Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Мураховская Ю.К.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней имени М.М. Краснова»;
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России

Шеремет Н.Л.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней имени М.М. Краснова»

Шмелькова М.С.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

Крылова Т.Д.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Цыганкова П.Г.

ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова»

Аутосомно-рецессивные оптические нейропатии: генетические варианты, клинические проявления

Авторы:

Мураховская Ю.К., Шеремет Н.Л., Шмелькова М.С., Крылова Т.Д., Цыганкова П.Г.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2022;138(6): 116‑122

Прочитано: 2804 раза


Как цитировать:

Мураховская Ю.К., Шеремет Н.Л., Шмелькова М.С., Крылова Т.Д., Цыганкова П.Г. Аутосомно-рецессивные оптические нейропатии: генетические варианты, клинические проявления. Вестник офтальмологии. 2022;138(6):116‑122.
Murakhovskaya YuK, Sheremet NL, Shmelkova MS, Krylova TD, Tsygankova PG. Autosomal recessive optic neuropathies: genetic variants, clinical manifestations. Russian Annals of Ophthalmology. 2022;138(6):116‑122. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2022138061116

Наследственные оптические нейропатии (НОН) — группа нейродегенеративных заболеваний, характеризующихся первичной потерей структуры и функции ганглиозных клеток сетчатки (ГКС) с последующей гибелью их аксонов, развитием частичной атрофии зрительных нервов. В зависимости от генетического варианта клиническая картина НОН может несколько различаться, однако, как правило, заболевание имеет ряд типичных особенностей: снижение остроты зрения обоих глаз, развитие дисхроматопсии, наличие центральных или центроцекальных скотом, побледнение диска зрительного нерва (ДЗН) и уменьшение толщины слоя нервных волокон сетчатки (СНВС), преимущественно папилломакулярного пучка [1, 2].

По оценке ряда авторов, наиболее распространенными являются наследственная оптическая нейропатия Лебера (НОНЛ) и аутосомно-доминантная оптическая нейропатия (АДОН). Как правило, пациенты с НОНЛ и АДОН имеют нарушения только со стороны органа зрения, лишь в некоторых случаях оптическая нейропатия может быть всего одним из симптомов тяжелой наследственной патологии. Аутосомно-рецессивные оптические нейропатии (АРОН), в отличие от НОНЛ и АДОН, часто характеризуются не только поражением органа зрения, но и широким спектром экстраокулярных проявлений, связанных с митохондриальной дисфункцией, включая мозговую, сердечную, мышечную или слуховую симптоматику [3—6].

Развитие оптической нейропатии как при синдромальных, так и при несиндромальных патологиях — это уникальная клиническая особенность митохондриальных заболеваний. Связано это с тем, что внутриглазная часть аксонов ГКС лишена миелиновой оболочки и, следовательно, крайне энергозависима [7], поэтому, как правило, при митохондриальных нарушениях основным патологическим офтальмологическим паттерном является поражение ГКС [5].

Несиндромальные АРОН изначально описывались в литературе как исключительно редкие, врожденные и очень тяжелые формы НОН. Однако в 2000-е годы появилось понимание, что частота встречаемости рецессивных форм НОН существенно недооценена, а их клиническое разнообразие — от тяжелой врожденной формы до медленно прогрессирующей оптической нейропатии с поздним дебютом — мало изучено. В 2003 г. был локализован ген на хромосоме 8q21-q22 [6] и выделены пять патогенных генетических вариантов, вызывающих развитие клинической симптоматики АРОН. Позже были определены гены TMEM126A, ACO2, RTN4IP1, WFS1 и NDUFS2, кодирующие соответственно: белок внутренней мембраны митохондрий, участвующий в сборке I комплекса дыхательной цепи митохондрий (ДЦМ) [8, 9]; митохондриальную аконитазу [10, 11]; митохондриальную оксидоредуктазу [12]; трансмембранный белок вольфрамин, участвующий в регуляции жизненного цикла нервных клеток [13, 14]; 49 кДа центральную субъединицу I комплекса дыхательной цепи митохондрий [15, 16].

Несмотря на достаточное количество генов, ассоциированных с АРОН, аутосомно-рецессивные формы НОН в некоторых исследованиях встречаются несколько реже доминантных. Группа ученых из университетской клиники Angers (Франция), во главе с M. Charif в 2021 г. опубликовала результаты исследования [3] с участием 1102 пациентов с различными формами НОН. У всех пациентов первоначально были исключены мутации митохондриальной ДНК (мтДНК), далее проводился поиск мутаций с помощью секвенирования нового поколения в 22 генах ядерной ДНК (яДНК). У 186 (17%) пациентов были обнаружены мутации, ассоциированные с АДОН, в то время как у 59 (5%) пациентов определялись мутации, связанные с АРОН. По данным исследования, наиболее распространенным генетическим вариантом, встречающимся среди пациентов, была мутация p.R55X в гене TMEM126A (8,47%), кодирующем протеин внутренней мембраны митохондрий [8]. Рецессивные варианты в гене ACO2 были обнаружены в 13 (22,3%) семьях, а у представителей 9 (15,2%) семей обнаруживался вариант RTN4IP1 в рецессивной форме. Рецессивные варианты в генах SPG7 (8,47%), OPA1 (5,08%) и SLC25A46 (1,69%), YME1L1 были ассоциированы с синдромальными оптическими нейропатиями. Данное молекулярно-генетическое исследование позволило выявить генетический дефект в 22% случаев и было ограничено поиском мутаций только в 22 генах яДНК, ассоциации которых с НОН были известны.

