
Мелфалан при лечении пролиферативной витреоретинопатии (экспериментальное исследование)
Журнал: Вестник офтальмологии. 2020;136(4):19-25.
DOI: 10.17116/oftalma202013604119
Прочитано: 3801 раз
Резюме
ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ
Изучение эффективности препарата мелфалан в качестве антипролиферативного средства при лечении экспериментальной пролиферативной витреоретинопатии (ПВР).
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Материалом для экспериментального исследования послужили 24 глаза 12 кроликов породы шиншилла, у которых моделировали ПВР на обоих глазах путем интравитреального введения культуры клеток гетерогенных активированных фибробластов 200 тыс. клеток в 0,1 мл. Лечение экспериментальной ПВР проводили через 1 день после моделирования процесса. В 1-й группе животных (6 глаз) в правый глаз однократно интравитреально вводили мелфалан 0,02 мг в 0,1 мл. Во 2-й группе животных (6 глаз) в правый глаз однократно интравитреально вводили мелфалан 0,005 мг в 0,1 мл. Левые глаза в обеих группах оставались без лечения. Через 30 дней после вывода животных из эксперимента глаза энуклеировали, фиксировали в 10% буферированном растворе формалина и подвергали стандартной гистологической обработке. Исследование парафиновых срезов глаз проводили с помощью микроскопической системы Leica (Leica Microsystems, Германия) со встроенной цифровой камерой при увеличении 200—600.
РЕЗУЛЬТАТЫ
В 1-й и 2-й группах исследования в глазах кроликов, получивших лечение, отмечалось отсутствие ПВР, в отличие от глаз без лечения, где определялась ПВР. В 1-й группе (мелфалан 0,02 мг в 0,1 мл) отмечались изменения в ретинальном пигментном эпителии (РПЭ), которые расценивались как ретинотоксическое действие. Глиальное перерождение и истончение сетчатки с исчезновением фоторецепторного слоя являются следствием нарушения метаболизма сетчатки, вызванного деструкцией РПЭ. Во 2-й группе сетчатка имела более сохранную структуру: единичные очаги с уменьшением объема наружного ядерного слоя, укорочением палочек и колбочек с сохранением внутренних слоев сетчатки.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Применение 0,005 мг мелфалана при однократном интравитреальном введении оказывало положительный антипролиферативный эффект на развитие экспериментальной ПВР с минимальными ретинотоксическими изменениями.
Ключевые слова
- пролиферативная витреоретинопатия
- мелфалан
- тракционная отслойка сетчатки
- ретинальный пигментный эпителий
Дата поступления: 13.06.2019
Дата принятия в печать: 18.12.2019
Дата публикации: 10.11.2020
Пролиферативная витреоретинопатия (ПВР) — сложное гетерогенное заболевание, характеризующееся формированием мембранных образований на внутренней поверхности сетчатки. Особенностью этих мембран является наличие у них контрактильных свойств, приводящих к тракционной отслойке сетчатки с потерей зрительных функций. ПВР, будучи многофакторным патологическим процессом, чаще всего возникает как осложнение при таких клинических состояниях, как регматогенная и травматическая отслойка сетчатки. Развитие ПВР после хирургического лечения отслойки сетчатки вызывает рецидивы заболевания — неприлегание сетчатки [1].
Направленность медикаментозного воздействия связана со стадийностью ПВР. Многочисленные препараты, протестированные на моделях животных и на клеточных культурах, демонстрируют свою эффективность [2], однако многие из них имеют тяжелые побочные эффекты, и лишь некоторые используются в клинической практике. Сложность заключается и в достижении терапевтической концентрации при их системном введении. Введение препаратов интравитреально не используется в клинической практике, так как существует концепция о токсическом влиянии в отношении сетчатки, а информации об интраокулярной фармакокинетике недостаточно [3, 4]. Сведения о цитопатогенезе ПВР ориентируют офтальмологов на использование патогенетической терапии на различных стадиях заболевания: стадии воспаления-альтерации, пролиферативной стадии и стадии рубцевания.
