Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Коган Е.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Щелокова Е.Е.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Демура Т.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Жарков Н.В.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Авраамова С.Т.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Ковязина Н.В.

ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России

Меерович Г.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет);
Институт общей физики им. А.М. Прохорова РАН (ИОФ РАН)

Меерович И.Г.

ФГУ «Федеральный исследовательский центр «Фундаментальные основы биотехнологии» РАН»

Ермакова Е.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Холщенкова А.Е.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Решетов И.В.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» (Сеченовский университет) Минздрава России

Гетерогенность экспрессии ALDH1, CD133 и CD34 в раковых стволовых клетках аденокарциномы легкого

Авторы:

Коган Е.А., Щелокова Е.Е., Демура Т.А., Жарков Н.В., Авраамова С.Т., Ковязина Н.В., Меерович Г.А., Меерович И.Г., Ермакова Е.А., Холщенкова А.Е., Решетов И.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Архив патологии. 2025;87(5): 36‑45

Прочитано: 146 раз


Как цитировать:

Коган Е.А., Щелокова Е.Е., Демура Т.А., и др. Гетерогенность экспрессии ALDH1, CD133 и CD34 в раковых стволовых клетках аденокарциномы легкого. Архив патологии. 2025;87(5):36‑45.
Kogan EA, Shchelokova EE, Demura TA, et al. Heterogeneity of ALDH1, CD133 and CD34 expression in cancer stem cells of lung adenocarcinoma. Russian Journal of Archive of Pathology. 2025;87(5):36‑45. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/patol20258705136

Рекомендуем статьи по данной теме:
Сни­же­ние экспрес­сии ге­нов ци­тос­ке­ле­та в опу­хо­ле­вых клет­ках при лен­ти­ви­рус­ной тран­сдук­ции. Мо­ле­ку­ляр­ная ге­не­ти­ка, мик­ро­би­оло­гия и ви­ру­со­ло­гия. 2025;(1):30-37

Рак легкого — прогностически неблагоприятная высоколетальная опухоль в связи с поздней диагностикой. Аденокарцинома легкого (АКЛ) отличается высокой резистентностью к большинству методов современной противоопухолевой терапии [1]. Хирургическое лечение, химио- и лучевая терапия оказываются неэффективными, поскольку не способны уничтожить ключевые клетки канцерогенеза — раковые стволовые клетки (РСК), биологические свойства которых обусловливают устойчивость к традиционным методам терапии, опухолевую прогрессию, а также рецидивы после лечения и метастазирование [2, 3]. В опухоли РСК присутствуют в небольшом количестве и представляют собой динамическую популяцию за счет присущей им пластичности, способности самообновляться, создавая гетерогенную опухолевую массу [4]. РСК существуют не изолированно, они находятся в тесной взаимосвязи и взаимодействии с окружающими их клетками и компонентами стромы. Вместе они формируют так называемую нишу РСК. Взаимодействие клеточных и неклеточных компонентов ниши позволяет реализовывать все биологические эффекты РСК за счет секреторных и ростовых факторов, выработка которых осуществляется посредством сигнальных путей, аналогичных путям регуляции стволовых клеток организма [5]. Гетерогенность в группе клеток с признаками «стволовости», приводит к появлению субпопуляций РСК, различающихся по биологическому потенциалу и предназначению, и как следствие — к молекулярному профилю, который может изменяться в процессе жизненного цикла, обусловливая тем самым сложности при их выявлении [5—8].

Маркеры стволовости, которые по результатам наших исследований и данным литературы [9—11] экспрессируются в РСК рака легкого с наибольшей частотой, — это ALDH1, CD133 и CD34.

ALDH1 представляет собой внутриклеточный фермент группы альдегиддегидрогеназ, вовлечен в сигнальные пути, связанные с важнейшими метаболическими процессами, важнейший из которых детоксикация токсичных метаболитов, включая химиотерапевтические препараты и дифференцировку клеток; признан маркером, позволяющим идентифицировать РСК в солидных опухолях легкого, молочной железы, колоректальном раке и др. [12, 13]. В ряде работ [14, 15] показаны высокое содержание этого фактора в РСК в отличие от нормальных, а также способность ALDH1+позитивных-клеток образовывать сфероиды и проявлять онкогенность при трансплантации иммунодефицитным мышам.

