Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Никита Владимирович Соловей

УЗ «Городская клиническая инфекционная больница», Минск, Республика Беларусь

Игорь Александрович Карпов

УО «Белорусский государственный медицинский университет», Минск, Республика Беларусь

Что делать?

Авторы:

Соловей Н.В., Карпов И.А.

Подробнее об авторах

Прочитано: 492 раза

Как цитировать:

Соловей Н.В., Карпов И.А. Что делать? Non nocere. Новый терапевтический журнал. 2025;(3):42‑47.
Solovey NV, Karpov IA. What to do? Non Nocere. New Therapeutic Journal. 2025;(3):42‑47. (In Russ.)

Авторы:

Никита Владимирович Соловей

Никита Владимирович Соловей,
врач-инфекционист УЗ «Городская клиническая инфекционная больница», к.м.н., доцент, Минск, Республика Беларусь

Игорь Александрович Карпов

Игорь Александрович Карпов,
член-корреспондент НАН Беларуси, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой инфекционных болезней УО «Белорусский государственный медицинский университет», Минск, Республика Беларусь


ЦМВ-колит у пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника: диагностика и лечение

Цитомегаловирусный колит (ЦМВ- колит) – распространенная проблема в клинической практике у пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника (ВЗК), особенно у получающих иммуносупрессивную терапию, в том числе биологическую. Поэтому важно сохранять клиническую настороженность в отношении данного заболевания, понимать, какие методы лабораторно-инструментальной диагностики оптимальны для своевременной верификации диагноза и как правильно помочь пациенту.

Цитомегаловирус (ЦМВ) является широко распространенным в популяции человека возбудителем. Так, согласно систематическому обзору и метаанализу 262 исследований, в среднем в мире антитела IgG к ЦМВ обнаруживаются примерно у 83% популяции [1]. По данным Всемирной организации здравоохранения, наибольшая распространенность ЦМВ отмечается в регионе Восточного Средиземноморья (90%), тогда как в Европейском регионе этот показатель составляет около 66% [1]. Инфицированность ЦМВ обратно коррелирует с уровнем дохода страны: чем выше экономический уровень, тем ниже распространенность инфекции [1].

ЦМВ (вирус герпеса человека 5-го типа) – один из представителей семейства герпесвирусов человека, подсемейства бета-герпесвирусов. Чаще всего мы инфицируемся ЦМВ в первые годы (десятилетия) жизни при прямом контакте с биологическими жидкостями, содержащими возбудитель, прежде всего со слюной инфицированных лиц, секретом половых путей и т. д. У некоторых при этом развивается клиника первичной инфекции – мононуклеозоподобный синдром (лихорадка, иногда лимфаденопатия, тонзиллофарингит, гепатоспленомегалия, лимфомоноцитоз и т. д.), разрешающийся в течение нескольких недель, однако у большинства первичное инфицирование протекает без каких-либо симптомов. Впоследствии за счет активации механизмов иммунной системы ЦМВ переходит в состояние латенции, реплицируясь в определенных клетках, но никак не проявляя себя клинически. Реактивация ЦМВ возможна на фоне состояний, сопровождающихся иммуносупрессией (продвинутые стадии ВИЧ, длительный прием глюкокортикостероидов, цитостатиков, терапия моноклональными антителами и прочее) [2].

Наличие IgG к ЦМВ в сыворотке крови означает инфицированность данным возбудителем. Следовательно, у пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника положительный результат обследования на антитела IgG к ЦМВ говорит о возможности реактивации данного вируса, в том числе с развитием явного ЦМВ-колита, в то время как отсутствие антител существенно снижает вероятность данного осложнения (кроме случаев ЦМВ-колита как проявления первичного инфицирования, что в целом достаточно редкая на практике ситуация).

Почему же развивается ЦМВ-колит у пациентов с ВЗК? Обычно ЦМВ в своей латентной форме инфицирует клетки (CD33+/CD34+) костного мозга и дифференцированные моноциты (CD14+) крови. Реактивация ЦМВ может быть спровоцирована рядом цитокинов, включая фактор некроза опухоли альфа (ФНО-α), интерферон гамма и гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор. После реактивации инфицированные клетки мигрируют в ткани и дифференцируются в макрофаги или дендритические клетки. Защиту организма от местной реактивации обеспечивает специфическая иммунная система, в частности антитела к ЦМВ и Т-лимфоциты (CD8+). Однако при иммуносупрессии эти механизмы нарушаются, что приводит к развитию проявляющихся клинически органоспецифических поражений, включая колит [3].

