Сафонова Т.Н.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им. М.М. Краснова»

Зайцева Г.В.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней им М.М. Краснова»

Роль белков мейбума в патогенезе дисфункции мейбомиевых желез

Авторы:

Сафонова Т.Н., Зайцева Г.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2025;141(1): 70‑75

Прочитано: 1366 раз


Как цитировать:

Сафонова Т.Н., Зайцева Г.В. Роль белков мейбума в патогенезе дисфункции мейбомиевых желез. Вестник офтальмологии. 2025;141(1):70‑75.
Safonova TN, Zaitseva GV. The role of meibum proteins in the pathogenesis of meibomian gland dysfunction. Russian Annals of Ophthalmology. 2025;141(1):70‑75. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/oftalma202514101170

Рекомендуем статьи по данной теме:

Мейбомиевы железы (МЖ) — это видоизмененные голокриновые сальные железы, расположенные в тарзальных пластинках верхних и нижних век. Их секреторный продукт — мейбум — образует наружный липидный слой слезной пленки [1]. Мейбум — вещество с разнообразным и уникальным по своей природе составом. Его компоненты отличаются от других липидных и белковых пулов человеческого организма [2].

Любые изменения МЖ, влияющие на синтез мейбума, играют ключевую роль в дестабилизации слезной пленки, приводя в конечном итоге к нарушению гомеостаза глазной поверхности и развитию синдрома «сухого глаза» [3].

Согласно определению Международной экспертной группы, дисфункция мейбомиевых желез (ДМЖ) представляет собой хроническую диффузную патологию желез, характеризующуюся обструкцией их выводных протоков и/или качественным/количественным изменением секреции [4]. Термин «дисфункция мейбомиевых желез» объединяет различные функциональные нарушения желез. За последние несколько лет были предложены две основные гипотезы патогенеза ДМЖ: «протокоцентрическая» и «мейбоцитцентрическая» [5—7]. Согласно первой гипотезе, предполагается, что гиперкератинизация является основной причиной обструктивной ДМЖ. Гиперкератинизация протокового эпителия начинается с окклюзии терминальных протоков, что приводит к каскаду изменений: стазу мейбума в протоках, нарастанию давления, кистозному расширению, атрофии ацинусов и в конечном итоге выпадению желез [8, 9]. Противоположное мнение высказали J. Jester и соавторы, которые считают, что ключевую роль в формировании ДМЖ играет нарушение регенерации ацинарных клеток [5]. К развитию гипосекреторной функции железы приводит аномальная пролиферация и дифференцировка мейбоцитов, не сопровождающаяся обструкцией устьев [10, 11]. Но, вероятнее всего, ДМЖ является результатом сочетания гиперкератинизации протоков и аномальной регенерации ацинарных базальных клеток [12—14].

Представляет интерес изучение патогенеза ДМЖ, ассоциированной с различными соматическими состояниями организма.

Потенциальной причиной ДМЖ считают процесс старения организма, часто называемый возрастной дисфункцией (ассоциированная с возрастом ДМЖ). В этом случае ДМЖ вызвана снижением количества дифференцирующихся мейбоцитов и, как следствие, атрофией желез с аномальной экскрецией липидов [11, 15].

Прогрессирующая атрофия МЖ (выпадение) сопровождается снижением качества и количества мейбума [16—18].

В поперечном исследовании с участием 177 пациентов (средний возраст — 57±1,6 года) зафиксировано, что ДМЖ коррелирует с возрастом и не зависит от пола [19]. Однако в перекрестном исследовании в азиатской популяции было установлено большее количество патоморфологических изменений МЖ у пожилых мужчин по сравнению с женщинами [20]. Несмотря на имеющиеся к настоящему времени данные, патогенез ДМЖ, и в частности ассоциированной с возрастом ДМЖ, остается не до конца ясным, его изучение является развивающейся областью исследований.

