Покровская Е.М.

Казанская государственная медицинская академия — филиал ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России;
Институт фундаментальной медицины и биологии ФГАОУ ВО «Казанский (Приволжский) федеральный университет»

Халиуллина С.В.

Институт фундаментальной медицины и биологии ФГАОУ ВО «Казанский (Приволжский) федеральный университет»;
ФГБОУ ВО «Казанский государственный медицинский университет» Минздрава России

Красножен В.Н.

Казанская государственная медицинская академия

Маннанова Э.Ф.

Казанская государственная медицинская академия — филиал ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России;
Институт фундаментальной медицины и биологии ФГАОУ ВО «Казанский (Приволжский) федеральный университет»

Клинико-патогенетическое значение сочетанного инфицирования носоглотки детей золотистым стафилококком и лимфотропными герпесвирусами

Авторы:

Покровская Е.М., Халиуллина С.В., Красножен В.Н., Маннанова Э.Ф.

Подробнее об авторах

Журнал: Российская ринология. 2022;30(4): 243‑248

Прочитано: 1415 раз


Как цитировать:

Покровская Е.М., Халиуллина С.В., Красножен В.Н., Маннанова Э.Ф. Клинико-патогенетическое значение сочетанного инфицирования носоглотки детей золотистым стафилококком и лимфотропными герпесвирусами. Российская ринология. 2022;30(4):243‑248.
Pokrovskaya EM, Khaliullina SV, Krasnozhen VN, Mannanova EF. Clinical and pathogenetic significance of combined infection of the nasopharynx of children with Staphylococcus aureus and lymphotropic herpesviruses. Russian Rhinology. 2022;30(4):243‑248. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/rosrino202230041243

Рекомендуем статьи по данной теме:

Сокращения:

ВГЧ-6 (HHV-6) — вирус герпеса человека 6-го типа (Human herpesvirus 4)

ВЭБ (EBV) — вирус Эпштейна—Барр (Epstein—Barr virus)

ГВ — герпесвирусы

ГМ — глоточная миндалина

ИФА — иммуноферментный анализ

ПЦР — полимеразная цепная реакция

CMV — цитомегаловирус

IgA — иммуноглобулин A

sIgA — секреторный иммуноглобулин А

Введение

Формирование и особенности течения патологии верхних дыхательных путей, в частности носа и околоносовых пазух, у детей тесно связаны с наличием хронической патологии органов лимфаденоидного глоточного кольца [1, 2], состоянием адаптивного иммунного ответа глоточной миндалины (ГМ) [3, 4], ролью секреторного иммуноглобулина А (sIgA), который является важной составляющей мукозального иммунитета, обеспечивая неспецифическую защиту против различных патогенов [5].

Уровень sIgA в организме зависит от множества факторов: состояния и особенностей макроорганизма (возраст, пол, наличие функциональных нарушений и патологических состояний), уровня колонизации верхних дыхательных путей, в частности носоглотки, различными патогенами, их вирулентности. Так, например, доказано, что персистенция лимфотропных герпесвирусов (ГВ), в первую очередь вируса Эпштейна—Барр (ВЭБ), является одной из ведущих причин несостоятельности местной иммунной защиты слизистых оболочек верхних дыхательных путей [6].

Возбудители герпесвирусных инфекций могут вызывать резкое угнетение внутриклеточной продукции медиаторов «до иммунного» воспаления в ГМ, приводя к снижению количества клеточных элементов в лимфоидной ткани носоглотки, содержащих sIgA, что является причиной пролонгированной иммуносупрессии и одной из наиболее вероятных причин хронизации процесса [7].

Отмечая возможные причины формирования хронической патологии органов лимфаденоидного глоточного кольца, нельзя не упомянуть и работы, посвященные возможным бактериальным причинам развития этой группы заболеваний [8, 9]. Особый интерес представляют исследования, касающиеся сочетанного инфицирования слизистой ротоглотки бактериальной микрофлорой и вирусами [9, 10]. Опубликованные в литературе данные свидетельствуют том, что подобные ситуации нередки и, при наличии клинических проявлений, одновременное инфицирование вирусными и бактериальными патогенами наблюдается в 80—82% случаев [9, 10]. В первую очередь речь идет о семействе ГВ. В качестве основных бактериальных патогенов в этих ситуациях, называют Streptococcus pneumoniae, Staphylococcus aureus и Haemophilus influenzae. Отличительной особенностью этих бактерий является их способность продуцировать IgA-протеазы — бактериальные ферменты, расщепляющие человеческий иммуноглобулин A (IgA), что приводит к снижению активности иммунного ответа, задержке элиминации возбудителей со слизистой оболочки и, как следствие, формированию хронической патологии верхних дыхательных путей [11—14].