Распространенность ЦМВ-колита среди всех обострений ВЗК составляет 1,5–4,5% [4, 5]. У пациентов с язвенным колитом частота реактивации ЦМВ значительно выше, чем у пациентов с болезнью Крона, достигая 40% при тяжелых обострениях [6–8]. Распространенность реактивации ЦМВ среди пациентов с умеренным и тяжелым обострением ВЗК варьирует от 21 до 34% и в большинстве работ была выше 30% среди пациентов с клиникой колита, рефрактерного к терапии системными глюкокортикостероидами [9–11].

Важно понимать, что реактивация ЦМВ и развитие ЦМВ-колита опасно для пациентов с ВЗК рядом неблагоприятных исходов. Пациенты с ВЗК и реактивацией ЦМВ по сравнению с пациентами только с ВЗК чаще нуждаются в госпитализации, имеют большую частоту обострений, нередко развивают токсический мегаколон с необходимостью в экстренной колэктомии, чаще не отвечают на стандартные дозы или схемы иммуносупрессивной терапии, а также имеют более высокий риск смерти вследствие перитонита, сепсиса, кишечных кровотечений, полиорганной недостаточности [6, 12–17].

Факторы риска развития ЦМВ-колита у пациентов с ВЗК продолжают изучаться. Сегодня известно, что данное состояние преимущественно развивается у пациентов, которые:

– имеют рефрактерную к терапии глюкокортикостероидам и другой иммуносупрессивной терапии форму заболевания [12, 18–20];

– получают определенные иммуносупрессивные лекарственные средства: глюкокортикостероиды, азатиоприн/метотрексат, блокаторы ФНО-α либо сразу несколько иммуномодулирующих средств [6, 18, 21, 22];

– имеют более старший возраст и большее число сопутствующих заболеваний [23].

Пациенты с ВЗК, которые получают моноклональные антитела с минимальным системным иммуносупрессивным эффектом, например ведолизумаб (моноклональное антитело, селективно блокирующее α4β7-интегрин преимущественно на уровне кишечной стенки), демонстрируют более низкий риск развития ЦМВ-колита по сравнению с пациентами, принимающими блокаторы ФНО-α и другие иммуносупрессанты. Например, в исследованиях GEMINI 1 и 2 зафиксирован всего один случай ЦМВ-колита среди 1434 пациентов, получавших ведолизумаб [24].

Основные клинические симптомы ЦМВ- колита у пациентов с ВЗК включают диарею (водянистую и/или кровянистую), абдоминальную боль, мелену и лихорадку. Эти проявления могут быть сходны с симптомами обострения собственно ВЗК, и это существенно затрудняет дифференциальную диагностику [25]. Одной из характерных клинических особенностей ЦМВ-колита является резистентность к терапии системными глюкокортикостероидами, что может помочь рано заподозрить данное состояние [25, 26].

Методы лабораторно-инструментальной диагностики являются ключевыми для верификации ЦМВ-колита и его дифференциации с обострениями собственно ВЗК, поэтому их мы рассмотрим более подробно.

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) на ДНК ЦМВ в крови

В ретроспективном наблюдательном исследовании 135 последовательных пациентов, госпитализированных со среднетяжелой и тяжелой формой язвенного колита, ЦМВ-колит диагностирован гистологически и иммуногистохимически у 27,4% (37/135). При этом 62,2% (23/37) пациента с ЦМВ-колитом имели позитивную ПЦР крови на ДНК ЦМВ с медианой 1008 копий/мл (межквартильный интервал 318–2980 копий/мл). При мультифакторном анализе независимыми предикторами ЦМВ-колита оказались рефрактерное к глюкокортикостероидам течение болезни, более высокий индекс коморбидности Чарльсона и положительная ПЦР на ДНК ЦМВ в крови [23]. Исходя из результатов, можно сделать вывод, что положительная ПЦР на ДНК ЦМВ в крови является независимым предиктором ЦМВ-позитивного рефрактерного язвенного колита, однако отрицательный результат ПЦР не исключает наличия ЦМВ-колита и требует прямых методов диагностики для окончательного уточнения диагноза.