Многочисленными работами установлена ассоциация развития ДМЖ с системными факторами, такими как дефицит андрогенов, гиперлипидемия и сахарный диабет (СД) [21—23]. Установлено, что СД является весомым фактором риска развития ДМЖ [24]. Клинически зафиксировано увеличение частоты ДМЖ у больных СД [25]. Эта взаимосвязь подтверждена проведенным метаанализом на более чем 2,5 млн пациентов [26]. Авторами было высказано предположение, что изменение продукции инсулина, развитие рецепторной резистентности к нему и гипергликемия являются ключевыми факторами патогенеза ДМЖ у пациентов с СД. Гипергликемия стимулирует липолиз в адипоцитах, что отражается на качественном составе мейбума [27, 28]. Подтверждением этих патологических механизмов служит выявленная способность инсулина стимулировать пролиферацию иммортализованных эпителиальных клеток МЖ человека, тогда как гипергликемия обладает токсическим эффектом [29]. Установлено, что концентрация глюкозы в слезной жидкости пациентов с ДМЖ на фоне СД значительно выше, чем у здоровых людей [30]. В то же время уровень ацетата — метаболита глюкозы — в слезной пленке пациентов с ДМЖ значительно снижен по сравнению со здоровыми людьми [31]. Ацетат — это молекула, которая поддерживает метаболизм ацетил-коэнзима A, липогенез и ацетилирование белков мейбума [32]. Снижение уровня ацетата в слезной жидкости при ДМЖ может усиливать метаболизм глюкозы в клетках глазной поверхности и приводить к нарушению ее гомеостаза.

ДМЖ при СД 2 типа и ассоциированный с ним синдром «сухого глаза» с повышенной испаряемостью слезы сопровождаются развитием воспаления на глазной поверхности и ростом популяций бактерий, который поддерживается за счет субстратов липидов с аномальным строением [33—35]. Но, несмотря на полученные в процессе исследований результаты, в 2017 г. эксперты TFOS DEWS II сообщили об отсутствии достаточных данных, касающихся влияния соматического статуса, пола, возраста и других факторов на развитие ДМЖ [36]. В настоящее время необходимы дальнейшие исследования для выявления взаимосвязи между метаболическим статусом пациента и наличием ДМЖ. Всемирной организацией здравоохранения дано определение метаболическому синдрому как патологическому состоянию, характеризующемуся абдоминальным ожирением, резистентностью к инсулину, гипертензией, дислипидемией (высокий уровень триглицеридов и/или низкий уровень холестерина липопротеинов высокой плотности) и гипергликемией [37, 38]. Доказано, что пациенты с метаболическим синдромом подвержены высокому риску развития СД 2 типа, который, в свою очередь, идентифицирован как ведущий системный фактор риска формирования ДМЖ [39—41].

Наука метаболомика изучает уникальные химические низкомолекулярные метаболические профили, специфичные для процессов, протекающих в живых клетках [42]. Метаболом представляет собой совокупность всех метаболитов, являющихся конечным продуктом обмена веществ в клетке, ткани, органе или организме [43]. В то время как сведения об экспрессии мРНК генов и данные протеомного анализа не раскрывают полностью всего, что может происходить в клетке, метаболические профили могут дать мгновенный снимок физиологических процессов в клетке, в том числе и в мейбоцитах.

В норме около 22% мейбума составляют белки. В настоящее время идентифицировано более 90 белков: кератины (-1, -5, -6, -7, -9, -10, -13, -16), белки поверхностно-активных веществ (-B, -C), липокалины, лактоферрин, белки переноса фосфолипидов, липофиллины, цитохром C, фарнезоид X, ламинин α-3, лизоцим C и протеогликаны [44].

Белки мейбума имеют особенность: они частично или полностью денатурированы, что обнажает больше гидрофобных аминокислотных остатков и увеличивает их общую липофильную способность. Такие белки оказываюет конденсирующее действие на липиды. При повышении температуры плавления мейбума происходит стаз секрета в протоках и закупорка устьев МЖ [45].

Одной из задач данного обзора является характеристика таких первичных метаболитов МЖ, как кератины, лактоферрины и липокалины для получения более целостного представления о патогенезе ДМЖ при метаболических нарушениях.