Были протестированы многочисленные препараты патогенетически ориентированного медикаментозного лечения ПВР: противовоспалительные агенты, антипролиферативные препараты, антиоксиданты. На стадии пролиферации заболевания широко изучаются применение и эффективность использования антипролиферативных препаратов, ингибирующих клеточный цикл и клеточную пролиферацию: 5-фторурацил, даунорубицин, таксол, колхицин, ретиноевая кислота, рибозимы, этопозид и др. [5—12].
Наиболее изученным препаратом для лечения ПВР является 5-фторурацил. Препарат действует на синтез ДНК, предотвращая образование тимидина. H. Borhani и соавт. [13] оценивали на модели ПВР у кроликов замедленное высвобождение препарата, заключенного в биоустройство, введенное интравитреально в концентрациях 0,5 и 1 мг. Исследования показали эффективность лечебного действия 5-фторурацила на развитие ПВР, а при большей концентрации препарата авторы отмечали предотвращение развития тракционной отслойки сетчатки в 100% случаев.
Применению 5-фторурацила 200 мг/мл и низкомолекулярного гепарина 5 ЕД/мл, добавленных в ирригационный раствор во время витреоретинальной операции, были посвящены три рандомизированных контролируемых клинических исследования [14—18].
Проведенные экспериментальные и клинические исследования по применению антипролиферативных препаратов в качестве местной и системной терапии при развитии ПВР показали наличие токсических свойств препаратов и недостаточную ингибицию пролиферативных процессов, что вызвало необходимость поиска новых лекарственных средств. Другой проблемой в лечении ПВР является способ доставки антипролиферативного препарата к патологическому очагу в заднем отрезке глаза. Наиболее адекватным способом, учитывая наличие гематоретинального барьера, является интравитреальный способ введения, позволяющий создавать терапевтическую концентрацию лекарственного вещества в заднем отрезке глаза, минимизируя системные побочные эффекты, наблюдаемые при парентеральном и пероральном введении.
В связи с этим большой интерес представляет препарат мелфалан, используемый в онкологической практике. Мелфалан является производным азотистого иприта, относится к бифункциональным алкилирующим соединениям циклонеспецифического действия. Препарат обладает противоопухолевым, алкилирующим, цитостатическим и иммунодепрессивным действием и вызывает повреждение макромолекулы ДНК, нарушает ее полимеризацию и редупликацию, способствует образованию дефектных форм ДНК и РНК и останавливает синтез белка. Препарат активен в отношении покоящихся и активно делящихся опухолевых клеток. Наиболее чувствительными фазами митотического цикла являются конец фазы G2 и переход G2-M.
Мелфалан применяли в офтальмоонкологии при лечении ретинобластомы в качестве препарата для внутриартериальной химиотерапии дополнительно к внутривенной химиотерапии, однако, несмотря на положительный эффект — резорбцию опухоли, появлялись рецидивы в виде отсевов в стекловидном теле. Введение препарата интравитреально позволило добиться полной резорбции отсевов [19—22]. В настоящее время в американских и многих европейских клиниках интравитреальное введение мелфалана входит в протокол лечения детей с двусторонней ретинобластомой [23]. Авторы отмечают, что системная химиотерапия совместно с интравитреальным введением мелфалана в дозе 20—30 мкг в 0,1 мл позволяет сохранить ребенку не только глаз, но и зрение. Но при интравитреальном введении мелфалан оказывает токсическое действние на сетчатку в дозах 20—30 мкг/мл, в результате чего развиваются атрофические процессы в сетчатке [24].
Актуальным оказалось использование этого препарата при лечении пролиферативных процессов глаза неонкологического генеза. Однако, учитывая токсические свойства мелфалана, необходимо было определить безопасную терапевтическую концентрацию препарата. Нами проведены экспериментально-морфологические исследования различных концентраций мелфалана (0,02; 0,01; 0,0075; 0,005 мг) [25]. Исследования показали появление деструктивных процессов в ретинальном пигментном эпителии (РПЭ) и атрофических процессов в наружных ядерном и плексиформных слоях сетчатки, имеющих дозозависимый характер при использовании мелфалана в дозах 0,02 и 0,01 мг. Мелфалан в дозе 0,005 мг, введенный однократно интравитреально, обладал минимальной ретинотоксичностью.