Однако сразу следует обратить внимание на то, что только положительный результат ПЦР на ДНК ЦМВ не всегда говорит о наличии у пациента явного ЦМВ-колита. Так, в исследовании 81 пациента с симптомами обострения язвенного колита выполнялась детекция ДНК ЦМВ методом количественной ПЦР в биоптатах толстой кишки и плазме крови, результаты анализировались у пациентов с поставленным диагнозом ЦМВ-колита и пациентов с ВЗК без ЦМВ-колита. Для биоптатов и плазмы крови чувствительность и отрицательное прогностическое значение количественной ПЦР были замечательными (100%), в то время как специфичность и позитивное предикативное значение низкими (41,9 и 15,7% соответственно для биоптатов, 48,6 и 24% соответственно для крови) [27]. Это говорит о том, что у всех пациентов с язвенным колитом и реактивацией ЦМВ определялась ДНК ЦМВ в биоптате кишки и плазме крови, но далеко не у всех пациентов с положительными результатами детекции ЦМВ в биологических образцах имелся реальный ЦМВ-колит. Поэтому важно помнить, что интерпретация результатов лабораторных исследований, в том числе ПЦР, всегда должна осуществляться в контексте клинических проявлений, имеющихся у пациента с ВЗК!

Фиброколоноскопия с биопсией

Является неотъемлемым методом верификации ЦМВ-колита, позволяя не только визуально оценить состояние слизистой толстой кишки, но и осуществить забор образцов для окончательного подтверждения или исключения реактивации ЦМВ. Характерные эндоскопические изменения при ЦМВ-колите представлены на рис. 1.

Рис. 1. Характерные эндоскопические изменения при ЦМВ-колите

Примечание. a – штампованные язвы (округлая форма язв с четкой демаркацией); b – продольные язвы (язвы, идущие вдоль просвета толстой кишки (стрелки)); c – диффузный дефект слизистой оболочки (множество дефектов слизистой оболочки с окружающей красноватой и эритематозной слизистой оболочкой); d – географические язвы (мелкие и распространенные дефекты слизистой оболочки с нечеткой демаркацией) [3].

Исследование биоптатов толстой кишки

Для получения оптимальных результатов диагностики ЦМВ-колита крайне важным является место забора биоптата! Так, биопсия из левых отделов толстой кишки идентифицировала практически всех пациентов с реактивацией ЦМВ на фоне язвенного колита, однако при болезни Крона ЦМВ-колит часто выявлялся только в случае биопсии из правых отделов толстой кишки. McCurdy и соавт. предложили забор минимум 11 биоптатов при язвенном колите и 16 биоптатов при болезни Крона для 80%-ной вероятности детекции ЦМВ-колита [28]. Оптимально выполнять биопсию из участков с видимыми признаками воспаления, так как в биоптатах слизистой толстой кишки без признаков воспаления редко выявлялась ДНК ЦМВ [29]. Также лучшие результаты детекции ЦМВ-позитивных клеток показаны при эндоскопическом заборе материала из основания и краев язв [30].

Гистологическое исследование с использованием окраски гематоксилином и эозином позволяет выявить характерный признак активной репликации ЦМВ – «совиные глаза» – базофильные внутриядерные тельца включения, представляющие собой активные нуклеопротеиновые ядра при внутриклеточном размножении ЦМВ. Однако наибольшую чувствительность и специфичность для выявления ЦМВ-колита дает использование иммуногистохимического исследования и тканевой ПЦР, являющихся прямыми методами верификации диагноза [31]. Интерпретация их результатов обязательно проводится с учетом клинических проявлений и наличия гистологических признаков активной инфекции. Клиническое и прогностическое значение положительной детекции ЦМВ в биоптате толстой кишки без гистологических признаков активной инфекции остается неясным.