CD133 представляет собой гликопротеин, экспрессируется в эмбриональных стволовых клетках и стволовых клетках взрослого организма, считается поверхностным маркером РСК, в том числе рака легкого, обсуждается его роль в регулировании сигнальных метаболических путей и в межклеточной коммуникации с формированием CD133+ микровезикул и/или экзосом [16, 17]; его рассматривают как потенциальную терапевтическую мишень и прогностический фактор у пациентов с раком легкого, предстательной железы и колоректальной карциномой. Имеются данные, что CD133 может регулировать пролиферацию и химиорезистентность раковых клеток [18].

CD34 представляет собой поверхностный трансмембранный белок. Биологическое значение CD34 многогранно и неоднозначно: участие в васкуло- и ангиогенезе, кроветворении, регенераторных процессах и воспалении. Он используется для идентификации и выделения стволовых кроветворных клеток и РСК в гематологических и негематологических злокачественных новообразованиях [11]. Известно участие CD34 в адгезии клеток и ее регуляции посредством воздействия на интегрины и селектины, которые в свою очередь играют решающую роль в миграции, пролиферации и дифференцировке клеток. В ряде работ показано, что CD34+позитивные РСК обладают повышенной способностью к самообновлению и инициации образования опухоли по сравнению с CD34-негативными РСК. Существует гипотеза, что экспрессия CD34 в ткани опухоли может быть связана с повышенной агрессивностью опухоли и устойчивостью к химиотерапии, склонностью к рецидивам и возникновению метастазов [19—21].

Вопросы, касающиеся идентификации РСК, их возможной гетерогенности и взаимодействия РСК с микроокружением в опухолях легкого чрезвычайно сложны, не до конца изучены и остаются актуальными, поскольку поиск методов терапии, воздействующих непосредственно на РСК, с минимизацией возможных побочных эффектов и осложнений представляется в настоящее время одним из основных направлений в борьбе с онкологическими заболеваниями [22—24].

Цель исследования выявление раковых клеток АКЛ с признаками стволовости и их гетерогенности по экспрессии маркеров ALDH1, CD133 и CD34 в клеточной культуре A549 и операционном материале в зависимости от гистологического типа, степени злокачественности и стадии опухолевого процесса.

Материал и методы

Был изучен операционный материал АКЛ от 32 пациентов. Кроме того, в опытах in vitro мы исследовали культуру клеток АКЛ A549 (ПраймБиоМед).

Операции производились в торакальном отделении УКБ №1 и УКБ №4 Первого МГМУ им. И.М. Сеченова. Макроскопическое исследование операционного материала сопровождалось забором не менее 3 фрагментов опухолевой ткани, 3 кусочков интактной ткани легкого, а также лимфатических узлов. Образцы фиксировали в 10% забуференном формалине, заливали в парафин, изготавливали парафиновые срезы и окрашивали гематоксилином и эозином [25]. Иммуногистохимическое исследование проводили иммунопероксидазным способом по стандартному протоколу [26] с использованием полилизиновых стекол (Leica Biosystems, предметные стекла Snowcoat X-TRA с адгезивной поверхностью, не требующие дополнительной обработки) на парафиновых срезах первичной АКЛ, лимфатические узлы подвергались гистологическому исследованию без идентификациии РСК в метастатических очагах. Для верификации диагноза и подтверждения первичного характера процесса использовали антитела к TTF1 (SpringBioscience, SP141, 1:100), СК7 (ПраймБиоМед, PBM-12F1, 1:100), Napsin A (Leica Biosystems, Novocastra, клон NCL-L-Napsin A, разведение 1:400), Ki-67 (ПраймБиоМед, клон GM010, 1:100), CDX2 (ПраймБиоМед, клон PBM-1C7, 1:100), SATB2 (Cell Marque Corporation, клон lEP281, 1:100).