Цель исследования — изучение эффективности препарата мелфалан в качестве антипролиферативного средства при лечении пролиферативного процесса неонкологического генеза — экспериментальной ПВР.
Материал и методы
Материалом для исследования модели послужили 12 кроликов (24 глаза) породы шиншилла массой 2,5—3,0 кг, у которых моделировали ПВР на обоих глазах путем интравитреального введения через плоскую часть цилиарного тела инсулиновой иглой 32G культуры клеток гетерогенных активированных фибробластов 200 тыс. клеток в 0,1 мл из коллекции клеточных культур ИБР РАН [26]. Модель экспериментальной ПВР была разработана совместно с Институтом биологии развития, где проводилась работа по приготовлению культуры фибробластов человека. Развитие ПВР в эксперименте происходило через 1 мес и имело место в 100% случаев, оно было идентифицировано морфологически с появлением эпиретинальных мембран (ЭРМ) на внутренней поверхности сетчатки. Эволюция ЭРМ включала основные стадии ее развития, от клеточно-волокнистой до фиброзной, и модель может быть использована для объективной оценки эффективности антипролиферативных препаратов.
Лечение экспериментальной ПВР проводили через 1 день после моделирования процесса. Животные были разделены на две группы. В 1-й группе животных (6 кроликов, 6 глаз) в правый глаз однократно интравитреально инсулиновой иглой 32G через плоскую часть цилиарного тела вводили мелфалан в концентрации 0,02 мг в 0,1 мл. Во 2-й группе животных (6 кроликов, 6 глаз) в правый глаз однократно интравитреально инсулиновой иглой 32G через плоскую часть цилиарного тела вводили мелфалан в концентрации 0,005 мг в 0,1 мл. Концентрация мелфалана 0,02 мг применяется онкологами для интравитреального введения при лечении ретинобластомы. Учитывая осложнения при интравитреальном введении препарата в данной концентрации, мы использовали концентрацию мелфалана 0,005 мг, которая изучена в эксперименте как наиболее безопасная [25]. Левый глаз у всех животных оставляли контрольным (без лечения). Животных наблюдали в течение 1 мес с использованием методов офтальмологического исследования — биомикроскопии и офтальмоскопии. После вывода животных из эксперимента глаза энуклеировали, фиксировали в 10% буферированном формалине и подвергали стандартной гистологической обработке. Микроскопическое исследование проводили с помощью микроскопической системы Leica (Leica Microsystems, Германия) со встроенной цифровой камерой при увеличении 200—600.
Результаты
В группе контроля в левых глазах 12 кроликов наблюдалось появление ЭРМ в виде волокнистых структур на внутренней поверхности сетчатки (рис. 1).

Рис. 1. ЭРМ (ПВР) на внутренней поверхности сетчатки при экспериментальном моделировании без лечения.
Здесь и на рис. 2—7 окраска гематоксилином и эозином. Ув. 200.
При исследовании 1-й группы (6 кроликов, 12 глаз) в 6 глазах, получавших лечение, отмечалось отсутствие ЭРМ. Однако доминирующими были атрофические изменения сетчатки, которые имели различную выраженность в виде преимущественно двух типов изменений.
Очаги первого типа характеризовались поражением всех слоев сетчатки с глиальным ее замещением. Отмечалось полное разрушение сетчатки, утрата ее слоистости. Сетчатка превращалась в глиальную ткань, спаянную с атрофичной хориоидеей (рис. 2).

Рис. 2. Эксперимент, 1-я группа.
Атрофический очаг сетчатки первого типа: глиальное перерождение сетчатки. Ув. 400.
Очаги второго типа характеризовались истончением сетчатки с исчезновением фоторецепторного слоя (слоя палочек и колбочек, наружного ядерного и плексиформного слоев), сохранялся лишь редуцированный внутренний ядерный слой (рис. 3).

Рис. 3. Эксперимент, 1-я группа.
Атрофический очаг сетчатки второго типа. Отсутствие фоторецепторного слоя сетчатки. Атрофия внутреннего зернистого слоя. Ув. 400.
Во всех глазах также диагностировались выраженные деструктивные процессы в РПЭ: диссоциация клеток, их миграция, оголение мембраны Бруха (рис. 4).

