Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Захарова Е.Е.

Медицинская клиника репродукции МАМА

Сухачева Т.С.

Медицинская клиника репродукции МАМА

Мельник Я.И.

Медицинская клиника репродукции МАМА

Дорощук Н.А.

Медицинская клиника репродукции МАМА

Капралова И.В.

Медицинская клиника репродукции МАМА

Биканов Р.А.

АО «Ферст Генетикс»

Фердман Д.К.

АО «Ферст Генетикс»

Залетова В.В.

Медицинская клиника репродукции МАМА

Рождение ребенка у пациента с необструктивной азооспермией и носительством реципрокной транслокации (описание случая)

Авторы:

Захарова Е.Е., Сухачева Т.С., Мельник Я.И., Дорощук Н.А., Капралова И.В., Биканов Р.А., Фердман Д.К., Залетова В.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Проблемы репродукции. 2023;29(2): 110‑115

Прочитано: 2113 раз


Как цитировать:

Захарова Е.Е., Сухачева Т.С., Мельник Я.И., и др. Рождение ребенка у пациента с необструктивной азооспермией и носительством реципрокной транслокации (описание случая). Проблемы репродукции. 2023;29(2):110‑115.
Zakharova EE, Sukhacheva TS, Melnik YaI, et al. Childbirth in a patient with non-obstructive azoospermia and reciprocal chromosomal translocation (case report). Russian Journal of Human Reproduction. 2023;29(2):110‑115. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/repro202329021110

Рекомендуем статьи по данной теме:

Среди множества факторов мужского и женского бесплодия наиболее тяжелые могут значительно снижать шансы на успешное применение вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) или исключать возможность рождения здорового ребенка даже при использовании высокотехнологичной медицинской помощи. Например, к труднопреодолимым факторам бесплодия относят необструктивную форму азооспермии у мужчин, а также реципрокную транслокацию — структурную хромосомную патологию.

При необструктивной, или секреторной, азооспермии вследствие тяжелого нарушения сперматогенеза в эякуляте отсутствуют сперматозоиды. Только у половины пациентов с этим диагнозом единичные половые клетки могут находиться в тестикулярной ткани. В ряде случаев возможен благоприятный прогноз на получение сперматозоидов хирургическим путем из яичка, однако вероятность успешного лечения бесплодия зависит как от первоначальной причины нарушения секреторной функции яичек, так и от практической возможности выделения тестикулярных сперматозоидов в конкретном клиническом случае [1]. Так, при критически малом количестве сперматозоидов в биоптате тестикулярной ткани, их выделение для проведения ЭКО является глобальной проблемой [2].

Реципрокная транслокация относится к генетической патологии и представляет собой взаимный обмен участками между двумя хромосомами вследствие их разрывов. Носительство сбалансированной реципрокной транслокации часто не сопровождается какими-либо клиническими признаками, однако приводит к нарушениям мейоза и формированию несбалансированных и анеуплоидных гамет. В связи с этим у носителей хромосомных транслокаций крайне высока вероятность образования нежизнеспособных эмбрионов, что, в первую очередь, становится причиной бесплодия и невынашивания беременности [3]. Пациентам с хромосомной патологией, имеющим высокий риск рождения детей с наследственными заболеваниями, показано проведение программы ЭКО с преимплантационным генетическим тестированием (ПГТ) эмбрионов [4].

В представленной статье описан уникальный клинический случай получения беременности и рождения здорового ребенка от пациента с сочетанной формой бесплодия, включающей одновременно два крайне неблагоприятных фактора — необструктивную азооспермию и реципрокную хромосомную транслокацию.

Пациент, 27 лет, и его супруга, Пациентка, 26 лет, обратились в Медицинскую Клинику репродукции МАМА в октябре 2020 г. с жалобами на отсутствие беременности в течение одного года регулярной половой жизни без предохранения. Для выявления возможных причин бесплодия супружеская пара была обследована в полном объеме согласно законодательству РФ [4, 5].

Основные данные обследования Пациента: спермограмма — азооспермия; гормональное исследование — ЛГ — 3,52 мМЕ/мл, ФСГ — 5,52 мМЕ/мл, тестостерон — 28,29 нмоль/л, ингибин В — 163 пг/мл; ультразвуковое исследование органов мошонки — эхографические признаки гипоплазии левого яичка; молекулярно-генетический анализ микроделеций Y хромосомы — делеции AZF локуса не выявлены; кариотипирование — 46,XY,t(14;20)(p11.2;q13.1), мужской кариотип, реципрокная транслокация между частью короткого плеча хромосомы 14 и частью длинного плеча хромосомы 20. На основании клинической картины и данных обследования Пациенту был поставлен диагноз: бесплодный брак; мужское бесплодие; необструктивная азооспермия; реципрокная транслокация 46,XY,t(14;20)(p11.2;q13.1).