Как было сказано выше, подтверждением протокоцентрической теории служит наличие гиперкератинизации, которая является основным фактором развития обструктивной ДМЖ и делает кератины потенциальным объектом исследования. Присутствие кератинов в мейбуме впервые было обнаружено на экспериментальной модели животного с индуцированной гиперкератинизацией МЖ [46]. Анализ главных компонентов мейбума в норме и при ДМЖ с использованием инфракрасной спектроскопии позволил выявить изменения содержания кератинов, которые могут влиять на вязкость липидов мейбума [47]. А с помощью протеомного анализа мейбума было установлено наличие кератинов, которые играют роль в липидном обмене, защите поверхностного эпителия, развитии воспаления [48]. Кератины преимущественно образуются в результате слущивания ороговевших эпителиальных клеток, выстилающих протоки МЖ [49]. В мейбуме наблюдали увеличение протоковых цитокератинов на 10% у пациентов с ДМЖ [50]. Кератин, смешиваясь с липидным слоем слезной пленки in vitro, способен дестабилизировать его [51]. Кератин-10 и кератин-1 считаются маркерами кератинизации, поскольку они были обнаружены в конечной стадии дифференцировки кератиноцитов. Для подтверждения гипотезы о том, является ли гиперкератинизация протокового эпителия основополагающей в развитии обструкции протоков МЖ, был изучен характер экспрессии кератина-10 и -1 в МЖ доноров. Результаты исследования показали: аномальная дифференцировка и пролиферация эпителия центральных протоков может быть причиной обструкции МЖ. Это позволило авторам считать снижение пролиферации и обновления ацинарных клеток основной причиной атрофии МЖ с возрастом. По их предположению, наличие сверхэкспрессии гиперпролиферативных кератинов в мейбуме может стать потенциальным биомаркером обструктивной ДМЖ [52]. O. Tektaş и соавторы показали роль кератинов-1, -10, -13, -14 и -19 в процессе кератинизации протоков МЖ [53]. Избыточные концентрации кератина нарушают нормальную структуру липидного слоя, что может сократить время разрыва слезной пленки у пациентов с ДМЖ [49]. Интересно отметить, что все ацинусы МЖ имеют высокое процентное соотношение кератина и липидов, которое постепенно уменьшается по мере продвижения секрета к устью железы [5]. Это открытие позволяет сделать вывод: в процессе созревания секрета, синтезируемого МЖ, и его экскреции из устья происходит отщепление кератина от липида. Известно, что при метаболическом синдроме, в особенности при СД 2 типа, происходит дислипидемия мейбума. Но при этом роль кератина как патогенетического фактора обструктивной ДМЖ у таких пациентов остается не ясной.

Изучение белок-липидных взаимодействий в составе мейбума с применением протеомных технологий являются активно развивающейся областью науки. Благодаря методам липидомики возросло количество данных, подтверждающих наличие белков в составе липидного слоя слезной пленки [54].

Одним из белков, идентифицированных в мейбуме, является иммунологический медиатор контроля воспаления лактоферрин [49]. Ранее считалось, что 33 % лактоферрина слезной жидкости экскретируется слезной железой, но в работе J. Su и соавторов было показано наличие в МЖ мыши и человека микроРНК, взаимодействующих с лактоферрином (данные микроРНК доступны в NCBI’s Gene Expression Omnibus под серийным номером GSE1582) [55].

Подтверждением этому служит протеомный анализ мейбума и обнаружение в нем лактоферрина [56]. Нарушение секреции мейбума приводит к снижению концентрации лактоферрина в слезе, поскольку не весь обнаруженный лактоферрин синтезируется слезными железами. Существует мнение, что уровень лактоферрина в слезной жидкости связан с ДМЖ, но не зависит от атрофии МЖ. Авторами была выдвинута гипотеза об отрицательном влиянии ДМЖ на состояние глазной поверхности с инициацией воспаления добавочных слезных желез, следствием которого является нарушение секреции лактоферрина [57]. Однако необходимы дополнительные исследования для выявления взаимосвязи между ДМЖ и уровнем лактоферрина в мейбуме.