Клетки A549 культивировали в среде DMEM, содержащей 2 мМ глутамина, раствор антибиотика-антимикотика (100 Е пенициллина, 100 мкг стрептомицина и 250 нг амфотерицина B в 1 мл) с добавлением 10% телячьей эмбриональной сыворотки, при 37 °C и 5% CO2. Морфологическое исследование проводили после окрашивания гематоксилином и эозином по стандартной методике [25]. Для иммуногистохимических исследований клетки A549 промывали раствором Версена, снимали с чашек 0,25% трипсином, подсчитывали и рассаживали в чашки Петри на стерильные предметные стекла с полилизиновым покрытием по 106 клеток в 1 мл ростовой среды и инкубировали в течение суток. Неокрашенные стекла с клетками подвергали иммуногистохимическому исследованию. В качестве первичных антител, маркеров РСК, применяли антитела к ALDH1 (Huabio, Polyclonal Rabbit Antibody, разведение 1:200), CD133 (Huabio, Polyclonal Rabbit Antibody, разведение 1:500), CD34 (Huabio, Polyclonal Rabbit Antibody, разведение 1:2000). В качестве вторичных антител использовали антитела к антимышиным и антикроличьим иммуноглобулинам, ставили положительные и отрицательные контроли. В качестве отрицательного контроля проводили иммуногистохимическую реакцию без внесения соответствующего антитела. В качестве положительного контроля для проведения реакции с антителами к ALDH1 использовали срезы ткани печени, с антителами к CD133 — образцы ткани почки. Оценку результатов реакций выполняли морфометрически путем подсчета соотношения количества клеток опухоли со специфическим окрашиванием ядра и/или цитоплазмы на 3000 клеток опухоли, выраженного в процентах. Использовали статистический U-критерий Манна—Уитни для оценки различий между малыми выборками.

Результаты

Морфологическая характеристика операционного материала

Макроскопическая характеристика

В подавляющем большинстве случаев изучены периферические АКЛ, которые располагались субплеврально, сопровождаясь втяжением плевры в проекции опухоли; на разрезе имели вид плотноэластичного узла белесовато-сероватого цвета с нечеткими границами (рис.1, а). Размер узлов варьировал от 0,8 до 6 см в наибольшем измерении. В 3 наблюдениях АКЛ представлены сероватыми студенистыми участками без четких границ. Окружающая ткань полнокровная, воздушная, розовато-серого или красноватого цвета, эластичная. Лимфатические узлы серовато-черные, плотноэластичные, размером от 0,5 до 1 см, в отдельных случаях обнаруживался конгломерат белесовато-серых лимфатических узлов с неразличимыми границами.

Рис. 1. Макроскопическое и микроскопическое исследование периферических аденокарцином легкого.

а — атипичная резекция верхней доли правого легкого с опухолью (стрелка); инвазивная немуцинозная аденокарцинома легкого с участками: б — ацинарного и папиллярного строения; в — микропапиллярного строения; г — муцинозная аденокарцинома; окраска гематоксилином и эозином.

Гистологическая характеристика

АКЛ представлены инвазивной аденокарциномой (32 наблюдения). Аденокарциномы преимущественно со стелющимся типом роста диагностированы в 7 случаях, с ацинарным и папиллярным паттернами — в 19 (рис. 1, б). Солидный, микропапиллярный (рис. 1, в) и криброзный варианты строения обнаружены у 5 пациентов. Аденокарциномы микропапиллярного строения характеризовались наличием фокусов инвазии в висцеральную плевру, а также наличием периневральной и лимфоваскулярной инвазии. В 6 наблюдениях имелись опухоли с муцинозной (рис. 1, г) дифференцировкой ацинарного строения и со стелющимся ростом, в 3 из них отмечался мультицентрический характер поражения.

Патологоанатомическая стадия процесса определялась при гистологическом исследовании по критериям Международной классификации стадий злокачественных новообразований TNM [28]. Стадии pT1 соответствовало 14 случаев, все без метастазов в лимфатических узлах (pN0). Стадия pT2 диагностирована в 13 наблюдениях, из них в 3 метастазы в лимфатических узлах не обнаружены (pN0), в 3 установлены метастазы в перибронхиальных лимфатических узлах на стороне поражения (pN1) и в 1 наблюдении найдены метастазы в бифуркационном лимфатическом узле на стороне поражения (pN2). У 3 пациентов определена стадия pT3, у 2 из них с метастазами в регионарных лимфатических узлах (pN1). Со стадией pT4 в исследование включены 2 пациента, у обоих имелись метастазы в бифуркационных лимфатических узлах (pN2). У 1 из этих пациентов через 5 мес после атипичной резекции легкого с опухолью развился рецидив АКЛ и диагностированы отдаленные метастазы. У 5 пациентов отмечались фокусы инвазии в висцеральную плевру, соответствующие стадии PL1 и PL2. На основании категорий T, N, M пациенты в исследовании были распределены согласно стадиям в соответствии с классификацией ВОЗ, 2021 г. [27]: стадия Ⅰ — 23 пациента, стадия II — 4 пациента, стадия III — 5 пациентов (табл. 1).

Таблица 1. Распределение материала по преобладающему паттерну роста (степени злокачественности) и по стадиям согласно критериям Международной классификации стадий злокачественных новообразований TNM (8-е издание, 2017) и классификации ВОЗ, 2021 г.