ПЦР фекалий на ДНК ЦМВ

Данный метод обследования пациентов с ВЗК предложен как альтернатива инвазивным методам исследования. В пилотном исследовании 21 пациента с обострением ВЗК, рефрактерного к терапии глюкокортикостероидами, ПЦР фекалий обладала чувствительностью 83%, специфичностью 93% и точностью 90% (в сравнении с ПЦР биоптатов кишки) [32]. В другой работе у 66 пациентов с ВЗК выполнялась биопсия кишки и количественная ПЦР биоптатов и фекалий на ДНК ЦМВ. ПЦР фекалий обладала высокой специфичностью (96%), но плохой чувствительностью (67%) для верификации ЦМВ-колита [33]. Таким образом, можно сделать выводы, что позитивный результат ПЦР фекалий на ДНК ЦМВ может быть полезным для подтверждения ЦМВ-колита у пациентов с ВЗК без дополнительного эндоскопического исследования, однако отрицательный результат ПЦР фекалий точно не может исключить наличие ЦМВ-колита и требует дополнительного использования инвазивных методов диагностики – фиброколоноскопии с биопсией, иммуногистохимического исследования и/или тканевой ПЦР.

Лечение ЦМВ-колита

Противовирусная терапия играет ключевую роль в ведении пациентов с ВЗК и реактивацией ЦМВ. В ретроспективном исследовании 118 госпитализированных пациентов с ВЗК в Тайвани у 35,6% (42/118) обнаружен верифицированный с помощью иммуногистохимического исследования биоптатов толстой кишки ЦМВ-колит. При этом адекватная противовирусная терапия (ганцикловир и/или валганцикловир минимум 2 недели) существенно снижала частоту осложнений (29% против 72%, p=0,006), особенно в подгруппе пациентов с болезнью Крона (20% против 100%, p=0,015). Пациенты с ЦМВ-колитом, получавшие противовирусную терапию менее 14 дней, имели большую частоту осложнений (72% против 43%, p=0,028) и хирургических вмешательств (56% против 26%, p=0,017) по сравнению с пациентами с ВЗК без ЦМВ, а при мультифакторном анализе наличие ЦМВ-колита, неадекватная противовирусная терапия и отсутствие ответа на биологическую терапию являлись независимыми статистически значимыми предикторами осложнений [34].

Лекарственными средствами выбора для терапии ЦМВ-колита у пациентов с ВЗК являются ганцикловир и валганцикловир (пероральное пролекарство с высокой биодоступностью, метаболизирующееся в организме пациента в активнодействующее вещество ганцикловир). Ганцикловир назначается по 5 мг/кг каждые 12 часов внутривенно капельно, а валганцикловир – по 900 мг каждые 12 часов внутрь. Длительность терапии составляет не менее 14 дней, в большинстве случаев достаточно 2–3 недель [35, 36]. Конечная длительность лечения определяется индивидуально клинико-лабораторной активностью заболевания.

На рис. 2 представлен один из предложенных алгоритмов диагностики и лечения ЦМВ-колита у пациентов с ВЗК [37].

Рис. 2. Алгоритм диагностики и лечения ЦМВ-колита у пациентов с ВЗК

Пациенты с ВЗК, перенесшие эпизод ЦМВ- колита, имеют высокие риски повторных госпитализаций, неэффективности проводимой терапии и проведения колэктомии. В ретроспективном анализе 14 пациентов с ВЗК и эпизодом ЦМВ-колита (13 – с язвенным колитом, 1 – с болезнью Крона) рецидив ЦМВ-колита произошел к 12 месяцам наблюдения у 29%, модификация режима биологической терапии к 6 месяцам наблюдения понадобилась 43% пациентов, эскалация дозы ранее проводимой биологической терапии к 12 месяцам наблюдения потребовалась 29% пациентов. Кроме того, к 12 месяцам наблюдения после первого эпизода ЦМВ-колита повторные госпитализации отмечались у 36% пациентов, 3 пациентам выполнена колэктомия, а ремиссия ВЗК достигнута только у 29% пациентов [38]. Таким образом, данные пациенты нуждаются в более тщательном наблюдении, особенно в первый год после реактивации ЦМВ.