Современные протеомные технологии позволяют выявить закономерности качественных изменений непосредственно секрета МЖ. Анализ состава секрета мейбума изучали с использованием жидкостной хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией [58].

Для достижения точности исследования использовали различные варианты масс-спектрометрического анализа, в частности, с ионными ловушками и мечеными атомами [59, 60].

Следует отметить, что на полученные результаты влияет применение различных модификаций, отсутствие стандартизации методик. Кроме того, изучение секрета МЖ у человека представляет определенные трудности из-за сложностей сбора биоматериала. Определение количественного и качественного компонентов мейбума и их точной локализации возможно также с помощью флуоресцентной микроскопии [61].

Одним из основополагающих белковых компартментов мейбума является липокалин, идентифицированный с помощью флуоресцентного анализа. Главным источником липокалина являются слезные железы, хотя его присутствие было установлено и в мейбуме [44]. Липокалин слезы относится к низкомолекулярным белкам, действующим внеклеточно. Липокалин благодаря наличию лигандов способен образовывать связи с различными липофильными молекулами, а также макромолекулами, включая такие белки, как лактоферрин и лизоцим. Функция липокалина заключается в регуляции вязкости слезы, связывании и высвобождении липидов, инактивации эндонуклеаз вирусной ДНК, связывании микробных сидерофоров (хелатов железа, используемых для доставки незаменимого железа к бактериям). Белок служит биомаркером синдрома «сухого глаза» и обладает противовоспалительной активностью [62, 63].

Пространственная конформация липидов в слезах имеет решающее значение для поддержания их функциональной активности. Липиды в слезах человека могут замедлять испарение, образуя поверхностный барьер на границе с воздухом. Липиды, образующие комплексы с основным липидсвязывающим белком в слезах, липокалином слезы, находятся в водном слое и могут выполнять функции, не связанные с образованием поверхностного барьера. При относительно небольших концентрациях в слезах все керамиды образуют комплекс с липокалином.

Установлено отсутствие связывания ди- и триглицеридов, сквалена, O-ацил-омега-гидроксижирных кислот, а также сложных эфиров воска и холестерина с липокалином из-за присутствия этих липидов вблизи границы раздела воздух–воздух [64].