В этом плане научный и практический интерес представляют исследования, касающиеся комплексной оценки факторов местного иммунитета, анализа показателей в зависимости от характера вирусно- бактериального инфицирования.

Цель исследования — оценка вирусно-бактериальной колонизации носоглотки и состояния мукозального иммунитета у детей с хроническим аденоидитом в зависимости от степени гипертрофии глоточной миндалины.

Пациенты и методы

Проведено одномоментное сравнительное исследование, включавшее клинико-лабораторное обследование 151 ребенка в возрасте от 3 до 7 лет, который проходил амбулаторное лечение по поводу хронического аденоидита на базе Медицинской клиники «Здоровье семьи» (Казань) в период с января по декабрь 2021 г. Включение в исследование проводили методом случайной выборки с учетом согласия пациентов и их родителей/законных представителей. Критериями включения являлись: возраст пациентов, наличие гипертрофии глоточной миндалины, отсутствие тяжелой сопутствующей патологии. Всем детям в рамках первичного консультирования осуществляли стандартный оториноларингологический осмотр и эндоскопию полости носа и носоглотки в соответствии с актуальными клиническими рекомендациями [15]. Степень гипертрофии аденоидов определяли по классификации А.Г. Лихачева [16].

По результатам клинико-инструментального обследования, пациенты были разделены на две группы в зависимости от степени гипертрофии глоточной миндалины: в 1-ю группу вошли 73 ребенка с аденоидами 1—2-й степени; во 2-ю группу — 78 детей с аденоидами 3-й степени.

В рамках исследования было выполнено:

1. Микробиологические исследования носоглотки.

2. Определение ДНК лимфотропных ГВ (EBV, CMV, HHV-6) в мазке из носоглотки методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) (качественный анализ) в режиме реального времени с использованием тест-систем «РеалБест» (ЗАО «Вектор-Бест).

3. Определение протеолитической активности в отношении sIgA человека у выделенных штаммов S. aureus с использованием метода иммуноферментного анализа (ИФА). По величине протеолитической активности изолированные штаммы S. aureus были подразделены на следующие группы: с низкой активностью (от 0,09 до 0,40 усл.ед.), со средней активностью (от 0,40 до 1,10 усл.ед.) и с высокой активностью (1,10 до 18,11 усл.ед.).

4. Определение содержания в слюне sIgA методом ИФА (набор фирмы «Вектор Бест», Россия). Показатели сравнивали с нормальным уровнем sIgA в слюне, который в возрасте от 3 до 8 лет составляет 75—250 мг/л [17].

При статистической обработке данных анализ соответствия вида распределения признака закону нормального распределения проводили с помощью теста Шапиро—Уилка. Нормальное распределение констатировали при p>0,05. В ином случае использовали непараметрические методы статистического анализа. При распределении признака, отличном от нормального, из мер центральной тенденции использовали медиану (Me), из мер рассеяния — межквартильный размах (МКР, значения 25-го и 75-го процентилей). Относительные частоты признаков представляли в процентах (%), в качестве мер рассеяния рассчитывали 95% доверительный интервал (95% ДИ), рядом указывали абсолютные частоты, отражающие число пациентов с наблюдаемым значением признака и общее число пациентов в группе (n/N). Достоверность различий между сравниваемыми группами рассчитывали по критерию χ2. При сравнении групп с малым числом участников определяли точный критерий Фишера. Сравнение групп по количественным признакам (при условии распределения, отличного от нормального) проводили с использованием U-критерия Манна—Уитни.

Результаты

Анализ определения ДНК ГВ в мазке из носоглотки показал, что у 74 из 151 обследованного (49%; 95% ДИ 41,1—56,9) был получен положительный результат: у 23 пациентов 1-й группы (31,5%; 95% ДИ 20,9—42,1) и у 51 ребенка 2-й группы (65,4%; 95% ДИ 54,9—75,9) (p<0,001). Среди верифицированных возбудителей в вариантах моно- и микст инфекции доминировал ВЭБ, его обнаружили на слизистой оболочке носоглотки у 12 пациентов 1-й группы и у 34 — 2-й группы. На втором месте по частоте выделения находился ВГЧ-6 (табл. 1).