Патолого-анатомическая стадия, TNM

Преобладающий паттерн роста

Стадия процесса

стелющийся (Grade 1)

ацинарный, папиллярный

(Grade 2)

микропапиллярный, солидный, криброзный

(Grade 3)

pT1

pNO

4

10

I

pT2

pNO

3

5

1

I

pN1

1

2

II

pN2

1

III

pT3

pN0

1

II

pN1

2

III

pT4

pN2

2

III

7

19

6

Иммуногистохимическая характеристика

В аденокарциномах отмечалась экспрессия TTF1, CK7 и маркеров стволовости ALDH1, CD133 и CD34. Пролиферативная активность по Ki-67 на ранних стадиях соответствовала 3—10%, в случае распространенного опухолевого процесса достигала максимально 20%.

РСК с экспрессией ALDH1 были обнаружены во всех АКЛ (рис. 2). Отмечалось диффузное окрашивание цитоплазмы опухолевых клеток различной интенсивности с тенденцией к увеличению количества окрашенных клеток с ростом стадии процесса (p<0,05).

Рис. 2. Экспрессия ALDH1, CD133 и CD34 в аденокарциномах легкого в зависимости от стадии и степени дифференцировки опухоли.

В АКЛ Grade 1 со стелющимся типом роста, АКЛ Grade 2 (ацинарный и папиллярный паттерны) и АКЛ с солидным, криброзным и микропапиллярным характером роста, относящимся к высокой степени злокачественности (рис. 3, а), количество клеток с позитивным окрашиванием цитоплазмы составило в среднем 30% (рис. 3, б).

Рис. 3. Маркеры раковых стволовых клеток в аденокарциноме легкого у пациента со II стадией (pT2 pN1).

а — инвазивная немуцинозная аденокарцинома легкого смешанного строения,; позитивное окрашивание цитоплазмы РСК в реакции с антителами к: б — ALDH1; в — CD34; г — CD133. а — окраска гематоксилином и эозином, б — г — иммунопероксидазная реакция.

Наибольшее количество позитивно окрашенных клеток, достигающее в среднем 80%, обнаруживалось у пациентов с раком III стадии и метастазами в бифуркационных лимфатических узлах pT4 pN2 G3 (p<0,05). Мы отметили, что позитивно окрашенные клетки местами располагались группами из 2—3 клеток, а также преимущественную их локализацию в зонах инвазивного роста опухоли. В части срезов мы выявляли окрашивание клеток опухоли, выстилающих щелевидные пространства, напоминающие сосуды, некоторые из этих пространств содержали эритроциты.

Позитивное окрашивание в реакциях с антителами к CD34 обнаруживалось в цитоплазме клеток аденокарцином и в эндотелии сосудов как в опухоли, так и за ее пределами в окружающей легочной паренхиме. Окрашивание было диффузным цитоплазматическим различной интенсивности. Уровень экспрессии у пациентов в зависимости от степени злокачественности опухоли не отличался: обнаруживались единичные окрашенные клетки опухоли (в среднем 5%). Значительное увеличение количества окрашенных клеток в ткани опухоли было найдено у пациентов с метастазами (p<0,05): оно достигало в среднем 70—80% вне зависимости от размера опухоли, стадии процесса и степени злокачественности (рис. 3, в).

Позитивное окрашивание в реакциях с антителами к CD133 было выявлено в цитоплазме клеток в каждой аденокарциноме (см. рис. 2). Окрашивание клеток было диффузным и апикальным. При этом результаты окрашивания были аналогичны таковым при окрашивании с антителами к ALDH1: у пациентов с опухолями различной степени злокачественности I—III стадии, в том числе с метастазами в лимфатических узлах, количество клеток в первичной АКЛ с позитивным окрашиванием было в среднем 20% (рис. 3, г). Максимальное значение найдено у пациентов с раком III стадии pT4pN2 G3 и достигало в среднем 80% окрашенных клеток опухоли (p<0,05). Отмечалось также окрашивание клеток опухоли, формирующих щелевидные пространства, содержащие эритроциты.