Анализ литературных источников показал недостаток сведений о белках в составе мейбума и об их влиянии на функциональное состояние слезной пленки. Также отсутствуют данные об изменении качественного и количественного состава белков при ДМЖ или заболеваниях, ассоциированных с поражением МЖ. Эти аргументы указывают на необходимость поиска чувствительного и объективного метода для характеристики качественного состава мейбума и определения изменений соотношения липидов и белков. К таким методам относятся флуоресцентная спектроскопия в видимом оптическом диапазоне и спектроскопия ядерного магнитного резонанса. СД 2 типа, наряду с системными метаболическими нарушениями, ассоциирован с диспротеинемией, что может существенно влиять на экспрессию белков мейбума, усугубляя течение ДМЖ. Изучение химических и молекулярных изменений, к которым приводят качественные и количественные модификации классов липидов и белков, будет способствовать пониманию влияния различных соматических состояний на функцию МЖ.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Tiffany JM. Physiological Functions of the Meibomian Glands. Prog Retinal Eye Res. 1995;14:47-74.  https://doi.org/10.1016/1350-9462(93)E0008-R
  2. Butovich IA, Lu H, McMahon A, Eule JC. Toward an Animal Model of the Human Tear Film: Biochemical Comparison of the Mouse, Canine, Rabbit, and Human Meibomian Lipidomes. Investig Opthalmol Vis Sci. 2012; 53:6881-6896. https://doi.org/10.1167/iovs.12-10516
  3. Butovich IA. Meibomian glands, meibum, and meibogenesis. Exp Eye Res. 2017;163:2-16.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2017.06.020
  4. Nelson JD, Shimazaki J, Benitez-del-Castillo JM, Craig JP, McCulley JP, Den S. The international workshop on meibomian gland dysfunction: report of the definition and classification subcommittee. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2011;52:1930-1937. https://doi.org/10.1167/iovs.10-6997b
  5. Jester JV, Parfitt GJ, Brown DJ. Meibomian gland dysfunction: Hyperkeratinization or atrophy? BMC Ophthalmol. 2015;15(1):156.  https://doi.org/10.1186/s12886-015-0132-x
  6. Hwang HS, Parfitt GJ, Brown DJ, Jester JV. Meibocyte differentiation and renewal: Insights into novel mechanisms of meibomian gland dysfunction (MGD). Exp Eye Res. 2017;163:37-45.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2017.02.008
  7. Knop E, Knop N, Millar T, Obata H, Sullivan DA. The international workshop on meibomian gland dysfunction: Report of the subcommittee on anatomy, physiology, and pathophysiology of the meibomian gland. Investig Ophthalmol Vis Sci. 2011;52:1938-1978. https://doi.org/10.1167/iovs.10-6997c
  8. Arita R, Fukuoka S, Morishige N. New insights into the morphology and function of meibomian glands. Exp Eye Res. 2017;163:64-71.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2017.06.010
  9. Knop E, Knop N. Meibomian glands: Part IV. Functional interactions in the pathogenesis of meibomian gland dysfunction (MGD). Ophthalmologe. 2009;106:980-987.  https://doi.org/10.1007/s00347-009-2044-8
  10. Kim HM, Eom Y, Song JS. The Relationship Between Morphology and Function of the Meibomian Glands. Eye Contact Lens. 2018;44(1):1-5.  https://doi.org/10.1097/ICL.0000000000000336
  11. Chhadva P, Goldhardt R, Galor A. Meibomian Gland Disease: The Role of Gland Dysfunction in Dry Eye Disease. Ophthalmology. 2017;124(11S): S20-S26.  https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2017.05.031
  12. Xie HT, Sullivan DA, Chen D, Hatton MP, Kam WR, Liu Y. Biomarkers for progenitor and differentiated epithelial cells in the human meibomian gland. Stem Cells Transl Med. 2018;7:887-892.  https://doi.org/10.1002/sctm.18-0037