Таблица 1. Частота выделения ДНК вируса Эпштейна—Барр, цитомегаловируса и герпеса 6-го типа и их сочетания из носоглотки обследованных детей

Группа

N

EBV+

CMV+

HHV-6+

моно

(1)

микст

(2)

моно

(3)

микст

(4)

моно

(5)

микст

(6)

1-я группа

73 (100%)

12 (16,4%)

0

2 (2,7%)

2 (2,7%)

7 (9,6%)

2 (2,7%)

р1—3, 4, 6=0,012*

2-я группа

78 (100%)

22 (28,2%)

12 (15,4%)

3 (3,8%)

7 (8,9%)

12 (15,4%)

11 (14,1%)

р1—3=0,005, р1—4=0,021, р1—6=0,033, р2—3=0,042, р5—3=0,042, р6—3=0,046

Примечание. * — точный критерий Фишера, указаны только статистически значимые различия между группами.

Следует отметить, что в группе детей с выраженной гипертрофией небных миндалин ГВ на слизистой оболочке присутствовали чаще и преобладал также ВЭБ.

Анализ результатов микробиологического исследования показал, что одним из наиболее часто высеваемых микроорганизмов из носоглотки больных детей был золотистый стафилококк. Его изолировали со слизистой оболочки носоглотки у 71,5% (95% 64,3—78,7; 108/151) обследованных, причем практически всегда в ассоциациях с другими микроорганизмами. У 39,7% (95% ДИ 31,9—47,5; 60/151) пациентов S. aureus высевали в сочетании с β-гемолитическим стрептококком группы А. S. pneumoniae встречали только в сочетании с другими бактериями, таких случаев было 15,2% (95% ДИ 9,5—20,9; 23/151): у 4,1% (95% ДИ 0,1—8,1; 3/73) пациентов 1-й группы и у 25,6% (95% ДИ 16—35,2; 20/78) детей 2-й группы (p<0,001).

С учетом того, что золотистый стафилококк значимо преобладал среди патогенов, выделенных со слизистой оболочки носоглотки пациентов, дальнейшие специфические лабораторные исследования были проведены в отношении этого патогена. Детей, инфицированных S. aureus, обследовали на ГВ, а у стафилококков определяли sIgA-протеиназную активность. Данные представлены в табл. 2.

Таблица 2. Варианты инфицирования носоглотки обследованных пациентов в зависимости от степени гипертрофии глоточной миндалины

Вариант инфицирования носоглотки

1-я группа (n=73)

2-я группа (n=78)

р

Частота колонизации S. aureus

42 (57,5%)

66 (84,6%)

<0,001

Частота колонизации S. aureus с sIgA-протеиназной активностью

12/42 (28,6%)

51/66 (77,3%)

<0,001

Сочетанное инфицирование S. aureus с sIgA-протеиназной активностью и лимфотропными герпесвирусами

6/12 (50%)

43/51 (84,3%)

0,011

Золотистый стафилококк чаще колонизировал слизистую оболочку носоглотки детей с выраженной гипертрофией ГМ (p<0,001). В 1-й группе пациентов с гипертрофией 1—2-й степени S. aureus был выявлен у 57,5% (95% ДИ 46,2—68,8; 42/73) обследованных, во 2-й — у 84,6% (95% ДИ 76,6—92,6; 66/78). S. aureus с sIgA-протеиназной активностью также чаще изолировали у детей с выраженной гипертрофией ГМ (p<0,001), причем чаще — в комбинации с ГВ (p=0,011). Из 63 пациентов, инфицированных S. aureus с sIgA-протеиназной активностью, у 49 была выявлена активная репликация ГВ на слизистой оболочке носа (обнаружена ДНК в смыве из носоглотки методом ПЦР). У пациентов 1-й группы такой вариант сочетанного инфицирования регистрировали у 8,2% (95% ДИ 2—14,4; 6/73) обследованных, во 2-й группе — у 55,1% (95% ДИ 44,1—66,1; 43/78), (p<0,001).

В группе детей с аденоидами 3-й степени 51 из 66 изолятов S. aureus обладали sIgA-протеиназной активностью, что свидетельствует о характере патогенности штаммов, причем у 30 штаммов активность была высокой. У 51 пациента, инфицированного золотистым стафилококком, продуцентом sIgA-протеиназ, положительный результат ПЦР при определении ДНК лимфотропных ГВ в мазке из носоглотки наблюдали у 43. В подавляющем большинстве случаев речь шла о ВЭБ — у 29 из 43 обследованных.