Мутации в гене ACO2. Ген митохондриальной аконитазы ACO2 кодирует фермент, который катализирует превращение цитрата в изоцитрат в цикле трикарбоновых кислот [17]. Как правило, мутации в гене ACO2 имеют доминантный тип наследования. В 2012 г. впервые была описана гомозиготная мутация в гене ACO2, ассоциированная с развитием тяжелой ферментной недостаточности с аутосомно-рецессивным характером наследования, приводящей к инфантильной цереброретинальной дегенерации, или, иначе, амавротической идиотии [18]. В 2021 г. M. Charif и соавторы опубликовали еще одну статью [4], в которой представили результаты исследования с участием около 1000 человек европейского происхождения с генетически не подтвержденным диагнозом НОН. Было выявлено, что АДОН развиваются в результате моноаллельных мутаций в ACO2 и встречаются значительно чаще, чем рецессивные варианты. У 61 пациента с НОН были обнаружены мутации в гене ACO2, ассоциированные с развитием как АДОН, так и АРОН. У 50 пациентов были обнаружены гетерозиготные мутации гена ACO2, связанные с АДОН, в то время как у 11 пациентов — биаллельные мутации, ассоциированные с АРОН. К тому же рецессивные НОН сопровождаются экстраокулярной симптоматикой в 27% случаев, в то время как доминантные — только в 11%. Синдромальные АРОН, ассоциированные с ACO2, приводят к развитию тяжелой прогрессирующей неврологической патологии: атаксии, энцефалопатии, умственной отсталости, микроцефалии, атрофии мозжечка и зрительных нервов, нередко в патологический процесс вовлекается и сетчатка [10, 18—20]. Оптическая нейропатия является постоянным и отличительным признаком как синдромальных, так и несиндромальных вариантов заболеваний, связанных с мутацией в гене ACO2. В литературе описано лишь несколько случаев изолированной оптической нейропатии. Так, в исследовании M.D. Metodiev и соавторов приведено описание двух пациентов из одной семьи французского происхождения с изолированной оптической нейропатией, вызванной биаллельными мутациями в гене ACO2. У обоих пациентов в возрасте 3—5 лет отмечалось снижение остроты зрения, в дальнейшем были выявлены центроцекальные скотомы, дисхроматопсия, побледнение ДЗН и истончение СНВС, экстраокулярная симптоматика отсутствовала. У обоих пациентов были обнаружены биаллельные гетерозиготные мутации p.Leu74Val и p.Gly661Arg в гене ACO2 [10]. Позже J.C. Kelman и соавторы описали еще двух пациентов с АРОН из одной семьи. У обоих братьев были обнаружены компаунд-гетерозиготные мутации в гене ACO2 NM_001098.2: c.220C>G (p.Leu74Val) и NM_001098.2: c.2208 + 1dup [21]. В 2020 году S. Gibson и соавторы описали еще две компаунд-гетерозиготные мутации в гене ACO2 у двух детей с АРОН из одной семьи: c.1894G>A (p.Val632Met) и c.487G>T (p.Val163Leu) [17]. Примечательно, что при мутациях в гене ACO2 клиническое течение оптической нейропатии у пациентов с рецессивным вариантом наследования более тяжелое по сравнению с пациентами с доминантной формой НОН. Так, согласно данным исследования группы ученых во главе с M. Charif, свыше 60% пациентов с АРОН имеют остроту зрения ниже 0,1, в то время как острота зрения у пациентов с АДОН более чем в 80% случаев выше 0,1 [4].

Мутации в гене MCAT. Гомозиготные мутации p.L81R и p.R212W в гене MCAT также описаны в ассоциации с синдромальной и несиндромальной формами АРОН [22, 23]. Предполагается, что ген MCAT кодирует трансацилазу малонил-КоА — митохондриальный протеин, участвующий в биосинтезе жирных кислот. Протеин локализуется в митохондриях, где он катализирует перенос малонильной группы от малонил-КоА к митохондриальному белку-носителю ацилу [23, 24].

Совместная работа группы китайских и японских ученых под руководством H. Li и M. Yamamoto стала первым исследованием, в котором рассматривалась ассоциация мутаций в гене MCAT с развитием АРОН [22]. Авторы указывают, что экспрессия гена MCAT происходит исключительно в митохондриях ГКС, которые ввиду своей высокой метаболической активности отличаются содержанием большого количества митохондрий. Мутации в гене приводят к нестабильности структуры белка MCAT, что, в свою очередь, существенно снижает экспрессию гена, изменяя морфологическую структуру внутренней мембраны митохондрий. В эксперименте было показано, что у мышей с нокаутом гена MCAT определялось повреждение СНВС, сходное по патогенетическому механизму с фенотипом оптической нейропатии. В исследовании были описаны два брата китайского происхождения, которым в возрасте 8 лет была диагностирована несиндромальная оптическая нейропатия. У обоих пациентов наблюдалось постепенное снижение зрения, при офтальмоскопии было выявлено побледнение ДЗН и истончение СНВС во всех квадрантах, по данным оптической когерентной томографии. Помимо частичной атрофии зрительных нервов, у этих пациентов наблюдался горизонтальный нистагм, однако других нарушений со стороны органа зрения и экстраокулярных симптомов выявлено не было. У обоих пациентов по результатам полного секвенирования экзома были обнаружены две гомозиготные миссенс-мутации — p.L81R и p.R212W — в гене MCAT. Эти данные указывают на важную роль гена MCAT в поддержании нормальной функции митохондрий, а мутации p.L81R и p.R212W в этом гене могут приводить к прогрессирующей оптической нейропатии.