Рис. 4. Эксперимент, 1-я группа.
Деструкция РПЭ. Миграция клеток и очаги оголения мембраны Бруха. Ув. 400.
При исследовании 2-й группы (6 кроликов, 12 глаз) в 6 глазах, получивших лечение, микроскопически отмечалась полная редукция пролиферативного процесса, сетчатка прилежала и сохраняла свою нормальную структуру (рис. 5).

Рис. 5. Эксперимент, 2-я группа.
Сетчатка после введения 0,005 мг мелфалана имеет нормальное строение: структура сохранена, ПВР отсутствует. Ув. 200.
Грубые атрофические изменения в сетчатке (очаги первого и второго типа) отсутствовали. Однако в 5 глазах отмечались единичные дистрофические очаги, которые мы расценили как очаги третьего типа, которые характеризовались небольшим уменьшением объема наружного ядерного слоя, укорочением палочек и колбочек. При этом отмечалось полное сохранение внутренних слоев сетчатки (рис. 6).

Рис. 6. Эксперимент, 2-я группа.
Атрофический очаг сетчатки третьего типа. Уменьшение объема наружного ядерного слоя. Укорочение палочек и колбочек. Ув. 200.
Отмечались единичные деструктивные изменения в РПЭ с диссоциацией РПЭ и оголением мембраны Бруха (рис. 7).

Рис. 7. Эксперимент, 2-я группа.
Начальные изменения РПЭ: диссоциация клеток в пласте. Ув.400.
Обсуждение
Резюмируя полученные в эксперименте результаты, можно сделать заключение, что мелфалан является эффективным антипролиферативным препаратом, способствующим ингибиции пролиферативного процесса при лечении ПВР. Вместе с тем препарат обладает токсическими свойствами. Выраженность токсических осложнений зависит от концентрации препарата. Высокая концентрация, применяемая в онкологической практике (0,02 мг), вызывает распространенные атрофические изменения в сетчатке. В основе токсического действия, как показал анализ морфологического исследования, лежала атрофия преимущественно наружных слоев сетчатки: слоя палочек и колбочек, наружного ядерного и наружного плексиформного слоев, т.е. поражался фоторецепторный слой сетчатки. Известно, что функция фоторецепторного слоя тесно связана с метаболизмом РПЭ, структура которого значительно изменяется при интравитреальном введении мелфалана. Отмечались диссоциация клеток в пласте, их миграция с оголением мембраны Бруха. Фармакокинетические исследования показали, что мелфалан накапливался в РПЭ в большей концентрации, чем в сетчатке [27, 28]. Такая «тропность» мелфалана к РПЭ объясняет возникновение осложнений, связанных с изменением РПЭ и последующих нарушений функций фоторецепторов, ведущих к развитию атрофического процесса сетчатки, т. е. РПЭ является мишенью токсического действия мелфалана, выраженность которого зависела от концентрации препарата. Применение в эксперименте концентрации мелфалана 0,005 мг вызывало положительный лечебный антипролиферативный эффект на модели ПВР: не наблюдалось возникновение новообразованных эпиретинальных мембран на внутренней поверхности сетчатки, отсутствовало развитие тракционной отслойки сетчатки. Изменения РПЭ носили ограниченный характер с небольшой диссоциацией клеток, а атрофические процессы в сетчатке имели начальный характер и могут быть обратимыми.
Заключение
Проведенные экспериментальные исследования доказали эффективность антипролиферативного действия препарата мелфалан при однократном интравитреальном введении в концентрации 0,005 мг в 0,1 мл при лечении экспериментальной ПВР [29].
Использование эффективного антипролиферативного препарата во время витреоретинальной хирургии позволит снизить активность ПВР при дистрофической и травматической отслойке сетчатки, а также склерохориоретинального рубцевания при травме заднего отрезка глаза, что повысит эффективность хирургического лечения и снизит число повторных хирургических вмешательств.
Участие авторов:
Концепция и дизайн исследования: И. Х.-М.
Сбор и обработка материалы: Н.Л., И.Х.-М., Е.А.
Написание текста: И. Х.-М., Н.Л.