Врачам, которые ведут пациентов с ВЗК, полезно помнить следующие моменты:

– реактивацию ЦМВ и развитие ЦМВ-колита следует предполагать у пациентов с обострением ВЗК, особенно если обострение не отвечает на терапию системными глюкокортикостероидами;

– «золотым стандартом» верификации ЦМВ-колита является иммуногистохимическое исследование или детекция ДНК ЦМВ методом ПЦР в кишечном биоптате;

– ПЦР крови и/или фекалий на ДНК ЦМВ может быть альтернативным методом диагностики, особенно при невозможности быстро выполнить эндоскопическое исследование или использовать прямые методы диагностики в кишечном биоптате;

– для диагностики ЦМВ-колита крайне важен выбор оптимальных участков кишки для биопсии, количество биопсий, правильное хранение образцов до транспортировки в лабораторию;

– назначение противоцитомегаловирусной терапии – ганцикловира и/или валганцикловира – существенно улучшает прогноз у пациентов с ВЗК и реактивацией ЦМВ;

– пациенты с ВЗК, перенесшие ЦМВ-колит, нуждаются в более пристальном диспансерном наблюдении, особенно в течение первых 6–12 месяцев.

Литература / References:

  1. Zuhair M, Smit GSA, Wallis G, Jabbar F, Smith C, Devleesschauwer B, Griffiths P. Estimation of the worldwide seroprevalence of cytomegalovirus: A systematic review and meta-analysis. Rev Med Virol. 2019 May;29(3): e2034. https://doi.org/10.1002/rmv.2034
  2. Fernández S, Castro P & Azoulay E. What intensivists need to know about cytomegalovirus infection in immunocompromised ICU patients. Intensive Care Med. 2025 Jan;51(1):39-61.  https://doi.org/10.1007/s00134-024-07737-5
  3. Yokoyama Y, Yamakawa T, Hirano T, et al. Current Diagnostic and Therapeutic Approaches to Cytomegalovirus Infections in Ulcerative Colitis Patients Based on Clinical and Basic Research Data. Int J Mol Sci. 2020 Mar 31;21(7):2438. https://doi.org/10.3390/ijms21072438
  4. do Carmo AM, Santos FM, Ortiz-Agostinho CL, et al. Cytomegalovirus infection in inflammatory bowel disease is not associated with worsening of intestinal inflammatory activity. PLoS One. 2014 Nov 11;9(11): e111574. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0111574
  5. Bontà J, Zeitz J, Frei P, et al. Cytomegalovirus disease in inflammatory bowel disease: epidemiology and disease characteristics in a large single-centre experience. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2016 Nov;28(11):1329-1334. https://doi.org/10.1097/MEG.0000000000000716
  6. Lee HS, Park SH, Kim SH, et al. Risk Factors and Clinical Outcomes Associated with Cytomegalovirus Colitis in Patients with Acute Severe Ulcerative Colitis. Inflamm Bowel Dis. 2016 Apr;22(4):912-918.  https://doi.org/10.1097/MIB.0000000000000675
  7. Gauss A, Rosenstiel S, Schnitzler P, et al. Intestinal cytomegalovirus infection in patients hospitalized for exacerbation of inflammatory bowel disease: a 10-year tertiary referral center experience. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2015 Jun;27(6):712-720.  https://doi.org/10.1097/MEG.0000000000000361
  8. Levin A, Yaari S, Stoff R, Caplan O, Wolf DG, Israeli E. Diagnosis of Cytomegalovirus Infection during Exacerbation of Ulcerative Colitis. Digestion. 2017;96(3):142-148.  https://doi.org/10.1159/000479865
  9. Maher MM, Nassar MI. Acute cytomegalovirus infection is a risk factor in refractory and complicated inflammatory bowel disease. Dig Dis Sci. 2009 Nov;54(11):2456-2462. https://doi.org/10.1007/s10620-008-0639-6
  10. Criscuoli V, Casà A, Orlando A, et al. Severe acute colitis associated with CMV: a prevalence study. Dig Liver Dis. 2004 Dec;36(12):818-820.  https://doi.org/10.1016/j.dld.2004.05.013