Позже французскими исследователями был описан еще один случай АРОН у молодой женщины с гомозиготной миссенс-мутацией p.Asp171Asn в гене MCAT [23]. S. Gerber и соавторы провели полное секвенирование экзома у пациентов из 51 семьи с генетически не подтвержденным диагнозом НОН и обнаружили компаунд-гетерозиготную мутацию у одной пациентки французского происхождения. В возрасте 20 лет у нее случилось внезапное двустороннее снижение остроты зрения, впоследствии были выявлены центральная скотома, дисхроматопсия и истончение СНВС, по данным оптической когерентной томографии. Клиническая картина оптической нейропатии у этой пациентки соответствовала клиническому течению НОН.

Мутации в гене WFS1, локализованном преимущественно в 8-м экзоне, приводят к апоптозу нервных клеток в результате нарушения структуры трансмембранного белка вольфрамина, участвующего в регуляции кальциевого обмена в эндоплазматическом ретикулуме [13, 14]. Существует около 150 мутаций этого гена [13], как правило, они ассоциированы с большим разнообразием клинических проявлений с доминантным и рецессивным типом наследования, включая синдром Вольфрама, изолированную АРОН, изолированную АДОН, а также АРОН в сочетании с тугоухостью [25—28]. По данным J. Grenier и соавторов, биаллельные мутации в гене WFS1 были обнаружены у 3 из 24 пациентов с несиндромальной АРОН, у 8 пациентов с аутосомно-рецессивным синдромом Вольфрама; гетерозиготные мутации были обнаружены у 4 из 20 неродственных пациентов с АДОН [29].

Мутации в гене RTN4IP. До недавнего времени роль мутаций в гене RTN4IP1 в развитии клинической симптоматики НОН рассматривалась как несущественная. RTN4IP1 кодирует митохондриальный протеин, определяющий активность фермента хинон-оксидоредуктазы, который, в свою очередь, принимает участие в функционировании I и IV комплексов ДЦМ, а также в процессах формирования и ветвления дендритов [12]. Наиболее частыми клиническими проявлениями таких мутаций были тяжелые ювенильные энцефалопатии с ранним дебютом, а также выраженная мышечная слабость. Однако C. Angebault и соавт. [12] описали четыре семьи с клинической картиной НОН. У всех пациентов были обнаружены мутации в гене RTN4IP1, кодирующем митохондриальный фермент убихинон-оксидоредуктазу. RTN4IP1 относится к семейству ретикулонов, кодирующих белки наружной мембраны митохондрий и принимающих участие в процессах роста и ветвления дендритов. Отмечается, что ортологичный ему ген RAD8 участвует в процессе преобразования ультрафиолетового излучения в нервный импульс [12, 30]. При анализе фибробластов у пациентов с клиническими проявлениями НОН было отмечено снижение экспрессии белка, кодируемого геном, что приводило к нарушениям I и IV комплексов ДЦМ, а также к повышенной чувствительности фибробластов кожи к ультрафиолетовому излучению. С помощью полного секвенирования экзома у двух представителей первой семьи с неуточненным ранее генетическим диагнозом была обнаружена нуклеотидная замена p.Arg103His в гомозиготном состоянии, изменяющая функции RTN4-связывающего белка. Во второй и третьей семьях был обнаружен генетический вариант p.Arg103His в гомозиготном состоянии. У обоих пациентов авторы описывали легкое или средней тяжести течение заболевания. В четвертой семье нуклеотидная замена c.308G>A была обнаружена у двух сестер с ранним дебютом снижения зрения. У обеих девушек помимо билатеральной оптической нейропатии отмечались также нистагм, статокинетический мозжечковый синдром и трудности в обучении. Авторы обратили внимание на довольно ранний дебют заболевания у всех пациентов с мутациями в гене RTN4IP1, что, по их мнению, может приводить как к нарушению формирования нормального зрительного акта, так и к более ранним функциональным нарушениям на клеточном уровне, возможно, в пренатальном периоде. Авторы, исходя из молекулярных функций RTN4IP1, предполагают, что мутации в нем вызывают комбинированные изменения в ГКС: нарушают функции митохондрий, негативно влияют на процессы восприятия ультрафиолетового излучения, а также вызывают нарушения процессов роста, формирования и ветвления дендритов.

