В.И., Шиловский И.П., Митрофанова Е.С., Любимова Е.В. Плейоморфизм цитокинового профиля в ткани полипов в зависимости от фенотипа полипозного риносинусита. Вестник оториноларингологии. 2023;88(1):50-56.  https://doi.org/10.17116/otorino20228801150
  3. Wang W, Gao Y, Zhu Z, Zha Y, Wang X, Qi F, Zhou L, Pang J, Gao Z, Lv W. Changes in the clinical and histological characteristics of Chinese chronic rhinosinusitis with nasal polyps over 11 years. Int Forum Allergy Rhinol. 2019;9(2):149-157.  https://doi.org/10.1002/alr.22234
  4. Huriyati E, Darwin E, Yanwirasti Y, Wahid I. Differences in expression of inflammatory mediator in mucosal and polyp tissue between chronic rhinosinusitis and recurrent chronic rhinosinusitis. Open Access Maced J Med Sci. 2019;7(11):1733-1738. https://doi.org/10.3889/oamjms.2019.341
  5. Павлуш Д.Г., Матвеева Н.Ю. Локализация NO-синтазы и малых апоптотических молекул в слизистой оболочке полости носа при полипозном риносинусите. Тихоокеанский медицинский журнал. 2022;3:63-69.  https://doi.org/10.34215/1609-1175-2022-3-63-69
  6. Fokkens WJ, Lund VJ, Hopkins C, et al. European position paper on rhinosinusitis and nasal polyps 2020. Rhinology. 2020;58(Suppl. S29):1-464.  https://doi.org/10.4193/Rhin20.600
  7. Егоров В.И., Курбачева О.М., Савлевич Е.Л., Шачнев К.Н., Дынева М.Е., Савушкина Е.Ю., Кондаков А.К. Опыт работы центра диагностики и лечения полипозного риносинусита. Российская оториноларингология. 2020;19(6):8-15.  https://doi.org/10.18692/1810-4800-2020-6-8-15
  8. Takabayashi T, Schleimer RP. Formation of nasal polyps: the roles of innate type 2 inflammation and deposition of fibrin. J Allergy Clin Immunol. 2020;145(3):740-750.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.01.027
  9. Li X, Li C, Zhu G, Yuan W, Xiao ZA. TGF-β1 induces epithelial-mesenchymal transition of chronic sinusitis with nasal polyps through MicroRNA-21. Int Arch Allergy Immunol. 2019;179(4):304-319.  https://doi.org/10.1159/000497829
  10. Brescia G, Alessandrini L, Giacomelli L, Parrino D, Zanotti C, Tealdo G, Franz L, Carraro V, Barion U, Marioni G. A classification of chronic rhinosinusitis with nasal polyps based on structured histopathology. Histopathology. 2020;76(2):296-307.  https://doi.org/10.1111/his.13969
  11. Матвеева Н.Ю., Павлуш Д.Г., Калиниченко С.Г. BMP-2 и IL-1β как маркеры воспаления слизистой оболочки полости носа при полипозном риносинусите. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2022;174(10):462-467.  https://doi.org/10.1007/s10517-023-05728-y
  12. Cho SH, Hamilos DL, Han DH, Laidlaw TM. Phenotypes of chronic rhinosinusitis. J Allergy Clin Immunol Pract. 2020;8(5): 1505-1511. https://doi.org/10.1016/j.jaip.2019.12.021
  13. Nakayama T, Haruna SI. A review of current biomarkers in chronic rhinosinusitis with or without nasal polyps. Expert Rev Clin Immunol. 2023;19(8):883-892.  https://doi.org/10.1080/1744666X.2023.2200164
  14. Gao XW, Zhang XM, Liu HY, Wang SS, Dong HJ. Mechanism of interaction between ocular and nasal neurogenic inflammation in allergic rhinoconjunctivitis. Int Ophthalmol. 2019;39(10):2283-2294. https://doi.org/10.1007/s10792-018-01066-5
  15. Enache I, IoniȚĂ E, Mitroi M, Anghelina F, MogoantĂ C, Ciolofan S, CĂpitĂnescu A, Stepan A, Simionescu C. Histopathological features of chronic rhinosinusitis with nasal allergic polyps. Curr Health Sci J. 2020;46(1):66-71.  https://doi.org/10.12865/CHSJ.46.01.09
  16. Матвеева Н.Ю., Павлуш Д.Г., Калиниченко С.Г. Экспрессия про- и антиапоптотических молекул в слизистой оболочке полости носа при полипозном риносинусите. Вестник оториноларингологии. 2020;85(3):43-47.  https://doi.org/10.17116/otorino20208503143
  17. Ryu G, Kim DW. Th2 inflammatory responses in the development of nasal polyps and chronic rhinosinusitis. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2020;20(1):1-8.  https://doi.org/10.1097/ACI.0000000000000588
  18. Ozcan C, Ismi O, Kara T, Polat G, Erdogan O, Balci Fidanci S, Vayisoglu Y, Gorur K. Is there any possible role of Neurotrophin 3 in the pathogenesis of antrochoanal polyp? Medeni Med J. 2020;35(1):40-46.  https://doi.org/10.5222/MMJ.2020.78889