Основные данные обследования Пациентки: гормональное исследование: АМГ — 2,40 нг/мл, ЛГ — 3,84 мМЕ/мл, ФСГ — 3,50 мМЕ/мл, нмоль/л, пролактин — 235,04 мМЕ/л; ультразвуковое исследование органов малого таза: мультифолликулярная структура яичников, косвенные признаки спаечного процесса в полости малого таза. На основании клинической картины и данных обследования Пациентке был поставлен диагноз: первичное бесплодие сочетанное.

По заключению медико-генетического консультирования фенотипы супругов без особенностей; семейный анамнез не отягощен. Рассчитанная вероятность формирования нежизнеспособных эмбрионов составляет не менее 70%. С учетом тяжелой формы нарушения сперматогенеза у Пациента, доля нежизнеспособных эмбрионов может превышать расчетную величину. В случае наступления беременности рассчитанная вероятность рождения ребенка с пороками развития составляет не менее 14%, рассчитанная вероятность спонтанного аборта — не менее 21%.

Учитывая данные обследования супружеской пары и результаты медико-генетического консультирования, пациентам было рекомендовано достижение беременности методом ЭКО с хирургическим получением сперматозоидов из яичка и преимплантационным генетическим тестированием структурной хромосомной патологии (ПГТ-СП) у эмбрионов или достижение беременности методами ВРТ с использованием спермы донора. От использования спермы донора супруги отказались, в марте 2021 г. была начата программа лечения бесплодия методом ЭКО с получением и использованием собственных гамет Пациентов.

Стимуляция суперовуляции Пациентке была проведена по короткому протоколу с использованием препаратов фоллитропина-альфа и менотропина, с антогонизацией ганереликсом и триггированием хорионическим гонадотропином. При трансвагинальной пункции образований яичников получено восемь ооцит-кумулюсных комплексов, все восемь ооцитов на стадии метафазы второго редукционного деления (MII, зрелые) без морфологических особенностей.

В качестве подготовительного этапа к биопсии яичек с микродиссекцией (MD-TESE, microdissection testicular sperm extraction) Пациенту проведена стимуляция сперматогенеза рекомбинантным фолликуло-стимулирующим гормоном. Продолжительность подготовительной терапии составила 4 месяца.

Операция MD-TESE Пациенту выполнена последовательно на обоих яичках. Под контролем операционного микроскопа осуществлена ревизия канальцев яичка вплоть до средостения. Перспективных расширенных канальцев визуально не выявлено, произведена резекция семенных канальцев каждого яичка.

Фрагменты семенных канальцев обработаны механическим способом до состояния суспензии. По результату интраоперационного микроскопического исследования, полученная суспензия представлена в основном фрагментами ткани и отдельными клетками сперматогенного эпителия, эритроцитами и клеточным дебрисом; сперматозоиды и элонгированные сперматиды не обнаружены (рис. 1).

Рис. 1. Материал биопсии яичка после первичной механической обработки, микроскопическое исследование: сперматозоиды и элонгированные сперматиды не обнаружены.

По заключению последующего прижизненного патологоанатомического исследования биопсийного (операционного) материала биоптат представлен паренхимой testis с наличием канальцев нормальной и уменьшенной величины. Дифференциация типичных клеточных ассоциаций цикла сперматогенного эпителия нарушена: базальная мембрана неравномерно утолщена; клетки Сертоли в состоянии дистрофии; сперматогенный эпителий дифференциируется не на все ассоциации; морфологическая картина нарушения дифференцировки сперматид (по Holstein [6] 6—7 баллов), очаговый выраженный периканаликулярный фиброз.

Полученная в результате первичной механической обработки суспензия из биоптата яичка, несмотря на отсутствие сперматозоидов при интраоперационном исследовании, была вторично обработана методом дифференциального центрифугирования [7]. Примененный способ является новейшей запатентованной технологией выделения сперматозоидов из хирургически полученного материала. Предложенный подход значительно более эффективен по сравнению со стандартными методами выделения сперматозоидов, основанными на простой отмывке [8], так как позволяет избежать конгломерации единичных половых клеток с клеточным осадком и, как следствие, их потери. Благодаря применению метода дифференциального центрифугирования возможно обнаружение и получение единичных сперматозоидов при их критически малом количестве даже тогда, когда другие способы их выделения из хирургически полученного материала неэффективны [7].

В результате вторичной обработки из всего объема полученного материала было выделено восемь сперматозоидов категории подвижности В, С (после фармакологической активации [9, 10]), в том числе нормальной морфологии (рис. 2). Сперматозоиды Пациента были использованы для оплодотворения ооцитов Пациентки методом внутрицитоплазматической инъекции в ооцит.

Рис. 2. Единичные сперматозоиды, выделенные из биоптата яичка в результате вторичной обработки методом дифференциального центрифугирования.