Мутации в гене TMEM126A. Еще один ген, мутации в котором ассоциированы с развитием АРОН, — TMEM126A. Изначально наличие мутаций в данном гене связывали с ювенильными энцефалопатиями, однако в ряде исследований [8, 31] показана взаимосвязь между изменениями в гене и развитием оптической нейропатии. Гомозиготная нонсенс-мутация p.Arg55X в гене TMEM126A была впервые идентифицирована у пациентов с несиндромальной АРОН в 2009 г. [8]. С тех пор эта же мутация была выявлена у других пациентов североафриканского происхождения с несиндромальной АРОН [31, 32]. В 2012 г. D. Julie и соавторы описали семью марокканского происхождения с тремя детьми, страдающими рецессивным вариантом несиндромальной оптической нейропатии. У детей была идентифицирована гомозиготная мутация p.Arg55X в гене TMEM126A, в то время как оба клинически здоровых родителя оказались носителями гетерозиготной мутации. Интересно, что у четвертого ребенка, носителя гетерозиготной мутации, наблюдалась лишь временная потеря зрительных функций после физической нагрузки [32]. Позже были идентифицированы другие однонуклеотидные варианты мутаций сплайсинга в гене TMEM126A, являющиеся причиной развития несиндромальной АРОН: мутация c.86+2T>C в гомозиготном состоянии у пациентки турецкого происхождения, мутация p.S36 L в гомозиготном состоянии у двух пациентов из Ирака [11], гомозиготная мутация c.497A>G, p.Q166R у пациентки из Италии [33]. У всех пациентов отсутствовали признаки синдромальной патологии. Характерными для АРОН, ассоциированной с мутациями в гене TMEM126A, являются ранний дебют, побледнение ДЗН и наличие центральной скотомы; некоторые пациенты помимо оптической нейропатии имели признаки нейросенсорной тугоухости легкой степени [31].

Изначально предполагалось, что TMEM126A, являясь белком мРНК, локализованным на внутренней мембране митохондрий, участвует в синтезе крупных митохондриальных белковых комплексов [34—37], необходимых для нормального функционирования ГКС. Позднее, в 2021 г., L.E. Formosa и соавторы установили, что TMEM126A участвует в сборке ND4-модуля дистального региона I комплекса ДЦМ [9].

Мутации в гене NDUFS2. До недавнего времени считалось, что мутации в этом гене ассоциированы с тяжелой синдромальной патологией, например с синдромом Ли, Ли-подобными синдромами, прогрессирующей энцефаломиопатией с ранним началом [38—41]. Ранее в литературе были описаны 11 пациентов из 9 семей с изолированной недостаточностью I комплекса ДЦМ, связанной с мутацией NDUFS2. У всех пациентов был диагностирован синдром Ли или Ли-подобный синдром, и примечательно, что у 7 из 11 пациентов заболевание сопровождалось офтальмологической симптоматикой, характерной для НОНЛ. У четырех оставшихся пациентов офтальмологическое обследование не было проведено в связи с тяжелым общим состоянием. Предположительно, оптическая нейропатия является постоянным признаком и отличительной чертой заболеваний, вызванных мутацией в гене NDUFS2. В 2017 г. S. Gerber и соавторы впервые описали изолированное поражение зрительного нерва с типичной для НОНЛ клинической картиной. Три пациента из одной семьи французского происхождения обратились к офтальмологу с жалобами на острое, безболезненное, практически одновременное снижение зрения на обоих глазах, экстраокулярные симптомы при этом отсутствовали. На момент обращения при офтальмологическом осмотре были выявлены отек ДЗН и извитость сосудов, дисхроматопсия, центральная и центроцекальные скотомы. Через год у всех пациентов развилась частичная атрофия зрительного нерва. При проведении скрининга мутации в генах OPA1, SPG7, TMEM126A, ACO2 и RTN4IP1 были исключены. Все пациенты несли компаунд-гетерозиготную мутацию c.158A>G (p.Tyr53Cys) и c.923A>G (p.Tyr308Cys) в гене NDUFS2. Было выдвинуто предположение, что наличие в одном локусе двух рецессивных аллелей в гетерозиготном состоянии может привести к развитию изолированной несиндромальной оптической нейропатии. В отличие от ранее описанных мутаций в гене NDUFS2 с тяжелым мультисимптомным фенотипом, изолированная оптическая нейропатия сопровождалась незначительным снижением функции I комплекса ДЦМ: показатели активности I комплекса в фибробластах кожи пациентов были сопоставимы с показателями в фибробластах кожи лиц контрольной группы [15]. Согласно имеющимся исследованиям, зачастую именно компаунд-гетерозиготные мутации приводят к развитию изолированной АРОН.

Мутации в гене DNAJC30. Работа I комплекса ДЦМ, синтез которого кодируется как мтДНК, так и яДНК, нарушается при НОНЛ. I комплекс ДЦМ крайне чувствителен к воздействию окислительного стресса. Для поддержания его высокой функциональности каждая субъединица может подвергаться репарации вне зависимости от сохранности оставшегося комплекса. Было показано, что накопление нефункционирующих субъединиц I комплекса ДЦМ происходит в отсутствие белка DNAJC30. Дальнейшие исследования протеома и баз белковых взаимодействий показали взаимодействие DNAJC30 с субъединицами N-модуля, находящегося в части I комплекса, расположенной в матриксе митохондрий. По-видимому, белок DNAJC30, являясь шапероном I комплекса дыхательной цепи, способствует своевременной репарации и деградации поврежденных субъединиц N-модуля I комплекса, а также замене их на новые субъединицы [42].