Таким образом, экспрессия маркеров стволовости ALDH1, CD133 и CD34 отмечалась во всех АКЛ. Мы проанализировали количество окрашенных РСК с разными маркерами стволовости в срезах и их локализацию. Во всех случаях АКЛ I—III стадии (pT1-pT3) без поражения лимфатических узлов количество клеток с позитивным окрашиванием в реакциях с антителами к ALDH1 преобладало над таковым с антителами к CD133 и CD34 (см. рис. 2), что дало основание говорить о количественной гетерогенности РСК по содержанию маркеров стволовости у пациентов ранних стадий: наибольшее количество клеток содержали ALDH1 (в среднем до 30%), несколько меньше РСК — CD133 (в среднем до 20% клеток), количество CD34+позитивных РСК было наименьшим у пациентов без признаков метастатического поражения лимфатических узлов (в среднем до 5% клеток) (см. рис. 2). Количественная гетерогенность по содержанию маркеров стволовости не наблюдалась при раке III стадии (pT4 pN2 М0) с поражением лимфатических узлов: число позитивно окрашенных клеток опухоли со всеми факторами в среднем достигало 80% (см. рис. 2). Окрашенные клетки в реакциях с маркером ALDH1 преимущественно обнаруживались в зонах инвазивного роста. При изучении пошаговых срезов одной и той же опухоли клетки с экспрессией ALDH1 и CD133 обнаруживались не только в одном и том же фокусе, но и в разных. Анализ расположения позитивно окрашенных клеток в реакциях с антителами ко всем трем маркерам в пошаговых срезах опухолей у пациентов I—III стадии без поражения лимфатических узлов показал, что в отдельных локусах аденокарцином как в непосредственной близости друг к другу, так и в различных фокусах обнаруживались клетки, экспрессирующие ALDH1, CD133 и CD34. У пациентов с наличием поражения лимфатических узлов существенно преобладали клетки с позитивным окрашиванием в реакциях с CD34. При этом у пациентов с III стадией (pT4pN2М0) и поражением лимфатических узлов экспрессия всех трех указанных маркеров стволовости выявлялась в подавляющем большинстве опухолевых клеток в ткани АКЛ.

Степень злокачественности в АКЛ в соответствии с классификацией ВОЗ определяется по преобладающему гистологическому паттерну роста, мы не выявили достоверной корреляции между степенью злокачественности (преобладающим гистологическим паттерном) и количеством окрашенных клеток опухоли.

Цитологическая характеристика культуры клеток A549

При исследовании культуры клеток АКЛ A549 обнаруживались кластеры опухолевых клеток с признаками железистой дифференцировки, растущие в виде солидных пластов и местами формирующие сфероидные агрегаты, возвышающиеся над пластом опухолевых клеток (рис. 4, а). Фигуры митозов встречались нередко и в среднем составляли 9% опухолевых клеток.

Рис. 4. Раковые стволовые клетки в культуре раковых клеток А549.

а — окраска гематоксилином и эозином; б — экспрессия ALDH1 в цитоплазме раковых стволовых клеток; в — экспрессия CD34 в цитоплазме раковых стволовых клеток; г — экспрессия CD133; б — г — иммунопероксидазная реакция.

Иммуногистохимическое исследование на адгезивных стеклах с культурой клеток АКЛ A549 выявило позитивное окрашивание цитоплазмы части клеток (табл. 2): ALDH1+позитивные РСК составили в среднем 25% от общего количества раковых клеток (рис. 4, б), CD34+позитивные РСК — 31% раковых клеток (рис. 4, в), CD133+позитивные РСК — около 10% раковых клеток (рис.4, г) (p<0,05). Различия в процентном содержании ALDH1+ РСК, CD34+ РСК и CD133+ РСК свидетельствуют об их гетерогенности в культуре A549.

Таблица 2. Маркеры стволовости в РСК в клеточной культуре А549

Маркер стволовости

ALDH1+ РСК

CD34+ РСК

CD133+ РСК

Количество окрашенных клеток, %

25+0,7

31+0,8

10+0,3

Обсуждение

В результате проведенного исследования АКЛ различной степени злокачественности и культуры клеток АКЛ A549 мы обнаружили клетки опухоли, экспрессирующие маркеры стволовости ALDH1, CD133 и CD34. При этом в случае метастатического рака III стадии (pT4pN2М0) с поражением лимфатических узлов их количество является максимальным, достигая в среднем 80% (см. рис. 2). Злокачественность опухоли является многофакторным понятием, однако данные литературы [2—5] и полученные нами данные подтверждают, что РСК в АКЛ являются ключевыми клетками, ответственными за реализацию эффектов, характеризующих опухолевую прогрессию: активацию процессов пролиферации и эпителиально-мезенхимальной трансформации (ЭМТ); увеличение их количества в опухолях — признак роста пролиферативного, инвазивного и метастатического потенциала, а значит, и возрастания летальности, что совпадает с данными литературы [5].