  13. Chen H, Gao H, Xie HT, Liu ST, Huang YK, Zhang MC. Hyperkeratinization and proinflammatory cytokine expression in meibomian glands induced by staphylococcus aureus. Investig Ophthalmol Vis Sci. 2021;62:11.  https://doi.org/10.1167/iovs.62.13.11
  14. Qu JY, Xiao YT, Zhang YY, Xie HT, Zhang MC. Hedgehog signaling pathway regulates the proliferation and differentiation of rat meibomian gland epithelial cells. Investig Ophthalmol Vis. Sci. 2021;62:33.  https://doi.org/10.1167/iovs.62.2.33
  15. Yin Y, Gong L. Uneven Meibomian Gland Dropout Over the Tarsal Plate and its Correlation With Meibomian Gland Dysfunction. Cornea. 2015; 34(10):1200-1205. https://doi.org/10.1097/ICO.000000000000053
  16. Gutgesell VJ, Stern GA, Hood CI. Histopathology of meibomian gland dysfunction. Am J Ophthalmol. 1982;(94):383-387.  https://doi.org/10.1016/0002-9394(82)90365-8
  17. Parfitt GJ, Lewis PN, Young RD, Richardson A, Lyons JG, Di Girolamo N. Renewal of the holocrine meibomian glands by label-retaining, unipotent epithelial progenitors. Stem Cell Rep. 2016;(7):399-410.  https://doi.org/10.1016/j.stemcr.2016.07.010
  18. Rocha EM, Alves M, Rios JD, Dartt DA. The aging lacrimal gland: changes in structure and function. Ocul Surf. 2008;6:162-174.  https://doi.org/10.1016/S1542-0124(12)70177-5
  19. Machalińska A, Zakrzewska A, Safranow K, Wiszniewska B, Machaliński B. Risk factors and symptoms of meibomian gland loss in a healthy population. J. Ophthalmol. 2016;7526120. https://doi.org/10.1155/2016/7526120
  20. Nien CJ, Massei S, Lin G, Nabavi C, Tao J, Brown DJ, et al. Effects of age and dysfunction on human meibomian glands. Arch Ophthalmol. 2011; 129(4):462-469.  https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2011.69
  21. Wang LX, Deng YP. Androgen and meibomian gland dysfunction: from basic molecular biology to clinical applications. Int J Ophthalmol. 2021; 14(6):915-922.  https://doi.org/10.18240/ijo.2021.06.18
  22. Bu J, Wu Y, Cai X, Jiang N, Jeyalatha MV, Yu J, He X, He H, Guo Y, Zhang M, Quantock AJ, Liu Z, Li W. Hyperlipidemia induces meibomian gland dysfunction. Ocul Surf. 2019;17(4):777-786.  https://doi.org/10.1016/j.jtos.2019.06.002
  23. Mussi N, Haque W, Robertson DM. The Association Between Risk Factors for Metabolic Syndrome and Meibomian Gland Disease in a Dry Eye Cohort. Robertson Clin Ophthalmol. 2021;15:3821-3832. https://doi.org/10.2147/OPTH.S322461
  24. Guo Y, Zhang H, Zhao Z, Luo X, Zhang M, Bu J, Liang M, Wu H, Yu J, He H, Zong R, Chen Y, Liu Z, Li W. Hyperglycemia Induces Meibomian Gland Dysfunction. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2022;3;63(1):30. https://doi.org/10.1167/iovs.63.1.30
  25. Shamsheer RP, Arunachalam C. A Clinical Study of Meibomian Gland Dysfunction in Patients with Diabetes. Middle East African J Ophthalmol. 2015;22:462-466.  https://doi.org/10.4103/0974-9233.167827
  26. Yoo TK, Oh E. Diabetes mellitus is associated with dry eye syndrome: A meta-analysis. Int Ophthalmol. 2019;39:2611-2620. https://doi.org/10.1007/s10792-019-01110-y
  27. Ding J, Liu Y, Sullivan D. Effects of Insulin and High Glucose on Human Meibomian Gland Epithelial Cells. Investig Opthalmol Vis. Sci. 2015;56: 7814-7820. https://doi.org/10.1167/iovs.15-18049
  28. Xiao J, Adil MY, Chen X, Utheim ØA, Ræder S, Tønseth KA, Lagali NS, Dartt DA, Utheim TP. Functional and Morphological Evaluation of Meibomian Glands in the Assessment of Meibomian Gland Dysfunction Subtype and Severity. Am J Ophthalmol. 2020;209:160-167.  https://doi.org/10.1016/j.ajo.2019.09.005
  29. Miyake H, Oda T, Katsuta O, Seno M, Nakamura M. Meibomian Gland Dysfunction Model in Hairless Mice Fed a Special Diet With Limited Lipid Content. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016;57(7):3268-3275. https://doi.org/10.1167/iovs.16-19227