В 2018 г. были описаны биаллельные мутации ядерного гена DNAJC30, ассоциированные с развитием АРОН с типичной клинической картиной НОНЛ. В ходе исследований у 33 пациентов были идентифицированы мутации в ядерном гене DNAJC30: у 29 пациентов были обнаружены гомозиготные мутации c.152A>G (p.Tyr51Cys), у четырех пациентов — гомозиготные мутации c.232C>T (p.Pro78Ser) и c.302T>A (p.Leu101Gln), при этом необходимо отметить, что мутаций мтДНК, которые могли бы послужить причиной развития заболевания, у этих пациентов выявлено не было. Ожидалось, что мутации в гене DNAJC30 приведут к развитию тяжелых мультисистемных патологий, которые обычно развиваются в результате мутаций в генах, кодирующих три основные субъединицы I комплекса ДЦМ, однако при этой мутации наблюдалось развитие изолированного поражения со стороны органа зрения [43]. Лишь одной пациентке из Германии в возрасте двух лет был диагностирован синдром Ли, ассоциированный с гомозиготной мутацией в гене DNAJC30. Интересно, что большинство пациентов с мутацией p.Tyr51Cys в гене DNAJC30 — выходцы из стран Восточной Европы: России, Польши, Украины, Румынии [42]. Кроме того, в России вклад мутаций в гене DNAJC30 в развитие НОН значительно выше, так как на АРОН, ассоциированную с мутацией в гене DNAJC30, приходится четверть всех случаев с НОН с клинической картиной НОНЛ. В исследовании Н.Л. Шеремет и соавторов была проанализирована выборка из 107 пациентов с клинической картиной НОНЛ: мутации мтДНК были выявлены в 77,6% случаев (83 пациента), а мутации гена DNAJC30 — в 22,4% случаев (24 пациента) [44].

Как для НОНЛ, так и для АРОН, связанной с геном DNAJC30, характерны неполная пенетрантность и явное преобладание мужского пола среди пациентов с развившимся заболеванием в соотношении 5:1. Несмотря на ряд сходных симптомов, характерных для НОН, ассоциированных с мутациями мтДНК и яДНК, были выявлены незначительные различия в возрасте манифестации заболевания и в скорости восстановления остроты зрения. При АРОН восстановление зрительных функций наблюдается чаще, к тому же восстановление происходит в более ранние сроки по сравнению с НОНЛ, развивающимися в результате мутаций мтДНК. Кроме того, есть предположение, что пациенты с АРОН, ассоциированной с геном DNAJC30, лучше отвечают на терапию идебеноном [42].