Редактирование: И. Х.-М., Е.В.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
The authors declare no conflicts of interest.
<- Pastor JC, de la Rua ER, Martin F. Proliferative vitreoretinnopathy: risk factors and pathobiology. Prog Retin Eye Res. 2002;21(1):127-144. https://doi.org/10.1016/s1350-9462(01)00023-4
- Pastor JC, Rodriguez E, Marcos M, et al. Combined pharmacologic therapy in a rabbit model of proliferative vitreoretinopathy (PVR). Ophthalmic Res. 2000;32:25-29. https://doi.org/10.1159/000055583
- Asaria RH, Kon CH, Bunce C, Charteris DG, Wong D, et al. How to predict proliferative vitreoretinopathy. A prospective study. Ophthalmology. 2001;108:1184-1186. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(01)00553-x
- Jonas JB, Hayler JK, Panda-Jonas S. Intravitreal inlection of crystalline cortisone as adjunctive treatment of proliferative vitreoretinopathy. Br J Ophthalmol. 2000;84:1064-1067. https://doi.org/10.1136/bjo.84.9.1064
- Sundaram V, Barsam A, Vergili G. Intravitral low molecular weight heparin and 5-fluorouracil for the prevention of proliferative vitreoretinopathy following retinal reattachment surgery. Cochrane Database Syst Rev. 2010;7: CD006421. https://doi.org/10.1002/14651858.cd006421.pub2
- Kumar A, Nainiwal S, Choudbary I, Tewari HK, Verma LK. Role of daunorubicin in inhibiting proliferative vitreoretinopathy after retinal detachment surgery. Clin Experiment Ophthalmol. 2002;30(5):348-351. https://doi.org/10.1046/j.1442-9071.2002.00554.x
- Daniels SA, Coonley KG, Yoshizumi MO. Taxol treatment of experimental proliferative vitreoretinopathy. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1990; 228(6):513-516. https://doi.org/10.1007/bf00918482
- Berman DH, Gombe GM. Proliferative vitreoretinopathy: does oral low-dose colchicine have an inhibitory effect? A controlled study in humans. Ophthalmic Surg. 1989;20(4):268-272.
- Chang YC, Hu DN, Wu WC. Effect of oral 13-cis-retinoic acid treatment on postoperative clinical outcome of eyes with proliferative vitreoretinopathy. Am J Ophthalmolol. 2008;146(3):440-446. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2008.05.002
- Liang CM, Tai MC, Chang YH, et al. Glucosamine inhibits epithelial-to-mesenchymal transition and migration of retinal pigment epithelium cells in culture and morphologic changes in mouse model of proliferative vitreoretinopathy. Acta Ophthalmol. 2011;89(6):505-514. https://doi.org/10.1111/j.1755-3768.2011.02147.x
- Schiff WM, Hwang JC, Ober MD, et al. Safety and efficacy assessment of chimeric ribozyme to proliferating cell nuclear antigen to prevent recurrence of proliferative vitreoretinopathy. Arch Ophthalmol. 2007;125(9):1161-1167. https://doi.org/10.1001/archopht.125.9.1161
- Kuo HK, Wu PC, Yang PM, Chen YH, Wu YC, Hu DN. Effects of topoisomerase II inhibitors on retinal pigment epithelium and experimental proliferative vitreoretonopathy. J Ocul Pharmacol Ther. 2007;23(1):14-20. https://doi.org/10.1089/jop.2006.0059
- Borhani H, Peyman GA, Rahimy MH, Thompson H. Supression of experimental proliferative vitreoretinopaty by sustained intraocular delivery of 5-FU. Int Ophthalmol. 1995;19(1):43-49. https://doi.org/10.1007/bf00156419
- Charteris DG. Proliferative vitreoretinopathy pathology, surgical management and adjunctive treatment. Br J Ophthalmol. 1995;79:953-960. https://doi.org/10.1136/bjo.79.10.953
- Asaria RH, Kon CH, Bunce C, et al. Adjuvant 5-ftuorouracil and heparin prevents proliferative vitreoretinopathy: resulta from a randomized, double-blind controlled clinical trial. Ophthalmology. 2000;108(7):1179-1183. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(01)00589-9