  11. Cottone M, Pietrosi G, Martorana G, et al. Prevalence of cytomegalovirus infection in severe refractory ulcerative and Crohn’s colitis. Am J Gastroenterol. 2001 Mar;96(3):773-775.  https://www.sci-hub.ru/10.1111/j.1572-0241.2001.03620.x
  12. Cohen S, Martinez-Vinson C, Aloi M, et al. Cytomegalovirus Infection in Pediatric Severe Ulcerative Colitis-A Multicenter Study from the Pediatric Inflammatory Bowel Disease Porto Group of the European Society of Pediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition. Pediatr Infect Dis J. 2018 Mar;37(3):197-201.  https://doi.org/10.1097/INF.0000000000001724
  13. Kim YS, Kim YH, Kim JS, et al. Long-term outcomes of cytomegalovirus reactivation in patients with moderate to severe ulcerative colitis: a multicenter study. Gut Liver. 2014 Nov;8(6):643-647.  https://doi.org/10.5009/gnl13427
  14. Schenk W, Klugmann T, Borkenhagen A, et al. The detection of the cytomegalovirus DNA in the colonic mucosa of patients with ulcerative colitis is associated with increased long-term risk of proctocolectomy: results from an outpatient IBD clinic. Int J Colorectal Dis. 2019 Mar;34(3):393-400.  https://doi.org/10.1007/s00384-018-3210-8
  15. Criscuoli V, Rizzuto MR, Gallo E, Orlando A, Cottone M. Toxic megacolon and human Cytomegalovirus in a series of severe ulcerative colitis patients. J Clin Virol. 2015 May;66:103-106.  https://doi.org/10.1016/j.jcv.2015.03.009
  16. Matsumoto S, Yoshida Y. What are the factors that affect hospitalization and surgery for aggravation of ulcerative colitis? Eur J Gastroenterol Hepatol. 2014 Mar;26(3):282-287.  https://doi.org/10.1097/MEG.0000000000000028
  17. Zhang WX, Ma CY, Zhang JG, et al. Effects of cytomegalovirus infection on the prognosis of inflammatory bowel disease patients. Exp Ther Med. 2016 Nov;12(5):3287-3293. https://doi.org/10.3892/etm.2016.3763
  18. McCurdy JD, Jones A, Enders FT, et al. A model for identifying cytomegalovirus in patients with inflammatory bowel disease. Clin Gastroenterol Hepatol. 2015 Jan;13(1):131-137; quiz e7.  https://doi.org/10.1016/j.cgh.2014.05.026
  19. Henmi Y, Kakimoto K, Inoue T, et al. Cytomegalovirus infection in ulcerative colitis assessed by quantitative polymerase chain reaction: risk factors and effects of immunosuppressants. J Clin Biochem Nutr. 2018 Nov;63(3):246-251.  https://doi.org/10.3164/jcbn.18-14
  20. Tun GSZ, Raza M, Hale MF, Lobo AJ. Polymerase chain reaction for detection of mucosal cytomegalovirus infection in patients with acute ulcerative colitis. Ann Gastroenterol. 2019 Jan-Feb;32(1):81-87.  https://doi.org/10.20524/aog.2018.0318
  21. Nowacki TM, Bettenworth D, Meister T, et al. Novel score predicts risk for cytomegalovirus infection in ulcerative colitis. J Clin Virol. 2018 Aug;105:103-108.  https://doi.org/10.1016/j.jcv.2018.06.002
  22. Mavropoulou E, Ternes K, Mechie NC, et al. Cytomegalovirus colitis in inflammatory bowel disease and after haematopoietic stem cell transplantation: diagnostic accuracy, predictors, risk factors and disease outcome. BMJ Open Gastroenterol. 2019 Feb 27;6(1): e000258. https://doi.org/10.1136/bmjgast-2018-000258
  23. Melotti L, Rinaldi M, Salice M, et al. Is CMV DNAemia an early marker of CMV colitis in patients with active ulcerative colitis? Microbiol Spectr. 2024 Nov 5;12(11):e0115924. https://doi.org/10.1128/spectrum.01159-24