Результаты исследования sIgA оценивали по двум направлениям: по группам и у всех пациентов в целом в зависимости от бактериального и вирусного компонентов микробиоты носоглотки.

Проведенный анализ показал, что у детей с выраженной гипертрофией глоточной миндалины имело место снижение концентрации sIgA в слюне (Me 43; МКР 34,4—76,6; p<0,001) по сравнению с возрастной нормой и статистически значимое снижение концентрации sIgA в сравнении с результатами 1-й группы (Me 63,8; МКР 44,2—98,6; p=0,023).

Кроме того, была проведена сравнительная характеристика изменений уровня секреторного sIgA в зависимости от бактериального и вирусного компонентов микробиоты носоглотки. Все пациенты были распределены по четырем подгруппам в зависимости от характера выделяемой из носоглотки микрофлоры: 1 — S. aureus в сочетании с ГВ; 2 — S.aureus без них; 3 — другая бактериальная флора в сочетании с ГВ; 4 — другая бактериальная флора без них. Результаты представлены в табл. 3.

Таблица 3. Концентрация секреторного иммуноглобулина А в слюне в зависимости от особенностей инфицирования (различная бактериальная микрофлора в сочетании с герпесвирусами или без них

Микрофлора

S. aureus + ГВ

(1)

S. aureus без ГВ

(2)

Другая бактериальная флора + ГВ

(3)

Другая бактериальная флора без ГВ

(4)

n

59

49

15

28

Me (МКР)

40,8 (31,3—110,8)

58,4 (25,2—59,7)

90 (47,6—122,6)

98,2 (94,1—121)

p1—2>0,05; p1—4=0,028; p1—3>0,05; p2—3>0,05; p2—4>0,05; p3—4>0,05

Полученные результаты дают основание полагать, что при сочетанном инфицировании ГМ золотистым стафилококком и лимфотропными ГВ отмечается более существенное снижение концентрации sIgA в слюне по отношению к группе детей с другой бактериальной флорой, а также не инфицированных ГВ (p1—4=0,028).

Заключение

Проведенные исследования показали, что частота колонизации носоглотки детей с хроническими аденоидитами S. aureus с sIgA-протеиназной активностью и лимфотропными герпесвирусами (преимущественно ВЭБ и ВГЧ-6) встречаются достаточно часто. Можно полагать, что именно эти возбудители являются основной причиной хронического воспаления и развития гипертрофии глоточной миндалины. Обращает на себя внимание тот факт, что именно сочетанное инфицирование сопровождается максимально выраженными гипертрофическими изменениями глоточной миндалины [3].

Инфицирование детей лимфотропными герпесвирусами, в первую очередь ВЭБ, наряду с S. aureus с sIgA-протеиназной активностью, обоснованно можно рассматривать как одну из причин несостоятельности местной иммунной защиты слизистой оболочки верхних дыхательных путей.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — В.Н. Красножен, Е.М. Покровская, С.В. Халиуллина

Сбор и обработка материала — Е.М. Покровская, Э.Ф. Маннанова

Написание текста — Е.М. Покровская, С.В. Халиуллина

Редактирование — С.В. Халиуллина, Е.М. Покровская

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов

Литература / References:

  1. Marseglia GL, Pagella F, Klersy C. The 10-day mark is a good way to diagnose not only acute rhinosinusitis but also adenoiditis, as confirmed by endoscopy. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2007;71:581-583.  https://doi.org/10.1016/j.ijporl.2006.12.003
  2. Singh R, Shilpa R, Mukhopadhyay C, Shenoy PA, Balakrishnan R, Devaraja K. Correlation between microbiological profiles of adenoid tissue and nasal discharge in children with co-existent chronic adenoiditis and chronic rhinosinusitis. Indian J Otolaryngol Head Neck Surg. 2020;72(1):112-116.  https://doi.org/10.1007/s12070-019-01775-y
  3. Быкова В.П., Белавина П.И., Рязанская А.Г., Юнусов А.С. Состояние глоточной и небных миндалин у детей при современном лечении инфекционно-воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей и глотки, включающем назначение иммунотропных препаратов. Российская ринология. 2018;26(2):3-14.  https://doi.org/10.17116/rosrino20182623
  4. Рязанская А.Г., Быкова В.П., Юнусов А.С. Вторичные фолликулы лимфоэпителиальных органов глотки как структурная основа гуморального звена адаптивного иммунитета в условиях иммунотропной терапии. Российская ринология. 2020;28(3):137-144.  https://doi.org/10.17116/rosrino202028031137
  5. Климов А.В. Клинико-иммунологические факторы риска развития экссудативного среднего отита на фоне хронического у детей: Дис. ... канд. мед. наук. Томск. 2015. Ссылка активна на 05.10.22.  https://medical-diss.com/medicina/kliniko-immunologicheskie-faktory-riska-razvitiya-ekssudativnogo-srednego-otita-na-fone-hronicheskogo-adenoidita-u-detey
  6. Дроздова М.В. Лимфопролиферативный синдром у детей с заболеваниями верхних дыхательных путей (этиология, патогенез, клиническая и лабораторная диагностика): Дис. ... д-ра мед. наук. СПб. 2010. Ссылка активна на 05.10.2022. https://dissers.ru/2meditsina/limfoproliferativniy-sindrom-detey-zabolevaniyami-verhnih-dihatelnih-putey-etiologiya-patogenez-klinicheskaya-laboratornaya-diagnostika-14-01-03.php
  7. Красножен В.Н., Цыплаков Д.Э., Покровская Е.М., Халиуллина С.В., Маннанова Э.Ф. Иммуноморфологические особенности хронических аденоидитов. Folia Otorhinolaryngologiae et Pathologiae Respiratoriae. 2021;27(1):12-20.  https://doi.org/10.33848/foliorl23103825-2021-27-1-12-20
  8. Тюркина С.И., Минасян В.С., Савенкова М.С., Буллих А.В. Структура инфицирования и влияние герпесвирусов и атипичных патогенов на течение хронического аденоидита в группе часто болеющих детей. Российская оториноларингология. 2015;5:69-75. 
  9. Покровская Е.М., Халиуллина С.В., Халиуллина К.Р., Рахманова О.А., Скворцова И.И., Козлова В.Т. Этиологическая структура возбудителей аденотонзиллитов у детей. Практическая медицина. 2016;3:58-63. Ссылка активна на 05.10.22.  https://pmarchive.ru/el-arxiv/arxiv-za-2016-god/prakticheskaya-medicina-3-95-2016-allergologiya/
  10. Faden H, Callanan V, Pizzuto M. The ubiquity of asymptomatic respiratory viral infections in the tonsils and adenoids of children and their impact on airway obstruction. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2016;90:128-132.  https://doi.org/10.1016/j.ijporl.2016.09.006
  11. Wani JH, Gilbert JV, Plaut AG, Weiser JN. Identification, cloning and sequencing of the immunoglobulin A1 protease gene of Streptococcus pneumoniae. Infect Immun.1996;64:3967-3974. https://doi.org/10.1128/iai.64.10.3967-3974.1996
  12. Vitovski S, Dunkin KT, Howard AJ, Sayers JR. Nontypeable Haemophilus influenzae in carriage and disease: a difference in IgAl protease activity levels. JAMA. 2002;287(13):1699-1705. https://doi.org/10.1001/jama.287.13.1699
  13. Баязитова Л.Т. Вирулентные свойства стафилококковой микрофлоры кожи при атопическом дерматите: Дис. ... канд. мед. наук. Уфа. 2009. Ссылка активна на 05.10.22.  https://www.dissercat.com/content/virulentnye-svoistva-stafilokokkovoi-mikroflory-kozhi-pri-atopicheskom-dermatite
  14. Зарипова А.З., Тюрин Ю.А., Баязитова Л.Т., Тюпкина О.Ф., Исаева Г.Ш. Ig A протеазная активность клеточных ферментов различных серотипов Streptococcus pneumoniae, выделенных у детей-бактерионосителей. Инфекция и иммунитет. 2019;9(5-6):680-686.  https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-5-6-680-686
  15. Клинические рекомендации «Гипертрофия аденоидов. Гипертрофия небных миндалин (утвержденные Минздравом России), 2021. Ссылка активна на 05.10.22.  https://legalacts.ru/doc/klinicheskie-rekomendatsii-gipertrofija-adenoidov-gipertrofija-nebnykh-mindalin-utv-minzdravom/#100246
  16. Лихачев А.Г. Справочник по оториноларингологии. М.: Медицина; 1967.
  17. Петрова И.В. Оценка состояния иммунной системы у детей неинвазивными методами. Материалы IX Всероссийского съезда гигиенистов и санитарных врачей. М. 2001;2:433-436. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.