  30. Yu T, Han XG, Gao Y, Song AP, Dang GF. Morphological and cytological changes of meibomian glands in patients with type 2 diabetes mellitus. Int J Ophthalmol. 2019;12:1415-1419. https://doi.org/10.18240/ijo.2019.09.07
  31. Lin X, Xu B, Zheng Y, et al. Meibomian Gland Dysfunction in Type 2 Diabetic Patients. J Ophthalmol. 2017;2017:3047867. https://doi.org/10.1155/2017/3047867
  32. Jan RL, Tai MC, Ho CH, et al. Risk of recurrent corneal erosion in patients with diabetes mellitus in Taiwan: a population-based cohort study. BMJ Open. 2020;10:e035933. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2019-035933
  33. Сафонова Т.Н., Зайцева Г.В., Тимошенкова Е.И. Химический анализ состава мейбума на фоне сахарного диабета 2-го типа. Офтальмологические ведомости. 2024;1(17):89-102.  https://doi.org/10.17816/OV488056
  34. Wei Y, Asbell PA. The Core Mechanism of Dry Eye Disease Is Inflammation. Eye Contact Lens: Sci Clin Pr. 2014;40:248-256.  https://doi.org/10.1097/ICL.0000000000000042
  35. Xu KK, Huang YK, Liu X, Zhang MC, Xie HT. Organotypic Culture of Mouse Meibomian Gland: A Novel Model to Study Meibomian Gland Dysfunction In Vitro. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2020;9;61(4):30.  https://doi.org/10.1167/iovs.61.4.30
  36. Wolffsohn JS, Arita R, Chalmers R, Djalilian A, Dogru M, Dumbleton K, Gupta PK, Karpecki P, Lazreg S, Pult H, Sullivan BD, Tomlinson A, Tong L, Villani E, Yoon KC, Jones L, Craig JP. TFOS DEWS II Diagnostic Methodology report. Ocul Surf. 2017;15(3):539-574.  https://doi.org/10.1016/j.jtos.2017.05.001
  37. O’Neill LA, Pearce EJ. Immunometabolism governs dendritic cell and macrophage function. J Exp Med. 2016;213(1):15-23.  https://doi.org/10.1084/jem.20151570
  38. Saklayen MG. The global epidemic of the metabolic syndrome. Curr Hypertens Rep. 2018;20(2):12.  https://doi.org/10.1007/s11906-018-0812-z
  39. Yu T. Changes of meibomian glands in patients with type 2 diabetes mellitus. Int J Ophthalmol. 2016;9(12):1740-1744. https://doi.org/10.18240/ijo.2016.12.06
  40. Garzón PSJ, López-Alemany A, Gené-Sampedro A. Correlation between type 2 diabetes, dry eye and Meibomian glands dysfunction. J Optom. 2019;12(4):256-262.  https://doi.org/10.1016/j.optom.2019.02.003
  41. Arita R. Validity of noninvasive meibography systems: noncontact meibography equipped with a slit-lamp and a mobile pen-shaped meibograph. Cornea. 2013;32(1):65-70.  https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3182a2c7c6
  42. Daviss B. Growing pains for metabolomics. Scientist. 2005;19(8):25-28. 
  43. Jordan KW, Nordenstam J, Lauwers GY, Rothenberger DA, Alavi K, Garwood M, Cheng LL. Metabolomic characterization of human rectal adenocarcinoma with intact tissue magnetic resonance spectroscopy. Dis Colon Rectum J. 2009;52(3):520-525.  https://doi.org/10.1007/DCR.0b013e31819c9a2c
  44. Tsai PS, Evans JE, Green KM, Sullivan RM, Schaumberg DA, Richards SM. Proteomic analysis of human meibomian gland secretions. Brit J Ophthalmol. 2006;90(3):372e377. https://doi.org/10.1136/bjo.2005.080846
  45. Butovich IA, Millar TJ, Ham BM. Understanding and analyzing meibomian lipids — a review. Curr Eye Res. 2008;33(5-6):405-420.  https://doi.org/10.1080/02713680802018419
  46. Jester J, Nicholaides N, Smith RE. Meibomian gland dysfunction I: keratin protein expression. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1989;30:927-935. 
  47. Borchman D, Yappert MC, Foulks GN. Changes in human meibum lipid with meibomian gland dysfunction using principal component analysis. Exp Eye Res. 2010;91:246-256.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2010.05.014
  48. Paugh JR, Alfonso-Garcia A, Nguyen AL, Suhalim JL, Farid M, Garg S, Tao J, Brown DJ, Potma EO, Jester JV. Characterization of expressed human meibum using hyperspectral stimulated Raman scattering microscopy. Ocul Surf. 2019;17(1):151-159.  https://doi.org/10.1016/j.jtos.2018.10.003