  24. Dalal RS, Mitri J, Goodrick H, Allegretti JR. Risk of Gastrointestinal Infections After Initiating Vedolizumab and Anti-TNFα Agents for Ulcerative Colitis. J Clin Gastroenterol. 2023 Aug 1;57(7):714-720.  https://doi.org/10.1097/MCG.0000000000001733
  25. Shieh AC, Guler E, Tirumani SH, Dumot J, Ramaiya NH. Clinical, imaging, endoscopic findings, and management of patients with CMV colitis: a single-institute experience. Emerg Radiol. 2020 Jun;27(3):277-284.  https://doi.org/10.1007/s10140-020-01750-z
  26. Le PH, Lin WR, Kuo CJ, et al. Clinical characteristics of cytomegalovirus colitis: a 15-year experience from a tertiary reference center. Ther Clin Risk Manag. 2017 Dec 15;13:1585-1593. https://doi.org/10.2147/TCRM.S151180
  27. Esen S, Saglik I, Dolar E, et al. Diagnostic Utility of Cytomegalovirus (CMV) DNA Quantitation in Ulcerative Colitis. Viruses. 2024 Apr 26;16(5):691.  https://doi.org/10.3390/v16050691
  28. McCurdy JD, Enders FT, Jones A, et al. Detection of Cytomegalovirus in Patients with Inflammatory Bowel Disease: Where to Biopsy and How Many Biopsies? Inflamm Bowel Dis. 2015 Dec;21(12):2833-2838. https://doi.org/10.1097/MIB.0000000000000556
  29. Roblin X, Pillet S, Oussalah A, et al. Cytomegalovirus load in inflamed intestinal tissue is predictive of resistance to immunosuppressive therapy in ulcerative colitis. Am J Gastroenterol. 2011 Nov;106(11):2001-2008. https://doi.org/10.1038/ajg.2011.202
  30. Zidar N, Ferkolj I, Tepeš K, et al. Diagnosing cytomegalovirus in patients with inflammatory bowel disease – by immunohistochemistry or polymerase chain reaction? Virchows Arch. 2015 May;466(5):533-539.  https://doi.org/10.1007/s00428-015-1741-8
  31. Nguyen M, Bradford K, Zhang X, Shih DQ. Cytomegalovirus Reactivation in Ulcerative Colitis Patients. Ulcers. 2011 Jan 1;2011:282507. https://doi.org/10.1155/2011/282507
  32. Herfarth HH, Long MD, Rubinas TC, Sandridge M, Miller MB. Evaluation of a non-invasive method to detect cytomegalovirus (CMV)-DNA in stool samples of patients with inflammatory bowel disease (IBD): a pilot study. Dig Dis Sci. 2010 Apr;55(4):1053-1058. https://doi.org/10.1007/s10620-010-1146-0
  33. Ganzenmueller T, Kluba J, Becker JU, Bachmann O, Heim A. Detection of cytomegalovirus (CMV) by real-time PCR in fecal samples for the non-invasive diagnosis of CMV intestinal disease. J Clin Virol. 2014 Dec;61(4):517-522.  https://doi.org/10.1016/j.jcv.2014.10.009
  34. Hsieh CR, Wu RC, Kuo CJ, et al. Adequate antiviral treatment lowers overall complications of cytomegalovirus colitis among inpatients with inflammatory bowel diseases. BMC Infect Dis. 2024 Apr 26;24(1):443.  https://doi.org/10.1186/s12879-024-09317-w
  35. Panda K, Parashar D, Viswanathan R. An Update on Current Antiviral Strategies to Combat Human Cytomegalovirus Infection. Viruses. 2023 Jun 12;15(6):1358. https://doi.org/10.3390/v15061358
  36. Kucharzik T, Ellul P, Greuter T, et al. ECCO Guidelines on the Prevention, Diagnosis, and Management of Infections in Inflammatory Bowel Disease. J Crohns Colitis. 2021 Jun 22;15(6):879-913.  https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjab052
  37. Gilmore RB, Taylor KM, Morrissey CO, Gardiner BJ. Cytomegalovirus in inflammatory bowel disease: a clinical approach. Intern Med J. 2022 Mar;52(3):365-368.  https://doi.org/10.1111/imj.15085
  38. Singh G, Rentsch C, Beattie W, Christensen B, Macrae F, Segal JP. Long-Term Follow Up of Patients Treated for Inflammatory Bowel Disease and Cytomegalovirus Colitis. Diagnostics (Basel). 2024 Sep 13;14(18):2030. https://doi.org/10.3390/diagnostics14182030

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.