Относительное количество CD34+ РСК, ALDH1+ РСК и CD133+ РСК минимальное у пациентов при раке без поражения лимфатических узлов и возрастает при наличии метастазов в лимфатических узлах и распространенном раке в десятки раз. Увеличение количества CD34+РСК с повышением стадии выражено в большей степени, что, по-видимому, определяет особая роль CD34+ РСК в канцерогенезе, причем на это также указывают и ряд авторов [19—21]. Можно предположить, что возрастание инвазивного и метастатического потенциала и, следовательно, агрессивности АКЛ связано с участием CD34+ РСК, а также ALDH1+РСК и CD133+РСК в процессах ангиогенеза, адгезии и ЭМТ.

Была выявлена гетерогенность РСК по изученным маркерам в АКЛ. Мы подтвердили концепцию, что РСК — это гетерогенная совокупность динамичных субпопуляций клеток с признаками стволовости, выполняющих в пределах своей ниши определенные задачи и имеющих биологические свойства, позволяющие им реализовывать эти задачи [5—8]. Количество клеток, проявляющих признаки стволовости, является величиной, подверженной изменениям вследствие пластичности и ЭМТ, и зависит от внешних условий и внутренних стимулов микроокружения. Установлена также количественная гетерогенность РСК по маркерам ALDH1, CD133 и CD34, которая была обнаружена как в операционном материале ткани АКЛ, так и в культуре клеток АКЛ A549. У пациентов без метастазов в лимфатических узлах обнаружено преобладание ALDH1+РСК, что позволяет предполагать приоритетное значение ALDH1+РСК в опухоли для обеспечения резистентности к внешним неблагоприятным воздействиям (терапия) [12—15]; у пациентов с наличием метастазов в лимфатических узлах вне зависимости от размеров опухолевого узла выявлено преобладание) CD34+РСК, что может отражать высокий уровень ЭМТ и ангиогенеза [19—21]. Мы отметили, что маркеры стволовости ALDH1, CD133 и CD34 в случае метастатического рака III стадии определяются на серийных срезах одновременно в подавляющем большинстве клеток, и предположили, что перечисленные маркеры могут обнаруживаться в одной и той же раковой клетке. В то же время у пациентов, имеющих более ранние стадии, маркеры стволовости в серийных срезах обнаруживались в различных сочетаниях и по отдельности в разных участках опухоли. Учитывая, что маркеры являются звеньями сигнальных путей и непосредственными мишенями в сложной цепи молекулярных взаимодействий, результатом которых является реализация определенных пока не до конца установленных эффектов, правомочной становится гипотеза, что в одной клетке могут одновременно коэкспрессироваться как все перечисленные факторы одновременно, так и в различных сочетаниях, в том числе по отдельности, в зависимости от биологической задачи, стоящей перед той или иной субпопуляцией клеток с признаками стволовости. Выдвинутые предположения могут быть исследованы с помощью методов двойных-тройных антител и конфокальной микроскопии. Биологические задачи определяют дифференцировку (созревание) конкретной РСК или группы РСК в опухоли, следствием чего, очевидно, является появление в клетках молекулярных факторов, определяемых иммуногистохимически на различных этапах жизни каждой отдельно взятой РСК и коррелирующих с возрастанием резистентности к терапии, худшим прогнозом, появлением метастазов. Это соотносится с понятием об иерархии и гетерогенности клеток с признаками стволовости.

Заключение

В АКЛ как в операционном материале, так и в культуре A549 обнаружены РСК с экспрессией маркеров стволовости ALDH1, CD133 и CD34.

Увеличение количества РСК с экспрессией маркеров стволовости ALDH1, CD34 и CD133 в ткани опухоли достигает максимальных значений в случаях рака с метастазами в лимфатических узлах.

Значительное количество РСК с экспрессией ALDH1, CD34 и CD133 в АКЛ может свидетельствовать о выраженном инвазивном и метастатическом потенциале АКЛ, интенсивности процессов ЭМТ, а, следовательно, о высокой летальности.

Относительное увеличение CD34+РСК в ткани опухоли у пациентов с наличием метастазов в лимфатических узлах может выступать в роли раннего индикатора возрастания процессов эпителиально-мезенхимальной трансформации, а, следовательно, усиления агрессивности опухоли, склонности к инвазии и метастазированию.