  49. Jeyalatha MV, Qu Y, Liu Z, Ou S, He X, Bu J, Li S, Reinach PS, Liu Z, Li W. Function of meibomian gland: Contribution of proteins. Exp Eye Res. 2017;163:29-36.  https://doi.org/10.1016/j.exer.2017.06.009
  50. Roy NS, Wei Y, Kuklinski E, Asbell PA. The growing need for validated biomarkers and endpoints for dry eye clinical research. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2017;58:19.  https://doi.org/10.1167/iovs.17-21709
  51. Palaniappan CK, Schütt BS, Bräuer L, Schicht M, Millar TJ. Effects of keratin and lung surfactant proteins on the surface activity of meibomian lipids. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2013;54:2571-2581. https://doi.org/10.1167/iovs.12-11084
  52. Reneker LW, Irlmeier RT, Shui YB, Liu Y, Huang AJW. Histopathology and selective biomarker expression in human meibomian glands. Br J Ophthalmol. 2020;104:999-1004. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2019-314466
  53. Tektaş OY, Yadav A, Garreis F, Schlötzer-Schrehardt U, Schicht M, Hampel U, et al. Characterization of the mucocutaneous junction of the human eyelid margin and meibomian glands with different biomarkers. Ann Anat. 2012;194:436-445.  https://doi.org/10.1016/j.aanat.2012.07.004
  54. Galor A, Sanchez V, Jensen A, Burton M, Maus K, Stephenson D, Chalfant C, Mandal N. Meibum sphingolipid composition is altered in individuals with meibomian gland dysfunction-a side by side comparison of Meibum and Tear Sphingolipids. Ocul Surf. 2022;23:87-95.  https://doi.org/10.1016/j.jtos.2021.11.011
  55. Su J, Li H, Lin B, Li S, Zhou X, Li W, Guo P. Proteomic Analysis of Meibomian Gland Secretions in Patients With Blepharokeratoconjunctivitis. Transl Vis Sci Technol. 2022;11(12):4.  https://doi.org/10.1167/tvst.11.12.4
  56. Butovich IA, Suzuki T. Effects of Aging on Human Meibum. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2021;62(12):23.  https://doi.org/10.1167/iovs.62.12.23
  57. Chao C, Tong L. Tear lactoferrin and features of ocular allergy in different severities of meibomian gland dysfunction. Optom Vis Sci. 2018;95:930-936.  https://doi.org/10.1097/OPX.0000000000001285
  58. Butovich IA, Uchiyama E, Pascuale MAD. Liquid chromatography–mass spectrometric analysis of lipids present in human meibomian gland secretions. JP McCulley Lipids. 2007;42:765-776. 
  59. Butovich IA, Uchiyama E, Agee S, Mendiola L. Structural Analysis of the Nonpolar Lipids Present in the Human Meibomian Gland Secretions Using Ion Trap Mass Spectrometry. JP McCulley Investig Ophthalmol Vis Sci. 2007;48(13):441-441. 
  60. Butovich IA, Yuksel S. Probing dietary triacylglycerol metabolism and meibogenesis in mice: A stable isotope-labeled tracer liquid chromatography–tandem mass spectrometry study. Wilkerson J Biol Chem. 2023;299(4): 103046. https://doi.org/10.1016/j.jbc.2023.103046
  61. Sanderson MJ, Smith I, Parker I, Bootman MD. Fluorescence microscopy. Cold Spring Harb Protoc. 2014;10:071795. https://doi.org/10.1101/pdb.top071795
  62. Dartt DA. Proteomic analysis of tears in dry eye disease: A prospective, double-blind multicenter study. Ocul Surf. 2011;9(3):126-138.  https://doi.org/10.1016/s1542-0124(11)70022-2
  63. Патент РФ на изобретение №2 662 273/25.07.2018 Бюл. №21. Ангелуц А.А., Балакин А.В., Ожередов И.А., Прокопчук М.Н., Сафонова Т.Н., Патеюк Л.С., Солянкин П.М., Шкуринов А.П., Зайцева Г.В. Способ оценки гидратации роговицы глаза. Ссылка активна на 12.03.2024. https://www.elibrary.ru/download/elibrary_37378145_66613595.PDF
  64. Jung GT, Kim M, Song JS, Kim TI, Chung TY, Choi CY, Kim HS, An WJ. Tear Lipocalin and Lipocalin-Interacting Membrane Receptor Ben J. Glasgow. Ocul Surf. 2023;29:68-76.  https://doi.org/10.1016/j.jtos.2023.04.015

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.