Таким образом, АРОН представляют особый интерес среди других генетических вариантов НОН. Несмотря на то что мутации в генах, ассоциированных с АРОН, в основном приводят к серьезной синдромальной патологии, нельзя недооценивать их вклад в развитие изолированных форм НОН.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Milea D, Amati-Bonneau P, Reynier P, Bonneau D. Genetically determined optic neuropathies. Curr Opin Neurol. 2010;23(1):24-28.  https://doi.org/10.1097/WCO.0b013e3283347b27
  2. La Morgia C, Carbonelli M, Barboni P, Sadun AA, Carelli V. Medical management of hereditary optic neuropathies. Front Neurol. 2014;5:141.  https://doi.org/10.3389/fneur.2014.00141
  3. Charif M, Bris C, Goudenège D, Desquiret-Dumas V, Colin E, Ziegler A, Procaccio V, Reynier P, Bonneau D, Lenaers G, Amati-Bonneau P. Use of Next-Generation Sequencing for the Molecular Diagnosis of 1,102 Patients With a Autosomal Optic Neuropathy. Front Neurol. 2021;12:602979. https://doi.org/10.3389/fneur.2021.602979
  4. Charif M, Gueguen N, Ferré M, Elkarhat Z, Khiati S, LeMao M, Chevrollier A, Desquiret-Dumas V, Goudenège D, Bris C, Kane S, Alban J, Chupin S, Wetterwald C, Caporali L, Tagliavini F, LaMorgia C, Carbonelli M, Jurkute N, Barakat A, Gohier P, Verny C, Barth M, Procaccio V, Bonneau D, Zanlonghi X, Meunier I, Weisschuh N, Schimpf-Linzenbold S, Tonagel F, Kellner U, Yu-Wai-Man P, Carelli V, Wissinger B, Amati-Bonneau P, Reynier P; European ION Group, Lenaers G. Dominant ACO2 mutations are a frequent cause of isolated optic atrophy. Brain Commun. 2021;3(2): fcab063. https://doi.org/10.1093/braincomms/fcab063
  5. Carelli V, La Morgia C, Ross-Cisneros FN, Sadun AA. Optic neuropathies: the tip of the neurodegeneration iceberg. Hum Mol Genet. 2017;26(R2):139-150.  https://doi.org/10.1093/hmg/ddx273
  6. Barbet F, Gerber S, Hakiki S, Perrault I, Hanein S, Ducroq D, Tanguy G, Dufier JL, Munnich A, Rozet JM, Kaplan J. A first locus for isolated autosomal recessive optic atrophy (ROA1) maps to chromosome 8q. Eur J Hum Genet. 2003;11(12):966-971.  https://doi.org/10.1038/sj.ejhg.5201070
  7. Chun BY, Rizzo JF 3rd. Dominant optic atrophy: updates on the pathophysiology and clinical manifestations of the optic atrophy 1 mutation. Curr Opin Ophthalmol. 2016;27(6):475-480.  https://doi.org/10.1097/ICU.0000000000000314
  8. Hanein S, Perrault I, Roche O, Gerber S, Khadom N, Rio M, Boddaert N, Jean-Pierre M, Brahimi N, Serre V, Chretien D, Delphin N, Fares-Taie L, Lachheb S, Rotig A, Meire F, Munnich A, Dufier JL, Kaplan J, Rozet JM. TMEM126A, encoding a mitochondrial protein, is mutated in autosomal-recessive nonsyndromic optic atrophy. Am J Hum Genet. 2009;84(4):493-498.  https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2009.03.003
  9. Formosa LE, Reljic B, Sharpe AJ, et al. Optic atrophy-associated TMEM126A is an assembly factor for the ND4-module of mitochondrial complex I. Proc Natl Acad Sci USA. 2021;118(17):e2019665118. https://doi.org/10.1073/pnas.2019665118
  10. Metodiev MD, Gerber S, Hubert L, Delahodde A, Chretien D, Gérard X, Amati-Bonneau P, Giacomotto MC, Boddaert N, Kaminska A, Desguerre I, Amiel J, Rio M, Kaplan J, Munnich A, Rötig A, Rozet JM, Besmond C. Mutations in the tricarboxylic acid cycle enzyme, aconitase 2, cause either isolated or syndromic optic neuropathy with encephalopathy and cerebellar atrophy. J Med Genet. 2014;51(12):834-838.  https://doi.org/10.1136/jmedgenet-2014-102532
  11. Kloth K, Synofzik M, Kernstock C, Schimpf-Linzenbold S, Schuettauf F, Neu A, Wissinger B, Weisschuh N. Novel likely pathogenic variants in TMEM126A identified in non-syndromic autosomal recessive optic atrophy: two case reports. BMC Med Genet. 2019;0(1):62.  https://doi.org/10.1186/s12881-019-0795-x
  12. Angebault C, Guichet PO, Talmat-Amar Y, Charif M, Gerber S, Fares-Taie L, Gueguen N, Halloy F, Moore D, Amati-Bonneau P, Manes G, Hebrard M, Bocquet B, Quiles M, Piro-Mégy C, Teigell M, Delettre C, Rossel M, Meunier I, Preising M, Lorenz B, Carelli V, Chinnery PF, Yu-Wai-Man P, Kaplan J, Roubertie A, Barakat A, Bonneau D, Reynier P, Rozet JM, Bomont P, Hamel CP, Lenaers G. Recessive Mutations in RTN4IP1 Cause Isolated and Syndromic Optic Neuropathies. Am J Hum Genet. 2015;97(5): 754-760.  https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2015.09.012
  13. Дианов О.А., Лаврова Е.А., Мальцев В.В., Олейник Д.А. Синдром Вольфрама, неполная форма. Клинический случай. Проблемы эндокринологии. 2019;65(1):46-49.  https://doi.org/10.14341/probl8626