В АКЛ отмечается гетерогенность РСК по изученным маркерам: на ранних стадиях у пациентов без метастазов в ткани опухоли преобладают ALDH1+ РСК, при появлении метастатического поражения лимфатических узлов доминируют популяции CD34+ РСК вне зависимости от размеров узла опухоли. Количественная гетерогенность прослеживается также и в культуре клеток A549: наибольшее количество составили CD34+ РСК, чуть меньшее — ALDH1+РСК и клеток с CD133+РСК было менее всего.

Исследования Е.А. Коган, Г.А. Мееровича, И.В. Решетова выполнены при поддержке гранта РНФ № 24-45-00020 и в рамках билатерального Российско-Китайского проекта.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования — Коган Е.А., Щелокова Е.Е., Демура Т.А., Решетов И.В.

Сбор и обработка материала — Щелокова Е.Е., Коган Е.А., Жарков Н.В., Ковязина Н.В., Меерович Г.А., Меерович И.Г., Ермакова Е.А., Холщенкова А.Е.

Статистическая обработка данных — Ковязина Н.В., Холщенкова А.Е.

Написание текста — Щелокова Е.Е., Коган Е.А., Ковязина Н.В.

Редактирование — Коган Е.А., Щелокова Е.Е.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Bray F, Laversanne M, Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Soerjomataram I, et al. Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 2024;74(3):229‐263.  https://doi.org/10.3322/caac.21834
  2. Phi LTH, Sari IN, Yang YG, Lee SH, Jun N, Kim KS, et al. Cancer Stem Cells (CSCs) in Drug Resistance and their Therapeutic Implications in Cancer Treatment. Stem Cells International. 2018;28:5416923. https://doi.org/10.1155/2018/5416923
  3. Prabavathy D, Swarnalatha Y, Ramadoss N. Lung cancer stem cells—origin, characteristics and therapy. Stem Cell Investigation. 2018;5:6.  https://doi.org/10.21037/sci.2018.02.01
  4. Chu X, Tian W, Ning J, Xiao G, Zhou Y, Wang Z, et al. Cancer stem cells: advances in knowledge and implications for cancer therapy. Signal Transduction and Targeted Therapy. 2024;5;9(1):170.  https://doi.org/10.1038/s41392-024-01851-y
  5. Hardavella G, George R, Sethi T. Lung cancer stem cells-characteristics, phenotype. Translational Lung Cancer Research. 2016; 5(3):272-9.  https://doi.org/10.21037/tlcr.2016.02.01
  6. Mohan A, Raj Rajan R, Mohan G, Kollenchery Puthenveettil P, Maliekal TT. Markers and Reporters to Reveal the Hierarchy in Heterogeneous Cancer Stem Cells. Frontiers in Cell and Developmental Biology 2021;9:668851. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.66885
  7. Masciale V, Banchelli F, Grisendi G, D’Amico R, Maiorana A, Stefani A, et al. Cancer Stem Cells and Cell Cycle Genes as Independent Predictors of Relapse in Non-small Cell Lung Cancer: Secondary Analysis of a Prospective Study. STEM CELLS Translational Medicine. 2022;23;11(8):797-804.  https://doi.org/10.1093/stcltm/szac040
  8. Gasch C, Ffrench B, O’Leary JJ, Gallagher MF. Catching moving targets: cancer stem cell hierarchies, therapy-resistance & considerations for clinical intervention. Molecular Cancer. 2017;16, 43.  https://doi.org/10.1186/s12943-017-0601-3
  9. Lei HM, Zhang KR, Wang CH, Wang Y, Zhuang GL, Lu LM, et al. Aldehyde Dehydrogenase 1a1 Confers Erlotinib Resistance Via Facilitating the Reactive Oxygen Species-Reactive Carbonyl Species Metabolic Pathway in Lung Adenocarcinomas. Theranostics 2019;9(24):7122-39.  https://doi.org/10.7150/thno.35729
  10. Amir Barzegar Behrooz, Amir Syahir & Syahida Ahmad. CD133: beyond a cancer stem cell biomarker. Journal of Drug Targeting. 2019;27:3,257-269.  https://doi.org/10.1080/1061186X.2018.1479756
  11. Kapoor S, Shenoy SP, Bose B. CD34 cells in somatic, regenerative and cancer stem cells: Developmental biology, cell therapy, and omics big data perspective. Journal of Cellular Biochemistry. 2020;121(5-6):3058-3069. https://doi.org/10.1002/jcb.29571