Через 17—20 ч после оплодотворения у трех ооцитов из восьми наблюдали пары пронуклеусов. К третьим суткам культивирования in vitro было получено пять эмбрионов на стадии дробления; к четвертым суткам культивирования два эмбриона развились до стадии компактной морулы, три эмбриона остановились в развитии на стадии дробления (2—4 бластомера).

В целях ПГТ-СП двум нормально развивающимся эмбрионам (эмбрионы M1, M2) на четвертые сутки развития (стадия компактной морулы) проведена биопсия, в результате которой были получены эмбриональные клетки для генетического исследования (образцы M1, M2). Примененный метод биопсии на стадии компактной морулы является новой запатентованной технологией [11] и отличается своей безопасностью и эффективностью: процедура не травмирует ни сам эмбрион, ни клетки биоптата, что значительно повышает вероятность как дальнейшего нормального эмбрионального развития, так и получения достоверного результата генетического тестирования [12—15].

Через четыре часа после процедуры биопсии эмбрионы M1 и M2 (стадия компактной морулы) были криоконсервированы методом витрификации и помещены в криобанк до момента получения результата ПГТ-СП и выбора дальнейшей тактики лечения.

ПГТ-СП было выполнено методом NGS (next generation sequencing) с использованием системы высокопроизводительного секвенирования «F-Genetics» (по ТУ 26.60.12-001-03569019-2018) и набора реагентов «РепроЛайн» для выявления хромосомных аномалий в единичных клетках (РУ Росздравнадзора РФ РЗН 2020/10521, РЗН 2020/10525). В исследовании использовали образцы биопсии (М1 и М2), состоящие из восьми клеток каждый.

В результате биоинформационного анализа полученных хромосомных профилей, в образце M1 (рис. 3, а) была обнаружена сегментарная дупликация 20q13.13q13.33 размером 16 млн. пар оснований, что с высокой вероятностью является следствием сбалансированной транслокации у Пациента с кариотипом 46,XY,t(14;20)(p11.2;q13.1), образец M1 был не рекомендован к переносу. В образце M2 (рис. 3, в) какие-либо хромосомные перестройки не обнаружены (кариотип seq(1-22)x2,(X,Y)x1, согласно ISCN 2016 [16]), образец M2 был интерпретирован как рекомендованный к переносу.

Рис. 3. Хромосомные профили материала биопсии компактных морул.

а — образец M1. Сегментарная дупликация 20q13.13q13.33; б — образец M2. Кариотип seq(1-22)x2,(X,Y)x1.

В августе 2021 г. Пациентка вступила в программу ВРТ с переносом размороженного эмбриона в цикле заместительной гормональной терапии. С учетом данных ультразвукового исследования и гормонального мониторинга были определены сроки размораживания эмбриона и его переноса в полость матки. После размораживания эмбрион M2 находился в системе культивирования in vitro в течение 24 последующих часов до пятых суток доимплантационного развития. К моменту переноса в полость матки эмбрион M2 достиг стадии поздней бластоцисты (5АА по системе классификации Гарднера [17]).

Поддержку лютеиновой фазы цикла осуществляли препаратами прогестерона на фоне гормонального мониторинга. На 14-е сутки после переноса эмбриона уровень общего бета-ХГЧ в крови Пациентки составил 283,6 мМЕ/мл; на 24-й день после переноса эмбриона по результату УЗИ диагностирована одноплодная маточная беременность, соответствующая 5—6 неделям акушерского срока.

По результатам пренатального скрининга, проведенного на сроках 12 и 19 недель беременности, данные в пользу врожденной патологии плода и маркеры хромосомных аномалий не выявлены. В мае 2022 г. произошли срочные самопроизвольные роды доношенным плодом мужского пола весом 3500 г и ростом 53 см, с оценкой по Апгар 9/9 баллов. Согласно полученным заключениям неонатолога и педиатра с момента родов и по настоящее время ребенок здоров.