  19. Klingler AI, Stevens WW, Tan BK, et al. Mechanisms and biomarkers of inflammatory endotypes in chronic rhinosinusitis without nasal polyps. J Allergy Clin Immunol. 2021;147(4):1306-1317. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.11.037
  20. Zhu M, Gao X, Zhu Z, Hu X, Zhou H, Liu J. The roles of nasal nitric oxide in diagnosis and endotypes of chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J Otolaryngol Head Neck Surg. 2020;49(1):68.  https://doi.org/10.1186/s40463-020-00465-y
  21. Lucas BR, Voegels RL, do Amaral JB, Bachi ALL, Pezato R. BMP-7, MMP-9, and TGF-β tissue remodeling proteins and their correlations with interleukins 6 and 10 in chronic rhinosinusitis. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2021;278(11):4335-4343. https://doi.org/10.1007/s00405-021-06722-8
  22. Xu X, Lai Y, Hua ZC. Apoptosis and apoptotic body: disease message and therapeutic target potentials. Biosci Rep. 2019;39(1):BSR20180992. https://doi.org/10.1042/BSR20180992
  23. Bankova LG, Barrett NA. Epithelial cell function and remodeling in nasal polyposis. Ann Allergy Asthma Immunol. 2020;124(4):333-341.  https://doi.org/10.1016/j.anai.2020.01.018
  24. Lonergan A, Theoharides T, Tsilioni E, Rebeiz E. Substance P and Hemokinin 1 in nasal lavage fluid of patients with chronic sinusitis and nasal polyposis. OTO Open. 2019;3(3):2473974X19875076. https://doi.org/10.1177/2473974X19875076
  25. Zhou Y, Chen R, Kong L, Sun Y, Deng J. Neuroimmune communication in allergic rhinitis. Front Neurol. 2023;14:1282130. https://doi.org/10.3389/fneur.2023.1282130
  26. Jiao J, Wang C, Zhang L. Epithelial physical barrier defects in chronic rhinosinusitis. Expert Rev Clin Immunol. 2019;15(6):679-688.  https://doi.org/10.1080/1744666X.2019.1601556
  27. Carsuzaa F, Béquignon É, Dufour X, de Bonnecaze G, Lecron JC, Favot L. Cytokine signature and involvement in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Int J Mol Sci. 2021;23(1):417.  https://doi.org/10.3390/ijms23010417
  28. Sun Z, Luo D, Wang S, Huang R, Dong P. Salvianolic acid B inhibits myofibroblast differentiation and extracellular matrix accumulation in nasal polyp fibroblasts via the TGF-β1 signaling pathway. Mol Med Rep. 2021;23(6):478.  https://doi.org/10.3892/mmr.2021.12117
  29. Tomassen P, Vandeplas G, Van Zele T, et al. Inflammatory endotypes of chronic rhinosinusitis based on cluster analysis of biomarkers. J Allergy Clin Immunol. 2016;137(5):1449-1456.e4.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2015.12.1324
  30. Morawska-Kochman M, Śmieszek A, Marcinkowska K, Marycz KM, Nelke K, Zub K, Zatoński T, Bochnia M. Expression of apoptosis-related biomarkers in inflamed nasal sinus epithelium of patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps (CRSwNP)-evaluation at mRNA and miRNA levels. Biomedicines. 2022;10(6):1400. https://doi.org/10.3390/biomedicines10061400
  31. Ryu G, Kim DW. Th2 inflammatory responses in the development of nasal polyps and chronic rhinosinusitis. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2020;20(1):1-8.  https://doi.org/10.1097/ACI.0000000000000588
  32. Roan F, Obata-Ninomiya K, Ziegler SF. Epithelial cell-derived cytokines: more than just signaling the alarm. J Clin Invest. 2019;129(4):1441-1451. https://doi.org/10.1172/JCI124606
  33. Kim HJ, Park JH, Shin JM, Yang HW, Lee HM, Park IH. TGF-β1-induced HSP47 regulates extracellular matrix accumulation via Smad2/3 signaling pathways in nasal fibroblasts. Sci Rep. 2019;9(1):15563. https://doi.org/10.1038/s41598-019-52064-1
  34. Sadek AA, Abdelwahab S, Eid SY, Almaimani RA, Althubiti MA, El-Readi MZ. Overexpression of inducible nitric oxide synthase in allergic and nonallergic nasal polyp. Oxid Med Cell Longev. 2019;2019:7506103. https://doi.org/10.1155/2019/7506103
  35. Hu H, Wang S, Wang J, Huang R, Dong P, Sun Z. uPA affects the CRSsNP nasal mucosa epithelium apoptosis by regulating WIF1. Exp Cell Res. 2019;377(1-2):75-85.  https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2018.12.024
  36. Xu X, Lai Y, Hua ZC. Apoptosis and apoptotic body: disease message and therapeutic target potentials. Biosci Rep. 2019;39(1):BSR 20180992. https://doi.org/10.1042/BSR20180992