- Wickham L, Bunce C, Wong D, McGurn D, Charteris DG. Randomized controlled trial of combined 5-fluoroouracil and low-molecular-weight heparin in the management of unselected rhegmatogenous retinal detachments undergoing primary vitrectomy. Ophthalmology. 2007;114(4):698-704. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2006.08.042
- Sundaram V, Barsam A, Vergili G. Intravitral low molecular weight heparin and 5-fluorouracil for the prevention of proliferative vitreoretinopathy following retinal reattachment surgery. Cochrane Database Syst Rev. 2010; 7:CD006421. https://doi.org/10.1002/14651858.cd006421.pub2
- Wickham L, Bunce C, Wong D, McGurn D, Charteris DG. Randomized controlled trial of combined 5-fluoroouracil and low-molecular-weight heparin in the management of unselected rhegmatogenous retinal detachments undergoing primary vitrectomy. Ophthalmology. 2007;114(4):698-704. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2006.08.042
- Francis J, Schaiquevich P, Buiatrago E. Local and systemic toxicity of intravitreal melphalan for vitreous seeding in retinoblastoma: a preclinical and clinical study. Ophthalmology. 2014;121(9):1810-1817. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2014.03.028
- Chassemi F, Shields C. Intravitreal melphalan for refractory or recurrent vitreous seeding from retinoblastoma. Arch Ophthalmol. 2012;130(10):1268-1271. https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2012.1983
- Саакян С.В, Жаруа А. Результаты лечения резистентных и далеко зашедших форм ретинобластомы с помощью суперселективной интраартериальной терапии. Онкопедиатрия. 2015;2(3):333-334.
- Саакян С.В., Мякошина Е.Б., Поляков В.Г., Ушакова Т.Л., Исмаилова Д.М. Макулопатия и хориоретинопатия у детей с ретинобластомой на фоне химиотерапии: клинико-морфологические исследования. Российская педиатрическая офтальмология. 2018;13(4):167-175.
- Francis J, Marr B, Brodie S. Anterior ocular toxicity of intravitreous melphalan for retinoblastoma. JAMA Ophthalmol. 2015;133(12):1459-1463. https://doi.org/10.1001/jamaophthalmol.2015.3119
- Shaiquevich P, Buitrago E, Taich A. Pharmacokinetic analisis of melphalan after superselective ophthalmic artery infusion in preclinic models and retinoblastoma patients. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53(7):4205-4512. https://doi.org/10.1167/iovs.12-9501
- Хорошилова-Маслова И.П., Лепарская Н.Л. Изменения сетчатки при интравитреальном введении антипролиферативного препарата Мелфалан в различных концентрациях (экспериментально-морфологическое исследование). Российский офтальмологический журнал. 2018;11(1): 36-40. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2018-11-1-36-40
- Хорошилова-Маслова И.П., Лепарская Н.Л., Воротеляк Е.А., Васильева А.В. Роль фибробластов в моделировании пролиферативной витреоретинопатии. Вестник офтальмологии. 2017;133(5):4-10. https://doi.org/10.17116/oftalma201713354-10
- Francis J, Marr B, Brodie S. Anterior ocular toxicity of intravitreous melphalan for retinoblastoma. JAMA Ophthalmol. 2015;133(12):1459-1463. https://doi.org/10.1001/jamaophthalmol.2015.3119
- Shaiquevich P, Buitrago E, Taich A. Pharmacokinetic analisis of melphalan after superselective ophthalmic artery infusion in preclinic models and retinoblastoma patients. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53(7):4205-4212. https://doi.org/10.1167/iovs.12-9501
- Хорошилова И.П., Лепарская Н.Л. Способ лечения пролиферативных процессов заднего отрезка глаза. Патент РФ на изобретение №2684927/ 16.04.2019. Бюл. №11. Ссылка активна на 18.06.19. https://www1.fips.ru/iiss/document.xhtml?faces-redirect=true&id=cb51423de6551d27ef32016e7e6b8806
Рекомендуем статьи по данной теме:
Молекулярно-диагностические биомаркеры субретинальной жидкости в оценке тяжести и прогноза регматогенной отслойки сетчатки.Вестник офтальмологии. 2025;141(6):119-126