  12. Wei Y, Li Y, Chen Y, Liu P, Huang S, Zhang Y, et al. ALDH1: A potential therapeutic target for cancer stem cells in solid tumors. Frontiers in Oncology. 2022;12:1026278. https://doi.org/10.3389/fonc.2022.1026278
  13. MacDonagh L, Santiago RM, Gray SG, Breen E, Cuffe S, Finn SP, et al. Exploitation of the vitamin a/retinoic acid axis depletes ALDH1-positive cancer stem cells and re-sensitises resistant non-small cell lung cancer cells to cisplatin. Translational Oncology. 2021;14(4):101025. https://doi.org/10.1016/j.tranon.2021.101025
  14. Hida K, Maishi N, Akiyama K, Ohmura-Kakutani H, Torii C, Ohga N, et al. Tumor endothelial cells with high aldehyde dehydrogenase activity show drug resistance. Cancer Science. 2017; 108(11):2195-2203. https://doi.org/10.1111/cas.13388
  15. Zanoni M, Bravaccini S, Fabbri F, Arienti C. Emerging Roles of Aldehyde Dehydrogenase Isoforms in Anti-cancer Therapy Resistance. Frontiers in Medicine 2022;1;9:795762. https://doi.org/10.3389/fmed.2022.795762
  16. Moreno-Londoño AP, Robles-Flores M. Functional Roles of CD133: More than Stemness Associated Factor Regulated by the Microenvironment. Stem Cell Reviews and Reports. 2024;20(1):25-51.  https://doi.org/10.1007/s12015-023-10647-6
  17. Roy S, Lu K, Nayak MK, Bhuniya A, Ghosh T, Kundu S, et al. Activation of D2 Dopamine Receptors in Cd133+Ve Cancer Stem Cells in Non-Small Cell Lung Carcinoma Inhibits Proliferation, Clonogenic Ability, and Invasiveness of These Cells. Journal of Biological Chemistry. 2017;292(2):435-45.  https://doi.org/10.1074/jbc.M116.748970
  18. Pleskač P, Fargeas CA, Veselska R, Corbeil D, Skoda J. Emerging roles of prominin-1 (CD133) in the dynamics of plasma membrane architecture and cell signaling pathways in health and disease. Cellular & Molecular Biology Letters. 2024;29:41.  https://doi.org/10.1186/s11658-024-00554-0
  19. Radu P, Zurzu M, Paic V, Bratucu M, Garofil D, Tigora A, et al. CD34—Structure, Functions and Relationship with Cancer Stem Cells. Medicina. 2023;59(5):938.  https://doi.org/10.3390/medicina59050938
  20. Hassanpour M, Salybekov AA, Kobayashi S, Asahara T. CD34 positive cells as endothelial progenitor cells in biology and medicine. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 2023;11:1128134. https://doi.org/10.3389/fcell.2023.1128134
  21. Dawood S, Austin L, Cristofanilli M. Cancer stem cells: Implications for cancer therapy. Oncology. 2014;28:1101-1107 
  22. Zheng Y, Wang L, Yin L, Yao Z, Tong R, Xue J, et al. Lung Cancer Stem Cell Markers as Therapeutic Targets: An Update on Signaling Pathways and Therapies. Frontiers in Oncology. 2022:12:873994. https://doi.org/10.3389/fonc.2022.873994
  23. Lathia J, Liu H, Matei D. The Clinical Impact of Cancer Stem Cells. The Oncologist. 2020;25(2):123-131.  https://doi.org/10.1634/theoncologist.2019-0517
  24. Walcher L, Kistenmacher AK, Suo H, Kitte R, Dluczek S, Strauß A, et al. Cancer stem cells: origins and biomarkers—perspectives for targeted personalized therapies. Frontiers in Immunology. 2020; 11:1280. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.01280
  25. Коржевский Д.Э. Основы гистологической техники. Практическое руководство. М.: Медицина; 2010.
  26. Dabbs DJ. Diagnostic Immunohistochemistry. New York: Churchill Livingstone; 2002.
  27. Лемешко Б.Ю. Критерии проверки гипотез об однородности. Руководство по применению: монография. М.: ИНФРА-М; 2021. https://doi.org/10.12737/986695
  28. WHO Classification of Tumours. Thoracic tumours. WHO classification of tumours editorial board. 5th ed. Vol. 5. France, Lyon: IARC; 2021. https://tumourclassification.iarc.who.int

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.