  37. Wang C, Zhou ML, Liu YC, Cheng KJ. The roles of autophagy, mitophagy, and the akt/mTOR pathway in the pathogenesis of chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J Immunol Res. 2022;2022:2273121. https://doi.org/10.1155/2022/2273121
  38. Дубиков А.И., Калиниченко С.Г., Матвеева Н.Ю. Апоптоз как фактор организации аутоиммунного воспаления при ревматоидном артрите. Современная ревматология. 2019; 3(3):95-101.  https://doi.org/10.14412/1996-7012-2019-3-95-101
  39. Kim JY, Lim S, Lim HS, et al. Bone morphogenetic protein-2 as a novel biomarker for refractory chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J Allergy Clin Immunol. 2021;148(2):461-472.e13.  https://doi.org/10.1016/j.jaci.2021.02.027
  40. Chiarella E, Lombardo N, Lobello N, Aloisio A, Aragona T, Pelaia C, Scicchitano S, Bond HM, Mesuraca M. Nasal polyposis: insights in epithelial-mesenchymal transition and differentiation of polyp mesenchymal stem cells. Int J Mol Sci. 2020;21(18):6878. https://doi.org/10.3390/ijms21186878
  41. Bae JS, Ryu G, Kim JH, et al. Effects of Wnt signaling on epithelial to mesenchymal transition in chronic rhinosinusitis with nasal polyp. Thorax. 2020;75(11):982-993.  https://doi.org/10.1136/thoraxjnl-2019-213916
  42. Pappa V, Spitsin S, Gaskill PJ, Douglas SD. Neurokinin-1 receptor signaling induces a pro-inflammatory transcriptomic profile in CD16+ monocytes. J Neuroimmunol. 2021;353:577524. https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2021.577524
  43. Mullol J, Azar A, Buchheit KM, Hopkins C, Bernstein JA. Chronic rhinosinusitis with nasal polyps: quality of life in the biologics era. J Allergy Clin Immunol Pract. 2022;10(6):1434-1453.e9.  https://doi.org/10.1016/j.jaip.2022.03.002
  44. Chen CC, Buchheit KM. Endotyping chronic rhinosinusitis with nasal polyps: understanding inflammation beyond phenotypes. Am J Rhinol Allergy. 2023;37(2):132-139.  https://doi.org/10.1177/19458924221149003
  45. Савлевич Е.Л., Любимова Е.В., Зурочка А.В., Митрофанова Е.С., Шиловский И.П. Цитокиновый профиль ткани носовых полипов и клиническая характеристика пациентов с разной степенью медикаментозного контроля и тяжести течения полипозного риносинусита. Медицинская иммунология. 2024;26(3):533-544.  https://doi.org/10.15789/1563-0625-CPO-2914
  46. Gokani SA, Espehana A, Pratas AC, Luke L, Sharma E, Mattock J, Gavrilovic J, Clark A, Wileman T, Philpott CM. Systematic review of protein biomarkers in adult patients with chronic rhinosinusitis. Am J Rhinol Allergy. 2023;37(6):705-729.  https://doi.org/10.1177/19458924231190568
  47. Seah JJ, Thong M, Wang Y. The diagnostic and prognostic role of biomarkers in chronic rhinosinusitis. Diagnostics (Basel). 2023;13(4):715.  https://doi.org/10.3390/diagnostics13040715
  48. Yamada T, Miyabe Y, Ueki S, et al. Eotaxin-3 as a plasma biomarker for mucosal eosinophil infiltration in chronic rhinosinusitis. Front Immunol. 2019;10:74.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00074
  49. Zhang F, Xu Z, He X, Sun Y, Zhao C, Zhang J. Increased B cell-activating factor expression is associated with postoperative recurrence of chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Mediators Inflamm. 2022;2022:7338692. https://doi.org/10.1155/2022/7338692
  50. Wang G, Li M, Zheng J, Zhan J, Zheng H, Li R, Wei X. Circulating BAFF as novel biomarker in distinguishing chronic rhinosinusitis with nasal polyps endotypes and predicting postoperative recurrence. Int Immunopharmacol. 2022;104:108515. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2021.108515
  51. Porfire Irimia IM, Berindan-Neagoe I, Budisan L, Leucuta DC, Gata A, Minoiu AC, Georgescu BA, Covaliu BF, Albu S. Tissue interleukin-33: a novel potential regulator of innate immunity and biomarker of disease severity in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J Clin Med. 2023;12(24):7537. https://doi.org/10.3390/jcm12247537
  52. Wang G, Zheng H, Chen X, Zheng J, Zhan J, Li R, Qi Y, Ye Y, Zeng M, Wei X. Exploration of predictive biomarkers for postoperative recurrence in chronic rhinosinusitis with nasal polyps based on serum multiple-cytokine profiling. Mediators Inflamm. 2022;2022:1061658. https://doi.org/10.1155/2022/1061658

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.