  14. Староватых Ю.С., Руденок М.М., Карабанов А.В., Иллариошкин С.Н., Сломинский П.А., Шадрина М.И., Алиева А.Х. Анализ экспрессии генов cln3, gabbr1 и wfs1 у пациентов с болезнью Паркинсона. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2020;38(2):76-81.  https://doi.org/10.17116/molgen20203802176
  15. Gerber S, Ding MG, Gérard X, Zwicker K, Zanlonghi X, Rio M, Serre V, Hanein S, Munnich A, Rotig A, Bianchi L, Amati-Bonneau P, Elpeleg O, Kaplan J, Brandt U, Rozet JM. Compound heterozygosity for severe and hypomorphic NDUFS2 mutations cause non-syndromic LHON-like optic neuropathy. J Med Genet. 2017;54(5):346-356.  https://doi.org/10.1136/jmedgenet-2016-104212
  16. Pagniez-Mammeri H, Loublier S, Legrand A, Bénit P, Rustin P, Slama A. Mitochondrial complex I deficiency of nuclear origin. Structural genes. Mol Genet Metabol. 2012;105:163-72.  https://doi.org/10.1016/j.ymgme.2011.11.188
  17. Gibson S, Azamian MS, Lalani SR, Yen KG, Sutton VR, Scott DA. Recessive ACO2 variants as a cause of isolated ophthalmologic phenotypes. Am J Med Genet. 2020;182(8):1960-1966. https://doi.org/10.1002/ajmg.a.61634
  18. Spiegel R, Pines O, Ta-Shma A, Burak E, Shaag A, Halvardson J, Edvardson S, Mahajna M, Zenvirt S, Saada A, Shalev S, Feuk L, Elpeleg O. Infantile cerebellar-retinal degeneration associated with a mutation in mitochondrial aconitase, ACO2. Am J Hum Genet. 2012;90(3):518-523.  https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2012.01.009
  19. Sharkia R, Wierenga KJ, Kessel A, Azem A, Bertini E, Carrozzo R, Torraco A, Goffrini P, Ceccatelli Berti C, McCormick ME, Plecko B, Klein A, Abela L, Hengel H, Schöls L, Shalev S, Khayat M, Mahajnah M, Spiegel R. Clinical, radiological, and genetic characteristics of 16 patients with ACO2 gene defects: Delineation of an emerging neurometabolic syndrome. J Inherit Metabol Dis. 2019;42(2):264-275.  https://doi.org/10.1002/jimd.12022
  20. Srivastava S, Gubbels CS, Dies K, Fulton A, Yu T, Sahin M. Increased Survival and Partly Preserved Cognition in a Patient with ACO2-Related Disease Secondary to a Novel Variant. J Child Neurol. 2017;32(9):840-845.  https://doi.org/10.1177/0883073817711527
  21. Kelman JC, Kamien BA, Murray NC, Goel H, Fraser CL, Grigg JR. A sibling study of isolated optic neuropathy associated with novel variants in the ACO2 gene. Ophthalm Genet. 2018;39(5):648-651.  https://doi.org/10.1080/13816810.2018.1509353
  22. Li H, Yuan S, Minegishi Y, Suga A, Yoshitake K, Sheng X, Ye J, Smith S, Bunkoczi G, Yamamoto M, Iwata T. Novel mutations in malonyl-CoA-acyl carrier protein transacylase provoke autosomal recessive optic neuropathy. Hum Mol Genet. 2020;29(3):444-458.  https://doi.org/10.1093/hmg/ddz311
  23. Gerber S, Orssaud C, Kaplan J, Johansson C, Rozet JM. MCAT Mutations Cause Nuclear LHON-like Optic Neuropathy. Genes. 2021;12(4):521.  https://doi.org/10.3390/genes12040521
  24. Smith S, Witkowski A, Moghul A, Yoshinaga Y, Nefedov M, de Jong P, Feng D, Fong L, Tu Y, Hu Y, Young SG, Pham T, Cheung C, Katzman SM, Brand MD, Quinlan CL, Fens M, Kuypers F, Misquitta S, Griffey SM, Tran S, Gharib A, Knudsen J, Hannibal-Bach HK, Wang G, Larkin S, Thweatt J, Pasta S. Compromised mitochondrial fatty acid synthesis in transgenic mice results in defective protein lipoylation and energy disequilibrium. PLoS One. 2012;7(10):e47196. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0047196
  25. Bespalova IN, van Camp G, Bom SJ, Brown DJ, Cryns K, DeWan AT, Erson AE, Flothmann K, Kunst HP, Kurnool P, Sivakumaran TA, Cremers CW, Leal SM, Burmeister M, Lesperance MM. Mutations in the Wolfram syndrome 1 gene (WFS1) are a common cause of low frequency sensorineural hearing loss. Hum Mol Genet. 2001;10(22):2501-2508. https://doi.org/10.1093/hmg/10.22.2501
  26. Hansen L, Eiberg H, Barrett T, Bek T, Kjærsgaard P, Tranebjærg L, et al. Mutation analysis of the WFS1 gene in seven Danish Wolfram syndrome families; four new mutations identified. Eur J Hum Genet EJHG. 2005; 13(12):1275-1284. https://doi.org/10.1038/sj.ejhg.5201491
  27. Young TL, Ives E, Lynch E, Person R, Snook S, MacLaren L, Cater T, Griffin A, Fernandez B, Lee MK, King MC. Non-syndromic progressive hearing loss DFNA38 is caused by heterozygous missense mutation in the Wolfram syndrome gene WFS1. Hum Mol Genet. 2001;10(22):2509-2514. https://doi.org/10.1093/hmg/10.22.2509
  28. Hogewind BF, Pennings RJ, Hol FA, Kunst HP, Hoefsloot EH, Cruysberg JR, Cremers CW. Autosomal dominant optic neuropathy and sensorineural hearing loss associated with a novel mutation of WFS1. Mol Vis. 2010;16:26-35. 
  29. Grenier J, Meunier I, Daien V, Baudoin C, Halloy F, Bocquet B, Blanchet C, Delettre C, Esmenjaud E, Roubertie A, Lenaers G, Hamel CP. WFS1 in Optic Neuropathies: Mutation Findings in Nonsyndromic Optic Atrophy and Assessment of Clinical Severity. Ophthalmology. 2016;23(9):1989-1998. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2016.05.036