Представленный клинический случай является первым в мире описанным прецедентом рождения ребенка от отца с необструктивной азооспермией и одновременным носительством сбалансированной реципрокной транслокации. Учитывая крайне низкую рассчитанную вероятность получения беременности и рождения здорового ребенка в данном клиническом случае, нельзя не отметить случайную природу благоприятного исхода программы ЭКО. Однако основную и решающую роль как в получении сперматозоидов, так и в получении достоверного результата ПГТ-СП, мы отводим эффективному применению новейших эмбриологических и молекулярно-генетических технологий.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Corona G, Minhas S, Giwercman A, Bettocchi C, Dinkelman-Smit M, Dohle G, Fusco F, Kadioglou A, Kliesch S, Kopa Z, Krausz C, Pelliccione F, Pizzocaro A, Rassweiler J, Verze P, Vignozzi L, Weidner W, Maggi M, Sofikitis N. Sperm recovery and ICSI outcomes in men with non-obstructive azoospermia: a systematic review and meta-analysis. Human Reproduction Update. 2019; 5;25(6):733-757.  https://doi.org/10.1093/humupd/dmz028
  2. Verheyen G, Popovic-Todorovic B, Tournaye H. Processing and selection of surgically-retrieved sperm for ICSI: a review. Basic and Clinical Andrology. 2017;21;27:6.  https://doi.org/10.1186/s12610-017-0050-2
  3. Наследственные болезни: национальное руководство. Под ред. Бочкова Н.П., Гинтера Е.К., Пузырева Е.П. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2013.
  4. Приказ министерства здравоохранения РФ №803н от 31 июля 2020 г. «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению». Ссылка активна на 01.09.22.  https://roszdravnadzor.gov.ru/documents/74900?print
  5. Федеральный закон Российской Федерации №323-ФЗ от 21 ноября 2011 г. «Об основах охраны здоровья граждан Российской Федерации». Ссылка активна на 01.09.22.  https://minzdrav.gov.ru/documents/7025-federalnyy-zakon-323-fz-ot-21-noyabrya-2011-g
  6. De Kretser D.M., Holstein A.F. Testicular biopsy and abnormal germ cells. In: Hafez E.S.E., ed. The human semen and fertility regulation in men. St. Louis: Mosby; 1976;332-343. 
  7. Патент РФ на изобретение №2762489/21.12.21. Бюл. №36. Захарова Е.Е. Способ выделения сперматозоидов из материала аспирации и/или биопсии из придатка и/или яичка для использования в программах экстракорпорального оплодотворения и/или криоконсервации. Ссылка активна на 01.09.22.  https://www1.fips.ru/registers-doc-view/fips_servlet?DB=RUPAT&DocNumber=2762489&TypeFile=html
  8. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen, sixth edition. Geneva: World Health Organization; 2021. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO. 
  9. Lanzafame F., Chapman M.G., Guglielmino A., Gearon C.M., Forman R.G. Pharmacological stimulation of sperm motility. Human Reproduction. 1994;9(2):192-199.  https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a138481
  10. Kartavenko T, Zakharova E, Kapralova I, Krivokharchenko I, Zharskaja O, Melnik Y, Mskhalaya G, Zaletova V. Pharmacological stimulation of sperm motility in microdissection testicular sperm extraction (micro-TESE) using theophylline in patients with non-obstructive azoospermia (NOA). Abstract book of the 31st ESHRE Annual Meeting. Human Reproduction. 2015;30(1):i145. https://doi.org/10.1093/humrep/30.Supplement_1.1
  11. Патент РФ на изобретение №2718903/15.04.20. Бюл. №11. Захарова Е.Е. Способ получения биологического материала, передаваемого на генетическое исследование в программах преимплантационного генетического тестирования эмбрионов человека. Ссылка активна на 01.09.22.  https://www1.fips.ru/registers-doc-view/fips_servlet?DB=RUPAT&DocNumber=2718903&TypeFile=html
  12. Zakharova E, Zaletova V, Krivokharchenko A. Biopsy of human morula-stage embryos: outcome of 215 IVF/ICSI cycles with PGS. PLoS One. 2014;5;9(9):e106433. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0106433
  13. Kokkali G, Coticchio G, Bronet F, Celebi C, Cimadomo D, Goossens V, Liss J, Nunes J, Sfontouris I, Vermeulen N, Zakharova E, De Rycke M. ESHRE PGT Consortium and SIG Embryology good practice recommendations for polar body and embryo biopsy for PGT. Human Reproduction Open. 2020;29:2020(3). https://doi.org/10.1093/hropen/hoaa020
  14. Захарова Е.Е., Залетова В.В. Проведение биопсии эмбрионов человека на стадии компактной морулы повышает диагностическую надежность преимплантационного генетического скрининга (ПГС) и обеспечивает высокую частоту наступления беременности (по данным 215 циклов ЭКО-ИКСИ c ПГС). Проблемы репродукции. 2013;(4):75-81. 
  15. Захарова Е.Е., Залетова В.В. Биопсия на стадии компактной морулы: 91 роды, 107 детей. Проблемы репродукции. 2017;23(4): 105-108.  https://doi.org/10.17116/repro2017234105-108
  16. An International System for Human Cytogenomic Nomenclature. Edt. McGowan-Jordan J, Simons A, Schmid M. KARGER; 2016. https://doi.org/10.1159/isbn.978-3-318-06861-0
  17. Gardner D, Schoolcraft W. Culture and transfer of human blastocysts. Curr Opin Obstet Gynecol. 1999;11(3):307-11.  https://doi.org/10.1097/00001703-199906000-00013

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.