  30. Birch-Machin MA, Swalwell H. How mitochondria record the effects of UV exposure and oxidative stress using human skin as a model tissue. Mutagenesis. 2010;25(2):101-107.  https://doi.org/10.1093/mutage/gep061
  31. Meyer E, Michaelides M, Tee LJ, Robson AG, Rahman F, Pasha S, Luxon LM, Moore AT, Maher ER. Nonsense mutation in TMEM126A causing autosomal recessive optic atrophy and auditory neuropathy. Mol Vis. 2010; 13:16:650-664. 
  32. Désir J, Coppieters F, van Regemorter N, De Baere E, Abramowicz M, Cordonnier M. TMEM126A mutation in a Moroccan family with autosomal recessive optic atrophy. Mol Vis. 2012;18:1849-1857.
  33. La Morgia C, Caporali L, Tagliavini F, Palombo F, Carbonelli M, Liguori R, Barboni P, Carelli V. First TMEM126A missense mutation in an Italian proband with optic atrophy and deafness. Neurol Genet. 2019;5(3):e329. https://doi.org/10.1212/NXG.0000000000000329
  34. Heinrich PC, Schmelzer E, Northemann W, Kaiser C, Witt I. Rat liver cytochrome c oxidase subunits IV and V: cell-free synthesis as larger molecular weight precursors, mRNA sizes and sites of synthesis. Progr Clin Biol Res. 1982;102 Pt B:149-159. 
  35. Rings EH, Büller HA, de Boer PA, Grand RJ, Montgomery RK, Lamers WH, Charles R, Moorman AF. Messenger RNA sorting in enterocytes. Co-localization with encoded proteins. FEBS Lett. 1992;300(2):183-187.  https://doi.org/10.1016/0014-5793(92)80192-j
  36. Sylvestre J, Vialette S, Corral Debrinski M, Jacq C. Long mRNAs coding for yeast mitochondrial proteins of prokaryotic origin preferentially localize to the vicinity of mitochondria. Genome Biol. 2003;4(7):R44.  https://doi.org/10.1186/gb-2003-4-7-r44
  37. Garcia M, Darzacq X, Delaveau T, Jourdren L, Singer RH, Jacq C. Mitochondria-associated yeast mRNAs and the biogenesis of molecular complexes. Mol Biol Cell. 2007;18(2):362-368.  https://doi.org/10.1091/mbc.e06-09-0827
  38. Loeffen J, Elpeleg O, Smeitink J, Smeets R, Stöckler-Ipsiroglu S, Mandel H, Sengers R, Trijbels F, van den Heuvel L. Mutations in the complex I NDUFS2 gene of patients with cardiomyopathy and encephalomyopathy. Ann Neurol. 2001;49(2):195-201.  https://doi.org/10.1002/1531-8249(20010201)49
  39. Tuppen HA, Hogan VE, He L, Blakely EL, Worgan L, Al-Dosary M, Saretzki G, Alston CL, Morris AA, Clarke M, Jones S, Devlin AM, Mansour S, Chrzanowska-Lightowlers ZM, Thorburn DR, McFarland R, Taylor RW. The p.M292T NDUFS2 mutation causes complex I-deficient Leigh syndrome in multiple families. Brain J Neurol. 2010;133(10):2952-2963. https://doi.org/10.1093/brain/awq2322010
  40. Ngu LH, Nijtmans LG, Distelmaier F, Venselaar H, van Emst-de Vries SE, van den Brand MA, Stoltenborg BJ, Wintjes LT, Willems PH, van den Heuvel LP, Smeitink JA, Rodenburg RJ. A catalytic defect in mitochondrial respiratory chain complex I due to a mutation in NDUFS2 in a patient with Leigh syndrome. Biochim Biophys Acta. 2012;1822(2):168-175.  https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2011.10.012
  41. Marin SE, Mesterman R, Robinson B, Rodenburg RJ, Smeitink J, Tarnopolsky MA. Leigh syndrome associated with mitochondrial complex I deficiency due to novel mutations In NDUFV1 and NDUFS2. Gene. 2013; 516(1):162-167.  https://doi.org/10.1016/j.gene.2012.12.024
  42. Stenton S, Sheremet N, Catarino C, Andreeva N, Assouline Z, Barboni P, Barel O, Berutti R, Bychkov I, Caporali L, Capristo M, Carbonelli M, Cascavilla M, Charbel IP, Freisinger P, Gerber S, Ghezzi D, Graf E, Heidler J, Hempel M, Heon E, Itkis Y, Javasky E, Kaplan J, Kopajtich R, Kornblum C, Kovacs-Nagy R, Krylova T, Kunz W, La Morgia C, Lamperti C, Ludwig, C, Malacarne P, Maresca A, Mayr J, Meisterknecht J, Nevinitsyna T, Palombo F, Pode-Shakked B, Shmelkova M, Strom T, Tagliavini F, Tzadok M, van der Ven A, Vignal-Clermont C, Wagner M, Zakharova E, Zhorzholadze N, Rozet J, Carelli V, Tsygankova P, Klopstock T, Wittig I, Prokisch H. Impaired complex I repair causes recessive Leber’s hereditary optic neuropathy. J Clin Invest. 2021;131(6):e138267. https://doi.org/10.1172/jci138267
  43. Wiggs JL. DNAJC30 biallelic mutations extend mitochondrial complex I-deficient phenotypes to include recessive Leber’s hereditary optic neuropathy. J Clin Invest. 2021;131(6):e147734. https://doi.org/10.1172/JCI147734
  44. Шеремет Н.Л., Крылова Т.Д., Цыганкова П.Г. Новые возможности диагностики наследственных оптических нейропатий. Вестник офтальмологии. 2021;137(5-2):361-366.  https://doi.org/10.17116/oftalma2021137052361

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.